УДК 619:616.995.121.3
АКТИВНО ФУНКЦИОНИРУЮЩИЕ ШТАММЫ ВОЗБУДИТЕЛЯ ЭХИНОКОККОЗА КОПЫТНЫХ ЖИВОТНЫХ В КАБАРДИНО-БАЛКАРСКОЙ РЕСПУБЛИКЕ
© 2009 г. С.А. Беккиева, Ю.А. Кумышева, С.Ш. Чилаев, М.М. Сарбашева
Кабардино-Балкарская государственная Kabardino-Balkar State Agriculture Academy,
сельскохозяйственная академия, 360004, KBR, Nalchik, Lev Tolstoy St., 185,
360004, КБР, г. Нальчик, ул. Льва Толстого, 185, bam [email protected]
Паразитарная система эхинококкоза животных в природных экосистемах региона является многофункциональной и реализуется по схемам «пятнистый олень (Cervus nippo Temmink, 1838) — собака — овца, крупный рогатый скот, кролик», «благородный олень (Cervus elaphus Linnaeus, 1758) — собака — овца, крупный рогатый скот, кролик», «косуля (Capreolus Gray, 1821) — собака — овца, крупный рогатый скот, кролик», «кавказский тур (Capra caucasica Guldenstaedt et Pallas, 1783) — собака — овца, крупный рогатый скот, кролик». При этом фертильные штаммы Echinococcus granulosus пятнистого оленя, благородного оленя, косули, серны, кавказского тура и овец являются широко специфичными и могут обеспечить перекрестное заражение домашних и диких копытных, что также многократно повышает биологическую защищенность паразитарной системы, эхинококкоза животных в регионе.
Ключевые слова: эпизоотология, эхинококкоз, крупный рогатый скот, овца, коза, штамм, КБР, экстенсивность и интенсивность инвазии.
Parasitic system of the animals' and human being echinococcosis in the natural systems of the region is multifunctional and is realized according to the schemes «Cervus nippo Temmink, 1838 — dog — sheep, cattele, rabbit»; «Cervus elaphus Linnaeus, 1758 — dog — sheep, cattle, rabbit»; «Capra caucasica Guldenstaedt et Pallas, 1783 — dog — sheep, cattle, rabbit». The fertile stems of the spotted deer, noble deer, roe deer, chamois, Caucasian goat and sheep Ech. granulosus are widely specific and can lead to the cross infection of the do mestic and wild hoofed animals through the definite hosts' circle (shepherd dogs, wild dogs, wolves, jackals, raccoon dogs, foxes, badgers and so on). This many times increases biological protection of the parasitic system of the animals' echinococcosis.
Keywords: epizootiology, echinococcosis, large livestock, sheep, goat, strain, KBR, extensiveness and the intensity of invasion.
Игнорирование дегельминтизации собак, ослабление мер борьбы с безнадзорными собаками, ухудшение ветеринарно-санитарного контроля в сфере производства продуктов животноводства и малая эффективность профилактических мероприятий привели к широкому распространению эхинококкоза животных [1-3]. В Кабардино-Балкарской Республике этот процесс приобретает угрожающий характер с тенденцией формирования активно функционирующих эпизоото-логических сельских и городских очагов опасного
зооноза. Инвазированность эхинококкозом промежуточных хозяев: для крупного рогатого скота - 42,4 %; овец - 65,8; коз - 26,2; буйволов - 35,0; безнадзорных собак (дефинитивный хозяин) - 80^100 % [4, 5]. Инвазии копытных животных цестодой Echinococcus granulosus приобрели в Кабардино-Балкарском регионе природную очаговость, стационарность и привели к перекрестному заражению дефинитивных и промежуточных хозяев [5]. О широком распространении эхинококкоза можно судить по масштабности образо-
вания техногенных очагов эхинококкоза сельскохозяйственных животных [6, 7]. В этом контексте возрастает актуальность изучения вопросов биолого-экологической активности эпизоотологического процесса Ech. granulosus у разных видов животных. У сельскохозяйственных завершенные и незавершенные циклы Ech. granulosus снижают упитанность, прирост массы тела, молочную продуктивность коров на 18-30 %. В связи с этим представляет научно-практический интерес изучение эпизоотического процесса эхинококкоза животных и определение путей формирования инвазии в регионах РФ [3, 7].
Материалы и методы исследований
Формирование паразитарных систем эхинококкоза животных, определение активно функционирующих штаммов Echinococcus granulosus и пути перекрестного заражения у разных видов жвачных животных в условиях Кабардино-Балкарской Республики изучали опытным путем в 2003-2005 гг. в условиях СХПК «Малокабардинский» Терского района. В опыте 1 пяти агельминтозным беспородным щенкам в возрасте 3-5 мес., предварительно дегельминтизированных дронци-том в дозе 5 мг/кг массы тела, в условиях, исключающих спонтанное заражение, скормили с мясным фаршем по 3 эхинококковых пузыря, извлеченных из печени пятнистого оленя (Cervus nippo Temmink, 1838). Эхинококковые пузыри имели хорошо развитые про-тосколексы с крючьями. С 20-го дня после заражения через каждые 3 дня проводили копроовоскопию проб фекалий собак [8]. Щенков через 45 дней после заражения эхинококками убивали, а тонкий и толстый отдел кишечника подвергали полному гельминтологическому вскрытию (III В) по К.И. Скрябину. Извлеченные цестоды помещали в чашку Петри, промывали трижды дистиллированной водой. С помощью лупы отбирали цестоды с крупными мешковидными последними члениками и помещали в термостат при комнатной температуре на 7 дней для дозревания яиц. После этого, по принципу аналогов, подобрали по 3 гол. агельминтозных ягнят (6 мес.), телят (6 мес.) и 5 гол. крольчат (4 мес.), которым скормили с комбикормом по 3 лентеца Ech. granulosus. Подопытных животных содержали в условиях, исключающих спонтанное заражение. Через 150-160 дней после заражения всех подопытных животных убили и провели ПГВ печени, легких и других паренхиматозных органов [9]. Для определения числа протосколексов Ech. granulosus в 1 мл жидкости применяли счетную камеру ВИГИС [10]. По аналогичной схеме в остальных опытах определяли фертильность штаммов эхинококков от благородного оленя (Cervus elaphus Linnaeus, 1758), косули (Capreolus Gray, 1821), лося (Alces alces Linnaeus, 1758) и кавказского тура (Capra caucasica Guldenstaedt et Pallas, 1783). Собранных при вскрытии легких и печени
ларвоцист Ech. granulosus от каждого животного подсчитывали и определяли среднюю интенсивность инвазий (ИИ), а также экстенсивность инвазии (ЭИ). Результаты обработали статистически с расчетом средних величин по программе «Биометрия».
Результаты и обсуждение
В опыте 1 установлено, что штаммом Ech. granulosus от пятнистого оленя заразились 100 % ягнят и телят и 60 % крольчат. При этом у ягнят обнаружены в печени и легких фертильные цисты Ech. granulosus - 12,5±1,3 экз./гол.; у телят ацефалоцисты - 9,7±1,5 экз./гол.; у крольчат фертильные цисты - 5,5±0,8 экз./гол. Протос-колексы Ech. granulosus в 1 мл жидкости у цист ягнят -370,2±29,5 экз./мл, у телят не обнаружены, у крольчат -162,6±18,25 экз./мл (таблица, графа № 1).
Штамм Ech. granulosus от пятнистого оленя является биологически активным у ягнят и крольчат, так как формирует завершенный цикл. У телят - биологически пассивным, так как формирует незавершенный цикл, т.е. ацефалоцист. Можно полагать, что пятнистые олени, инвазированные эхинококкозом, могут прямо и косвенно активизировать эпизоотоло-гический процесс эхинококкоза у сельскохозяйственных животных.
В опыте 2 установлено, что штаммом Ech. granu-losus от благородного оленя заразились 80 % ягнят, 60,0 % телят, 57 % крольчат. У ягнят в печени обнаружено фертильных цист Ech. granulosus 9,2±1,8 экз./гол, у телят - 6,5±1,2 экз./гол. ацефалоцист, у крольчат - 4,0±1,0 экз./гол. фертильных цист. Количество протосколексов в 1 мл жидкости у цист ягнят составило 296,8±22,3 экз./мл, у телят не обнаружено, у крольчат - 130,4±15,9 экз./мл (таблица, № 2). Штамм Ech. granulosus от благородного оленя также является биологически активным у ягнят и крольчат и пассивным - у телят. Благородные олени, зараженные эхинококкозом, также могут активизировать эпизоотический процесс эхинококкоза у сельскохозяйственных животных.
Показатели зараженности ягнят, телят и крольчат штаммом Echinococcus granulosus от пятнистого оленя (1), благородного оленя (2), косули (3), кавказского тура (4)
Вид № Число Из них ЭИ, ИИ, Количество
животных зараженных число инвази-рованных % экз./ гол. протосколексов Echinococcus granulosus в мл жидкости
1 3 3 100 12,5±1,3 370,2±29,5
Ягнята 2 5 4 80,0 9,2±1,8 296,8±22,3
3 3 3 100 15,7±2,3 319,8±24,4
4 3 3 100 12,4±2,7 316,3±28,6
1 3 3 100 9,7±1,5 -
Телята 2 5 3 60,0 6,5±1,2 -
3 3 2 66,7 10,0±1,9 -
4 3 1 33,3 8 -
1 5 3 60,0 5,5±0,8 162,6±18,2
Крольчата 2 7 4 57,1 4,0±1,0 130,4±15,9
3 5 4 80,0 7,6±1,3 207,5±15,8
4 7 4 57,1 6,3±1,8 186±19,4
Опыт 3. Штаммом Ech. granulosus от косули заразились 100 % ягнят, 66,7 % телят, 80,0 % крольчат. У ягнят обнаружено в печени фертильных цист Ech. granulosus - 15,7±2,3 экз./ гол, телят - 10,0±1,9 экз./ гол. ацефалоцист, у крольчат - 7,6±1,3 экз./ гол. фертиль-ных цист. Количество протосколексов Ech. granulosus в 1 мл жидкости у цист ягнят составило 319,8±24,4 экз./мл, у телят не обнаружено, у крольчат - 207,5±15,8 экз./мл (таблица, № 3). Штамм Ech. granulosus от косули является наиболее биологически активным у ягнят и крольчат и биологически пассивным у телят. Косули, инвазированные эхинококкозом, могут повышать активность эпизоотического процесса эхинококкоза в сельскохозяйственных системах при пастбищном содержании животных.
Опыт 4. Штамм Ech. granulosus от лося является ацефалоцистой и представляет биологический тупик, не вызывает заражения собак.
Опыт 5. Штаммом Ech. granulosus от кавказского тура заразились 100 % ягнят, 33,3 % телят, 57,1 % крольчат. У ягнят в печени и легких обнаружены фер-тильные цисты Ech. granulosus - 12,4±2,7 экз./гол., у телят - 8 экз. ацефалоцист у одной особи, у крольчат -6,3±1,8 экз./гол. фертильных цист. Количество про-тосколексов Ech. granulosus в 1 мл жидкости у цист ягнят составило 316,3±28,6 экз./мл, у телят не обнаружено, у крольчат - 186,0±19,4 экз./мл. Штамм Ech. granulosus от кавказского тура является наиболее биологически активным только у ягнят и крольчат и биологически пассивным у телят (таблица, № 4).
Многофункциональная паразитарная система эхи-нококкоза домашних и диких животных может реализоваться по схемам «пятнистый олень (Cervus nippo Temmink, 1838) - собака - овца, крупный рогатый скот, кролик», «благородный олень (Cervus elaphus Linnaeus, 1758) - собака - овца, крупный рогатый скот, кролик», «косуля (Capreolus Gray, 1821) - собака - овца, крупный рогатый скот, кролик», «кавказский тур (Capra
Поступила в редакцию_
caucasica Guldenstaedt et Pallas, 1783) - собака - овца, крупный рогатый скот, кролик», что многократно повышает биологическую защищенность эхинококкоза животных в регионе. Штамм Ech. granulosus от лося (Alces alces Linnaeus, 1758) является ацефалоцистой и представляет биологический тупик, не вызывает заражения собак.
Литература
1. Абуладзе К.И. Современное воззрение на «штамм-ность» и новые данные по ультраструктуре Ech. granulosus // Материалы I Закавказ. конф. по общей паразитол. Тбилиси, 1978. С. 50-68.
2. Атаев А.М. Эпизоотологический процесс и активно функционирующие штаммы Echinococcus granulosus у жвачных животных Дагестана // Вестн. ветеринарии. Ставрополь, 1997. № 9/3. С. 32-37.
3. Бессонов А.С. Распространение эхинококкоза животных в центральном регионе РФ // Материалы науч.-практ. конф. ВОГ. М., 1988. С. 3-7.
4. Биттиров А.М. Формирование гельминтологических комплексов животных на Центральном Кавказе и разработка способов регуляции численности трематод : автореф. дис. ... д-ра биол. наук. М., 1999. 43 с.
5. Брофман В.С. Инвазии копытных животных и человека, вызванные ларвальной цестодой Echinococcus granulosus // Материалы Всерос. науч.-практ. конф. М., 2004. Ч. 1. С. 47-49.
6. Колесников В.И. Эхинококкоз собак в г. Ставрополе // Вестн. ветеринарии. 2003. № 12/1. С. 32-37.
7. Успенский А.В. Иммуноферментная диагностика лар-вальных цестодозов животных // Бюл. Всесоюз. ин-та гель-минтол. 1995. Вып. 36. С. 75-78.
8. Калантарян В.Г. Сравнительная оценка прижизненных методов диагностики гельминтозов // Материалы Всесоюз. науч.-практ. конф. ВОГ. М., 1957. С. 89-91.
9. Скрябин К.И. Метод полного и неполного гельминтологического вскрытия животных. М., 1928. С. 4-19.
10. Мигачева Л.Г. Новая методика подсчета яиц и личинок гельминтов // Тр. ВИГИС. 1986. Т. 22. С. 146-150.
5 марта 2008 г.