МИКРОБИОЦЕНОЗ ШИНШИЛЛ ПРИ НЕЗАРАЗНОЙ ПАТОЛОГИИ ЖЕЛУДОЧНО-КИШЕЧНОГО ТРАКТА В УСЛОВИЯХ Г. САМАРА Текст научной статьи по специальности «Ветеринарные науки»

DOI 10.12737/18296 УДК 579.62 : 579.61 : 579.26

МИКРОБИОЦЕНОЗ ШИНШИЛЛ ПРИ НЕЗАРАЗНОЙ ПАТОЛОГИИ ЖЕЛУДОЧНО-КИШЕЧНОГО ТРАКТА В УСЛОВИЯХ Г. САМАРА

Ермаков Владимир Викторович, канд. биол. наук, доцент кафедры «Эпизоотология, патология и фармакология», ФГБОУ ВО Самарская ГСХА.

446442, Самарская область, п.г.т. Усть-Кинельский, ул. Учебная, 2.

E-mail: Vladimir 21 [email protected]

Ключевые слова: микробиоценоз, шиншилла, энтеробактерии, энтерококки, бактероиды.

Цель исследований - повышение резистентности организма шиншилл к представителям патогенных и условно-патогенных микробов при незаразной патологии желудочно-кишечного тракта. Исходя из цели исследования, были поставлены следующие задачи - выделение и идентификация у шиншилл видового состава микрофлоры желудочно-кишечного тракта по морфологическим, тинкториальным, культуральным, биохимическим и серологическим свойствам. В опытной группе у шиншилл с незаразной патологией желудочно-кишечного тракта (гастроэнте-роколит) в пробах фекалий идентифицированы резидентные микроорганизмы Enterococcus faecalis КОЕ 2,85х104±0,23, Peptococcus niger - 3,64х105±0,33, Peptostreptococcus anaerobius - 3,74х104±0,52, Lactobacillus delbrueckii - 2,84х102±0,53, Bifidobacterium bifidum - 3,16х102±0,46, Escherichia coli - 2,67х105±0,53, Serratia marcescens - 2,95х104±0,13, Bacteroides fragilis - 2,57х103±0,12, Prevotella bivia - 4,21х103±0,24. Среди транзиторных микроорганизмов были идентифицированы Staphylococcus epidermidis и S. saprophiticus, Streptococcus rattus и S. crice-tus, Enterobacter cloacae, Klebsiella oxytoca, Citrobacter diversus, Salmonella enteritidis и Yersinia enterocolitica, Proteus vulgaris, Bacillus cereus, B. subtillis, Clostridium sporogenes, C. ramosum, С. difficile, Helicobacter pylori, Campylobacter coli. Заключение. Микробиоценоз здоровых шиншилл включает аутомикрофлору, занимающую определённую экологическую нишу в организме животных. При развитии патологии желудочно-кишечного тракта у шиншилл уменьшается количество аутомикрофлоры, а её место занимают транзиторные условно-патогенные и патогенные микроорганизмы, проникающие в организм животных алиментарно и фекально-орально. В связи с этим, в ходе дальнейших исследований, необходимо разработать эффективные пробиотики для профилактики и ликвидации дисбаланса микрофлоры желудочно-кишечного тракта шиншилл.

Пептококки и пептострептококки в ассоциации с другими микробами вызывают гнойно-воспалительные болезни различной локализации, обитают на слизистых полости рта, кишечника, верхних дыхательных путей и мочеполового тракта.

Энтеробактерии вызывают кишечные инфекции и некишечные, оппортунистические инфекции, вызываемые условно-патогенными бактериями различных родов семейства Enterobacteriaceae [1].

Вирусная инфекция в период становления клеточных и гуморальных звеньев неспецифической резистентности и иммунной системы создаёт благоприятные условия для активизации патогенных и условно-патогенных бактерий и микромицетов [2, 3].

Условно-патогенные микроорганизмы, представители резидентной и транзиторной микрофлоры макроорганизма оказывают болезнетворное воздействие на организм изученных хорьков, кошек и собак [4, 5]. Питание животных, при этом, является одним из самых значимых экологических антропогенных факторов для макроорганизма, который может привести к качественным и количественным нарушениям видового спектра микробного ценоза [6].

При дисфункции микробиоценоза у мелких домашних животных часто диагностируются кератомико-зы и поверхностные дерматомикозы [7].

В ходе дисбаланса микробиоценоза желудочно-кишечного тракта у козлят происходит снижение резидентной облигатной анаэробной микрофлоры [8].

В настоящее время в России у граждан большой популярностью пользуются шиншиллы, у которых часто, как и у других грызунов, проявляется незаразная патология желудочно-кишечного тракта [9]. В связи с этим были проведены исследования резидентной и транзиторной микрофлоры шиншилл, содержащихся у жителей г. Самара.

Цель исследований - повышение резистентности организма шиншилл к представителям патогенных и условно-патогенных микробов при незаразной патологии желудочно-кишечного тракта.

Задачи исследований - выделение и идентификация у шиншилл видового состава микрофлоры желудочно-кишечного тракта по морфологическим, тинкториальным, культуральным, биохимическим и серологическим свойствам.

Материалы и методы исследований. Материалом и объектом для исследования являлись самки и самцы короткохвостых или больших шиншилл (СЫпсЫНа Ьгеуюа^а1а), содержащихся в домашних условиях у жителей г. Самара.

Были отобраны по средней живой массе тела и возрасту 10 шиншилл (6 самок и 4 самца), из которых сформировали две группы животных. Возраст шиншилл - 1,5-2 года, масть серовато-голубая, а брюшко окрашено в белый цвет, живая масса самцов составляла в среднем 658 г, а самок - 876 г.

В контрольной и опытной группе находились по три самки и два самца.

Контрольная группа состояла из здоровых шиншиллы, а в опытной группе содержались шиншиллы с симптомами незаразной патологии желудочно-кишечного тракта.

У шиншилл опытной группы наблюдалось снижение аппетита и температуры тела, умеренная жажда. Моторика желудка и перистальтика кишечника слабые, при пальпации стенка живота была напряжена, реакция болезненная, животное худеет, понос, частая дефекация, кал жидкий с примесями слизи и плохопе-реваренных частиц корма, у некоторых зверьков с примесями крови.

По завершении исследования были вынужденно убиты две самки шиншиллы с опытной группы, у которых в ходе патологоанатомического вскрытия выявлено набухание и гиперемия с кровоизлияниями слизистой оболочки желудка, тонкого и толстого кишечника. Содержимое желудка, особенно кишечника, жидкое, мутное, с большим количеством слизи и примесью крови. При гистологическом исследовании установлены характерные для серозного и геморрагического гастроэнтероколита изменения воспалительного характера в слизистой оболочке, в глубоколежащих слоях стенок желудка, тонкого и толстого кишечника, полученные вследствие развития незаразной патологии желудочно-кишечного тракта гастроэнтероколита.

В ходе исследования шиншиллы содержались в специализированных клетках в квартирах горожан со свободным доступом к воде (вакуумные поилки, использовалась остывшая и профильтрованная кипячёная или минеральная негазированная вода), сену и материалу для стачивания зубов, периодически для чистки шерсти животным предоставляли «купальню из смеси дроблённого вулканического камня и песка для купания немецкого производства». Исследование проводилось в декабре 2015 г.

Отбор биоматериала. Мочу у шиншилл отбирали в пустые коллекторы, исследовали путём подготовки препаратов раздавленная и висячая капля в ходе световой микроскопии при затемнённом поле зрения. Пробы фекалий отбирали для изучения микрофлоры желудочно-кишечного тракта шиншилл. Из проб фекалий готовили баксуспензию (иноулят) в десятикратных разведениях. Инокулят высевали в чашки Петри и пробирки на мясо-пептонный агар, в мясо-пептонный бульон, на дифференциально-диагностические и элективно-селективные среды. Далее посевы культивировали при 25-37оС (для некоторых культур до 45оС) в течение 48-72 ч. Как правило, в рецептуре дифференциально-диагностических и элективно-селективных сред имеются все необходимые специфические ростовые факторы, обеспечивающие избирательный рост и накопление определённых облигатных и факультативных аэробных и анаэробных микробов.

Пробы мочи сеяли в среду Ферворта-Вольфа (в модификации С. И. Тарасевича) и исследовали в ходе тёмнопольной световой бактериоскопии в препаратах «раздавленная и висячая капля».

Транзиторные и резидентные микроорганизмы, содержащиеся в фекалиях исследуемых шиншилл, культивировали на следующих средах: стафилококки культивировали на желточно-солевом агаре (ЖСА), стрептококки - на глюкозо-кровяном МПА. Пептококки и пептострептококки выделяли на кровяном МПА с созданием анаэробных условий, бациллы - на мясо-пептонном агаре, кровяном агаре, хеликобактерии - на полужидком мясо-печёночном-пептонном агаре.

Эшерихии выделяли на средах Эндо и кровяном агаре, сальмонеллы - на висмут-сульфитном агаре, иерсинии - на дифференциально-диагностическом СБТС-агаре и селективном Ш-агаре, клебсиеллы - на агаре Плоскирёва, протеи - на скошенном агаре П-1 с полимиксином и солями желчных кислот и на скошенным МПА, энтеробактеры - на эозинметиленовом агаре, серрации - на пептон-глицериновом агаре, цитро-бактеры - на висмут-сульфитном агаре и агаре Плоскирева, среде Ресселя и Клиглера, энтерококки - на средах Диф-5 и кровяном агаре, кампилобактерии - на сафранино-железо-новобиоцинов среде. Созданием анаэробных условий культивировали бактероиды на глюкозо-кровяном агаре с добавлением гемина (витамин К), лактобациллы, бифидобактерии и превотеллы - на глюкозо-кровяном агаре, клостридии - в бульоне Китта-Тароцци и на железо-сульфитном агаре Вильсона-Блера.

Чистые культуры микроорганизмов идентифицировали по морфологическим, тинкториальным, куль-туральным, биохимическим и серологическим свойствам. Определение количества выросших колоний микроорганизмов (КОЕ - колониеобразующая единица) на плотных питательных средах проводили общепринятым методом на приборе ПСБ (прибор счёта бактерий). Биохимические свойства микроорганизмов изучали постановкой пёстрого ряда со средами Гисса, в пластинах ПБДЭ (пластина для биохимической дифференциации энтеробактерий), в тестах на антибиотикочувствительность и резистентность, и в других специфических

тестах. Результаты исследований обрабатывали статистически с использованием компьютерной программы Excel.

Результаты исследований. Живая масса шиншиллы контрольной группы находилась в следующих пределах: у самцов - (669,52±0,54) г, у самок - (870,38±0,28) г, в опытной группе: у самцов -(542,56±0,36) г, у самок - (634,62±0,48) г, соответственно.

В пробах мочи шиншилл контрольной и опытной групп, в ходе бактериоскопии мочи и в ходе её культивирования, спирохитозные бактерии выявлены не были.

В пробах фекалий шиншилл контрольной группы были выделены и идентифицированы резидентные микроорганизмы Enterococcus faecalis - КОЕ 1,76х103±0,25, Peptococcus niger - 3,68х103±0,48, Peptostrepto-coccus anaerobius - 3,24х103±0,12, Lactobacillus delbrueckii - 5,46х104±0,43, Bifidobacterium bifidum -5,16х104±0,24, Escherichia coli - 2,83х103±0,13, Serratia marcescens - 1,63х103±0,12, Bacteroides fragilis -1,47х102±0,16, Prevotella bivia - 3,25х102±0,23.

Среди транзиторных бактерий выявлены эпидермальный стафилококк Staphylococcus epidermidis -КОЕ 1,06х102±0,04 и сапрофитный стафилококк S. Saprophiticus - 1,48х102±0,06, Streptococcus rattus -1,08х102±0,02 и S. cricetus - 1,08х102±0,05, Enterobacter cloacae - 2,16х103±0,08, Klebsiella oxytoca -1,67х102±0,06, Citrobacter diversus - 2,12х102±0,08, Bacillus cereus - 2,14х102±0,05, B. subtillis - 2,36х103±0,07, Clostridium sporogenes - 2,18х102±0,08, C. ramosum - 2,34х102±0,15, С. difficile - 1,23х102±0,06.

В опытной группе у шиншилл с незаразной патологией желудочно-кишечного тракта (гастроэнтерит и колит) в пробах фекалий выделены и идентифицированы резидентные микроорганизмы Enterococcus faecalis - КОЕ 2,85х104±0,23, Peptococcus niger - 3,64х105±0,33, Peptostreptococcus anaerobius -3,74х104±0,52, Lactobacillus delbrueckii - 2,84х102±0,53, Bifidobacterium bifidum - 3,16х102±0,46, Escherichia coli - 2,67х105±0,53, Serratia marcescens - 2,95х104±0,13, Bacteroides fragilis - 2,57х103±0,12, Prevotella bivia - 4,21х103±0,24.

Среди транзиторных микроорганизмов были идентифицированы эпидермальный стафилококк Staphylococcus epidermidis - КОЕ 3,16х102±0,26 и сапрофитный стафилококк S. saprophiticus - 3,18х103±0,06, Streptococcus rattus - 2,58х103±0,32 и S. cricetus - 3,06х103±0,22, Enterobacter cloacae - 3,36х104±0,38, Klebsiella oxytoca - 2,77х103±0,16, Citrobacter diversus - 4,12х103±0,12, Salmonella enteritidis - 2,31х103±0,07 и Yersinia enterocolitica - 1,77х103±0,08, Proteus vulgaris - 2,59х103±0,14, Bacillus cereus - 3,64х103±0,18, B. subtillis - 5,46х104±0,27, Clostridium sporogenes - 4,27х104±0,23, C. ramosum - 4,48х104±0,37, С. Difficile -3,53х103±0,07, Helicobacter pylori - 3,56х102±0,13, Campylobacter coli - 1,49х102±0,02.

Таблица 1

Идентификация чистых культур бактерий, выделенных из фекалий шиншилл

Свойства

Чистая культура культуральные морфологические тинкториальные, (по Граму±)

1 2 3 4

Staphylococcus epidermidis На ЖСА круглые, несколько мутные с ровной периферией, окружённые радужным венчиком Скопление кокков, напоминающих виноградную гроздь Равномерная (+)

Staphylococcus saprophiticus На ЖСА круглые, мутные с ровной периферией и радужным венчиком Скопление кокков, напоминающих виноградную гроздь Равномерная (+)

Streptococcus rattus На глюкозо-кровяном МПА колонии круглые в диаметре 1-3 мм, полупрозрачные, зона а-гемолиза Кокки круглые, располагаются одиночно и малыми цепочками Равномерная (+)

Streptococcus cricetus На глюкозо-кровяном МПА колонии круглые и шероховатые в диаметре 1-2 мм, выпуклые, зона а-гемолиза слабая или отсутствует Кокки, располагаются одиночно и небольшими цепочками Равномерная (+)

Peptococcus niger На кровяном МПА колонии мелкие 3-4 мм в диаметре, выпуклые, тёмные, имеют блеск Кокки, расположены парами, тетрадами и небольшими скоплениями произвольной формы Равномерная (+)

Peptostreptococcus anaerobius На кровяном МПА колонии 4-5 мм в диаметре, выпуклые, мутноватые, тёмные, имеют характерный сладковатый запах Кокки, коккобациллы, располагающиеся одиночно, короткими цепочками Равномерная (+)

Escherichia coli Колонии тёмно-красные, округлые с ровной периферией, выпуклые, гладкие, размер 2-3 мм, на кровяном агаре гемолиз отсутствует Прямые, короткие толстые палочки, с округлыми полюсами, одиночные и парные Равномерная (-)

1 2 3 4

Salmonella enteritidis Колонии чёрные, круглые, выпуклые, периферия ровная, поверхность гладкая, размер 2-4 мм Палочки прямые, длинные, тонкие, с округлыми полюсами, одиночные Равномерная (-)

Yersinia enterocolitica Среда СБТС: колонии голубовато-синие, округлые, выпуклые, поверхность гладкая, периферия ровная, размер около 1 мм. Среда 0!Ы-агар: равномерное помутнение Палочки овоидные, короткие, в поперечнике толстые, одиночные Равномерная (-)

Klebsiella oxytoca Колонии куполообразные,поверхность слизистая, красные и розовые, размер 4-6 мм Палочки прямые одиночные и парные, полюса округлые Равномерная (-)

Proteus vulgaris Колонии крупные 5-6 мм, периферия ровная, центр приподнятый, поверхность гладкая, на косяке МПА - эффект роения Палочки прямые, короткие, с округлыми полюсами, одиночные и парные Равномерная (-)

Enterobacter cloacae Колонии бледно-розовые, круглые, выпуклые, периферия неровная, поверхность матовая, слизистая, размер 3-4 мм Палочки прямые, короткие и длинные, толстые, края прямые, одиночные и парные, редко небольшими цепочками Равномерная (-)

Serratia marcescens Колонии округлые, несколько выпуклые, периферия ровная, красные и розовые Палочки прямые, коротки с округлыми полюсами, располагаются малыми группами Равномерная (-)

Citrobacter diversus На агаре Плоскирева светло-красные и светло-розовые колонии, круглые, несколько выпуклые, в большинстве случаев с гладкой поверхностью. На висмут-сульфитном агаре колонии зелёные, коричневые и чёрные, не окрашивающие в чёрный цвет среду под колониями Палочки прямые, подвижные, одиночные и парные Равномерная (-)

Enterococcus faecalis Среда Диф-5: колонии сероватые, круглые, выпуклые, периферия ровная, поверхность гладкая, размер около 1 мм. Кровяной агар: гемолиза нет Кокки овоидной формы, парные, редко небольшими цепочками Равномерная (+)

Campylobacter coli Слабое помутнение среды, без изменения её цвета Тонкие, слегка извитые, располагаются попарно в виде «летящей чайки» Равномерная (-)

Bacteroides fragilis Колонии мелкие, серовато-белые, полупрозрачные, гладкие, периферия ровная, гемолиз отсутствует Палочки короткие, толстые, полюса округлые, одиночные или в небольших группах Равномерная (-)

Lactobacillus delbrueckii Колонии крупные, плоские, сероватые, с ровной периферией, поверхность гладкая, зона а-гемолиза Палочки длинные, одиночные и парные, в коротких цепочках, полюса округлые Равномерная (+)

Bifidobacterium bifidum Колонии средние, плотные, чечевицеобразные гладкие и шероховатые Палочки короткие и длинные с утолщением на полюсе, располагаются одиночно, полисадом и У-образно Неравномерная (+)

Helicobacter pylori Колонии в виде серовато-голубого диска около поверхности среды Мелкие, тонкие, слегка спиральной формы, напоминающие «летящую ласточку» Равномерная (-)

Prevotella bivia На глюкозо-кровяном агаре колонии мелкие 2-4 мм в диаметре, округлые, выпуклые, бледно-коричневого цвета, поверхность гладкая Полиморфные, прямые, широкие, короткие палочки, с округлыми полюсами, одиночные, парные и небольшими группами Равномерная (-)

Bacillus cereus, B. subtillis На МПА колонии Э-формы мелкие, выпуклые, с ровной периферией, поверхность несколько блестящая, 13-формы крупные с шероховатой поверхностью и неровной периферией, матово-серые, плоские Прямоугольные палочки, располагающиеся цепочками, при длительном культивировании образуются споры по диаметру не превышающие диаметр вегетативных клеток Равномерная (+)

Clostridium sporogenes Колонии неправильной формы с ризоидной периферией, несколько выпуклые зеленовато-чёрные Крупные палочки с округлыми полюсами, подвижные, одиночные и парные, споры овальные, расположены субтерминально Равномерная (+)

Clostridium ramosum Колонии неправильной формы с ризоидной периферией, несколько выпуклые зеленовато-чёрные Крупные палочки с округлыми полюсами, неподвижные, одиночные и парные, споры круглые, терминальные Равномерная (+)

Clostridium difficile Колонии неправильной формы с ризоидной периферией, несколько выпуклые зеленовато-чёрные Крупные палочки с округлыми полюсами, подвижные, одиночные и парные, споры овальные, субтерминальные Равномерная (+)

В ходе биохимического исследования установлено, что выделенная культура Staphylococcus epidermidis дала положительный результат в тесте Фогес-Проскауэра, ферментировала с образованием кислоты сахарозу, мальтозу, D-маннозу, D-лактозу и галактозу, D-фруктозу и рибозу.

Культура Staphylococcus saprophiticus - в тесте Фогес-Проскауэра дала положительный результат, ферментировала с образованием кислоты сахарозу, мальтозу, D-маннит и трегалозу, D-лактозу, фруктозу и ксилит. Streptococcus rattus растёт при 45оС и в среде с 40% желчи, гидролизует аргинин и эскулин. S. cricetus растёт при 45оС, в среде с 6,5% NaCl, в с среде с 40% желчи, гидролизует эскулин.

Peptococcus niger и Peptostreptococcus anaerobius дали слабую реакцию в пёстром ряде сред Гисса, тест на расщепление пептона положительный, на каталазу, индол и восстановление нитратов отрицательный.

Кампилобактерии в тесте на ферментацию сахаров дали отрицательный результат, а в тестах на образование сероводорода, оксидазную и каталазную активность, восстановление нитратов - положительный результат.

Бактероиды в тестах на ферментацию с образованием кислоты глюкозы, лактозы и сахарозы, на гидролиз эскулина и образование H2S дали положительный результат, расщепление желатины было слабое, а на ферментацию рамнозы дали отрицательный результат.

Лактобациллы в тестах на ферментацию арабинозы, ксилозы, глюкозы, фруктозы, мальтозы дали положительный результат, а в тестах на каталазную и цитохромоксидазную активность, на гидролиз желатина, казеина, на образование индола и сероводорода - отрицательный результат.

Бифидобактерии в тестах на ферментацию глюкозы, лактозы, сахарозы, целлобиозы дали положительный результат, а в тестах на ферментацию арабинозы, ксилозы, рибозы, глюконата, мелецитозы, манни-та, салицина, крахмала и трегалозы - отрицательный результат.

Хеликобактерии в тесте пёстрый ряд со средами Гисса не прореагировали, дали положительный результат в тестах на уреазную, алкогольдегидрогеназную, липазную, оксидазную и каталазную активность. Превотелы не расли в среде с 20% желчи, резистентны к канамицину (100мкг), ванкомицину (5 мкг), но чувствительны к колистину (10 мкг), в тесте на гидролиз желатины и крахмала, на ферментацию с образованием кислоты глюкозы и лактозы дали положительный результат.

Культура Bacillus cereus растёт в присутствии лизоцима, в тесте на каталазу, Фогес-Проскауэра, утилизацию цитрата, расщепление тирозина, на лецитиназу, редукцию нитратов до нитритов, гидролиз казеина, желатина, крахмала, на ферментацию с образованием кислоты D-глюкозы дала положительный результат.

Культура B. subtillis растёт в присутствии лизоцима, в тесте на каталазу, Фогес-Проскауэра, утилизацию цитрата, редукцию нитратов до нитритов, гидролиз казеина, желатина, крахмала, на ферментацию с образованием кислоты D-глюкозы, L-арабинозы, D-ксилозы и маннита дала положительный результат.

Культура Clostridium sporogenes в тесте на липазу, гидролиз желатины дала положительный результат, основными продуктами метаболизма культуры являлись уксусная, масляная и изовалериановая кислоты.

Культура Clostridium ramosum показала низкую биохимическую активность, основным продуктом метаболизма культуры являлась уксусная кислота.

Культура Clostridium difficile обладала низкой биохимической активностью за исключением теста на гидролиз желатины, основными продуктами метаболизма культуры являлись уксусная, масляная, изомасля-ная, валериановая и изовалериановая, изокапроевая кислоты.

Результаты биохимического тестирования культур энтеробактерий представлены в таблице 2.

В контрольной группе у шиншилл выделены резидентные представители аутомикрофлоры желудочно-кишечного тракта с незначительным количеством транзиторных условно-патогенных микроорганизмов. В пробах фекалий шиншилл опытной группы среди транзиторных микроорганизмов выделены патогенные (Salmonella enteritidis, Yersinia enterocolitica, Campylobacter coli) и условно-патогенные бактерии.

Таблица 2

Результаты биохимической идентификации энтеробактерий

Тест (№ лунки) Klebsiella oxytoca Proteus vulgaris Escherichia coli Serratia mar-cescens Samonella enteritidis Yersinia entero- colitica Enterobacter cloacae Enterococcus faecalis Citrobacter diversus

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10

Утилизация цитрата натрия

1 + - - + + + - +

Утилизация малонита натрия

2 + - - - - + - +

Утилизация цитрата натрия с глюкозой

3 + - + + + + - +

1 2 1 3 4 5 | 6 | 7 1 8 1 9 10

П родукция лизиндекарбоксилазы

4 + | - + + 1 + 1 - 1 - 1 + -

Продукция аргининдегидролазы

5 - | - - - 1 - 1 - 1 + 1 + +

Продукция орнитиндекарбоксилазы

6 - | - - + 1 + 1 + 1 + 1 + +

Продукция фенилаланиндезаминазы

7 - | + - - 1 - 1 - 1 - 1 + -

Образование индола

8 + | + + - 1 - 1 - 1 - 1 - +

Продукция ацетилметилкарбинола

9 + | - - + | - | - 1 + 1 - -

Наличие уреазы

10 + | + - - 1 - 1 + 1 - 1 - +

Образование сероводорода

11 - | + - -| + | - 1 - 1 - -

Утилизация глюкозы

12 + | + + + 1 + 1 + 1 + 1 + +

Тест на наличие |3-галактозидазы

13 + | - + + 1 - 1 + 1 + 1 + +

Утилизация лактозы

14 + | - + - 1 - 1 - 1 + 1 + +

Утилизация маннита

15 + | - + + 1 + 1 + 1 + 1 + +

Утилизация сахарозы

16 + | + + + 1 - 1 + 1 + 1 + -

Утилизация инозита

17 + | - - + 1 + 1 - 1 - 1 + -

Утилизация сорбита

18 + | - + + 1 + 1 + 1 + 1 + +

Утилизация арабинозы

19 + | - + - 1 + 1 + 1 + 1 + +

Утилизация мальтозы

20 + | + + + 1 + 1 + 1 + 1 + +

Тест Фогес-Проскауэра

+ | + - + 1 - 1 - 1 + 1 + -

Тест на выявление способности к движению

- | + + + 1 + 1 + /- 1 + 1 - +

Заключение. Микробиоценоз здоровых шиншилл включает аутомикрофлору, занимающую определённую экологическую нишу в организме животных. При развитии патологии желудочно-кишечного тракта у шиншилл уменьшается количество аутомикрофлоры, а её место занимают транзиторные условно-патогенные и патогенные микроорганизмы, проникающие в организм животных алиментарно и фекально-орально. В связи с этим, в ходе дальнейших исследований, необходимо разработать эффективные пробио-тики для профилактики и ликвидации дисбаланса микрофлоры желудочно-кишечного тракта шиншилл.

Библиографический список

1. Воробьёв, А. А. Атлас по медицинской микробиологии, вирусологии и иммунологии / А. А. Воробьёв, А. С. Быков, М. Н. Бойченко [и др.]. - М. : Медицинское информационное агентство, 2007. - С. 40-45.

2. Ермаков, В. В. Микроорганизмы, осложняющие течение панлейкопении у кошек в условиях Самарской области // Известия Самарской ГСХА. - 2015. - №1. - С. 50-56.

3. Ермаков, В. В. Микробиоценоз норок при незаразной патологии желудочно-кишечного тракта // Зоотехническая наука в условиях современных вызовов : сб. ст. - Киров, 2015. - С. 101-105.

4. Ермаков, В. В. Патогенные и условно-патогенные микробы в микробиоценозе хорьков (фретка) в условиях Самарской области // Известия Самарской ГСХА. - 2014. - №1. - С. 29-35.

5. Ермаков, В. В. Резидентная и транзиторная микрофлора бродячих кошек и собак в условиях Самарской области // Известия Самарской ГСХА. - 2013. - №1. - С. 15-19.

6. Ермаков, В. В. Микробиологическая идентификация микробиоценоза и иммунный статус у лабораторных грызунов при кормлении их генномодифицированными кормами // Известия Самарской ГСХА. - 2012. - №1. - С. 38-43.

7. Ермаков, В. В. Микробиологическая диагностика кератомикозов и поверхностных дерматомикозов у мелких домашних животных // Известия Самарской ГСХА. - 2011. - №1. - С. 35-38.

8. Ермаков, В. В. Иммунный статус и идентификация копрокультур энтеробактерий козлят зааненской породы // Известия Самарской ГСХА. - 2010. - №1. - С. 11-14.

9. Шиншиллы. Описание, виды и содержание шиншилл [Электронный ресурс]. - 11^: http://fauna.dobro-est.com (дата обращения: 24.12.15).