CC BY
23УДК 579.6:636.2(470.620)
Шевченко А. А., Литвинова А. Р., Черных О. Ю, Зеркалев Д. Ю., Украина Е. Р.
РАСПРОСТРАНЕНИЕ БАКТЕРИАЛЬНЫХ ИНФЕКЦИЙ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА В КРАСНОДАРСКОМ КРАЕ И ИХ ПРОФИЛАКТИКА
Ключевые слова: стрептококкоз, морфологические, тинкториальные, культуральные, патогенные, серологические свойства, эпизоотическая обстановка, безвредность, иммуногенность, вакцина.
Резюме: Представлены сведения по изучению распространения бактериальных инфекционных болезней крупного рогатого скота в Краснодарском крае. Зарегистрировано 16 наименований бактериальных инфекций. Среди видового состава микроорганизмов в исследованных животноводческих хозяйствах были зарегистрированы 32 серотипа E. coli, 9 видов рода Streptococcus, Enteroccocus, Staphylococcus, Pseudomonas. При изучении бактериальной ассоциативной инфекции у коров отмечали угнетение, нарушение аппетита, малоподвижность, потерю веса, продуктивности, дерматиты, маститы, эндометриты, пододерматиты, конъюнктивиты и другие. У телят указанные виды микроорганизмов вызывали серозные, катаральные и геморрагические пневмонии, гепатит, спленит, энтериты и гастроэнтериты разного характера. В молоке коров обнаруживали соматические клетки, надои значительно снижались. Испытания вакцины в производственных условиях показали, что инактивированная ассоциированная вакцина против стрептококкоза и стафилококкоза крупного рогатого скота была безвредной и обеспечивала 85-90 % защиту после двукратной прививки животных внутримышечно по 5,0 см3 с интервалом 7-14 суток.
Введение
Животноводство является важной отраслью народного хозяйства. Однако успешное развитие животноводства сдерживает возникновение и распространение инфекционных болезней. Среди инфекционных болезней крупного рогатого скота чаще регистрируются бактериальные и вирусные болезни: инфекционный ри-нотрахеит, рото-короновирусные инфекции, парагрипп-3, эшерихиоз, сальмонел-лез, стрептококкоз, псевдомоноз, стафи-лококкоз и другие, которые наносят значительный экономический ущерб, складывающийся из-за падежа, снижения продуктивности животных и затрат на проведение лечебных и профилактических мероприятий [1, 2].
В последние годы в скотоводстве все большее распространение получают так называемые факторные инфекционные болезни, в этиологии которых, как правило, играют основную роль условно-патогенные микроорганизмы, к числу которых относят бактерии рода Esherichia, Streptococcus, Enteroccocus, Staphylococcus, Pseudomonas, Citrobacter, Enterobacter, Proteusи другие. Условно-патогенные микроорганизмы вызывают дерматиты, метриты, маститы, артриты, септицемию, омфалиты и другие воспалительные процессы. Телята болеют с первых дней рождения: пупоч-
ный сепсис, поражение суставов, энтерит, пневмония. Летальность молодняка может достигать 50-80 %. Указанные микроорганизмы вызывают различные заболевания и у человека (ангину, рожу, скарлатину, гнойничковые поражения кожи, менин-гоэнцефалиты и другие), то есть болезнь имеет социальное значение [3, 4]. Широкое распространение условно-патогенных микроорганизмов в природе, наличие нозологических единиц, обусловленных ими, а также частое обнаружение этих микроорганизмов при различных патологических состояниях крупного рогатого скота, требует всестороннего изучения свойств, эпи-зоотологической и этиологической значимости различных видов, разработки специфических средств и методов профилактики заболеваний, обусловленных ими.
В последние годы в стране эффективно развивается скотоводство, в том числе и на Северном Кавказе. Однако интенсивное развитие отрасли сдерживают инфекционные болезни крупного рогатого скота, которые наносят значительный экономический ущерб, складывающийся из-за падежа, снижения продуктивности и затрат на проведение лечебных и профилактических мероприятий. Самой надежной защитой животных против инфекционных болезней является профилактическая вакцинация. Применение вакцин в животновод-
стве позволяет снизить стрессовые ситуации у прививаемых животных, уменьшить трудозатраты. По мнению многих исследователей, инактивированные вакцины, изготовленные из штаммов возбудителей инфекционных болезней, выделенных из эпизоотического очага, обладают высокой специфичностью, иммуногенностью и способствуют созданию напряженного иммунитета. Поэтому необходимо изучать инфекционные болезни крупного рогатого скота и разрабатывать эффективные методы профилактики животных [5, 6, 7].
Задачей наших исследований было изучить эпизоотическую обстановку по бактериальным инфекционным болезням крупного рогатого скота в Краснодарском крае, разработать и испытать новую вакцину для защиты животных.
Материалы и методы исследований
Используя эпизоотологические, клинические, серологические методы исследования нами была изучена эпизоотическая ситуация и проведен анализ данных статистической отчетности ГБУ «Кропоткинская краевая ветеринарная лаборатория» по территориальному распространению инфекционных болезней крупного рогатого скота в Краснодарском крае и «Ростовской областной ветеринарной лаборатории» с 2010 по 2017 годы.
Диагностику проводили с учетом эпизо-отологических, клинических, патоморфоло-гических данных и подтверждением лабораторных исследований. Лабораторная диагностика основана на результатах бактериологического исследования. Бактериологические исследования включали выделение возбудителя от больных животных в исходном материале согласно «Методическим указаниям по бактериологической диагностике смешанных кишечных инфекций» (Москва, 2000) с использованием биохимических тест-систем фирмы «Р1^а^асЬе-maDiagnostika»: ENTEROtest 24, NEFER-Mtest 24, EN-COCCUStest, STREPTOtest 16. Определение уровня антител в сыворотке крови нутрий проводили в РП согласно методическим указаниям по лабораторной диагностике стрептококкоза животных (М., 1990), утвержденным Главным управлением ветеринарии. Для исследования использовали патологический материал от больных и павших животных, свежие трупы телят, трубчатую кость, долю печени с желчным пузырем, селезенку, почку, сердце, перевязанное лигатурой у аорты, брыжеечные лимфоузлы, при необходимости
и головной мозг. Для прижизненной диагностики исследовали фекалии, кровь.
Из поступившего материала по общей принятой методике в микробиологии готовили мазки-отпечатки, окрашивали по Граму и микроскопировали под иммерсионной системой микроскопа.
Для определения культуральных свойств возбудителя проводили посевы выделенной культуры из патматериала в мясо-пептонный бульон (МПБ) с добавлением глюкозы до 0,2%-ной конечной концентрации в чашки Петри с мясо-пептон-ным агаром (МПА) с добавлением глюкозы до 0,2%-ной конечной концентрации и 5 % дефибринированной крови кролика. Инкубирование культуры проводили в термостате при температуре 37 °С. Через 18-20 часов после инкубирования наблюдали в МПБ рост в виде диффузного помутнения среды.
Результаты и обсуждение
При изучении эпизоотической ситуации бактериальных инфекций у крупного рогатого скота на базе кафедры микробиологии, эпизоотологии и вирусологии КубГАУ и в ГБУ «Кропоткинская краевая ветеринарная лаборатория» было установлено, что среди бактериальных инфекций в Краснодарском крае за последние 7 лет были зарегистрированы 14 нозологических инфекционных болезней: эшерихиоз, стрептококкоз, псевдомоноз, стафилокок-коз, сальмонеллез, злокачественный отек, туберкулез, бруцеллез, сибирская язва, эн-терококкоз, эмфизематозный карбункул, инфекционная энтеротоксемия, лептоспи-роз, некробактериоз, пастереллез. В нозологическом профиле бактериальных инфекций чаще регистрируются эшерихиоз 50-55 %, псевдомоноз 14-18 %, энтерокок-коз 13-15 %, стрептококкоз 12,0-15 %, ста-филококкоз11-14 %.
При исследовании родового состава выделяемых микроорганизмов от больных и павших животных наиболее чаще регистрировались бактерии рода Esherich-ia, Streptococcus, Enteroccocus, Staphylococcus, Pseudomonas. Среди видового состава бактерий рода Esherichia установлено, что в исследованных животноводческих хозяйствах в указанных выше регионах были зарегистрированы 32 серотипа E. coli из них О1, О2, О4, О8, О9, О15, О17,О18, 020, О26, О33, О35, О41, О55, О78, О86, О101, О 103, О111,О115, О117, О118, О119, О126, О127, О137, О138, О139, О141,О 142, О147, О 157 и обнаружен один нетипиру-
емый изолят. При исследовании микроорганизмов рода Streptococcus выделяли различные виды, такие как Str. pneumoniae, Str. septicum, Str. pyogenes, Str. uberis, Str. vestibularis, Str. zooepidemicus, Str. bovis, Str. salivarus, Str. mutans, среди рода Enterocco-cus, вид Enteroccocusfaecalis, среди бактерий рода Streptococcus, доминировал Strep-tococcuspneumoniae, среди рода Pseudomonas, чаще выделяли вид Pseudomonasaeru-ginosa и среди рода Staphylococcus выделен вид Staphylococcusaureus. От больных и павших животных выделяли указанные виды микроорганизмов в ассоциации: рода Esherichiaи Streptococcus, рода Enterocco-cus и Staphylococcus, рода Esherichia, Streptococcus и Pseudomonas. Данные микроорганизмы у крупного рогатого скота вызывали различные воспалительные процессы: дерматиты, маститы, эндометриты, по-додерматиты, конъюнктивиты и другие. У телят указанные виды микроорганизмов вызывали серозные, катаральные и геморрагические пневмонии, гепатит, спле-нит, энтериты и гастроэнтериты разного характера. В молоке коров обнаруживали соматические клетки, надои значительно снижались.
Учитывая, что вакцина против стрепто-коккоза и стафилококкоза крупного рогатого скота в России не выпускается, нами были изучены основные биологические свойства наиболее часто выделяемых сероваров 115 различных бактериальных культур рода Streptococcus и Staphylococcus. На основании проведенных исследований по антиген-ности, иммуногенности, стабильности выбраны штаммы Str. pneumoniae и Staphylo-coccusaureus для изготовления вакцины. При культивировании штаммов Str. pneumoniae накопление микробных клеток (м.к./см3) на обычных питательных средах: мясо-пептон-ном и глюкозо-сывороточном бульонах составляло не менее 6-10 млрд м.к./см3. Для получения бактериального сырья при изготовлении вакцины нами был взят как наиболее доступный и дешевый мясо-пептонный бульон, обогащенный глюкозой, который позволяет получать необходимую концентрацию микробных клеток.
Для изготовления опытных образцов инактивированных вакцин вирулентные возбудители стрептококкоза штамм Str. Рneumoniae и стафилококкоза Staphylo-coccusaureus отдельно освежали в пробирках с МПБ биофабричного производства с добавлением 40%-го раствора глюкозы до 1%-ной концентрации, рН 7,2-7,4 при культивировании в условиях термостата при 37 °С в
течение 18-20 ч. Оценку чистоты роста проводили на МПА, МПБ, средах Эндо и Пло-скирева, Китта-Тароцци, агаре и бульоне Са-буро, окраской по методу Грама.
Матричную расплодку возбудителей стрептококкоза штамм Str. Рneumoniae и стафилококкоза Staphylococcusaureus выращивали во флаконах емкостью 250 мл. В каждый из них вносили 80-100 мл МПБ с добавлением 40%-ного раствора глюкозы до 1%-ной концентрации, рН 7,2-7,4 и 1-2 мл освеженной культуры исследуемого возбудителя с концентрацией не менее 4^109 микробных клеток в 1 мл по оптическому стандарту ГИСК им. Тарасевича. Посевы культивирования при 37 °С в условиях термостата в течение 18-20 часов. Затем оценку чистоты роста проводили на МПА, МПБ, средах Китта-Тароцци, агаре и бульоне Сабуро, окраской по методу Грама.
Для отработки технологии изготовления вакцины бактериальное сырье возбудителя стрептококкоза штамм Str. Рneumoniae и стафилококкоза Staphylococcusaureus нарабатывали в 3-5-литровых бутылях путем внесения в каждую из них питательной среды МПБ с добавлением 40%-го раствора глюкозы до 1,0%-ной конечной концентрации и 5-10 % матричной расплодки культуры возбудителя от объема питательной среды, выращивание осуществляли в термостате при 37 °С в течение 18-20 часов, рН 7,2-7,4. Контроль на чистоту роста проводили на питательной среде МПА с добавлением 5%-й дефибринированной крови кролика, МПБ, агаре и бульоне Сабуро, среде Китта-Тароц-ци, окраской по методу Грама.
Для получения инактивированной вакцины необходимо было подобрать эффективный препарат для инактивации, позволяющий подавить патогенность возбудителя, но сохранить его иммуногенные свойства. При отработке режима инактивации возбудителей стрептококкоза и стафилококкоза брали выращенную культуру с концентрацией не менее 4^109 м. к./см3 по оптическому стандарту ГИСК им. Тарасевича, вносили в нее разные концентрации раствора формалина от 0,1 до 0,4 % по активности формальдегида, оставляли при температуре 37 ± 2 °С и 22 ± 2 °С в течение 15 суток, периодически перемешивая. Полноту инактивации культуры определяли путем посева баккультуры на стерильные питательные среды (МПА, МПБ), приготавливали препараты, окрашивали по Гра-му и просматривали их в течение 10 суток. При необходимости проводили заражение исследуемым материалом молодых белых
мышей и наблюдением за их клиническим состоянием в течение 10 суток.
В дальнейшем полученную баккульту-ру с концентрацией не менее 4^109 м.к./см3 по оптическому стандарту ГИСК им. Тара-севича возбудителя стрептококкоза и ста-филококкоза Staphylococcusaureus, отдельно инактивировали путем внесения формалина в 0,3-0,5%-ной конечной концентрации в течение 48-96 часов при температуре +37 °С. Контроль полноты инактивации проводили посевом бактериальной массы на питательные среды МПА, МПБ, среды Эндо и Плоскирева и просмотра их в течение 10-ти суток. В сомнительных случаях проводили заражение исследуемого материала белым мышам массой 16-18 г. и наблюдением за их клиническим состоянием в течение 10-ти суток.
Нами из выделенных микроорганизмов по ранее разработанной технологии была изготовлена опытная ассоциированная формолгидроокисьалюминиевая вакцина против стрептококкоза и стафило-коккоза крупного рогатого скота. На следующем этапе исследований мы определили оптимальную иммунизирующую дозу гидроокисьалюминиевой формолвакцины против стрептококкоза и стафилококкоза на белых мышах. Для этого брали по 4 животных массой 18-20 г на каждую дозу вакцины и прививали однократно внутримышечно в область бедра.
В результате было установлено, что оптимальной иммунизирующей дозой ГОА-формолвакцины против стрептокок-коза и стафилококкоза составила 1,0 млрд микробных клеток по оптическому стандарту ГИСК им. Тарасевича, которая позволяет обеспечить не менее 80%-ную защиту вакцинированных животных от вирулентных возбудителей стрептококкоза и стафилококкоза.
Иммуногенность и безвредность опытных серий инактивированной вакцины оценивали на белых мышах. На каждую серию вакцины брали по 10 животных массой 18-20 г., иммунизировали двукратно внутримышечно по 0,5 см3 с интервалом 10 суток с последующим через 10-14сут. заражением привитых и не иммунизированных животных возбудителями Str. Pneumonia и Staphylococcusaureus в смертельной дозе - 200 млн м. к./см3. Наблюдение за животными вели в течение 30 дней. В результате установлено, что у белых мышей через 14 суток после двукратной прививки ГОА-формолвакциной против стрептококкоза и стафилококкоза крупного рогатого скота в дозе по 0,5 см3 формировался напряжённый иммунитет, обеспечивающий не менее 80%-ную защиту животных.
Испытания ассоциированной вакцины против стрептококкоза и стафилокок-коза крупного рогатого скота проводили в хозяйствах Тимашевского, Кореновско-
Таблица. Эффективность ассоциированной вакцины против стрептококкоза и стафилококкоза крупного рогатого скота в _ производственных условиях ^_
№ п/п Наименование хозяйства Кол-во животных в опыте (голов) Доза в см3 Сохранность через 12 месяцев
кол-во животных в опыте (голов) защита в %
1. ООО «Искра» Тимашевского района 700 первая вакцинация и вторая по 0,5 691 98,7
2. «Родник» Тихорецкого района 200 первая вакцинация и вторая по 0,5 195 97,5
3. «Сфера» Кореновского района 100 первая вакцинация и вторая по 0,5 97 97,0
го и Тихорецкого районов Краснодарского края. В каждом хозяйстве иммунизировали по 100-700 голов крупного рогатого скота разного возраста. Вакцину вводили внутримышечно двукратно с интервалом 7-14 дней в дозе коровам по 5,0 см3, телятам в возрасте 30 дней - в дозе 1,5-2,0 см3. За привитыми животными вели наблюдение в течение 12 месяцев. В период наблюдения поствакцинальных отклонений не было, заболевания животных не наблюдали. Эффективность ассоциированной вакцины против стрептококкоза и стафило-коккоза крупного рогатого скота составила 85-90 % (таблица).
Заключение
Таким образом, в Краснодарском крае среди бактериальных инфекционных бо-
лезней у крупного рогатого скота чаще регистрируются эшерихиоз, стрептокок-коз, псевдомоноз, энтерококкоз и стафи-лококкоз, которые выделяются в виде моно- и ассоциаций. Испытанная инактиви-рованная ассоциированная вакцина против стрептококкоза и стафилококкоза крупного рогатого скота была безвредной и обеспечивала не менее 80%-ную защиту через 14 суток после двукратной прививки животных внутримышечно по 0,5 см3 с интервалом 10 суток. В результате было получено два патента РФ: № 2406532 от 04.06.2009 г. «Способ изготовления вакцины, ассоциированной против стрептококкоза и стафи-лококкоза крупного рогатого скота» и № 2406533 от 04.06.2009 г. «Вакцина, ассоциированная против стрептококкоза и стафи-лококкоза крупного рогатого скота».
Библиографический список:
1. Мищенко В. А. Проблема респираторных сме-
шанных инфекций молодняка крупного рогатого скота / В. А. Мищенко // Международная научная конференция «Актуальные проблемы инфекционной патологии животных» 30-31 октября. Сборник научных трудов. - Владимир. -2003. - С. 73-77.
2. Золотухин С. Н. Смешанная кишечная инфекция
телят и поросят, вызываемая патогенными энте-робактериями / С. Н. Золотухин, Л. С. Каврук, Д. А. Васильев // Ульяновск, 2005. - 108 с.
3. Шевченко А. А. Лабораторная диагностика ин-
фекционных болезней животных / А. А. Шевченко [и др.] // - Краснодар. - 2008. - С. 55-65.
4. Шевченко А. А. Совершенствование специфиче-
ской профилактики крупного рогатого скота / А. А. Шевченко, Л. В. Шевченко, А. Р. Литвинова [и др.] // Труды Кубанского государственного аграрного университета. Серия: Ветеринарные науки. - 2009. - № 1 (ч.1). - С. 127-129.
5. Шевченко А. А. Биологические свойства стреп-
тококков, выделенных у крупного рогатого скота в Краснодарском крае / А. А. Шевченко, О. В. Двадненко // Актуальные проблемы интенсивного развития животноводства: Сборник научных трудов МСХ и продовольствия Республики Беларусь, Главное управление образования науки и кадров учреждение образования «Белорусская государственная с/х академия». - Горки.
- 2010. - Вып. 13. - Ч. 2. - С. 332-338.
6. Шевченко А. А. Эпизоотологические особенно-
сти инфекционных болезней крупного рогатого скота в Краснодарском крае / А. А. Шевченко, А. И. Двадненко // Научный журнал «Труды Кубанского государственного аграрного университета». - Выпуск 2 (35) 2012 ФГОУ ВПО Куб ГАУ
- Краснодар. - 2012. - С. 365-367.
7. Шевченко А. А. Распространение стрептококко-
за крупного рогатого скота в Краснодарском крае и совершенствование профилактики / А. А. Шевченко [и др.] // «Веткорм», ветеринария и кормление. - 2013. - № 5. - С. 57-58.
References:
1. Mishchenko V A. Problema respiratomyh smeshannyh
infekcij molodnyaka krupnogo rogatogo skota [The problem of respiratory mixed infections of young cattle] / V A. Mishchenko // Mezhdunarodnaya nauchnaya konferenciya «Aktual>nye problemy infekcionnoj patologii zhivotnyh» 30-31 oktyabrya. Sbornik nauchnyh trudov. - Vladimir. - 2003. - S. 73-77.
2. Zolotuhin S. N. Smeshannaya kishechnaya infekciya
telyat i porosyat, vyzyvaemaya patogennymi enterobakteriyami [Mixed intestinal infection of calves and piglets caused by pathogenic enterobacteria] / S. N. Zolotuhin, L. S. Kavruk, D. A. Vasil>ev // Ul>yanovsk, 2005. - 108 s.
3. Shevchenko A. A. Laboratornaya diagnostika infekcionnyh boleznej zhivotnyh [Laboratory diagnosis of infectious animal diseases] / A. A. Shevchenko [i dr.] // - Krasnodar. - 2008. - S. 55-65.
4. Shevchenko A. A. Sovershenstvovanie specificheskoj
profilaktiki krupnogo rogatogo skota [Improving the specific prevention of cattle] / A. A. Shevchenko, L. V Shevchenko, A. R. Litvinova [i dr.] // Trudy Kubanskogo gosudarstvennogo agrarnogo universiteta. Seriya: Veterinarnye nauki. - 2009. - №
1 (ch.1). - S. 127-129.
5. Shevchenko A. A. Biologicheskie svojstva streptokokkov, vydelennyh u krupnogo rogatogo skota v Krasnodarskom krae [Biological properties of streptococci isolated from cattle in the Krasnodar Territory] / A. A. Shevchenko, O. V Dvadnenko // Aktual>nye problemy intensivnogo razvitiya zhivotnovodstva: Sbornik nauchnyh trudov MSH i prodovol>stviya Respubliki Belarus>, Glavnoe upravlenie obrazovaniya nauki i kadrov uchrezhdenie obrazovaniya «Belorusskaya gosudarstvennaya s/h akademiya». - Gorki. - 2010. - Vyp. 13. - Ch. 2. - S. 332-338.
6. Shevchenko A. A. Epizootologicheskie osobennosti
infekcionnyh boleznej krupnogo rogatogo skota v Krasnodarskom krae [Epizootological features of infectious diseases of cattle in the Krasnodar Territory] / A. A. Shevchenko, A. I. Dvadnenko // Nauchnyj zhurnal «Trudy Kubanskogo gosudarstvennogo agrarnogo universiteta». - Vypusk
2 (35) 2012 FGOU VPO Kub GAU. - Krasnodar. -2012. - S. 365-367.
7. Shevchenko A. A. Rasprostranenie streptokokkoza
krupnogo rogatogo skota v Krasnodarskom krae i
sovershenstvovanie profilaktiki [The spread of cattle streptococcosis in the Krasnodar Territory and the improvement of prevention] / A. A. Shevchenko [i
dr.] // «Vetkorm», veterinariya i kormlenie. - 2013. - № 5. - S. 57-58.
Shevchenko A. A., Litvinova A. R., Chernykh O. U, Zerkalev D. U., Ukraine E. R. DISTRIBUTION OF BACTERIAL INFECTIONS OF CATTLE IN KRASNODAR TERRITORY AND THEIR PREVENTION
Key Words: streptococcosis, morphological, tinctorial, cultural, pathogenic, serological properties, epizootic situation, safety, immunogenicity, vaccine.
Abstract: The data on the spread of bacterial infectious diseases of cattle in the Krasnodar Territory are presented. 16 names of bacterial infections are registered. Among the species composition of microorganisms, 32 E. coli serotypes, 9 species of the genus Streptococcus, Enteroccocus, Staphylococcus, and Pseudomonas were registered in the livestock farms studied. In the study of bacterial associative infection in cows, depression, appetite disturbance, low mobility, weight loss, productivity, dermatitis, mastitis, endometritis, subdermatitis, conjunctivitis, and others were noted. In calves, these types of microorganisms caused serous, catarrhal and hemorrhagic pneumonia, hepatitis, splenitis, enteritis and gastroenteritis of various kinds. Somatic cells were found in the milk of cows, the milk yield decreased significantly. Vaccine tests under production conditions showed that the inactivated associated vaccine against streptococcosis and bovine staphylococcosis was harmless and provided 85-90 % protection after double vaccination of animals intramuscularly at 5.0 cm3 with an interval of 7-14 days.
Сведения об авторах:
Шевченко Александр Алексеевич, доктор вет. наук, профессор, зав. кафедрой микробиологии, эпизоотологии и вирусологии ФГБОУ ВПО «Кубанский государственный аграрный университет имени И. Т. Трубилина», дом 13, ул. Калинина, г. Краснодар, Российская Федерация, 350044; тел.: +7 (918) 154 94 61; e-mail: [email protected]
Литвинова Анастасия Руслановна, аспирантка кафедры микробиологии, эпизоотологии и вирусологии, ФГБОУ ВО «Кубанский государственный аграрный университет имени И. Т. Трубилина»; дом 13, ул. Калинина, г. Краснодар, Российская Федерация, 350044; тел.: +7 (918) 124 97 68; e-mail: [email protected]
Черных Олег Юрьевич, доктор вет. наук, директор ГБУ «Кропоткинская краевая ветеринарная лаборатория»; д. 303, ул. Красноармейская, г. Кропоткин, Краснодарский край, Россия, 352380; тел.: +7 (861) 386 23 14; e-mail: [email protected]
Зеркалев Дмитрий Юрьевич, канд. биол. наук, доцент кафедры микробиологии, эпизоотологии и вирусологии ФГБОУ ВПО «Кубанский государственный аграрный университет имени И. Т. Трубилина», дом 13, ул. Калинина, г. Краснодар, Российская Федерация, 350044; тел.: +7 (909) 451 98 36; e-mail: [email protected]
Украина Екатерина Романовна, студентка ФГБОУ ВПО «Кубанский государственный аграрный университет имени И. Т. Трубилина», дом 13, ул. Калинина, г. Краснодар, Российская Федерация, 350044; тел.: +7 (918) 154 94 61; e-mail: [email protected]
Author affiliation:
Shevchenko Alexander Alekseevich, D. Sc. in Veterinary Medicine, Professor, Head of the Department of Microbiology, Epizootology and Virology of the Federal State Budgetary Educational Institution (FSBEI) of Higher Professional Education (HPE) «Kuban State Agrarian University named after I. T. Trubilin»; house 13, Kalinin str. Krasnodar city, Russian Federation, 350044; phone: +7 (918) 154 94 61; e-mail: [email protected]
Litvinova Anastasia Ruslanovna, Post-graduate Student of the Department of Microbiology, Epizootology and Virology of the Federal State Budgetary Educational Institution (FSBEI) of Higher Professional Education (HPE) «Kuban State Agrarian University named after I. T. Trubilin»; house 13, Kalinin str. Krasnodar city, Russian Federation, 350044; phone: +7 (918) 124 97 68; e-mail: [email protected]
Chernykh Oleg Yur'evich, D. Sc. in Veterinary Medicine, Director of the Kropotkin Regional Veterinary Laboratory; house 303, Krasnoarmeyskaya str., Kropotkin city, Krasnodar Region, Russian Federation, 352380; phone: +7 (861) 386 23 14; e-mail: [email protected]
Zerkalev Dmitry Yur'evich, Ph. D. in Biology, Associate Professor of the Department of Microbiology, Epizootology and Virology of the Federal State Budgetary Educational Institution
(FSBEI) of Higher Professional Education (HPE) «Kuban State Agrarian University named after I. T. Trubilin»; house 13, Kalinin str. Krasnodar city, Russian Federation, 350044; phone: +7 (909) 451 98 36; e-mail: [email protected]
Ukraina Ekaterina Romanovna, Student of the Federal State Budgetary Educational Institution (FSBEI) of Higher Professional Education (HPE) «Kuban State Agrarian University named after I. T. Trubilin»; house 13, Kalinin str. Krasnodar city, Russian Federation, 350044; phone: +7 (918) 154 94 61; e-mail: [email protected]
УДК 619:616.9 Коколова Л. М.
ALVEOCOCCUS MULTILOCULARIS. ИСТОЧНИКИ И ФАКТОРЫ ПЕРЕДАЧИ ВОЗБУДИТЕЛЕЙ
Ключевые слова: Alveococcus multilocularis - альвеолярный эхинококкоз, Echinococcus multilocularis, возбудитель болезни, человек, белый песец, красная лисица, собака, лемминг, мышевидные грызуны, Якутия.
Резюме: Цель нашего исследования - изучить особенности распространения особо опасных зо-онозных гельминтозов - альвеококкоза (альвеолярного эхинококкоза) для снижения риска заражения возбудителями зоонозов животных и человека с учетом природно-климатических условий и социально-экономических преобразований в Якутии. Возбудитель альвеококкоза выделен в самостоятельный род совсем недавно. До этого его, благодаря сходству, по классификацию тений относили к роду Echinococcus - эхинококков и называли Echinocoaus multilocularis. Источником возбудителя альвеолярного эхинококкоза грызунов, насекомоядных и приматов (человека и др.) - промежуточных хозяев Alveococcus multilocularis являются хищные плотоядные: белые полярные песцы, лисицы, собаки - окончательные хозяева тениид, выделяющие во внешнюю среду с фекалиями онкосферы альвеококка. В отличие от эхинококкоза у альвеококкоза распространение очаговое. Очаги альвеококкоза в России зарегистрированы в Западной и Восточной Сибири, Красноярском, Хабаровском краях, Магаданской области, Чукотке и Якутии. При изучении эколого-эпизоотической обстановки по зоонозным гельминтозам в условиях вечной мерзлоты дана характеристика природных очагов альвеококкоза, проведен анализ и прогнозирование развития эпизоотической ситуации в природных комплексах. Определены основные источники и факторы передачи альвеококкоза у восприимчивых животных и закономерность циркуляции возбудителей в природных очагах. Таким образом, на территории Якутии находятся природные очаги альвеококкоза. По прогнозам специалистов практически все они располагают эпизоотическим потенциалом, достаточным для внезапного обострения эпизоотической обстановки в регионе. Поэтому необходимость возобновления мониторинга природных очагов альвеолярного эхинококкоза представляется весьма актуальной.
Введение
В XIX веке многие европейские патологи, включая Buhl (1852), Luschka (1856), описали специфическую и редкую опухоль печени, которую назвали «альвеолярная карциома», т. е. опухоль, имеющую ячеистое строение. В 1855 году Virchow обнаружил в опухоли крючья эхинококка и высказал, что опухоль имеет паразитарную природу и является одним из разновидностей личиночной формы цестоды Taenia
echinococcus известной теперь как Echinococcus granulosus. Назвал опухоль «язвенная мультилокулярная гидатида». Другие исследователи использовали материалы исследования Posselt (1890) для утверждения двух разных гипотез и определили морфологическое отличие, потому был выдвинут аргумент в поддержке самостоятельности вида Alveococcus multilocularis, к тому основным поводом послужило специфическое географическое распростране-
