CC BY
12ЭКОЛОГИЧЕСКАЯ
ТОКСИКОЛОГИЯ
УДК 504.45.054 :597.55
ИЗМЕНЕНИЕ НЕКОТОРЫХ ГЕМАТОЛОГИЧЕСКИХ ПОКАЗАТЕЛЕЙ МОЛОДИ ПЛОТВЫ RUTILUS RUTILUS I. ПРИ ПИТАНИИ КОРМОМ, ЗАГРЯЗНЕННЫМ ПОЛИХЛОРИРОВАННЫМИ БИФЕНИЛАМИ И ХЛОРОРГАНИЧЕСКИМИ ПЕСТИЦИЦИДАМИ
Е.А. Заботкина, Т.Б. Камшилова, ГМ. Чуйко
Федеральное государственное бюджетное учреждение науки «Институт биологии внутренних вод им И.Д. Папанина РАН», 152742, нос. Борок Ярославской обл.
Исследованы количество микроядер, амитотический индекс и соотношение лейкоцитов в периферической крови и иммунокомпетентных органах годовиков плотвы, питавшихся фаршем из рыб, выловленных в Шекснинском и Моложском плесах Рыбинского водохранилища (содержание ПХБ в корме составило 50,8 нг/г и 3,7 нг/г сухой массы, соответственно). Полученные данные подтверждают мутагенную активность ПХБ и указывают на неспецифическую реакцию защитных систем организма рыб в ответ на загрязнение.
Ключевые слова: плотва, полихлорированные бифенилы, микроядра, лейкоциты, фагоцитарная активность нейтро-филов.
Введение. Загрязнение водоемов, особенно их донных грунтов, полихлорированными бифенилами (ПХБ) и хлороргани-ческими пестицидами (ХОП) представляет серьезную экологическую проблему. Опасность ПХБ и ХОП определяется их высокой устойчивостью к физическим, химическим и биологическим факторам, глобальной распространенностью, биоаккумуляцией за счет высокой липофильности и токсическим действием на организмы в очень малых дозах [11]. При включении в пищевые цепи происходит их биомагнификация, т.е. увеличение на порядок и выше на каждом последующем уровне трофической пирамиды [13].
Установлено эмбриотоксическое, терато- и мутагенное, иммуносупрессивное действие ПХБ и ХОП на позвоночных
[1, 8, 16]. Они действуют на организм подобно гормонам, вызывают нарушения обмена железа, поражают эндокринную и половую системы [8], влияют на антиоксидантную защиту и пищеварительные ферменты [3, 15, 17].
Цель работы - изучить изменения некоторых показателей крови у молоди плотвы обыкновенной ШИш Ь. при
питании ее кормами с разной концентрацией ПХБ и ХОП.
Материалы и методы исследования. Исследования проводили на рыбе в возрасте 1+, массой 20,9 ± 2,7 г и длиной 11,6 ± 0,6 см, полученной путем искусственного оплодотворения производителей, выловленных в Волжском плесе Рыбинско-
о о
го водохранилища (58 30' с.ш., 38 30 в.д.). Рыб подращивали на экспериментально-прудовой базе ИБВВ РАН и акклими-
Заботкина Елена Анатольевна (Zabotkina Elena Anatolyevna), кандидат биологических наук, ведущий научный сотрудник лаборатории физиологии и токсикологии водных животных ФГБУН «Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН», пос. Борок Ярославской обл., [email protected] Камшилова Татьяна Борисовна (Kamshilova Tatyana Borisovna), научный сотрудник лаборатории физиологии и токсикологии водных животных ФГБУН «Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН», пос. Борок Ярославской обл., [email protected]
Чуйко Григорий Михайлович (Chuiko Grigoriy Michaylovich), доктор биологических наук, заведующий лабораторией физиологии и токсикологии водных животных ФГБУН «Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН», пос. Борок Ярославской обл., [email protected]
ровали к лабораторным условиям в течение 1 месяца. Условия акклимации и проведения эксперимента описаны ранее [3]. С начала эксперимента рыб кормили рыбным фаршем, приготовленным из мышц лещей, выловленных в Молож-ском (контроль) и Шекснинском (опыт) плесах Рыбинского водохранилища. Содержание ПХБ и ХОП в фарше составляло соответственно: ПХБ - 3,7 и 50,8, ДДТ и его метаболитов - 2,8 и 6,8, суммы изомеров ГХЦГ - 0,64 и 2,6, гексахлорбен-зола (ГХБ) - 0,19 и 0,17 мкг/кг сырой массы, соответственно [12].
Пробы для анализа отбирали в начале эксперимента (0 сут), через 52 и 169 суток экспозиции, обездвижив рыб методом оглушения. После каудотомии отбирали из хвостовых сосудов кровь для анализа фагоцитарной активности нейтро-филов и делали мазки периферической крови для исследования соотношения лейкоцитов, количества микроядер (МЯ) и амитотических делений в эритроцитах. Затем препарировали органы и делали мазки-отпечатки почек, селезенки и печени для анализа лейкопоэза. Мазки крови и мазки-отпечатки органов фиксировали этиловым спиртом, окрашивали по Романовскому-Гимза и просматривали под световым микроскопом.
Подсчет МЯ проводили на 1000 клеток и выражали в промилле [6]: амитозов - на 500 клетках [4], лейкоцитов - на 200 клетках и выражали в %. Рассчитывали индекс сдвига лейкоцитов (ИСЛ) [4]. Фагоцитарную активность оценивали по доле активированных нейтрофилов (ДАН, %) и индексу активности нейтрофилов (ИАН, усл. ед.) [5]. Результаты анализов в контрольной группе не отличались во все сроки отбора, поэтому в графе «0» во всех таблицах указаны средние по группе за время эксперимента.
Данные представлены в виде средних значений и их ошибок (х±тх). Достоверность различий оценивали методом од-нофакторного дисперсионного анализа (ANOVA, LSD-тест, р<0,05).
Результаты и обсуждения. Результаты исследований показали, что питание рыб кормом, содержащим ПХБ и ХОП, оказало влияние на все исследуемые показатели.
В контроле доля клеток с МЯ варьировала от 1,3 до 3,6%о. В опыте она была выше, но достоверные отличия зафикси-
рованы только на 52-е сутки эксперимента (табл. 1). На 169-е сутки количество аберрантных клеток уменьшилось в 2 раза, но по-прежнему оставалось выше контроля, хотя различия стали недостоверными.
Количество рыб с амитозами в крови возрастало с увеличением экспозиции и к концу эксперимента все опытные рыбы имели амитозные клетки. Относительная доля амитозных клеток в течение всего периода наблюдений у всех рыб не превышала 0,4 %. Достоверность различий относительного числа амитозных клеток между контрольной и опытной группами рыб оценить не удалось, поскольку в контроле они были выявлены только у одной особи (табл. 1).
Оценка лейкограмм и их сдвига показала ряд изменений в ходе эксперимента в исследованных иммунокомпетентных органах рыб (рис. 1).
В наименьшей степени изменялось относительное количество плазматических клеток. Наиболее общей на действие ПХБ и ХОП была реакция лимфоцитов. Их доля у опытных рыб во всех органах, за исключением селезенки, в течение периода наблюдения была ниже контроля. В селезенке величина показателя сначала (52-е сутки) несколько снизилась, но к 169-м суткам достоверно превысила показания в контроле.
Относительное количество моноцитов в периферической крови рыб не отличалось в опыте и контроле. В почке и селезенке доля макрофагов достоверно возрастала на 52-е сутки, а к 169-м суткам была в 2 раза ниже контрольного уровня. В печени она более чем в 2 раза превышала контроль в течение всего эксперимента.
Доля гемоцитобластов в крови повысилась к 52-м суткам эксперимента, затем возвратилась к уровню контроля, тогда как в головном отделе почки она в 2,5 раза превысила контроль к 52-м суткам, а к 169-м суткам была в 2 раза ниже его. В туловищном отделе почки их доля в 2 раза превышала показатели контроля в течение всего опыта (рис. 1).
Доли миелоцитов, сегментоядерных нейтрофилов (СЯН) и эозинофилов не отличались в контроле и опыте во всех тканях. Изменения относительного количества метамиелоцитов в периферической крови, головном отделе почек и печени носили сходный характер, доли клеток достоверно увеличивались к концу опыта. В туловищном отделе почек величина
Таблица 1
Цитоморфологические показатели периферической крови годовиков плотвы
Экспозиция, сутки Число рыб Число рыб с микроядрами Микроядра, (%о) Число рыб амитозами Амитоз, (%)
4 1,3 ± 0,51 0,4
52 13,2 ± 3.63,6 ± 0,7 * 0,30 ± 0,241 0,4
169 6,8 ± 2,2т 3,0 ± 0,61 0,36 ± 0,161 0,2
Примечание: над чертой - опыт, под чертой - контроль; одинаковые цифры надстрочного индекса указывают на отсутствие достоверных отличий.
этого показателя к 52-м суткам резко снизилась (в 2 раза), а на 169-е сутки возросла. Количество ПЯН не изменялось только в крови, в головном отделе почек их доля достоверно снижалась на 52-е сутки опыта, а к 169-м суткам возвращалась к уровню контроля. В селезенке доля ПЯН возрастала к 52-м суткам эксперимента, а к 169-м была ниже контрольного уровня. В туловищном отделе почек и печени она была ниже в течение всего опыта.
Анализ ИСЛ показал его различную направленность в органах (табл. 2). В крови наблюдали повышение ИСЛ к концу эксперимента в 3 раза, в головном отделе почек - в 1,6 раза. В туловищном отделе почек после резкого снижения - в 2,5 раза на 52-е сутки, к концу эксперимента он немного превысил контроль. В селезенке ИСЛ снижался в течение всего опыта, а в печени - повышался.
Исследование фагоцитарной активности нейтрофилов крови показало достоверное увеличение ДАН и ИАН как в спонтанном, так и индуцированном тестах только к 169-м суткам экспозиции (табл. 3).
Выявленные изменения свидетельствуют о негативном влиянии на рыб поступающих с кормом доз ПХБ и ХОП. Повышение доли клеток с МЯ в течение эксперимента указывает на цитогенетические нарушения и мутагенный эффект в соматических клетках плотвы. Известно, что уровень
спонтанного мутагенеза у плотвы не превышает 3,11%о [7]. У рыб частота встречаемости МЯ в эритроцитах положительно коррелирует с концентрацией ПХБ в воде и временем экспозиции [14]. Увеличение количества микроядер в эритроцитах периферической крови выявлено у самцов плотвы Rutilus rutilus (L.), инъецированных внутрибрюшинно Arador 1254 в дозе 10-100 мг/кг и у сеголеток, полученных путем искусственного скрещивания этих самцов и интактных самок [7]. Мутагенное влияние ПХБ на эритроциты периферической крови показано для вьюна Misgurnus anguillicaudatus (Cantor) [14].
Увеличение числа рыб с амитозами в эритроцитах также свидетельствует о токсическом эффекте. Амитоз считают одним из патоморфологических состояний клеток красной крови, указывающим на развитие дегенеративных и некро-биотических процессов в организме, обусловленных разными причинами, в том числе и химическими токсикозами [2]. Амитоз может быть компенсаторной реакцией на функциональные перегрузки, голодание, денервацию и гипоксию у рыб [4].
Анализ изменения соотношения лейкоцитов свидетельствует о перестройке лейкопоэза у плотвы под действием ПХБ и ХОП. Лимфопения и нейтрофилия в периферической крови связаны с преобладанием незрелых форм гра-
Рис. 1. Динамика лейкограмм молоди плотвы под действием ПХБ. А - периферическая кровь, б - головной отдел почки, в - туловищный отдел почки, г - селезенка, д -печень; 1- лимфоциты, 2 - моноциты/макрофаги, 3 - плазматические клетки, 4 -гемоцитобласты, 5 - миелоциты, 6 - метамиелоциты, 7 - палочкоядерные нейтрофилы, 8 - сегментоядерные нейтрофилы, 9 - эозинофилы.
Таблица 2
Динамика ИСЛ в периферической крови и внутренних органах молоди плотвы
Экспозиция, сутки Периферическая кровь Головной отдел почки Туловищный отдел почки Селезенка Печень
0 0,54±0,16 1,20±0,10 1,53±0,09 0,37±0,15 0,08±0,04
52 0,57±0,01 1,03±0,05 0,66±0,08* 0,26 0,10±0,02
169 1,43±0,46* 1,90±0,13* 1,77±0,05* 0,15±0,02* 0,18±0,03*
Таблица 3
Изменение показателей фагоцитарной активности нейтрофилов молоди плотвы
Экспозиция, сутки ДАН, % ИАН, отн. ед.
спонтанный индуцированный спонтанный индуцированный
0 21,5 ±8,5 46,0±1,0 0,28±0,13 0,71±0,02
52 19,5±1,5 21,5 ±8,5 53,0±5,0 46,0±1,0 0,28±0,04 0,28±0,13 0,97±0,11 0,71±0,02
169 20,5±0,5* 57,0±1,0* 0,31±0,01* 1,05±0,03*
15,0±2, 41,0±6,0 0,20±0,05 0,67±0,06
нулоцитов и указывают на неспецифическую реакцию со стороны лейкоцитов, характерную для большинства токсикозов [5, 9]. Подобная реакция отмечена нами ранее у лещей Abramis brama L. в Шекснинском плесе Рыбинского водохранилища, донные отложения которого загрязнены стоками Череповецкого промышленного узла [10].
Вместе с тем, изменение соотношения лейкоцитов в органах рыб в течение эксперимента может быть связано с гибелью зрелых клеток, усиленным выбросом бластных форм из органов в кровоток. Направление изменений долей макрофагов в головном и туловищном отделах почек и селезенке происходит сходным образом - их количество резко увеличивается к 52-м суткам эксперимента, а затем, к 1 69-м суткам, падает ниже уровня контроля. Тогда как в печени доля макрофагов остается более чем в 3 раза выше контрольных значений в течение всего эксперимента, что, возможно, связано с ролью макрофагов в утилизации поврежденных клеток и процессах детоксикации, протекающих, в основном, в печени. ИСЛ, характеризующий направление лейкопоэза, свидетельствует о сдвиге лейкопоэза в целом в сторону увеличения миелоидного звена.
Анализ фагоцитарной активности нейтрофилов показывает увеличение как доли клеток, способных продуцировать активные формы кислорода, так и усиление активности самих клеток в опытной группе рыб. Учитывая изменение соотношения клеток в крови, способными к фагоцитозу оказываются и функционально незрелые клетки - метамиелоциты, а не только палочко- и сегментоядерные нейтрофилы.
Таким образом, выявленные изменения указывают на мутагенные и деструктивные процессы в органах кроветворения, и хронические воспалительные явления в организме рыб при алиментарном поступлении ПХБ и ХОП в исследованных дозах.
Заключение. Содержавшиеся в корме концентрации ПХБ и ХОП оказали влияние на все исследуемые показатели и
подтвердили мутагенную активность этих соединений. Обнаруженные сдвиги в лейкопоэзе и увеличение фагоцитарной активности клеток свидетельствуют об активизации защитных систем, направленной на нейтрализацию действия токсиканта, а также о развитии хронических воспалительных процессов в организме рыб при длительном алиментарном поступлении ПХБ и ХОП в исследуемых дозах.
Работа выполнена при финансовой поддержке грантов РФФИ 08-05-00805а и 12-05-00572а.
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1. Авхименко М.М. Медицинские и экологические последствия загрязнения окружающей среды полихлорированными бифенилами // Полихлорированные бифенилы. Супертоксиканты XXI века. № 5. М.: ВИНИТИ, 2000. С. 14-31.
2. Алов ИА., Брауде А.И., АспизМ.Е. Основы функциональной морфологии клетки. М.: Медицина, 1969. 344 с.
3. Голованова И.Л., Кузьмина В.В., Чуйко Г.М., Ушакова Н.В., Филиппов АА. Влияние полихлорированных бифенилов на активность протеиназ и карбогидраз в кишечнике молоди плотвы Rutilus rutilus (L.). // Биол. внутр. вод, 2011. № 2. С. 97-103.
4. Житенева Л.Д., Макаров Э.В., Рудницкая ОА. Основы ихтиогематологии (в сравнительном аспекте). Ростов-на-Дону: Эверест, 2004. 312 с.
5. Заботкина ЕА., Лапирова Т.Б., Назарова ЕА. Влияние ионов кадмия на некоторые морфофункциональные и иммунофизиологические показатели сеголеток речного окуня Perca fluviatilis L. (Perciformes, Percidae) // Вопр. ихтиол. 2009. Т. 49, № 1. С. 117-124.
6. Захидов С.Т., Позняков С.П., Урываева И.В., Хамидов Д.Х. Метод учета микроядер в изучении мутагенных свойств пестицидов // Узбек. биол. ж. 1986. № 4. С. 54-57.
7. Изюмов Ю.Г., ТаликинаМ.Г., Чеботарева Ю.В., Чуйко Г.М. Влияние Ароклора 1254 на эмбриональную гибель, количество микроядер и митоз в родительском и первом поколениях плотвы Rutilus rutilus(L.) // Биол. внутр. Вод, 2003. № 4. С. 85-91.
8. Каримов Р.Р. Исследование механизмов развития анемии при подострой интоксикации полихлорированными бифенилами: Автореф. дисс. канд .мед. наук. Тюмень, 2007. 24 с.
9. Лапирова Т.Б., Заботкина ЕА. Влияние пестицидов на иммунофизиологическое состояние рыб // Успехи соврем. биологии. 2004. Т. 124, № 4. С. 361-368.
10. Лапирова Т.Б., Заботкина ЕА. Сравнительный анализ показателей иммунофизиологического состояния леща Abramis brama (L.) из различных по степени загрязнения участков Рыбинского водохранилища// Биол. Внут р. вод, 2010. № 2. С. 86-91.
11. Майстренко В.Н., Клюев НА. Эколого-аналитический мониторинг стойких органических
загрязнителей. - М.: БИНОМ. Лаборатория знаний, 2004. 323с.
12. Чуйко Г.М., Законное В.В., Морозов АА., Бродский Е.С., Шелепчиков АА., Фешин Д.Б. Пространственное распределение и качественный состав полихлорированных бифенилов (ПХБ) и хлорорганических пестицидов (ХОП) в донных отложениях и леще (Abramis brama L.) из Рыбинского водохранилища // Биол. внутр. вод, 2010. № 2. С. 98-108.
13. BuckmanA.H., Wong Ch.S., Chow EA., Brown S.B., Solomon K.R., FiskA.T. Biotransformation of polychlorinated biphenyls (PCBs) and bioformation of hydroxylated PCBs in fish // Aquat. Toxicol., 2006. Vol. 78, № 2. P. 176-185.
14. Chu S., Xi Z., et al. Induction of Micronuclei in Peripheral Erythrocytes of Misgurnus anguillicaudatus by Polychlorinated Biphenils // Bul. Environ. Contam. Toxicol., 1996. Vol. 57. P. 179-182.
15. Devaux A., Flammarion P., Bernardon V, Garric J., Monod G. Monitoring the chemical pollution of the river Rhone through measurement of DNA damage and cytochrome P450 1A induction in Chub (Leucisccus cephalus) // Mar. Environ. Res. 1998. Vol. 46. № 1-5. P. 257-262.
16. IwanowiczL.R., Lerner D.T., Blazer VS., McCormick S.D. Aqueous exposure to Aroclor 1254 modulates the mitogenic response of Atlantic salmon anterior kidney T-cells: Indications of short-and long-term immunomodulation // Aquat. Toxicol., 2005. Vol. 72. № 4. P. 305-314.
17. Otto D.M.E. Polychlorinated biphenyl (PCB) alterations of antioxidant defenses and xenobiotic metabolism in teleost fish: role of tissue glutathione metabolism in xenobiotic detoxication pathways//Diss. Abst. International, 1998. Vol. 58, № 6. P. 2998.
REFERENCES:
1. Avchimencko M.M. Medical and ecological consequences of pollution of the environment by polychlorinated biphenils // Polychlorinated biphenils. Supertoxicants of XX centh. № 5. M.: VINITI, 2000. P. 14-31.(in Russian)
2. Alov IA., Braude A.I., AspizM.E. Theory of cell functional morphology. M.: Medicina, 1969. 344 p. (in Russian)
3. Golovanova I.L., Kuz'mina V.V., Chuiko G.M., Ushakova N.V, Filippov AA. Effect of polychlorinated biphenyls on activities of intestinal proteinases and carbohydrases in young roach Rutilus rutilus (L.) // Inland water biology. 2011. № 2. P. 97-103. (in Russian)
4. ZhitenevaL.D., MakarovE.V., Rudnitskaya OA. The fundamentals of ichthtyohematology (in comparative aspect). Rostov-on-Don: Everest, 2004. 312 p. (in Russian)
5. Zabotkina EA., Lapirova T.B., Nazarova EA. Influence of Cadmium Ions on Some Morphofunctional and Immune-Physiological Parameters of Perch (Perciformes, Percidae) Underyearlings Perca fluviatilis // Journal of Ichthyology. 2009. Vol. 49, №. 1. P. 111-118. (in Russian)
6. Zachidov S.T., Poznyakov S.P., Uryvaeva I.V, Hamidov D.H. The method of micronuclei calculation in investigation of pesticide mutagens // Uzbek. Biol. J. 1986. № 4. P. 54-57. (in Russian)
7. Izyumov Yu.G., TalikinaM.G., Chebotareva Yu.V., Chuiko G.M. Effect of Aroclor 1254 on embryonic ruin, quantity of micronuclei and mitosis at parents and first generation in roach Rutilus rutilus(L.) // Inland water biology. 2003. № 4. P. 85-91. (in Russian)
8. Karimov R.R. Study of developmental mechanisms of anemia at suba0cute intoxication by polychlorinated biphenils. Abstract of diss. C.m.s. Tyumen, 2007. 24 p. (in Russian)
9. Lapirova T.B., Zabotkina EA. Effect of pesticide on immunophisiological state of fish // Progress of modern biology. 2004. Vol. 124, № 4. P. 361-368. (in Russian)
10. Lapirova T.B., Zabotkina EA. The comparative analysis of immunophysiological status
parameters of bream from differently polluted parts of the Rybinsk reservoir // Inland water biology. 2010. № 2. P. 86-91. (in Russian)
11. Maystrenko V.N., KlyuevNA. Ecological and analytic monitoring of resistant organic pollutions. M.: BINOM. Laboratory of knowledge, 2004. 323 p. (in Russian)
12. Chuiko G.M., Zakonnov VV, MorozovAA., Brodskii E.S., Shelepchikov a.a., Feshin D.B. Spatial distribution and qualitative composition of polychlorinated biphenils (PCBs) and organochlorine pesticides (Ops) in bottom sediments and bream (Abramis brama L.) from the Rybinsk reservoir // Inland water biology. 2010. № 2. P. 98-108. (in Russian)
13. Buckman A.H., Wong Ch.S., Chow EA., Brown S.B., Solomon K.R., FiskA.T. Biotransformation of polychlorinated biphenyls (PCBs) and bioformation of hydroxylated PCBs in fish // Aquat. Toxicol., 2006. Vol. 78, № 2. P. 176-185.
14. Chu S., Xi Z., et al. Induction of Micronuclei in Peripheral Erythrocytes of Misgurnus anguillicaudatus by Polychlorinated Biphenils // Bul. Environ. Contam. Toxicol., 1996. Vol. 57. P. 179-182.
15. Devaux A., Flammarion P., Bernardon V, Garric J., Monod G. Monitoring the chemical pollution of the river Rhone through measurement of DNA damage and cytochrome P450 1A induction in Chub (Leucisccus cephalus) // Mar. Environ. Res. 1998. Vol. 46. № 1-5. P. 257-262.
16. Iwanowicz L.R., Lerner D.T., Blazer V.S., McCormick S.D. Aqueous exposure to Aroclor 1254 modulates the mitogenic response of Atlantic salmon anterior kidney T-cells: Indications of short-and long-term immunomodulation // Aquat. Toxicol., 2005. Vol. 72. № 4. P. 305-314.
17. Otto D.M.E. Polychlorinated biphenyl (PCB) alterations of antioxidant defenses and xenobiotic metabolism in teleost fish: role of tissue glutathione metabolism in xenobiotic detoxication pathways//Diss. Abst. International, 1998. Vol. 58, № 6. P. 2998.
E.A. Zabotkina, T.B.Kamshilova, G.M. Chuiko
CHANGES OF SOME HEMATOLOGICAL INDICATORS IN ROACH YOUNG RUTILUS RUTILUS L. FED WITH FOOD CONTAMINATED WITH POLYCHLORINATED BIPHENYLS AND ORGANOCHLORIDE PESTICIDES
Federal State Budgetary Science Institution" I.D. Papanin Institute for Biology of Inland Waters", Russian Academy of Sciences, 152742, Borok, Yaroslavl Region, Russian Federation
The number of micronuclei, amitotic index and leukocytes balance were investigated in peripheral blood and immune competent organs of one year old roach fed with stuffing of fishes captured in the Sheksna and Molozh stretches of water in the Rybinsk reservoir ( concentration of PCB in the feed was 50.8 ng/g and 3.7 ng//g ,dry weight accordingly). Data obtained prove PCB mutagenic activity and show non-specific response of fishes protective systems to the pollution.
Key words: roach, polychlorinated biphenyls, micronuclei, leukocytes, neutrophils phagocytic activity.
Материал поступил в редакцию 15.01.2014 г
