CC BY
72
Особенности детоксикации с участием ферментов микросомального окисления и глутатионзависимых ферментов при псевдотуберкулезе у детей
Жаворонок Т.В., Носарева О.Л., Помогаева А.П., Бутусова В.Н., Стариков Ю.В., Климанова Е.М., Петина Г.В., Степовая Е.А.
The detoxication peculiarities by microsomal oxidation enzymes and glutathione dependent enzymes under pseudotuberculosis at children
Zhavoronok T.V., Nosareva O.L., Pomogayeva A.P., Butusova V.N., Starikov Yu.V., Klimanova Ye.M., Petina G.V., Stepovaya Ye.A.
Сибирский государственный медицинский университет, г. Томск
© Жаворонок Т.В., Носарева О.Л., Помогаева А.П. и др.
Проведена комплексная оценка детоксикационной функции по антипириновому тесту и активности глутатионзависимых ферментов у детей, больных комбинированной формой псевдотуберкулеза средней степени тяжести с острым гладким течением. Поражение печени устанавливали по клиническим и биохимическим данным. Особенности биохимических процессов детоксикации, наблюдаемых при инфицировании Yersinia pseudotuberculosis, необходимо принимать во внимание, определяя прогноз заболевания.
Ключевые слова: псевдотуберкулез, токсины, острое воспаление, перекисное окисление липидов, цитохром Р450, глу-татионзависимые ферменты.
There was evaluated detoxication function state by the antipyrine test and glutathione dependent enzymes activity among the children with combined form of middle-degree pseudotuberculosis of sharp smooth tendency. Liver disorder was proven by the clinical and biochemical approaches. Our results show that it is desirable to allow detoxication biochemical processes peculiarities under Yersinia pseudotuberculosis infection while determining disease prognosis.
Key words: pseudotuberculosis, toxins, acute inflammation, lipid peroxidation, cytochrome P450, glutathione dependent enzymes.
УДК 616.9-002:577.15
Введение
Псевдотуберкулез (ПТ) как острое инфекционное заболевание характеризуется токсикоаллергической и полиочаговой симптоматикой, возникающей под влиянием спектра токсинов, связанных с Yersinia pseudotuberculosis: цитотоксина, термолабильного и термостабильного токсинов, энтеротоксина, экзотоксина, факторов, нарушающих проницаемость сосудов кожи, — PF-раннего и PF-позднего [4, 9, 10, 13].
Метаболизм бактериальных токсинов в организме сопряжен с активацией микросомального окисления
на уровне семейства цитохромов Р450 и мобилизацией ферментов второй фазы биотрансформации ксенобиотиков, в частности, глутатион^-трансфераз. Восстановленный глутатион (GSH) принимает участие в многочисленных жизненно важных клеточных функциях [14, 17], а конъюгация с ним токсинов и ксенобиотиков в большинстве случаев рассматривается как реакция детоксикации [5]. Деградация таких конъюга-тов, инициируемая у-глутамилтранспептидазой, и дальнейший гидролиз производных цистеинилглици-на до составляющих его аминокислот происходит на поверхности мембран клеток печени, почек [15]. По-
вреждая мембраны, токсины Yersinia
pseudotuberculosis нарушают эти процессы, а также непосредственно воздействуют на систему цитохро-мов Р450 [10], ингибируя активность монооксигеназ, поэтому исследование детоксикационного потенциала организма при ПТ приобретает особую актуальность.
Целью исследования было выяснение участия мик-росомального окисления и глутатиондеградирующих ферментов в механизмах детоксикации у детей при остром псевдотуберкулезном воспалении.
Материал и методы
Обследовано 63 ребенка в возрасте от 5 до 15 лет, находившихся в стационаре с диагнозом ПТ средней степени тяжести с острым гладким течением. Диагноз был поставлен согласно классификации А.А. Колты-пина [3], верифицирован с помощью бактериологического анализа и реакции непрямой гемагглютинации (РНГА), диагностический титр 1 : 200. Всех детей этой группы обследовали в острую фазу ПТ и в период ранней реконвалесценции [12]. Группу сравнения составили 26 детей группы здоровья II-A, сопоставимых по возрасту. Показатели антипиринового теста (период полувыведения Ту2, общий клиренс Clr препарата) в слюне рассчитывали по методу В.В. Brodie и соавт. (1949) [6], основанному на спектрофотометрической регистрации 4-нитрозантипирина при длине волны, равной 350 нм. Исследования компонентов системы глута-тиона в эритроцитах проводили с использованием базовых реактивов фирмы «МР Biomedicals» (США); определяли активность глутатионзависимых ферментов [8]: глутатион^-трансферазы (КФ 2.5.1.18) по скорости ферментативного преобразования 2,4-динитробензена, глутатионпероксидазы (КФ 1.11.1.9) по способности катализировать реакцию взаимодействия восстановленного глутатиона с гидроперекисью т-бутила, глутатионредуктазы (КФ 1.6.4.2) по зависимому от НАДФ Н-преобразованию окисленной формы глутатиона в восстановленную, содержание восстановленного глутатиона по способности кислотораствори-мых тиоловых группировок взаимодействовать с 5,5'-дитио-бис(2-нитробензойной кислотой). Содержание белка в гемолизате эритроцитов определяли унифицированным биуретовым методом. В сыворотке крови определяли активность
у-глутамилтранспептидазы (КФ 2.3.2.2), аминотранс-фераз (АсАТ (КФ 2.6.1.1) и АлАТ (КФ 2.6.1.2)),
5'-нуклеотидазы (КФ 3.1.3.5), содержание билирубина унифицированными методами. Полученные данные представлены в виде X + т, где X — среднее значение; т — ошибка среднего. Проверка полученных данных в группах на принадлежность к закону распределения Гаусса была осуществлена путем вычисления асимметрии As и эксцесса Es. Для проверки статистических гипотез о различии между исследуемыми группами использовали непараметрический критерий Манна— Уитни — для попарно не связанных и Вилкоксона — для попарно связанных выборок при их несоответствии нормальному распределению.
Результаты и обсуждение
При клиническом обследовании у детей с разными нозологическими формами ПТ наряду с типичной симптоматикой (общеинфекционный синдром, катаральные явления, артралгии, экзантемы, диспепсический синдром, боли в животе — схваткообразные или тупые, болезненность при пальпации в илеоцекальном углу и т.д.) отмечались признаки гепато- и спленоме-галии. Гепатомегалия, характеризующаяся превышением размеров печени от 1 до 4 см относительно возрастной нормы, выявлялась на 4—10-й день болезни у 78% больных. О повреждении мембран гепатоцитов и нарушении функции гепатобилиарной системы у детей в разгар ПТ свидетельствовало повышение в крови активности АлАТ в 1,5—3,0 раза (41% больных), 5'-нуклеотидазы — в 1,4—3,6 раза (99% больных), уровня общего билирубина — до 2,53 раза. Цитолиз сохранялся в течение 10—14 сут. Желтушное окрашивание кожи и склер держалось 5—7 сут (17% больных). Развитие токсического повреждения печени является особенностью формирования всех клинических форм ПТ у детей [11], что также отмечено ранее в исследованиях [1].
Повреждения структуры гепатоцитов сопровождались изменением детоксикационного потенциала печени, сопряженного с активностью ферментов биотрансформации ксенобиотиков. Используя антипири-новый тест, учитывали, что метаболизм препарата-анализатора осуществляется главным образом в печени и отчасти в почках гидроксилированием в 4-й позиции, окислением метильной группы в 3-й позиции, а также посредством ^деметилирования. Скорость протекания этих реакций зависит от активности цито-хром Р450-зависимых монооксигеназ, локализованных
в микросомальной фракции гепатоцитов [16]. В группе здоровых детей период полувыведения антипирина составил (4,79 + 0,25) ч, общий клиренс препарата — (5,40 + 0,61) мл/мин (табл. 1), что находится в пределах референтных значений. При псевдотуберкулезе Т1/2 антипирина на пике заболевания был повышен в 3,38 раза, а Clr снижен в 3,70 раза по сравнению с группой здоровых детей. При клиническом выздоровлении пациентов регистрировался менее выраженный дисбаланс значений Т1/2 и Clr — отличия от контрольных величин составили 1,80 и 1,73 раза соответственно. Следовательно, в период ранней реконвалесцен-ции функциональное напряжение системы микросо-мального окисления было недостаточным для полной нейтрализации токсинов, обусловливающих проявления болезни.
Эндотоксины Yersinia pseudotuberculosis способны нарушать строение гладкого эндоплазматического ретикулума клеток печени и угнетать активность мик-росомальных ферментов, в частности, повреждать структуру цитохромов Р450, потенцируя их переход в неактивную форму Р420 [10]. К тому же в центре псевдотуберкулезных гранулем снижается количество функциональных клеток (гепатоцитов, нефроцитов), обеспечивающих работу микросомального звена системы детоксикации. Yersinia pseudotuberculosis и их токсины вызывают генерализованное воспаление с повреждением всех органов и тканей, а также способны снижать скорость кровотока, способствуя тканевой гипоксии и нарушению окислительного метаболизма
клеток с возникновением дисбаланса восстановленных форм НАДФ и НАД, необходимых для стабильной работы микросомальной гидроксилирующей системы.
Необходимо отметить, что метаболизм ксенобиотиков и токсинов в детском возрасте иной, чем у взрослых. Многие ферментные системы детоксикации созревают постепенно в процессе развития ребенка, что сказывается на течении болезней. Это касается системы микросомального окисления, в частности изоформ цитохрома Р450, а также ферментных систем глутатион^-трансфераз, УДФ-глюкуронилтрансфераз печени, почек и др.
Активность глутатион-8-трансферазы эритроцитов детей в динамике ПТ изменялась согласованно с показателями антипиринового теста. На пике инфекционного процесса активность энзима была в 3,99 раза выше по сравнению со здоровыми детьми. Это могло быть вызвано экспрессией фермента в ответ на выброс токсинов псевдотуберкулезного микроба и образование токсичных продуктов пероксидации и липоперок-сидации клеточных структур (табл. 2). В стадию ранней реконвалесценции активность глутатион-8-транс-феразы повышалась менее значительно — в 1,73 раза относительно контрольных величин — и была при этом в 2,30 раза ниже активности фермента в острый период псевдотуберкулеза. По-видимому, уровень экзогенных и эндогенных токсинов у детей оставался достаточно высоким и в стадию клинического выздоровления.
Таблица 1
Показатели антипиринового теста в слюне и активность у-глутамилтранспептидазы в сыворотке крови детей
при псевдотуберкулезе (X ± m)
Группа пациентов Период полувыведения антипирина, ч Общий клиренс антипирина, мл/мин у-глутамилтранс-пептидаза, мккат/л
Здоровые дети (контроль) 4,79 ± 0,25 5,40 ± 0,61 0,34 ± 0,02
Псевдотуберкулез (острый период) 16,21 ± 1,50 Р1 < 0,001 1,46 ± 0,47 Р1 < 0,001 1,88 ± 0,19 Р1 < 0,01
Псевдотуберкулез(период ранней реконвалесценции) 8,63 ± 0,74 Р1 < 0,001; р2 < 0,01 3,12 ± 0,56 Р1 < 0,01; р2 < 0,05 0,51 ± 0,05 Р1 < 0,01; р2 < 0,01
Примечание . Здесь и в табл. 2:р1 — уровень значимости различий между группами, рассчитанный относительно контрольных величин; р2 — уровень значимости различий в группе, рассчитанный относительно данных острого периода болезни.
Таблица 2
Содержание восстановленного глутатиона и активность глутатионзависимых ферментов в эритроцитах детей
при псевдотуберкулезе (X ± m)
Глутатион Глутатион- Глутатион- Глутатион-S-
Группа пациентов восстановленный, пероксидаза, редуктаза, трансфераза,
мкмоль/(мин • г) мкмоль/(мин • г) мкмоль/(мин • г) мкмоль/(мин • г)
Здоровые дети (контроль)
Псевдотуберкулез (острый период)
1,84 ± 0,09
0,62 ± 0,07
2,44 ± 0,25
1,80 ± 0,25
0,82 ± 0,06 Р1 < 0,01
0,41 ± 0,09 р1 < 0,05
4,44 ± 0,21 Р1 < 0,01
7,18 ± 1,80 Р1 < 0,01
Псевдотуберкулез (период ранней 1,05 ± 0,07
реконвалесценции) р1 < 0,01
Глутатион-8-трансферазы функционируют на второй линии защиты клетки от экзогенных (микробные метаболиты, ксенобиотики и др.) и эндогенных (продукты пероксидации и др.) токсинов, нейтрализуя их посредством восстановления, присоединения к субстрату молекулы в8И или нуклеофильного замещения гидрофобных групп. Эти энзимы конъюгируют с глу-татионом токсичные продукты перекисного окисления липидов (ноненали, децинали, холестерин-а-оксид), чем способствуют их выведению из организма. Преобладающее количество веществ при связывании с в8И образует соответствующие тиоэфиры. Кроме того, семейство глутатион-8-трансфераз использует восстановленный глутатион для прямой регенерации липоперекисей в мембранах, снижая последствия окислительного стресса, неизбежно возникающего при остром воспалении [5].
Анализ полученных данных (см. табл. 2) указывает на активный расход восстановленного глутатиона в реакциях нейтрализации токсинов и утилизации продуктов переокисления в эритроцитах детей при ПТ. Концентрация в8И в клетках красной крови была сниженной на пике заболевания в 2,24 раза, в период ранней реконвалесценции — в 1,75 раза по сравнению с группой контроля, что сопровождало дисбаланс в работе глутатионзависимых ферментов на всех сроках исследования. Необходимо также отметить, что восстановленный глутатион интенсивно расходуется вследствие ряда окислительно-восстановительных реакций как поставщик 8И-групп, защищающих клетку от ОН-радикала и других активных форм кислорода.
Используя в8И, глутатион-8-трансфераза способна в физиологических условиях восстанавливать гид-ропероксигруппы окисленных фосфолипидов непосредственно в мембранах без предварительного фос-фолипазного гидролиза [2]. Известно, что продукты такого гидролиза — свободные жирные кислоты — ингибируют глутатион-8-трансферазу, а глутатионпе-роксидаза резистентна к их действию [7]. При остром инфекционном воспалении вследствие развития ацидоза, выхода ионов Са2+ потенцируется активность фосфолипазы А2, угнетающей способность глутатион-
0,88 ± 0,07 3,37 ± 0,33 3,12 ± 0,37
Р1 < 0,01; р2 < 0,01 р1 < 0,01; рг < 0,01 р1 < 0,01; рг < 0,01
S-трансферазы к детоксикации липопероксидов. Однако глутатион^-трансфераза при этом интенсивно экспрессируется, и ее первоочередной задачей, вероятно, становится нейтрализация микробных токсинов, а основные антиоксидантные эффекты по нейтрализации продуктов перекисного окисления липидов в мембранах осуществляются глутатионпероксидазой. Действительно, вследствие большой нагрузки на глу-татионпероксидазу в реакциях элиминации токсичных метаболитов перекисного окисления липидов на пике болезни активность фермента падала в 1,51 раза, однако в период ранней реконвалесценции его функциональные возможности стабилизировались, возрастая в 1,42 раза относительно контрольных величин.
Снижение уровня GSH, связанное с процессами детоксикации и антиоксидантной защиты, сопровождалось повышением активности у-глутамилтранспептидазы (см. табл. 1). Активность фермента возрастала по сравнению со значениями группы здоровых детей в 5,53 раза на пике болезни, в 1,50 раза в период ранней реконвалесценции, стимулируя отщепление у-глутамильного остатка и начало деградации глутатиона, его конъюгатов и их дальнейшую элиминацию. Наряду с этим повышение активности у-глутамил-транспептидазы — дополнительное свидетельство повреждения ткани печени и гепатобилиарного тракта, поскольку рост активности данного фермента обычно сопровождает синдромы цитолиза, холестаза, процессы интоксикации организма.
Вследствие высокого расхода GSH при элиминации токсинов Yersinia pseudotuberculosis и нейтрализации проявлений окислительного стресса реципрокно увеличивалась активность глутатионредуктазы эритроцитов как в разгар заболевания, так и в период ранней реконвалесценции. Скорость НАДФ H-зависимого процесса ферментативной регенерации GSH намного превосходит возможности синтеза глутатиона в тканях de novo, однако на пике болезни ее недостаточно для поддержания оптимальных концентраций этого трипептида.
Заключение
Таким образом, при ПТ обнаружено нарушение процессов детоксикации на уровне ферментов микро-сомального окисления, более выраженное на пике болезни. В острую фазу инфекционного воспаления выявлено снижение концентрации GSH и функциональной активности глутатионпероксидазы при повышении активности глутатион-8-трансферазы и глутатионредуктазы. Токсины ПТ весьма агрессивны для организма, что требует в разгар инфекционного воспаления преимущественной активации компонентов системы глутатиона, обладающих детоксикацион-ной направленностью. В период ранней реконвалес-ценции функциональная активность компонентов системы глутатиона ориентирована на элиминацию последствий окислительного стресса.
Изучение состояния системы глутатионзависимых ферментов может быть полезным при прогнозировании течения псевдотуберкулеза, поскольку отражает уровень процессов детоксикации в организме и стабилизации клеточных мембран.
Литература
1. Жаворонок Т.В., Носарева О.Л., Помогаева А.П., Клима-нова Е.М. Состояние микросомального окисления и окислительного метаболизма мембран у детей при псевдотуберкулезе // Сиб. журн. гастроэнтерологии и гепато-логии. 2003. № 16—17. С. 191—194.
2. Зенков Н.К., Ланкин В.З., Меньщикова Е.Б. Окислительный стресс: Биохимический и патофизиологический аспекты. М.: Наука — Интерпериодика, 2001. 343 с.
3. Инфекционные болезни у детей / Под ред. проф. В.Н. Тимченко и проф. Л.В. Быстряковой. СПб.: Спец-лит, 2001. 560 с.
4. Исачкова Л.М., Прокопенкова А.П., Плехова Н.Г., Горли-кова Р.П. К вопросу о биологическом действии эндотоксина Yersinia pseudotuberculosis // Журн. микробиологии. 1990. № 10. С. 7—11.
5. Колесниченко Л.С., Кулинский В.И. Глутатионтрансфера-зы // Успехи соврем. биологии. 1989. Т. 107. Вып. 2. С. 179—194.
6. Краковский М.Э., АширметовАХ. Методы оценки активности монооксигеназной ферментной системы // Лаб. дело. 1990. № 3. С. 130—133.
7. Ланкин В.З., Бондарь Т.Н., Тихазе А.К. Влияние свобод-
ных жирных кислот на липопероксидазную активность антиоксидантных ферментов — Se-содержащей глутатионпероксидазы и неселеновой глутатион^-трансферазы // Докл. АН СССР. 1997. Т. 357. Вып. 5. С. 828—831.
8. Медицинские лабораторные технологии / Под. ред. А.И. Карпищенко. СПб., 1999. Т. 2. 656 с.
9. Недашковская Е.П., Алихацкая Г.Н., Тимченко Н.Ф. Изучение биохимических свойств и порообразующей активности термостабильного токсина Yersinia pseudotuberculosis // Инфекционная патология в Приморском крае. Владивосток, 1994. С. 16—17.
10. Разник С.Д. Характеристика биологического действия токсина Yersinia pseudotuberculosis: Автореф. дис. ... канд. мед. наук. Владивосток, 1999. 12 с.
11. Рудакова Р.И., Носкова Ф.В., Мордовец В.И. и др. Кли-нико-эпидемиологические особенности псевдотуберкулеза у детей // Острые инфекционные заболевания. Киров, 1994. С. 44—46.
12. Руководство по инфекционным болезням / Под. ред. проф. В.Ф. Учайкина. М.: ГЭОТАР, Медицина, 1998. С. 621—630.
13. Carnoy C., SimonetM. Yersinia pseudotuberculosis superantigenic toxins // Bacterial protein toxins: a comprehensive sourcebook. London: Academic Press, 1999. P. 611—622.
14. Hayes J.D., McLellan L.I. Glutathione and glutathione-dependent enzymes represent a co-ordinately regulated defence against oxidative stress // Free Rad. Res. 1999. V. 31. P. 273—300.
15. Kozak E.M., Tate S.S. Glutatione-degrading enzymes of mi-crovillus membranes // J. Biol. Chem. 1982. V. 257. № 11. P. 6322—6327.
16. Parke D.V., Ioannidles C., Lewis D.F.V.The role of the sytochromes P-450 in the detoxication and activation of drugs and other ^emicals // Can. J. Physiol. and Pharmacol. 1991. V. 69. № 5. Р. 537—540.
17. Wang W., Ballatori N. Endogenous glutathione conjugates: occurrence and biological functions // Pharmacol. Reviews. 1998. V. 50. № 3. P. 335—355.
Поступила в редакцию 04.07.2005 г.
