CC BY
1
ЗООТЕХНИЯ И ВЕТЕРИНАРИЯ
Научная статья УДК 579.62
doi: 10.47737/2307-2873 2024 47 71
ОСОБЕННОСТИ ПРОЦЕДУРЫ ПОДГОТОВКИ И ВЫДАЧИ ПБА II ГРУППЫ СТОРОННЕЙ ОРГАНИЗАЦИИ ВЕТЕРИНАРНОГО ПРОФИЛЯ
©2024. Елена Александровна Артемьева1, Екатерина Витальевна Панкова2, Лилия Арсентьевна Мельникова3, Эльмира Наримановна Мустафина4
1,2,3,4Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности, Казань, Россия 1 artemevaelena21@mail. ru
Аннотация. Штаммы, хранящиеся в Государственных коллекциях микроорганизмов являются основой для разработки и выпуска биопредприятиями лекарственных средств ветеринарного назначения, что имеет ведущее значение в обеспечении биологической и продовольственной безопасности Российской Федерации. В статье представлены данные по процедуре подготовки и выдачи референтного штамма Brucella canis из Государственной коллекции штаммов микроорганизмов - возбудителей особо опасных болезней, используемых в ветеринарии и животноводстве ФГБНУ «ФЦТРБ-ВНИВИ» - сторонней организации ветеринарного профиля. Дантая процедура включaла в себя такие этапы, как aнализ входящих документов; проверь жизнеспособности и биологических свойств; подготовь исходящих документов для передачи; упаковга и выдачa штамма микроорганизма. Все этапы были проведены в соответствии с требованиями биологической безопасности работы с патогенными биологическими агентами I-IV группы патогенности (СанПиН 3.3686 - 21, МУК 3.1.29.64-11). Выбранный метод консервации - лиофилизация, с применением криопротектора сахароза-желатиновой среды способствует сохранности штамма Brucella canis в течение 5 лет при температуре плюс 4 С. При этом его жизнеспособность и биологические свойства остаются стабильными, что свидетельствует о создании оптимальных условий в Государственной коллекции штаммов. По окончанию работы подготовлены все необходимые документы для его передачи, после чего проведена упаковка и выдача сторонней организации ветеринарного профиля.
Ключевые слова: штамм, Brucella canis, жизнеспособность, биологические свойства, биологическая безопасность
Введение. В Российской Федерации эпизоотологическое благополучие по инфекционным заболеваниям зависит от комплекса ветеринарно-санитарных
мероприятий, включающих в себя мониторинговые исследования,
профилактические, диагностические и лечебные мероприятия [5]. В настоящее время достигнуто существенное снижение уровня
заболеваемости инфекционными болезнями, однако они продолжают оказывать большой экономический ущерб сельскому хозяйству как в России, так и за рубежом [10, 11, 17].
Наиболее распространенным
инфекционным заболеванием среди животных и людей является бруцеллез - инфекционная болезнь II группы патогенности (опасности), вызываемая бактериями, объединенными в
один род Brucella, включающий в себя 12 видов [9]. В настоящее время все чаще регистрируются случаи заболевания собак, вызванные Brucella canis. Данный возбудитель имеет важное эпизоотическое значение во всем мире - его вспышки зарегистрированы в США, Канаде, странах Южной Америки, Азии и Африки, Европы [12-14].
В связи с развитием различных видов собаководства (охотничьего, служебного, спортивного, декоративного и др.), а также ввоза новых пород собак из-за рубежа, и проведения международных выставок, возросла вероятность вспышек бруцеллеза у этих животных в РФ [3]. Первые случаи выявления В. canis у собак отмечены в 1994, 1998 и 1999 гг. в Москве и Санкт-Петербурге
[4].
Вышесказанное свидетельствует о значимости своевременного проведения мониторинговых исследований
эпизоотической обстановке по бруцеллезу животных и ветеринарно-санитарных мероприятий с применением эффективных противобруцеллезных лекарственных средств [6, 7].
В настоящее время биопредприятия РФ выпускают весь арсенал препаратов ветеринарного назначения. Их работа регламентируется указанием Главного госинспектора РФ № 22-7/443 от 08.05.92 «О порядке выдачи разрешения на право выпуска ветеринарных препаратов и аттестации». Ввиду участившихся случаев выявления несоответствия качества иностранных биопрепаратов Россельхознадзор ужесточил требования для отечественных и зарубежных производителей биопрепаратов [15, 16]. Все штаммы патогенов, применяемые в производстве лекарственных препаратов ветеринарного назначения, подлежат обязательному депонированию в Российских государственных коллекциях (№ 492-ФЗ «О биологической безопасности в Российской Федерации» от декабря 2020 года).
Задачей Коллекций патогенных микроорганизмов является сохранность коллекционного фонда штаммов в условиях, исключающих их утрату фенотипических и генетических свойств [2, 8].
Одной из таких коллекций является Государственная коллекция штаммов микроорганизмов - возбудителей особо опасных болезней, используемых в ветеринарии и животноводстве (далее
«ГКШМ»), находящаяся в ФГБНУ «ФЦТРБ-ВНИВИ», где проводится работа по ведению коллекционного фонда штаммов возбудителей заразных и особо опасных болезней (ООБ).
Для разработки и производства биопрепаратов ветеринарного назначения, биопредприятия страны получают
депонированные производственные штаммы из «ГКШМ» согласно требованиям биобезопасности работы с ПБА ¡-IV группы патогенности [1].
Целью данной работы является описать особенности проведения процедуры подготовки и выдачи ПБА II группы сторонней организации ветеринарного профиля, на примере референтного штамма В. canis.
Методика. Вся работа с ПБА проводилась строго в соответствии с СанПиН 3.3686 - 21. Для определения жизнеспособности и сохранности
биологических свойств была взята ампула со штаммом В. canis КМ6/66 из коллекционного фонда «ГКШМ» с пометкой в «Журнале учета движения патогенных биологических агентов (ПБА) «Д» (число сухих препаратов), и «Карте индивидуального учета коллекционного ПБА». Суспендирование лиофилизированной культуры, находящейся в ампуле, проведено путем внесения 0,85% стерильного раствора хлорида натрия при помощи пипетки Пастера. Посев взвеси культуры проводился на печеночно-пептонный глюкозо-глицериновый агар (ППГГА) и печеночно-пептонный глюкозо-глицериновый бульон (ППГГБ). Первичную емкость уничтожили с пометкой в следующих учетных формах: «Журнал регистрации вскрытия первичной емкости (ампулы, флакона) с сухим ПБА 1-11 групп с целью высева или уничтожения», «Журнал обеззараживания ПБА». Инкубирование посевов штамма проводили в термостате при температуре плюс 37 °С. С выросших культур получили первую и вторую генерацию. Последнюю проверяли на характер роста и биологические свойства, предусмотренные паспортом на штамм, руководствуясь общепринятыми методическими указаниями (МУК 3.1.7.3402-16. Эпидемиологический надзор и лабораторная диагностика бруцеллеза осуществлялась по методическим указаниям по методам контроля и ГОСТ 33675-2015. Животные. Лабораторная диагностика бруцеллеза. Бактериологические методы).
Результаты. Процедура подготовки и выдачи штамма В. canis включала в себя несколько этапов:
1-й этап - анализ входящих документов организации, запрашивающей штамм. Выдачу референтного штамма В. canis организации ветеринарного профиля проводили на основании следующих документов: официального письма на бланке организации; ксерокопии лицензии и санитарно-эпидемиологического заключения, дающие право осуществлять работу с ПБА 11-1У группы.
2-й этап - определение жизнеспособности референтного штамма В. canis и изучение его биологических свойств. Анализ проделанной работы показал, что штамм жизнеспособен, дает рост на 4-6 сутки на ППГГА в виде мелких, выпуклых, негладких колоний белого цвета. На ППГГБ -равномерное помутнение и пристеночное кольцо. При микроскопии мазков видны мелкие, грамотрицательные коккообразные палочки, расположенные отдельно, попарно и скученно, окрашенные по Граму - в розовый цвет и по Козловскому - в красный цвет.
В препарате висячей капли - штамм неподвижен.
Тест на диссоциацию в реакции термоагглютинации - положительный, наблюдается агглютинация клеток с выпадением их на дно пробирки в виде осадка и просветление жидкости, в пробе с раствором акрифлавина на предметном стекле -агглютинация с образованием хорошо выраженных хлопьев. Окраска колоний по Уайт-Вилсону, выращенных в чашках Петри, показывает равномерно окрашенный широкий периферический ободок фиолетового цвета и интенсивно окрашенную поверхность, что характерно для находящихся в Я - форме клеток.
Пластинчатая РА на предметном стекле демонстрирует положительную реакция исследуемого штамма с Я- сывороткой на четыре креста («++++»): видно просветление жидкости с образованием четко выраженного агглютината, с 8-сывороткой - отрицательная реакция («-»), просветление жидкости отсутствует, смесь гомогенная. Контроль на
самоагглютинацию, с физиологическим раствором - отрицательный.
Штамм активен в отношении тионина, в разведении 1:25 тыс. наблюдается слабый сплошной рост в первых двух штрихах, в разведении 1:50 тыс. и 1:100 тыс. выражен рост культуры по ходу проведение пасева штрихом, в отношении фуксина не активна, в разведении 1:50 тыс. и 1:100 тыс. - роста культуры не выявлено.
Штамм В. canis ЯМ6/66 не образует сероводород, так как почернения нижнего конца индикаторной полоски фильтровальной бумаги не произошло.
3-й этап - оформление исходящих документов на передачу штамма. На содержимое вторичной тары (металлический пенал) оформлено письмо в двух экземплярах на бланке организации и два акта упаковки, копия паспорта на штамм, справка о транспортировании спецгруза с указанием транспортного средства. В «Карту индивидуального учета коллекционного ПБА» занесены данные по движению штамма, подготовлены 2 экземпляра акта передачи ПБА I - IV групп за пределы организации. В «Журнале выдачи ПБА» отмечено количество выдаваемых ампул. Передача штамма представителям организации ветеринарного профиля осуществлялась по предъявлению пакета документов (удостоверение личности и доверенность).
4-й этап - упаковка и выдача запрашиваемого штамма микроорганизма. Для упаковки использовались следующие материалы: вторичная тара с герметичной крышкой, гигроскопический материал, шпагат, оберточная бумага и сургуч. Первичная емкость с культурой штамма обернута гигроскопическим материалом, вложена в пенал с первыми экземплярами сопроводительного письма и акта упаковки (Рис. 1 а, Ь). Вторичная тара герметично закрыта, обернута бумагой, ошнурована, опечатана сургучной печатью, для транспортировки нанесен особый знак «Осторожно! Не вскрывать во время перевозки!» (Рис. 2 а, Ь).
Поэтапная процедура подготовки и выдачи ПБА II группы патогенности показана в виде схемы на рисунке 3.
А
Рис 1. Этапы укладки первичной емкости и исходящих документов: ампула обернута гигроскопическим материалом (А), вложены сопроводительное письмо и акт упаковки (В) Fig 1. Stages of placing the primary container and outgoing documents: the ampoule is wrapped in hygroscopic material (A), a cover letter and a packaging certificate are included (B)
Рис 2. Этапы упаковки вторичной тары с ампулами референтного штамма B.canis. Пенал закрыт герметично и упакован бумагой (А), ошнурован и опечатан сургучной печатью (В) Fig. 2. Stages of packaging secondary containers with ampoules of the reference strain of B. canis The case is hermetically sealed and packed with paper (A), laced and sealed with wax seal (B)
Анализ вх. Проверка Подготовка Упаковка и
документов ПБА (его документов выдача ПБА
организации жизнеспти, для
биол.св-в) передачи
Рис 3. Cхема поэтапной процедуры подготовки и выдачи ПБА II группы патогенности Fig. 3. Scheme of step-by-step procedure for the preparation and issuance of pathogenic
biological agents of II group
Выводы
1. На примере референтного штамма B. canis описана процедура подготовки и выдачи
ПБА II группы патогенности сторонней организации ветеринарного профиля.
2. Процедура подготовки и выдачи ПБА II группы включает в себя 4 этапа: анализ
входящих документов сторонней организации; проверка ПБА (его жизнеспособности и биологических свойств); подготовка документов для передачи; упаковка и выдача ПБА).
3. Разработана схема поэтапной процедуры подготовки и выдачи ПБА II группы патогенности в соответствии с СанПиН 3.3686 - 21.
Работа выполнена за счет средств ФГБНУ «ФЦТРБ-ВНИВИ» в рамках научно-исследовательской работы по теме ««Изучение биологических характеристик штаммов заразных и особо опасных болезней животных и их стабильности в процессе длительного хранения».
Список источников
1. Артемьева Е.А., Мельникова Л.А., Родионов А.П. Особенности подготовки и выдачи производственного штамма 5584 Burkholderia mallei в соответствии с требованиями биологической безопасности // Ветеринария сегодня. 2021. № 10 (3). С. 243-247.
2. Гришкина Т.А., Тимофеева Е.В., Спиридонов В.А. Оценка результатов хранения музейных штаммов возбудителя сапа в течение длительного периода // Проблемы особо опасных инфекций. 2004. № 1 (87). С. 40-42.
3. Дегтяренко Л.В. и др. Оптимальная система дифференциальной диагностики бруцеллеза крупного рогатого скота и ее противоэпизоотическая эффективность // Материалы всероссийской научной конференции по проблемам хронических инфекций. Омск: Сиб. отд-ние ВНИИБТЖ, 2001. С. 26-28.
4. Зинова А.А. Диагностика бруцеллеза собак, вызываемого Brucella canis (обзор литературы) // Ветеринарная патология. 2006. № 3 (18). С. 11-14.
5. Иванов А.В., Юсупов Р.Х. Обеспечение ветеринарного благополучия животноводческих хозяйств от особо опасных болезней // Материалы всероссийской научной конференции. Казань, 2005. С. 302-306.
6. Костюкова Т.К., Смоленский В.Ю., Ляпин М.Н. Разработка инструктивно-методической базы учреждения как элемента обеспечения безопасной работы с патогенными биологическими агентами // Проблемы особо опасных инфекций. 2014. № 3. С 25-29.
7. Осидзе Д.Ф. Ветеринарные препараты. М.: Колос, 1981. С. 24-33.
8. Онищенко Г.Г. и др. Современное состояние коллекционной деятельности связанной с использованием возбудителей инфекционных болезней I - II патогенности // Проблемы особо опасных инфекций. 2010. № 103. С. 5-10.
9. Панкова Е.В. Фенотипический контроль стабильности при хранении музейных и производственных штаммов возбудителей бруцеллеза // Ветеринарный врач. 2012. № 2. С.23-24.
10. Родионов А. П. и др. Эпизоотическая характеристика стационарно неблагополучных по сибирской язве пунктов в Республике Татарстан // Ветеринарный врач. 2021. № 1. С. 50-55.
11. Спиридонов А. Г. Биологические свойства бактерий Clostridium perfringens, выделенных в регионе Среднего Поволжья от больных анаэробной энтеротоксемией телят // Ветеринарный врач. 2022. № 1. С. 41 -46.
12. Alton G.G., Jones L.M., Pietz D.E. Laboratory techniques in brucellosis. Geneva: World Health Organization, 1975. P. 1-163.
13. Carmichael L.E., Kenney R.M Canine abortion caused by Brucella canis // Journal of the American Veterinary Medical Association. 1968. № 6 (152). P. 605-616.
14. Cordon J.C., Pue H.L., Rutgers H.C. Canine brucellosis in a household // Journal of the American Veterinary Medical Association. 1985. № 7 (186). P. 695-698.
15. В вакцине против ларинготрахеита птиц «Вир-101 ИЛТ» обнаружен вирус болезни Ньюкасла. URL:
https://fsvps.gov.ru/news/v-vakcine-protiv-laringotraheita-ptic-vir-101-ilt-obnaruzhen-virus-bolezni-niukasla/_(дата
обращения: 17.04.2024).
16. Россельхознадзор сообщает о выявлении несоответствующих образцов лекарственных препаратов для ветеринарного применения зарубежного производства. URL: https://154. fsvps. gov.ru/news/rosselhoznadzor-soobshhaet-
o-vyiavlenii-nesootvestvuiushhih-importnyh-obrazcov-lekarstvennyh-preparatov-dlia-veterinarnogo-primeneniia/_(дата
обращения: 17.04.2024).
17. Теория эпидемиологии. Специфика эпидемиологии инфекционных болезней. URL: https://meduniver.com/Medical/Microbiology/1100.html (дата обращения: 17.04.2024).
FEATURES OF THE PROCEDURE FOR PREPARATION AND ISSUANCE OF THE PATHOGENIC BIOLOGICAL AGENTS OF THE II GROUP TO THE THIRD PARTY VETERINARY ORGANIZATIONS
©2024. Elena A. Artem'yeva1, Ekaterina V. Pankova2, Liliya A. Mel'nikova3, El'mira N. Mustafina4
1,2,3,4Federal Center for Toxicological, Radiation and Biological Safety, Kazan, Russia 1 artemevaelena21@mail. ru
Abstract. Strains stored in the State collections of microorganisms are the basis for the development and production of veterinary medicines by bio-enterprises, which is of leading importance
in ensuring the biological and food security of the Russian Federation. The article presents data on the procedure for preparing and issuing a reference strain of Brucella canis from the State collection of strains, which are pathogens of especially dangerous diseases, used in veterinary and animal husbandry of the FSBI "FCTRB-VNIVI", to the third party veterinary organization. The procedure included such stages as analysis of incoming documents; checking viability and biological properties; preparing documents for transfer; packaging and issuing the strain of microorganism. The work was carried out in accordance with the biological safety requirements for working with pathogenic biological agents of I-IV groups (SanPiN 3.3686 - 21, MUK 3.1.29.64-11). The chosen preservation method was lyophilization, using a cryoprotector sucrose-gelatin medium, which contributes to the preservation of the Brucella canis strain for 5 years at a temperature of +4 °C. At the same time, its viability and biological properties remain stable, which indicates the creation of optimal conditions in the in the State collection of strains. At the end of wok work all necessary documents for its transfer were prepared, after that it was packaged and handed over to the third party veterinary organization.
Keywords: strain, brucellosis, viability, biological properties, biological safety
References
1. Artem'eva E.A., Mel'nikova L.A., Rodionov A.P. Osobennosti podgotovki I vydachi proizvodstvenno goshtamma 5584 Burkholderia mallei v sootvetstvii s trebovaniyami biologicheskoi bezopasnosti (Features of preparation and delivery of the production strain 5584 Burkholderia mallei in accordance with the requirements of biological safety),Veterinariyasegodnya, 2021, No. 10 (3), pp.243-247.
2. Grishkina T.A., Timofeeva E.V., Spiridonov V.A. Otsenka rezul'tatov khraneniya muzeinykh shtammov vozbuditelya sapa v techenie dlitel'nogo perioda, Problemy osoboopasnykh infektsii (Evaluation of the results of storing museum strains of the sap pathogen for a long period), 2004, No. 1(87), pp.40-42.
3. Optimal'naya sistema differentsial'noi diagnostiki brutselleza krupnogo rogatogo skota I ee protivoepizooticheskaya effektivnost' (The optimal system of differential diagnosis of bovine brucellosis and its antiepizootic effectiveness) / Degtyarenko L.V. [i dr.], Materialy vserossiiskoi nauchnoi konferentsii po problemam khronicheskikh infektsii, Omsk, Sib. otd-nieVNIIBTZh, 2001, pp. 26-28.
4. Zinova A.A. Diagnostika brutselleza sobak, vyzyvaemogo Brucella canis (obzorliteratury) (Diagnosis of canine brucellosis caused by Brucella canis (literature review)), Veterinarnaya patologiya, 2006, No. 3 (18), pp. 11-14.
5. Ivanov A.V., Yusupov R.Kh. Obespechenie veterinarnogo blagopoluchiya zhivotnovodcheskikh khozyaistv ot osoboopasnykh boleznei (Ensuring the veterinary well-being of livestock farms from particularly dangerous diseases), Materialy vserossiiskoi nauchnoi konferentsii, Kazan', 2005, pp. 302-306.
6. Kostyukova T.K., Smolenskii V.Yu., Lyapin M.N. Razrabotka instruktivno-metodicheskoi bazy uchrezhdeniya kak elementa obespecheniya bezopasnoi raboty s patogennymi biologicheskimi agentami (Development of the instructional and methodological base of the institution as an element of ensuring safe work with pathogenic biological agents), Problemy osoboopasnykh infektsii, 2014, No. 3, pp. 25-29.
7. Osidze D.F. Veterinarnye preparaty (Veterinary drugs), M.,Kolos, 1981, pp. 24-33.
8. Sovremennoe sostoyanie kollektsionnoi deyatel'nosti svyazannoi s ispol'zovaniem vozbuditelei infektsionnykh boleznei I - II patogennosti (The current state of collection activities related to the use of pathogens of infectious diseases of the I - II pathogenicity) / G.G. Onishchenko [i dr.], Problemy osoboopasnykh infektsii, 2010, No. 103, pp. 5-10.
9. Pankova E.V. Fenotipicheskii kontrol' stabil'nosti pri khranenii muzeinykh i proizvodstvennykh shtammov vozbuditelei brutselleza (Phenotypic stability control during storage of museum and industrial strains of brucellosis pathogens), Veterinarnyi vrach, 2012, No. 2, pp.23-24.
10. Epizooticheskaya kharakteristika statsionarno neblagopoluchnykh po sibirskoi yazve punktov v Respublike Tatarstan (Epizootic characteristics of stationary anthrax-affected settlements in the Republic of Tatarstan) / A. P. Rodionov [i dr.],Veterinarnyivrach. 2021, No.1, pp.50-55.
11. Biologicheskie svoistva bakterii Clostridium perfringens, vydelennykh v regione Srednego Povolzh'ya ot bol'nykh anaerobnoi enterotoksemiei telyat (Biological properties of Clostridium perfringens bacteria isolated in the Middle Volga region from calves with anaerobic enterotoxemia) / A. G. Spiridonov [i dr.],Veterinarnyivrach, 2022, No.1, pp. 41-46.
12. Alton G.G., Jones L.M., Pietz D.E. Laboratory techniques in brucellosis, Geneva, World Health Organization, 1975, pp. 1-163.
13. Carmichael L.E., Kenney R.M Canine abortion caused by Brucella canis,Journal of the American Veterinary Medical Association, 1968, No. 6 (152), pp. 605-616.
14. Cordon J.C., Pue H.L., Rutgers H.C. Canine brucellosis in a household,Journal of the American Veterinary Medical Association, 1985, No. 7 (186), pp. 695-698.
15. V vaktsine protiv laringotrakheita ptits «Vir-101 ILT» obnaruzhen virus bolezni N'yukasla (The Newcastle disease virus has been detected in the avian laryngotracheitis vaccine Vir-101 ILT), URL: https://fsvps.gov.ru/news/v-vakcine-protiv-laringotraheita-ptic-vir-101 -ilt-obnaruzhen-virus-bolezni-niukasla/(data obrashcheniya: 17.04.2024).
16. Rossel'khoznadzor soobshchaet o vyyavlenii nesootvetstvuyushchikh obraztsov lekarstvennykh preparatov dlya veterinarnogo primeneniya zarubezhnogo proizvodstva (The Rosselkhoznadzor reports on the identification of inappropriate samples of medicines for veterinary use of foreign production), URL: https://154.fsvps.gov.ru/news/rosselhoznadzor-soobshhaet-o-vyiavlenii-nesootvestvuiushhih-importnyh-obrazcov-lekarstvennyh-preparatov-dlia-veterinarnogo-primenenija/(data obrashcheniya: 17.04.2024).
17. Teoriya epidemiologic Spetsifika epidemiologii infektsionnykh boleznei (Theory of epidemiology. Specificity of the epidemiology of infectious diseases), URL: https://meduniver.com/Medical/Microbiology/ 1100.html (data obrashcheniya: 17.04.2024).
Сведения об авторах Е.А. Артемьева1- кандидат ветеринарных наук, старший научный сотрудник; Е.В. Панкова2 -кандидат биологических наук, ведущий научный сотрудник; Л. А. Мельникова3- кандидат ветеринарных наук, ведущий научный сотрудник; Э. Н. Мустафина4 -кандидат ветеринарных наук, ведущий научный сотрудник.
1,2,3,4Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности» (ФГБНУ «ФЦТРБ-ВНИВИ»), отдел - Государственная коллекция микроорганизмов, Научный городок-2, Казань, Россия
1 artemevaelena21 @mail.ru
2 katerinka [email protected] [email protected]
Information about the authors
E. A. Artem'eva1 - Cand. Vet. Sci.; E. V. Pankova2 - Cand. Biol. Sci., Leading Researcher; L. A. Mel'nikova3 - Cand. Vet. Sci., Leading Researcher; E.N. Mustafina4 - Cand. Vet. Sci., Leading Researcher.
1,2,3,4Federal State Budgetary Scientific Institution "Federal Center for Toxicological, Radiation and Biological Safety" (FSBI "FCTRB-VNIVI"), Department of the State collection of microorganisms, Nauchny gorodok-2, Kazan, Russia
1 artemevaelena21 @mail.ru
2 katerinka [email protected] [email protected]
Конфликт интересов: авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов. Conflict of interest: the authors declare that they have no conflicts of interest.
Статья поступила в редакцию 27.04.2024; одобрена после рецензирования 14.06.2024; принята к публикации 10.08.2024. The article was submitted 27.04.2024; approved after reviewing 14.06.2024; acceptedfor publication 10.08.2024.
