CC BY
0
| ГЕМАТОЛОГИЯ ИТРАНСФУЗИОЛОГИЯ | RUSSIAN JOURNAL OF НЕМАТОLOGY AND TRANSFUSIOLOGY (GEMATOLOGIYA I TRANSFUSIOLOGIYA) | 2024; ТОМ69; №2 |
4 генов позволял отличить опухолевые образцы лимфоузлов от реактивных в с чувствительностью 89% и специфичностью 100% (^<0,001). Отсутствие метилирования хотя бы одного из изученных генов ми-кроРНК имело место лишь в 11,0% случаях лимфомы (рис.1). В 24,3% образцов имело место метилирование 2-х, в 44,1 — 3-х и в 11,1% всех 4-х из проанализированных генов. В опухолевой ткани лимфомы достоверно коррелировали друг с другом статусы метилирования пар
Рис. 2. Значимые для лимфомогенеза общие мишени генов микроРНК MiR-34A, MIR-129-2, M/R-34A»MtR-203
геновMIR-34B/CnMIR-203(p=0,006, ,/=0,009), MIR-34B/ChMIR129-2 (p=0,001, /=0,002), MIR-203 и MIR-129-2 (^<0,001, q=0,002), a также MIR34B/C и MIR-34A (^<0,001, /=0,001).
Заключение. Наряду с данными об отсутствии метилирования MIR-203, MIR-34B/C, MIR-34A и MIR129-2 в костном мозге и крови здоровых доноров, полученными в ходе более ранних экспериментов, можно говорить, что выявляемое в пораженных лимфоузлах больных ДВККЛ метилирование анализируемых генов носит опухольспецифичный характер. Согласно данным литературы, для микроРНК miR-34a, miR-34b, miR-34c, miR-129 и miR-203 идентифицировано множество общих мишеней (рис. 2), а именно м-РНК протоонкогенов, связанных с регуляцией клеточного цикла в контрольной точке фазового перехода G1/S, апоптозом, репарацией повреждений ДНК, миграцией клеток, неоангиогенезом и противоопухолевым иммунным ответом. Таким образом, выявляемое соче-танное метилирование MIR-34A, MIR-34B/C, MIR-129-2 и MIR-203 должно в большей степени способствовать приросту злокачественного потенциала лимфомных клеток, чем метилирование отдельных генов.
Финансирование: грант РНФ № 22-2500222, бюджетная тема по Государственному заданию № FWNR-2024-0004.
Высочин И. В.1, Астрелина Т. А.1, Саркисов И. Ю.2, Саркисов А. И.2, Кван О. К.3, Находкин Д. А.4, Судакова Л. В.4, Гаврилей А. В.5, Широков Д. В.6, Сухарева А. С.7, Тюриков Ю. М.8, Рагожина С. Е.9, Ищенкова И. В.10, Фомина А. Ю.11, Бицоев Е. А.12
РЕЗУЛЬТАТЫ ПРОИЗВОДСТВА И КЛИНИЧЕСКОГО ПРИМЕНЕНИЯ КРИОКОНСЕРВИРОВАННЫХ ТРОМБОЦИТОВ
ВЛПУ РФ С 2016 ПО 2023 Г.
1ФГБУ ГНЦ ФМБЦ им АИ Бурназяна ФМБА России, 2НПП Биотех-М, 3ФГАУ «НМИЦ сти «Областная станция переливания крови», 5ГБУЗ Тюменской области «Областная УР», 7БУ ХМАО-Югры «Окружная клиническая больница», Ханты-Мансийск, 8ОБУЗ • 10ГБУ Ростовской области «Станция переливания крови», 11ГБУЗ Астраханско
Введение. Разработанная и запатентованная в РФ технология криоконсервирования тромбоцитов специалистами ФГБУ «ГНЦ ФМБЦ им. А.И. Бурназяна ФМБА России« и НПП «Биотех-М« внедрена в производство тридцати одного лечебно-профилактического учреждения (ЛПУ) с 2012 по 2023 г. Территория производства и клинического применения технологии обширна: от Санкт-Петербурга до Абакана и от Сыктывкара до Нальчика
Цель работы. Оценить производственную воспроизводимость и клиническую эффективность криоконсервированных тромбоцитов вЛПУ РФ.
Материалы и методы. Технология производства и качество получаемых криоконсервированных тромбоцитов (ККТ) характеризуются следующими параметрами: концентрация тромбоцитов в афе-резных КТ составляет от 1 до 2х109/мл; количество криопротектора (не более 1300 мг/доза) не требует удаления криопротектора и обеспечивает низкую концентрацию (менее 0,5%) криопротектора после размораживания ККТ; осмолярность размороженного ККТ не превышает 380 мОсмоль/л; рН размороженного ККТ составляет 7,1—7,3; сохранность тромбоцитов — не менее 70% исходной концентрации; сохранность функционально-активных тромбоцитов — не менее 50%. ККТ клинически применяли для коррекции тромбоцитопении.
Результаты и обсуждение. За семь лет заготовлено 10 887 доз, а разморожено и перелито больным 7511 лечебных доз ККТ. Сохранность тромбоцитов после размораживания во всех ЛПУ значимо не отличалась и составила 87±5%. Единая методика криоконсервирования тромбоцитов (патент К.и 2715746) показала свою высокую воспроизводимость и технологичность. В результате
нейрохирургии имени ак. H.H. Бурденко» Минзрава России, 4ГБУЗ Владимирской обла-станция переливания крови», 6БУЗ УР «Республиканская станция переливания крови МЗ «Ивановская областная станция переливания крови», 9ГКУЗ «Кузбасский центр крови», й области «Областной центр крови», 12медицинская служба 15 армии ВКС ОСН
внедрения технологии криоконсервирования тромбоцитов с использованием Криотромбосет® реализована многоэтапная технология в замкнутой системе с соблюдением асептическихусловий, использовано штатное трансфузиологическое оборудование ЛПУ обеспечена высокая сохранность функционально-активных тромбоцитов после длительного хранения до 2-х лет в замороженном состоянии; сформированы стратегические запасы карантинизированных тромбоцитов сучётом антигенного разнообразия, прекращены списания тромбоцитных компонентов по сроку годности, 100% обеспечение заявок на клиническое применение в выходные и праздничные дни и при ЧС, снижение себестоимости производства тромбоцитных компонентов за счёт оптимизации логистики. Потребность в ККТ с каждым годом постоянно растёт. В .Москве, Казани, Сургуте, Коми, Тюмени трансфузии ККТ проводили больным преимущественно хирургического профиля. ВО Владимире, Ижевске, Уфе, Ханты Жансийске, Иванове, Ростове больше онкогематологическим больным. После трансфузии ККТ больным посттрансфузионных осложнений не выявлено во всех ЛПУ^ При этом скорректированный прирост тромбоцитов составил: через 1 час более 7500 м2/мкл и через 24 часа не менее 4500 м2/мкл. Переливаемые ККТ содержали не менее 250х109 тромбоцитов в дозе и показали высокую клиническую эффективность. После трансфузии ККТ геморрагический синдрому больных был скорригирован.
Заключение. Производство ККТ позволилоувеличить срок хранения тромбоцитов с 5 суток до 2 лет ККТ (в 150 раз дольше), создать стратегический резерв, карантинизировать тромбоциты, обеспечить безопасность и высокую эффективность гемокомпонентной терапии.
