CC BY
57
УДК 619:616.995.121.3 А.М. Биттиров, С.А. Беккиева,
Л.З. Шекихачева, С.Ш. Чилаев
СХЕМЫ РЕАЛИЗАЦИИ БИОЛОГИЧЕСКОГО ЦИКЛА ЭХИНОКОККОЗА ЖИВОТНЫХ
Паразитарная система эхинококкоза животных и человека в природных экосистемах региона является многофункциональной и реализуется по схемам «пятнистый олень - собака - овца, крупный рогатый скот, кролик», «благородный олень - собака - овца, крупный рогатый скот, кролик», «косуля - собака - овца, крупный рогатый скот, кролик», «кавказский тур - собака - овца, крупный рогатый скот, кролик». При этом фертильные штаммы Echinococ-cus granulosus пятнистого оленя, благородного оленя, косули, серны, кавказского тура и овец являются широко специфичными и могут обеспечить перекрестное заражение домашних и диких копытных опосредованно через круг дефинитивных хозяев (чабанских собак, одичавших собак, волков, шакалов, енотовидных собак, лисиц, барсуков и др.), что также многократно повышает биологическую защищенность паразитарной системы эхинококкоза животных в регионе.
Введение. Придание животноводству экстенсивного пути развития, игнорирование дегельминтизации присельских и городских собак, ослабление борьбы с безнадзорными собаками, ухудшение эпидемиологического, ветеринарно-санитарного контроля и санитарно-просветительской работы в сфере производства продуктов животноводства и малая эффективность рекомендуемых профилактических мероприятий привели к широкому распространению эхинококкоза животных и человека в регионе. Распространение эхинококкоза животных в РФ приобретает угрожающий характер с тенденцией формирования активно функционирующих эпизоотологических сельских и городских очагов опасного зооноза. Инвазированность эхинококко-зом промежуточных хозяев составляет: крупного рогатого скота 42,4%, овец - 65,8%, коз - 26,2%, буйволов
- 35,0%, безнадзорных собак (дефинитивный хозяин) - 80-100%. С 1995 по 2006 г. в Кабардино-Балкарской республике с диагнозами эхинококкоз печени, легких, селезенки, перикарда, диафрагмы и головного мозга оперировано 1038 пациентов в возрасте от 6 до 68 лет. Инвазии копытных животных цестодой Echinococ-cus granulosus приобрели в регионе природную очаговость, стационарность и механизмы перекрестного заражения дефинитивных и промежуточных хозяев. О широком распространении эхинококкоза сельскохозяйственных и промысловых животных в Центральном регионе РФ можно судить по масштабности образования техногенных очагов эхинококкоза сельскохозяйственных животных. В этом контексте обращается внимание на актуальность изучения вопросов биолого-экологической активности эпизоотологического и эпидемиологического процесса Echinococcus granulosus у разных видов животных и человека. Цестода Echi-nococcus granulosus при паразитировании в паренхиматозных органах животных вызывает тяжелые патологические изменения, истощение, асциты, воспаление печени и легких. У сельскохозяйственных животных завершенные и незавершенные циклы Echinococcus granulosus снижают упитанность, прирост массы тела, молочную продуктивность коров на 18-30%. В связи с этим заслуживает научно-практический интерес изучение эпизоотологического процесса эхинококкоза животных и определение путей формирования инвазии в регионе.
Материалы и методы исследований. Формирование паразитарных систем эхинококкоза животных, определение активно функционирующих штаммов Echinococcus granulosus и путей перекрестного заражения у разных видов жвачных животных изучали опытным путем, что отражается в тексте статьи. При этом применяли метод гельминтологических вскрытий печени, желчного пузыря и легких жвачных животных при их убое (Скрябин К.И., 1928). Для определения количества протосколексов Echinococcus granulosus в 1 мл жидкости применяли счетную камеру ВИГИС, разработанную Л.Г. Мигачевой, Г.А. Котельниковым (1986). Собранных при вскрытии легких и печени Echinococcus granulosus от каждого животного подсчитывали и определяли среднюю интенсивность инвазий, а также рассчитывали экстенсивность инвазии. Полученные результаты обработали статистически с расчетом средних величин по программе «Биометрия».
Результаты и обсуждение. Степень участия диких копытных животных в реализации эпизоотического процесса эхинококкоза в природных экосистемах представляет определенный научно-практический интерес. С этой целью нами были поставлены серии опытов по многоступенчатому моделированию эпизоотиче-
ского процесса эхинококкоза с участием диких копытных. Опыты были поставлены в 2003-2005 гг. в условиях СХПК «Малокабардинский» Терского района. Порядок и схемы постановки опытов излагаются ниже.
Опыт 1. Пяти агельминтозным беспородным щенкам (№ 1-5) в возрасте 3-5 месяцев, предварительно дегельминтизированных дронцитом в дозе 5 мг/кг массы тела, в условиях, исключающих спонтанное заражение, скормили с мясным фаршем по три эхинококковых пузыря, которых извлекали из печени пятнистого оленя. Эхинококковые пузыри имели хорошо развитые протосколексы с крючьями. С 20 дня после заражения через каждые 3 дня проводили копроовоскопию по методу Калантарян (1957). В результате установлено, что первое выделение члеников с яйцами цестоды отмечается на 39 день после заражения у всех щенят. Щенков № 1 и 2 подвергли вскрытию, в тонком отделе кишечника которых были обнаружены цепни, соответственно, 1820 и 1278 экземпляров длиной от 0,8 до 1,4 см. Извлеченных цестод помещали в чашку Петри, промывали трижды дистиллированной водой, с помощью лупы отбирали цестод с крупными мешковидными последними члениками и помещали в термостат при комнатной температуре на 7 дней для дозревания яиц. Затем, по принципу аналогов отобрали по 3 голов агельминтозных ягнят (6 мес.) и телят (6 мес.) и 5 гол. крольчат (4 мес.), которым скормили с комбикормом по три лентецов Echinococcus granulosus. Подопытных животных содержали в условиях, исключающих спонтанное заражение. Через 150-160 дней после заражения всех подопытных животных подвергали убою и ПГВ печени, легких и других паренхиматозных органов. Результаты исследований отражены в таблице 1.
Таблица 1
Показатели зараженности ягнят, телят и крольчат штаммом Echinococcus granulosus
от пятнистого оленя
Вид животных Подвергнуто заражению Echinococcus granulosus, гол. Из них инвазиро-вано, гол. ЭИ, % ИИ, экз./ гол. Количество протоско-лексов Echinococcus granulosus в мл жидкости
Ягнята З З 100 12,5±1,З З70,2±29,5
Телята З З 100 9,7±1,5 -
Крольчата 5 З 60,0 5,5±0,8 162,6±18,2
Как видно, штаммом Echinococcus granulosus от пятнистого оленя заразились все 100% ягнят и телят и 60% крольчат. При этом у ягнят обнаружено в печени и легких фертильных цист Echinococcus granulosus в количестве 12,5±1,З экз/гол., у телят 9,7±1,5 экз/гол. ацефалоцист альвеолярного строения и у крольчат -5,5±0,8 экз/гол фертильных цист. Количество протосколексов Echinococcus granulosus в мл жидкости у цист ягнят составило З70,2±29,5 экз/мл, у телят не обнаружено, у крольчат - 162,6±18,25 экз/мл.
Таким образом, штамм Echinococcus granulosus от пятнистого оленя является биологически активным у ягнят и крольчат, так как формирует завершенный цикл, а у телят - биологически пассивным, так как формирует незавершенный цикл, т.е ацефалоцист. Также можно полагать, что пятнистые олени, инвазиро-ванные эхинококкозом, могут прямо и косвенно активизировать эпизоотологический процесс эхинококкоза у сельскохозяйственных животных.
Опыт 2. По аналогичной схеме пяти агельминтозным беспородным щенкам (№ 1-5) в возрасте З-5 месяцев предварительно дегельминтизированных дронцитом в дозе 5 мг/кг массы тела в условиях, исключающих спонтанное заражение, скормили с мясным фаршем по три эхинококковых пузыря, которых извлекали из печени благородного оленя. Эхинококковые пузыри имели хорошо развитые протосколексы с крючьями. С 20 дня после заражения через каждые З дня проводили копроовоскопию по методу Калантарян (1957). В результате установлено, что первое выделение члеников с яйцами цестоды отмечается на 42 день после заражения у всех щенят. Щенков № 1 и 2 подвергли вскрытию, в тонком отделе кишечника были обнаружены цепни, соответственно, 1З8З и 952 экземпляров длиной от 0,9 до 1,2 см. Извлеченных цестод помещали в чашку Петри, промывали трижды дистиллированной водой, с помощью лупы отбирали цестод с крупными мешковидными последними члениками и помещали в термостат при комнатной температуре на 7 дней для дозревания яиц Echinococcus granulosus. Затем, по принципу аналогов, также подобрали по 5 голов агельминтозных ягнят (6 мес.) и телят (6 мес.) и 7 голов крольчат (4 мес.), которым скормили с комбикормом по З лентецов Echinococcus granulosus. Подопытных животных содержали в условиях, исклю-
чающих спонтанное заражение. Через 150-160 дней после заражения всех подопытных животных подвергали убою и ПГВ печени, легких и других паренхиматозных органов. Результаты исследований отражены в табл. 2.
Таблица 2
Показатели зараженности ягнят, телят и крольчат штаммом Ech. granulosus
от благородного оленя
Вид Подвергнуто заражению Echinococcus granulosus, гол. Из них инвазиро-вано, гол. ЭИ, % ИИ, экз./ гол. Количество протос-колексов Echinococcus granulosus в мл жидкости
Ягнята 5 4 80,0 9,2±1,8 296,8±22,З
Телята 5 З 60,0 6,5±1,2 -
Крольчата 7 4 57,1 4,0±1,0 1З0,4±15,9
Как видно, штаммом Echinococcus granulosus от благородного оленя заразились 80% ягнят и 60,0% телят и 57% крольчат. У ягнят обнаружено в печени и легких фертильных цист Echinococcus granulosus в количестве 9,2±1,8 экз/гол., телят 6,5±1,2 экз/гол. ацефалоцист и у крольчат - 4,0±1,0 экз/гол. фертильных цист. Количество протосколексов Echinococcus granulosus в мл жидкости у цист ягнят составило 296,8±22,З экз/мл, у телят не обнаружено, у крольчат - 1З0,4±15,9 экз/мл.
Таким образом, штамм Echinococcus granulosus от благородного оленя также является биологически активным у ягнят и крольчат и биологически пассивным у телят. Благородные олени, инвазированные эхи-нококкозом, также могут активизировать эпизоотологический процесс эхинококкоза у сельскохозяйственных животных.
Опыт 3. Пяти агельминтозным беспородным щенкам (№ 1-5) в возрасте З-5 месяцев, предварительно дегельминтизированных дронцитом в дозе 5 мг/кг массы тела, в условиях, исключающих спонтанное заражение, скормили с мясным фаршем по три эхинококковых пузыря, которых извлекали из печени косули. Эхинококковые пузыри имели хорошо развитые протосколексы с крючьями. С 20 дня после заражения щенят через каждые З дня проводили копроовоскопию по методу Калантарян (1957). В результате установлено, что первое выделение члеников с яйцами цестоды отмечается на 44 день после заражения у всех щенят. Щенков № 1 и 2 подвергли вскрытию, в тонком отделе кишечника были обнаружены цепни, соответственно, 2076 и 1694 экземпляров длиной от 0,9 до 1,5 см. Цестод помещали в чашку Петри, промывали трижды дистиллированной водой, с помощью лупы отбирали цестод с крупными мешковидными последними члениками и помещали в термостат при комнатной температуре на 7 дней для дозревания яиц. Затем по принципу аналогов также подобрали по З головы агельминтозных ягнят (6 мес.) и телят (6 мес.) и 5 голов крольчат (4 мес.), которым скормили с комбикормом по З лентецов Echinococcus granulosus. Подопытных животных содержали в условиях, исключающих спонтанное заражение. Через 150-160 дней после заражения всех подопытных животных подвергали убою и ПГВ печени, легких и других паренхиматозных органов. Результаты исследований отражены в таблице З. Как видно, штаммом Echinococcus granulosus от косули заразились 100% ягнят и 66,7% телят и 80,0% крольчат. У ягнят обнаружено в печени и легких фертильных цист Echinococcus granulosus в количестве 15,7±2,З экз/гол., телят 10,0±1,9 экз/гол. ацефалоцист и у крольчат - 7,6±1,З экз/гол. фертильных цист. Количество протосколексов Echinococcus granulosus в мл жидкости у цист ягнят составило З19,8±24,4 экз/мл, у телят не обнаружено, у крольчат - 207,5±15,8 экз/мл.
Таким образом, штамм Echinococcus granulosus от косули является наиболее биологически активным у ягнят и крольчат и биологически пассивным у телят. Косули, инвазированные эхинококкозом, также могут повышать активность эпизоотического процесса эхинококкоза в сельскохозяйственных системах при пастбищном содержании животных.
Опыт 4. Пяти агельминтозным беспородным щенкам (№ 1-5) в возрасте З-5 месяцев, предварительно дегельминтизированных дронцитом в дозе 5 мг/кг массы тела, в условиях, исключающих спонтанное заражение, скормили с мясным фаршем по три эхинококковых пузыря, которых извлекали из печени и легких лося. Эхинококковые пузыри имели размеры до теннисного мяча. С 20 дня после заражения щенят через каждые З дня проводили копроовоскопию по методу Калантарян (1957). При этом на протяжении исследо-
ваний (до 60 дней) выделение члеников с яйцами цестоды у всех щенят не регистрировали. Щенков № 1 и 2 подвергли вскрытию, в тонком отделе кишечника также не были обнаружены цепни. Таким образом, штамм Echinococcus granulosus от лося представляет биологический тупик и не вызывает заражение собак.
Таблица 3
Показатели зараженности ягнят, телят и крольчат штаммом Ech. granulosus от косули
Вид животных Подвергнуто заражению Echinococcus granulosus, гол. Из них инвазиро-вано, гол. ЭИ, % ИИ, экз/гол. Количество протоско-лексов Echinococcus granulosus в мл жидкости
Ягнята З З 100 15,7±2,З З19,8±24,4
Телята З 2 66,7 10,0±1,9 -
Крольчата 5 4 80,0 7,6±1,З 207,5±15,8
Опыт 5. Трем агельминтозным беспородным щенкам (№ 1-З) в возрасте З-5 месяцев, предварительно дегельминтизированных дронцитом в дозе 5 мг/кг массы тела, в условиях, исключающих спонтанное заражение, скормили с мясным фаршем по три эхинококковых пузыря, которых извлекали из печени и легких кавказского тура. Эхинококковые пузыри имели хорошо развитые протосколексы с крючьями. С 20 дня после заражения щенят через каждые З дня проводили копроовоскопию по методу Калантарян (1957). В результате установлено, что первое выделение члеников с яйцами цестоды отмечается на З8 день после заражения у всех щенят. Щенков № 1 и 2 подвергли вскрытию, в тонком отделе кишечника которых были обнаружены цепни, соответственно, 2,47 и 1,85 тыс. экз. длиной от 0,9 до 1,З см. Цестод в чашке Петри помещали в термостат при комнатной температуре на 7 дней для дозревания яиц Echinococcus granulosus. Затем, по принципу аналогов также подобрали по З головы агельминтозных ягнят (б мес.) и телят (6 мес.) и 7 голов крольчат (4 мес.), которым скормили с комбикормом по З лентеца. Подопытных животных содержали в условиях, исключающих спонтанное заражение. Через 150-160 дней после заражения всех подопытных животных подвергали убою и ПГВ печени, легких и других паренхиматозных органов. Результаты исследований отражены в таблице 4. Как видно, штаммом Echinococcus granulosus от кавказского тура заразились 100% ягнят, ЗЗ,З% телят и 57,1% крольчат. У ягнят обнаружено в печени и легких фертильных цист Echino-coccus granulosus в количестве 12,4±2,7 экз/гол., телят 8 экз. ацефалоцист у одной особи и у крольчат -6,З±1,8 экз/гол. фертильных цист. Количество протосколексов Echinococcus granulosus в мл жидкости у цист ягнят составило З16,З±28,6 экз/мл, у телят не обнаружено, у крольчат - 186,0±19,4 экз/мл. Штамм Echino-coccus granulosus от кавказского тура является наиболее биологически активным только у ягнят и крольчат и биологически пассивным у телят.
Таблица 4
Показатели зараженности ягнят, телят и крольчат штаммом Ech. granulosus
от кавказского тура
Вид животных Подвергнуто заражению Echinococcus granulosus, гол. Из них инвазиро-вано, гол. ЭИ, % ИИ, экз/гол. Количество протосколексов Echinococcus granulosus в мл жидкости
Ягнята З З 100 12,4±2,7 З16,З±28,6
Телята З 1 ЗЗ,З 8 -
Крольчата 7 4 57,1 6,З±1,8 186,0±19,4
Литература
1. Абуладзе, К.И. Тениаты - ленточные гельминты животных и человека и вызываемые ими заболевания / К.И. Абуладзе// Основы цестодологии. - М.: Наука, 1964. - Т.4. - 530 с.
2. Абуладзе, К.И. Современное воззрение на «штаммность» и новые данные по ультраструктуре Ech. granulosus / К.И. Абуладзе // Мат-лы 1-й Закавказ. конф. по общей паразитол. - Тбилиси, 1978. -С. 50-68.
3. Атаев, А.М. Эпизоотологический процесс и активно функционирующие штаммы Echinococcus granulosus у жвачных животных Дагестана / А.М. Атаев // Вестн. ветеринарии. - Ставрополь, 1997. - №9/3. -С. 32-37.
4. Бессонов, А.С. Распространение эхинококкоза животных в Центральном регионе РФ / А.С. Бессонов // Мат-лы науч.-практ. конф. ВОГ. - М.: Изд-во ВИГИС, 1988. - С. 3-7.
5. Бессонов, А.С. Эпизоотология альвеолярного эхинококкоза животных и человека / А.С. Бессонов. - М.: Колос, 2003. - 255 с.
6. Биттиров, А.М. Эпизоотология эхинококкоза овец и крупного рогатого скота в КБР / А.М. Биттиров // Бюл. Всес. ин-та гельминтол. - 2000. - Вып. 56. - С. 97-99.
7. Биттиров, А.М. Формирование гельминтологических комплексов животных на Центральном Кавказе и разработка способов регуляции численности трематод: автореф. дис. ... д-ра биол. наук / А.М. Биттиров. - М.: Изд-во ВИГИС, 1999. - 43 с.
8. Брофман, В.С. Инвазии копытных животных и человека, вызванные ларвальной цестодой Echinococcus granulosus / В.С. Брофман // Мат-лы Всерос. науч.-практ. конф. - М., - 2004. - Ч.1.- С. 47-49.
9. Скрябин, К.И. Методы исследований в гельминтологии / К.И. Скрябин. - М.: Сельхозизд. - 1928. - Т.1. -С. 147-164.
10. Колесников, В.И. Эхинококкоз собак в г. Ставрополе / В.И. Колесников // Вестн. ветеринарии. - Ставрополь. - 2003. - №12/1. - С. 32-37.
11. Мовсесян, С.О. Эпизоотологические особенности эхинококкоза животных в условиях Араратской долины Республики Армения / С.О. Мовсесян // Мат-лы Всерос. науч.-практ. конф. ВОГ. - М.: Изд-во ВИГИС.
- 1999. - С. 88-91.
12. Оробец, В.А. Терапия экспериментального эхинококкоза собак / В.А. Оробец // Вестн. ветеринарии. -Ставрополь. - 2002. - №4. - С. 76-78.
13. Петров, Ю.Ф. Эколого-эпизоотологические особенности эхинококкозной инвазии животных в Нечерноземной зоне РФ / Ю.Ф. Петров // Мат-лы Всерос. науч.-практ. конф. ВОГ. - М.: Изд-во ВИГИС. - 1997.
- С. 121-124.
14. Успенский, А.В. Иммуноферментная диагностика ларвальных цестодозов животных / А.В. Успенский // Бюл. Всес. ин-та гельминтол. - 1995. - Вып. 36. - С.75-78.
---------♦'-----------
УДК 619:616.995.121.3 М.Б. Чапаев, А.С. Канокова
ЭКОЛОГИЧЕСКИЕ ПРОБЛЕМЫ ЭПИЗООТОЛОГИИ ТРИХОНЕМАТИДОЗОВ ЛОШАДЕЙ АНГЛО-КАБАРДИНСКОЙ ПОПУЛЯЦИИ В РЕГИОНЕ ЮЖНОГО ФЕДЕРАЛЬНОГО ОКРУГА
Наибольший показатель ЭИ (42,7%) трихонематидозов лошадей отмечается в горной зоне при обнаружении в среднем, 157,0±1,6 экземпляров личинок в 1 г фекалий. Сравнительно меньше ЭИ трихонематидозов лошадей в предгорной зоне (30,7%). Результаты исследований также показали на рост ЭИ трихонематидозов лошадей табунно-конюшенного содержания от 26,0 до 50,0%, ИИ - от 1178,6±41,7 до 4193,2±183,9 экз/гол. (в среднем ЭИ - 35,6%, ИИ - 3175,4±118,7 экз/гол) и у лошадей круглогодичного табунного содержания, соответственно от 32,1 до 67,4%, ИИ - от 2185,4±65,2 до 5319,5±237,8 экз/гол. (в среднем, ЭИ - 47,1%, ИИ - 3862,8±146,5 экз/гол). У лошадей круглогодичного табунного содержания ЭИ и ИИ трихонематидозов были больше, что обусловлено продолжительностью трофического контакта с биотопами инвазии.
Введение. Представители нематод семейства ТпсЬюпетаМае Witenberg (1925) вызывают трихоне-матидозы. У лошадей паразитируют преимущественно гельминты подсемейства ТпсЬюпетайпае Railliet
