CC BY
3
Российский медико-биологический вестник
ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ Том 32, № 4, 2024 имени академика И. П. Павлова
УДК 616.31-022:616.314-089.23
001: https://doi.org/10.17816/PAVLOVJ321672
Изменение микробиоты рта на различных этапах активного ортодонтического лечения
К. А. Гришаева1 и, А. В . Севбитов1, Т. В . Царёва2, А. В . Ходоров2, М. Д. Тимошина1, М . Ю . Кузнецова1
1 Первый Московский государственный медицинский университет имени И . М. Сеченова (Сеченовский Университет), Москва, Российская Федерация;
2 Российский университет медицины, Москва, Российская Федерация
АННОТАЦИЯ
Введение. В доступной литературе нет достаточного количества исследований, посвященных изучению связи применения несъемной ортодонтической аппаратуры с изменением качественного и количественного состава бактерий в конкретные периоды ортодонтического лечения .
Цель. Выявить изменения количественного и качественного состава микробиоценоза в области установленной несъемной аппаратуры в различные периоды ортодонтического лечения .
Материалы и методы. В исследовании приняли участие 40 человек в возрасте 18-44 лет. Все пациенты имели в анамнезе патологии окклюзии, зубочелюстные аномалии и нуждались в ортодонтическом лечении с использованием несъемной техники металлической брекет-системы . Перед установкой несъемной аппаратуры лигатурной вестибулярной металлической брекет-системы (ОС ог^о^писб, США) все пациенты прошли санацию у стоматолога-терапевта, профессиональную гигиену полости рта (удаление твердых и мягких зубных отложений, полировка зубов), при необходимости — удаление зубов мудрости/зачатков зубов мудрости . Оценка микробиоценоза проводилась в области предполагаемого расположения брекетов до начала ортодонтического лечения, в области расположения брекетов — в период адаптации к несъемной аппаратуре (через 1 месяц после фиксации аппаратуры) и в период активного лечения (через 6 месяцев после фиксации аппаратуры) .
Результаты. При исходном исследовании частота выявления стабилизирующей микрофлоры составила 81,25%, пародонтопатогенной микрофлоры — 18,75% . В период адаптации частота выявления стабилизирующей микрофлоры составляет 56,25%, частота выявления пародонтопатогенов увеличилась до 43,75% (р = 0,052) . В фазу активного ортодонтического лечения наблюдалось уменьшение частоты выявления пародонтопатогенных бактерий до 40,96%, а частота выявления стабилизирующей микрофлоры составила 59,04% (р = 0,007) . Значение микробного числа до установки несъемной ортодонтической техники — 105 ± 102 КОЕ/см2, в фазу адаптации — 107 ± 102 КОЕ/см2 (р = 0,043), в период активного ортодонтического лечения — 105 ± 102 КОЕ/см2 (р = 0,008) .
Заключение. В ходе клинико-лабораторного исследования установлено, что видовой и количественный состав микробиоценоза рта в различные этапы ортодонтического лечения имеет характерные особенности: до фиксации несъемных ортодонтических аппаратов превалируют так называемые «стабилизирующие» микроорганизмы по сравнению с представителями группы пародонтопатогенов, в период адаптации существенно возрастает доля пародонтопатогенов при уменьшении доли стабилизирующей микрофлоры, в фазу активного ортодонтического лечения нормализуется их соотношение
Ключевые слова: микробиоценоз; микробиота полости рта; несъемная ортодонтическая техника; пародонтопатогены; адаптация к несъемной ортодонтической технике; ортодонтическое лечение
Для цитирования:
Гришаева К.А., Севбитов А.В., Царёва Т.В., Ходоров А.В., Тимошина М.Д., Кузнецова М.Ю. Изменение микробиоты рта на различных этапах активного ортодонтического лечения // Российский медико-биологический вестник имени академика И. П. Павлова. 2024. Т. 32, № 4. С. 529-538. 001: https://doi.org/10.17816/PAVL0VJ321672
Рукопись получена: 27. 03. 2023
Рукопись одобрена: 07 .11. 2023
Опубликована: 31.12. 2024
© Эко-Вектор, 2024 Все права защищены
ORIGINAL STUDY ARTICLES 530 -
DOI: https://doi.org/10.17816/PAVLOVJ321672
Changes in Oral Microbiota at Different Stages of Active Orthodontic Treatment
Kseniya A . Grishayeva1 Andrey V . Sevbitov1, Tat'yana V . Tsaryova2, Aleksandr V . Khodorov2, Mariya D . Timoshina1, Mariya Yu . Kuznetsova1
1 I . M . Sechenov First Moscow State Medical University (Sechenovskiy University), Moscow, Russian Federation;
2 Russian University of Medicine, Moscow, Russian Federation
ABSTRACT
INTRODUCTION: There are no sufficient numbers of studies in the modern literature devoted to investigation of the relationship between the use of fixed orthodontic appliances and changes in the qualitative and quantitative bacterial composition at certain periods of orthodontic treatment .
AIM: To identify changes in the qualitative and quantitative composition of the microbiocenosis in the area of installed fixed appliances at different periods of orthodontic treatment .
MATERIALS AND METHODS: The study included 40 participants aged 18-44 years . All patients had a history of occlusion pathologies, dento-alveolar anomalies, and needed orthodontic treatment with use of fixed metal bracket systems . Before installing a fixed ligature vestibular metal bracket system (OC Orthodontics, USA), all patients underwent sanitation by a dental therapist, professional oral hygiene (removal of hard and soft dental deposits, tooth polishing), and, if necessary, extraction of wisdom teeth/wisdom tooth germs . The microbiocenosis was assessed in the area of intended placement of braces before orthodontic treatment, in the area of installation of braces in the period of adaptation to the fixed appliance (at 1 month after fixing the appliance) and in the period of active treatment (at 6 months after fixing the appliance)
RESULTS: On the initial examination, the frequency of detection of stabilizing microflora was 81. 25%, periodontopathogenic microflora — 18 . 75% . In the period of adaptation, the frequency of detection of stabilizing microflora was 56 . 25%, the frequency of detection of periodontopathogens increased to 43 .75% (p = 0 . 052) . In the phase of active orthodontic treatment, a decrease in the frequency of detection of periodontopathogenic bacteria to 40 .96% was observed, and the frequency of detection of stabilizing microflora was 59. 04% (p = 0 . 007) . The microbial number before the installation of fixed orthodontic appliances was 105 ± 102 CFU/cm2, in the adaptation phase — 107 ± 102 CFU/cm2, in the period of active treatment — 105 ± 102 CFU/cm2 (p = 0 . 008) .
CONCLUSION: In the course of clinical and laboratory study, species and quantitative composition of the oral microbiocenosis was found to have characteristic features at different stages of the orthodontic treatment: before installation of fixed orthodontic appliances, the so-called 'stabilizing' microorganisms prevail over representatives of the group of periodontopathogens, in the period of adaptation, the proportion of periodontopathogens increases significantly with a decrease in the proportion of stabilizing microflora, in the phase of active orthodontic treatment their ratio normalizes .
Keywords: microbiocenosis; microbiota of oral cavity; fixed orthodontic appliances; periodontopathogens; adaptation to fixed orthodontic appliances; orthodontic treatment
For citation:
Grishayeva KA, Sevbitov AV, Tsaryova TV, Khodorov AV, Timoshina MD, Kuznetsova MYu. Changes in Oral Microbiota at Different Stages of Active Orthodontic Treatment. I. P. Pavlov Russian Medical Biological Herald 2024;32(4):529-538. DOI: https://doi.org/10.17816/PAVLOVJ321672
Received: 27 . 03 . 2023 Accepted: 07 .11. 2023 Published: 31.12. 2024
eco. vector £) Ecu-Vector 2024
All rights reserved
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
ЗЧА — зубочелюстные аномалии
КОЕ — колониеобразующие единицы
ОДЛ — ортодонтическое лечение
ППМ — пародонтопатогенный микроорганизм
ВВЕДЕНИЕ
На сегодняшний день все больше пациентов различного возраста нуждается в ортодонтической помощи из-за высокой распространенности зубочелюстных аномалий (ЗЧА) [1] . Чаще всего один вид ЗЧА вызван несколькими причинами [2-5] . В научной литературе имеются данные о влиянии на возникновение ЗЧА хронических и врожденных общесоматических патологий, неблагоприятных условий окружающей среды [6,7] .
Большинство ЗЧА подлежит ортодонтической коррекции с использованием несъемной техники брекет-системы . В среднем ортодонтическое лечение (ОДЛ) занимает период около 2 лет, и в это время же около 50% пациентов имеют клинические проявления в виде белых пятен твердых тканей рта [8]. Повреждения могут иметь значительную глубину (= 75 мкм) и образовываться уже в течение первых 6-10 недель . Участки декальцинации не только несут изменения эстетики, но могут стать необратимыми и привести к образованию полостей [9] . По этой причине проблема белых пятен является весьма серьезной в ортодонтии и требует особого подхода . Кроме того, использование несъемной аппаратуры нередко сопровождается неприятными ощущениями в полости рта, а в крайних случаях — развитием или обострением имеющихся болезней па-родонта на фоне роста и размножения пародонтопато-генных микроорганизмов (ППМ) [10] .
Первичная адаптация ортодонтических пациентов к несъемной аппаратуре происходит от 1 недели до 4 месяцев . Характерными клиническими проявлениями этой фазы лечения у пациентов являются болевые ощущения в области зубов, травматические повреждения слизистой оболочки губ, щек, языка, нарушение дикции, головные боли, депрессивные состояния [11] . Активный период ОДЛ начинается в среднем спустя полгода и заключается в непосредственном передвижении зубов, изменении соотношений зубных рядов и работой с окклюзией в сагиттальном, трансвер-зальном и вертикальном направлении Данный этап также может сопровождаться жалобами на травмирование слизистой оболочки губ, щек, языка и болезненные ощущения после активации брекет-системы, которая должна совершаться с временным интервалом
в 1-2 месяца . Кроме того, на данном этапе пациенты часто предъявляют жалобы на нарушение фиксации тех или иных несъемных ортодонтических элементов, реже — на поломку ортодонтических элементов в полости рта, доставляющих дискомфорт
Цель — выявить изменения количественного и качественного состава микробиоценоза в области установленной несъемной аппаратуры в разные периоды ортодонтического лечения
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
Участниками данного исследования стали 40 человек (18-44 лет, из них женщин — 21, мужчин — 19) ортодонтического профиля, постоянно проживающих на территории Российской Федерации. Все пациенты дали добровольное информированное согласие на участие в исследовании. Исследование одобрено Локальным этическим комитетом Первого Московского государственного медицинского университета им И М Сеченова (Сеченовский университет) (Протокол № 11-23 от 15 . 06 . 2023) .
Критерии включения: интактные ткани пародон-та без признаков гингивита и пародонтита, необходимость в ортодонтической коррекции с использованием несъемной техники металлической брекет-системы (ЗЧА, патология прикуса)
Критерии исключения: отказ подписать информированное согласие или отказ от участия в исследовании при последующих посещениях (через 1 месяц и полгода)
С целью осуществления бактериологического исследования материал забирали из области предполагаемого расположения брекетов у пациентов до начала ОДЛ, из области расположения брекетов — в период адаптации (через 1 месяц после фиксации аппаратуры) и в период активного лечения (через 6 месяцев после фиксации аппаратуры) .
Взятие исследуемого материала осуществляли утром, до гигиенической чистки зубов и до приема пищи, с использованием асептической адгезивной пленки на основе полимерных соединений «Диплен-дента» (Норд-Ост, Россия) . Участок пленки 50 х 50 мм
накладывали на вестибулярную поверхность зуба в течение 15 с . Затем пленка помещалась в многофункциональную транспортную среду Эймса (1 мл; Himedia Labs, Индия), после чего применялся бактериологический метод исследования по протоколам анаэробного культивирования [12] .
Не позднее двух суток исследуемый материал доставляли при температуре 4-6°С в микробиологическую лабораторию . Материал подвергался процессу гомогенизации на ультразвуковом шюттель-аппарате в течение 5 мин . (Геософт, Россия) . Получение чистых культур микроорганизмов осуществлялось в аэробных и анаэробных условиях, а именно: универсальных питательных средах (кровяной агар 5% на основе Brain-Heart Infusion (Himedia Labs, Индия) с добавлением 0,1 мкг/мл менадиона (Himedia Labs, Индия), 5 мкг/мл гемина (Himedia Labs, Индия) После засеивания среды помещали в анаэростат (Himedia Labs, Индия) . Туда же помещали палладиевый катализатор в виде стандартной пластины, редуцирующей кислород, — в дополнение к созданным внутри анаэростата бескислородным условиям посредством газовой смеси азота, водорода и углекислого газа в процентном соотношении 80/10/10 . Для культивирования аэробных микроорганизмов применялись универсальные питательные среды (5% гемин-агар на основе Brain-Heart Infusion, желточно-солевой агар (Himedia Labs, Индия)), селективные среды (желточно-солевой агар с содержанием NaCl 10% (Himedia Labs, Индия)) . На них осуществлялся количественный секторальный посев по технике Мельникова-Царева, далее среды помещались в термостаты и анаэростаты для аэробного и анаэробного культивирования соответственно [13].
В следующей части микробиологической идентификации применялись протоколы бактериального исследования, содержащие установление ряда признаков видов микроорганизмов: культуральных, морфологических, биохимических [13] . Последние наиболее точно определяли на тестах-стрипах API (Франция) .
Результаты количественного исследования выражались через десятичный логарифм величины микробного числа — колониеобразующих единиц (КОЕ)/см2 .
Статистическую обработку результатов проводили на основе пакета статистических программ SPSS, версия 23 (IBM Company, США) с использованием приемов описательной и сравнительной статистики. Предварительный этап статистического анализа показателей установил, что распределение некоторых значений не подчинялось закону нормального распределения (по Гауссу), что не позволило использовать параметрические методики оценки, поэтому для количественных показателей в динамике определяли вероятность различий p по Манну-Уитни (p < 0,05 — порог статистической значимости) . Прогностическая модель, характеризующая зависимость количественной переменной от факторов, разрабатывалась с помощью метода линейной регрессии
РЕЗУЛЬТАТЫ
До фиксации несъемных ортодонтических аппаратов (металлической вестибулярной брекет-систе-мы) по частоте выделения превалируют так называемые «стабилизирующие» микроорганизмы (81,25%) . Однако в некоторых случаях были выявлены представители группы ППМ (18,75%; табл . 1) .
Таблица 1. Состав микробных ассоциаций рта (число штаммов) у пациентов с нормальным состоянием пародонта до и в течение ортодонтического лечения
Род/вид микроорганизма До установки, в области предполагаемого места расположения брекетов В области расположения брекетов
Через 1 месяц Через 6 месяцев
n % n % n %
Streptococcus spp. 14 43,75 14 43,75 12 35,52
Streptococcus intermedius* 2 6,25 4 12,5 4 11,76
Veillonella spp. 6 18,75 2 6,25 4 11,76
Prevotella intermedia* 2 6,25 4 12,5 6 17,6
Fusobacterium nucleatum* 2 6,25 2 6,25 0 0
Lactobacillus spp. 2 6,25 2 6,25 2 5,88
Corynebacterium spp. 4 12,5 0 0 2 5,88
Actinomyces spp.* 0 0 4 12,5 4 11,6
ИТОГО: 32 100,0 32 100,0 34 100,0
в т. ч. стабилизирующих 26 81,25 18 56,25 20 59,04
в т. ч. пародонтопатогенных* 6 18,75 14 43,75 14 40,96
р - - 0,064 0,052 0,013 0,007
Примечание: * — пародонтопатогенные виды по номенклатуре Всемирной организации здравоохранения
Стабилизирующие виды микроорганизмов, такие как микроаэрофильные стрептококки, в ходе нашего исследования были выделены в количестве 14 штаммов; вторыми по частоте встречаемости были представители рода вейлонелл — 6 штаммов . Представители резидентной микрофлоры — Lactobacillus brevis и Corynebacterium amycolatum — выделены в количестве 2 и 4 штамма соответственно . Пародонтопатоген-ные представители рода Streptococcus spp. выделены в количестве 2 штаммов (6,25%), Prevotella intermedia, Fusobacterium nucleatum — по 2 штамма (по 12,5%) .
Средний показатель микробной обсеменённости составил 105 ± 102 КОЕ/см2 при диапазоне значений от 104 до 107 КОЕ/см2 . Наибольшее микробное число зарегистрировано у Streptococcus sanguis и Lactobacillus brevis
В период первичной адаптации (спустя 1 месяц после фиксации аппаратуры) картина микробиоценоза
полости рта в области ее расположения изменилась (табл 1)
В фазу адаптации к брекет-системе выделили в превалирующем большинстве представителей рода Streptococcus spp. (14 штаммов; 43,75% от общего числа выделенных штаммов), однако изменилось количество выделенных грамотрицательных анаэробов Veillonella spp. — выделено 2 штамма (6,25%); представителей рода Corynebacterium spp. не выделено
Пародонтопатогенных Streptococcus intermedius выделено в 2 раза больше (4 штамма, 12,5% от общего количества), аналогично Prevotella intermedia. Именно на этом этапе ОДЛ появились грамположительные ППМ Actinomyces spp. в количестве 4 штаммов (12,5%) . В целом возросла доля пародонтопатогенов — до 43,75% (первоначальная — 18,75%) и уменьшилась доля стабилизирующей микрофлоры — 56,25% (исходно 81,25%, p < 0,05; рис . 1) .
Рис. 1. Доля (%) стабилизирующей и пародонтопатогенной микрофлоры в различные периоды ортодонтического лечения. Примечание: * — изменения статистически значимы по сравнению с уровнем до лечения.
Наблюдаемая зависимость числа штаммов (п) через 1 месяц после установки несъемной техники от числа штаммов (п) до установки несъемной техники описывается уравнением парной линейной регрессии:
У (число штаммов (п)) через 1 месяц после установки несъемной техники = 0,748 х X (число штаммов (п)) до установки несъемной техники + 8,378.
При увеличении числа штаммов (п) до установки несъемной техники на 1 следует ожидать увеличение числа штаммов (п) через 1 месяц после установки
несъемной техники на 0,748. Полученная модель объясняет 40,7% наблюдаемой дисперсии числа штаммов (n) через 1 месяц после установки несъемной техники .
Средняя величина микробной обсеменённости в области расположения брекетов увеличилась до 107 ± 102 КОЕ/см2 при диапазоне от 103 до 108 КОЕ/см2 (p = 0,043), наибольшие показатели — у Streptococcus sanguis .
В фазу активного ОДЛ доля всех микроаэро-фильных стрептококков уменьшилась до 12 штаммов (35,52%), увеличилось количество штаммов Veillonella spp. (до 4; 11,76%), Prevotella intermedia (до 6; 17,6%) .
ORIGINAL STUDY ARTICLES 534 -
Таким образом, доля стабилизирующих микроорганизмов возросла до 59,04%, а пародонтопатогенных — снизилась до 40,96%, однако всё равно осталась » в 2 раза выше результатов до начала ОДЛ (р = 0,007; рис. 1) .
Наблюдаемая зависимость числа штаммов (п) через 6 месяцев после установки несъемной техники от числа штаммов (п) до установки несъемной техники описывается уравнением парной линейной регрессии:
У (число штаммов (п)) через 6 месяцев после установки несъемной техники = 0,883 ж X (число штаммов (п)) до установки несъемной техники + 1,569.
При увеличении числа штаммов (п) до установки несъемной техники на 1 следует ожидать увеличение числа штаммов (п) через 6 месяцев после установки несъемной техники на 0,883 . Полученная модель объясняет 86,9% наблюдаемой дисперсии числа штаммов (п) через 6 месяцев после установки несъемной техники
Наблюдаемая зависимость числа штаммов (абсолютный показатель) через 1 месяц после установки несъемной техники от числа штаммов (абсолютный показатель) через 6 месяцев после установки несъемной техники описывается уравнением парной линейной регрессии:
ОБСУЖДЕНИЕ
Во многих исследованиях изучались изменения микробиоты у детей и подростков школьного возраста, находящихся на ОДЛ с использованием несъемной техники. Несмотря на то что в данных исследованиях существуют противоречия, большое количество авторов представляют данные о преобладании резидентных грамположительных кокковых бактериальных форм в полости рта до начала ОДЛ . Данный морфологический вид микроорганизмов чаще всего представлен бактериями родов Streptococcus и Staphylococcus. Также для данного возрастного периода некоторые исследователи считают характерным выделение Enterobacteriaceae (в 40,0% случаев), Peptostreptococcus и Peptococcus [14].
Y (число штаммов (n)) через 1 месяц после установки несъемной техники = 0,826 ж X (число штаммов (n)) через 6 месяцев + 7,25.
При увеличении числа штаммов (n) через 6 месяцев после установки несъемной техники на 1 следует ожидать увеличение числа штаммов (n) через 1 месяц после установки несъемной техники на 0,826 . Полученная модель объясняет 44,5% наблюдаемой дисперсии числа штаммов (n) через 1 месяц после установки несъемной техники
Средняя величина микробной обсеменённости уменьшилась до 105 ± 102 КОЕ/см2 (p = 0,008) при диапазоне значений от 103 до 107 КОЕ/см2; наибольшее микробное число — у Streptococcus sanguis и Lactobacillus brevis, что идентично периоду до ОДЛ . Данные таблицы 1 свидетельствуют, что период активного лечения у ортодонтических пациентов характеризуется нормализацией микробиоценоза рта Необходимо отметить, что данный этап лечения сопровождается также преобладанием грамположительных ППМ (Streptococcus intermedius, Actinomyces spp.).
В период адаптации ортодонтического пациента к несъемной брекет-системе микробная обсеменённость пародонта возрастает на два порядка, а в период активного ОДЛ снижается до нормальных величин (табл . 2) .
Ранее коллективом зарубежных авторов установлено, что при использовании ортодонтической техники в полости рта значительно увеличивается количество S. mutans и Lactobacillus spp., а также доля потенциально патогенных грамотрицательных бактерий, что подтверждается результатами нашего исследования В частности, ряд авторов указывает на значительное увеличение грамотрицательных бактерий соответственно через 3 и 6 месяцев с момента установки вестибулярной металлической брекет-системы, с последующим снижением этих показателей через полгода и год [15-17] . Особое внимание в данные сроки уделяется представителям основных пародонтопатогенных видов грамотрицатель-ных бактерий, прежде всего представителям видов
Таблица 2. Средняя микробная обсеменённость у пациентов с нормальным состоянием пародонта до и в течение ортодонтического лечения
Микробное число До установки несъемной аппаратуры Период адаптации Период активного лечения
КОЕ/см2, M ± m 105 ± 102 107 ± 102 105 ± 102
P - 0,043 0,008
A. actinomycetemcomitans и Porphyromonas gingivalis [14, 18] .
В нашем исследовании сделана попытка дать полноценную микробиологическую характеристику ротового микробиоценоза на основных этапах ОДЛ (адаптации и активного лечения) у взрослых пациентов . До фиксации несъемной аппаратуры в полости рта характерно преобладание стабилизирующей и пародонтопатогенной микрофлоры (81,25% и 18,75% соответственно) По данным отечественных ученых, более чем в половине случаев выделения ППМ наблюдается сопряженное герпетическое повреждение пародонта [19] . Установлено, что активация латентной фазы инфекционного процесса, обусловленного внедрением вируса герпеса, может вызывать локальное угнетение иммунного ответа, что, в свою очередь, объясняет этиологию спорадического возникновения деструкции пародонта [19, 20] . Отсутствие вирусной инфекции или ее реактивации можно объяснить тем, что у некоторых людей при наличии пародонто-патогенных бактерий наблюдается интактный (здоровый) пародонт [21] . Значимую долю пародонтопато-генных бактерий до начала ОДЛ занимали представители рода Veillonella (18,75%), в период адаптации частота их выявления резко снизилась (до 6,25%), а через полгода практически достигла первоначальных значений (11,76%) . Микроаэрофильные представители рода Streptococcus выделялись довольно часто как до начала ОДЛ, так и в период адаптации; в фазу активного лечения частота их выявления сохранялась на уровне 35,52% Важно отметить, что Streptococcus intermedius и Actinomyces spp. — представители пародонтопатогенных видов II порядка [13, 14] — выявляются с большей частотой именно в период адаптации и в период активного ОДЛ. Необходимо обратить внимание также на увеличение частоты выделения в период адаптации одного из ведущих грамотрицательных пародонтопатогенных видов — Prevotella intermedia [13] .
Полученные нами результаты указывают на тенденцию к нормализации микробиоценоза в фазу активного ОДЛ (уменьшение частоты пародонто-па-тогенов, увеличение — стабилизирующих видов) . Об этом свидетельствует также стабилизация общего микробного числа в данный период ОДЛ до значений 105 ± 102 КОЕ/см2 при диапазоне от 103 до 107 КОЕ/см2 по сравнению с периодом адаптации, когда показатель микробного числа достигал своих верхних границ — 107 ± 102 КОЕ/см2 при диапазоне от 103 до 108 КОЕ/см2 .
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
В ходе клинико-лабораторного исследования установлено, что видовой и количественный состав микробиоценоза рта в различные этапы ортодонти-ческого лечения имеет характерные особенности Увеличение частоты выделения пародонтопатогенных бактерий и общего микробного числа в период адаптации (через 1 месяц) после установки ортодон-тических конструкций, по-видимому, следует расценивать как фактор риска, особенно у пациентов, имеющих исходное носительство пародонтопатогенных бактерий A. actinomycetemcomitans, Porphyromonas gingivalis Prevotella intermedia, Fusobacterium nucleatum, Streptococcus intermedius, Actinomyces spp.
Данное обстоятельство следует учитывать при обследовании пациентов на этапе подготовки к ортодон-тическому лечению . В дальнейшем это позволит обосновать и более эффективно проводить превентивные мероприятия в клинической практике врачей-ортодонтов и врачей-стоматологов-терапевтов
ДОПОЛНИТЕЛЬНО
Финансирование. Авторы заявляют об отсутствии внешнего финансирования при проведении исследования. Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Вклад авторов: Гришаева К. А. — концепция и дизайн исследования, проведение микробиологических исследований, написание текста; Севбитов А. В. — концепция исследования, редактирование; Царёва Т. В. — концепция и дизайн исследования, проведение микробиологических исследований, анализ данных; Ходоров А. В. — анализ данных; Тимошина М. Д. — концепция исследования, редактирование; Кузнецова М. Ю. — анализ данных, подготовка иллюстраций. Авторы подтверждают соответствие своего авторства международным критериям ICMJE (все авторы внесли существенный вклад в разработку концепции и подготовку статьи, прочли и одобрили финальную версию перед публикацией).
Funding. This study was not supported by any external sources of funding.
Conflict of interests. The authors declare no conflicts of interests. Contribution of the authors: K. A. Grishayeva — concept and design of study, conducting of microbiological studies, writing the text; A. V. Sevbitov — concept of study, editing; T. V. Tsaryova — concept and design of study, conducting of microbiological studies, analysis of data; A. V. Khodorov — analysis of data; M. D. Timoshina — concept of study, editing; M. Yu. Kuznetsova — analysis of data, working on drawings. The authors confirm the correspondence of their authorship to the ICMJE International Criteria. All authors made a substantial contribution to the conception of the work, acquisition, analysis, interpretation of data for the work, drafting and revising the work, final approval of the version to be published and agree to be accountable for all aspects of the work.
СПИСОК ИСТОЧНИКОВ
1. Симакова А.А., Горбатова Л.Н., Горбатова М.А., и др. Распространенность зубочелюстных аномалий у взрослого населения России и стран бывшего СССР: систематический обзор // Ортодонтия. 2022. № 4 (100). С. 6-11.
2. Митин Н.Е., Перминов Е.С., Калиновский С.И., и др. Исследование качества жизни стоматологических больных, использующих иммедиат-протезы в период после экстракции зуба до проведения имплантации // Вестник Авиценны. 2019. Т. 21, № 4. С. 625-631. doi: 10.25005/2074-0581-2019-21-4-625-631
3. Дудник О.В., Мамедов Ад.А., Адмакин О.И., и др. Особенности ортодонтического лечения пациентов с расщелиной губы и неба // Стоматология детского возраста и профилактика. 2020. Т. 20, № 2. С. 137-142. doi: 10.33925/1683-3031-2020-20-2-137-142
4. Белоусова А.В., Емелина Г.В., Смольянинов С.И., и др. Влияние несъемных ортопедических конструкций на здоровье пародонта // Современная наука: актуальные проблемы теории и практики. Серия: Естественные и технические науки. 2020. № 12. С. 167-169. doi: 10.37882/2223-2966.2020.12.04
5. Гуськов А.В., Абдурахманова М.А., Никифоров А.А., и др. Диагностическая значимость провоспалительных цитокинов при планировании дентальной имплантации у пациентов с общесоматическими патологиями // Российский медико-биологический вестник имени академика И.П. Павлова. 2023. Т. 31, № 3. C. 501-510. doi: 10.17816/PAVL0VJ108371
6. Яблокова Н.А., Севбитов А.В. Роль радиационного фактора в формировании стоматологической заболеваемости детского населения // Российский вестник перинатологии и педиатрии. 2012. № 6. С. 83-87.
7. Кирюшин В.А., Боботина Н.А., Демченко М.А., и др. Влияние загрязнений атмосферного воздуха на частоту врожденных пороков развития (на примере региона) // Российский медико-биологический вестник имени академика И. П. Павлова. 2023. Т. 31, № 1. С. 29-36. doi: 10.17816/PAVL0VJ109333
8. Рогожников Г.И., Казымов К.П., Четвертных В.А., и др. Мор-фоструктурные изменения твердых тканей зубов при различной степени стираемости // Российский стоматологический журнал. 2014. № 1. С. 15-18.
9. Косюга С.Ю., Ботова Д.И., Бухнин А.В. Прогнозирование развития кариеса зубов у пациентов на активном этапе ортодонтического лечения // Медицинский альманах. 2022. № 4 (73). С. 68-73.
10. Ахмедова М.Д., Григорьева О.В., Соколова О.А., и др. Микробиота полости рта при ортодонтическом лечении брекет-системами. В сб.: Первая бухарская международная конференция студентов-медиков и молодежи; Бухара, 23-25 Мая 2019 г. Бухара; 2019. Т. 1. С. 347-349.
11. Беляев А.Ф., Карпенко Н.А. Болевой синдром при адаптации к брекет-системам // Российский журнал боли. 2013. № 1 (38). С. 75-76.
12. Miyoshi T., Oge S., Nakata S., et al. Gemella haemolysans inhibits the growth of the periodontal pathogen Porphyromonas gingivalis // Sci. Rep. 2021. Vol. 11, No. 1. P. 1 1742. doi: 10.1038/s41598-021-91267-3
13. Царев В.Н., Николаева Е.Н., Ипполитов Е.В. Пародонтопато-генные бактерии — основной фактор возникновения и развития пародонтита // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2017. Т. 94, № 5. С. 101-112. doi: 10.36233/03729311-2017-5-101-112
14. Гордина Ю.А. Влияние несъемной ортодонтической техники на состояние микрофлоры полости рта на различных фазах ортодонтического лечения. В сб.: IV Международная студенческая научная конференция «Студенческий научный форум — 2012»; Москва, 15 февраля по 31 марта 2012 г. М.; 2012. С. 1-5. Доступно по: https://scienceforum.ru/2012/article/2012000852?ysclid=m3n2kk 18rh588503429. Ссылка активна на 27.03.2023.
15. Arab S., Nouhzadeh Malekshah S., Abouei Mehrizi E., et al. Effect of Fixed Orthodontic Treatment on Salivary Flow, pH and Microbial Count // J. Dent. (Tehran). 2016. Vol. 13, No. 1. P. 18-22.
16. Shukla C., Maurya R., Singh V., et al. Evaluation of role of fixed orthodontics in changing oral ecological flora of opportunistic microbes in children and adolescent // J. Indian Soc. Pedod. Prev. Dent. 2017. Vol. 35, No. 1. P. 34-40. doi: 10.4103/0970-4388.199226
17. Shukla C., Maurya R.K., Singh V., et al. Evaluation of changes in Streptococcus mutans colonies in microflora of the Indian population with fixed orthodontics appliances // Dent. Res. J. (Isfahan). 2016. Vol. 13, No. 4. P. 309-314. doi: 10.4103/1735-3327.187876
18. Ghijselings E., Coucke W., Verdonck A., et al. Long-term changes in microbiology and clinical periodontal variables after completion of fixed orthodontic appliances // Orthod. Craniofac. Res. 2014. Vol. 17, No. 1. P. 49-59. doi: 10.1111/ocr.12031
19. Царёв В.Н., Макеева И.М., Ягодина Е.А., и др. Герпес и папиллома-вирусы как компоненты микробиома при патологии слизистой оболочки полости рта и пародонта // Dental Forum. 2017. № 3. С. 46-49.
20. Kamma J.J., Slots J. Herpesviral-bacterial interactions in aggressive periodontitis // J. Clin. Periodontol. 2003. Vol. 30, No. 5. P. 420-426. doi: 10.1034/j.1600-051x.2003.20002.x
21. Самусенков В.О., Царев В.Н., Ипполитов Е.В., и др. Результаты клинико-лабораторных исследований при комплексном лечении хронического пародонтита легкой степени с использованием фотодинамической терапии // Стоматология для всех. 2021. № 2 (95). С. 38-41. doi: 10.35556/idr-2021-2(95)38-41
REFERENCES
1. Simakova AA, Gorbatova LN, Gorbatova MA, et al. Systematic review of the prevalence of dentoalveolar anomalies in adults in Russia and other former soviet republics. Ortodontiya. 2022;(4):6-11. (In Russ).
2. Mitin NE, Perminov ES, Kalinovskiy SI, et al. Study of quality of life of dental patients using immediate protheses in the post-extraction
period before implantation. Avicenna Bulletin. 2019;21(4):625-31. (In Russ). doi: 10.25005/2074-0581-2019-21-4-625-631 3. Dudnik OV, Mamedov AA, Admakin OI, et al. Aspects of orthodontic protocol in cleft lip and palate patients. Pediatric Dentistry and Dental Prophylaxis. 2020;20(2):137-42. (In Russ). doi: 10.33925/1683-30312020-20-2-137-142
4. Belousova AV, Emelina GV, Smolyaninov SI, et al. Impact of non-removable orthopedic devices effects on periodontal health. Modern Science: Actual Problems of Theory and Practice. Series of «Natural and Technical Sciences». 2020;(12):167-9. (In Russ). doi: 10.37882/2223-2966.2020.12.04
5. Gus'kov AV, Abdurakhmanova MA, Nikiforov AA, et al. Diagnostic Significance of Proinflammatory Cytokines in Planning Dental Implantation in Patients with General Somatic Pathologies. I. P. Pavlov Russian Medical Biological Herald. 2023;31(3):501-10. (In Russ). doi: 10.17816/PAVL0VJ108371
6. Yablokova NA, Sevbitov AV. Role of radiation factor in pediatric dental morbidity. Rossiyskiy Vestnik Perinatologii i Pediatrii. 2012;(6):82-7. (In Russ).
7. Kiryushin VA, Bobotina NA, Demchenko MA, et al. Influence of Atmospheric Air Pollution on Frequency of Congenital Anomalies (on an example of a region). I. P. Pavlov Russian Medical Biological Herald. 2023;31(1):29-36. (In Russ). doi: 10.17816/PAVL0VJ109333
8. Rogozhnikov GI, Kazymov KP, Chetvertnykh VA, et al. Morphostructural changes of hard tissues of teeth with varying degrees of abrasion. Rossiyskiy Stomatologicheskiy Zhurnal. 2014;(1):15-8. (In Russ).
9. Kosyuga SYu, Botova DI, Buhnin AV. Prediction of the development of caries in patients of the active period ortodonic treatment. MeditsinskiyAlmanakh. 2022;(4):68-73. (In Russ).
10. Akhmedova MD, Grigor'yeva OV, Sokolova OA, et al. Mikrobiota polosti rta pri ortodonticheskom lechenii breket-sistemami. In: The First Bukhara International conference of medical students and youth; Bukhara, 23-25 May 2019. Bukhara; 2019;1:347-9. (In Russ).
11. Belyayev AF, Karpenko NA. Bolevoy sindrom pri adaptatsii k breket-sistemam. Russian Journal of Pain. 2013;(1):75-6. (In Russ).
12. Miyoshi T, Oge S, Nakata S, et al. Gemella haemolysans inhibits the growth of the periodontal pathogen Porphyromonas gingivalis. Sci Rep. 2021;1 1(1):1 1742. doi: 10.1038/s41598-021-91267-3
13. Tsarev VN, Nikolaeva EN, Ippolitov EV. Periodontophatogenic bacteria of the main factors of emergence and development of
periodontitis. Journal of Microbiology, Epidemiology and Immuno-biology. 2017;94(5):101-12. (In Russ). doi: 10.36233/0372-931 1-20175-101-112
14. Gordina J. Influence of fixed orthodontic technics on a condition of microflora of an oral cavity on various phases of orthodontic treatment. In: IV Mezhdunarodnaya studencheskaya nauchnaya konferentsiya «Studencheskiy Nauchnyy Forum — 2012»; Moscow, 15 February -31 March 2012. Moscow; 2012. P. 1-5. Available at: https:// scienceforum.ru/2012/article/20 1 2000852?ysclid=m3n2kk18 rh588503429. Accessed: 2023 March 27. (In Russ).
15. Arab S, Nouhzadeh Malekshah S, Abouei Mehrizi E, et al. Effect of Fixed Orthodontic Treatment on Salivary Flow, pH and Microbial Count. J Dent (Tehran). 2016;13(1):18-22.
16. Shukla C, Maurya R, Singh V, et al. Evaluation of role of fixed orthodontics in changing oral ecological flora of opportunistic microbes in children and adolescent. J Indian Soc Pedod Prev Dent. 2017;35(1):34-40. doi: 10.4103/0970-4388.199226
17. Shukla C, Maurya RK, Singh V, et al. Evaluation of changes in Streptococcus mutans colonies in microflora of the Indian population with fixed orthodontics appliances. Dent Res J (Isfahan). 2016; 13(4):309-14. doi: 10.4103/1735-3327.187876
18. Ghijselings E, Coucke W, Verdonck A, et al. Long-term changes in microbiology and clinical periodontal variables after completion of fixed orthodontic appliances. Orthod Craniofac Res. 2014;17(1):49-59. doi: 10.1111/ocr.12031
19. Tsarev VN, Makeyeva IM, Yagodina EA, et al. Herpesand papillomaviruses as components of microbiome in diseases of oral mucosa and periodontium. Dental Forum. 2017;(3):46-49. (In Russ).
20. Kamma JJ, Slots J. Herpesviral-bacterial interactions in aggressive periodontitis. J Clin Periodontol. 2003;30(5):420-6. doi: 10.1034/j.1600-051x.2003.20002.x
21. Samusenkov VO, Tsarev VN, Ippolitov EV, et al. Results of clinical and laboratory research in the complex treatment of mild chronic periodontitis using photodynamic therapy. International Dental Revue. 2021;(2):38-41. (In Russ). doi: 10.35556/idr-2021-2(95)38-41
ОБ АВТОРАХ
* Гришаева Ксения Алексеевна;
ORCID: https://orcid.org/0000-0002-6932-9088;
eLibrary SPIN: 4152-0354; e-mail: [email protected]
Севбитов Андрей Владимирович, д.м.н., профессор;
ORCID: https://orcid.org/0000-0002-8247-3586;
eLibrary SPIN: 8143-7686; e-mail: [email protected]
Царёва Татьяна Викторовна, к.м.н., доцент; ORCID: https://orcid.org/0000-0001-9571-0520; eLibrary SPIN: 2028-8404; e-mail: [email protected]
Ходоров Александр Владимирович, к.м.н., доцент; ORCID: https://orcid.org/0009-0004-6387-3914; eLibrary SPIN: 5496-0870; e-mail: [email protected]
Тимошина Мария Дмитриевна, к.м.н.;
ORCID: https://orcid.org/0000-0003-3673-3209;
eLibrary SPIN: 2824-5870; e-mail: [email protected]
AUTHORS' INFO
* Kseniya A. Grishayeva;
ORCID: https://orcid.org/0000-0002-6932-9088;
eLibrary SPIN: 4152-0354; e-mail: [email protected]
Andrey V. Sevbitov, MD, Dr. Sci. (Med.), Professor;
ORCID: https://orcid.org/0000-0002-8247-3586;
eLibrary SPIN: 8143-7686; e-mail: [email protected]
Tat'yana V. Tsaryova, MD, Cand. Sci. (Med.), Associate Professor; ORCID: https://orcid.org/0000-0001-9571-0520; eLibrary SPIN: 2028-8404; e-mail: [email protected]
Aleksandr V. Khodorov, MD, Cand. Sci. (Med.), Associate Professor; ORCID: https://orcid.org/0009-0004-6387-3914; eLibrary SPIN: 5496-0870; e-mail: [email protected]
Mariya D. Timoshina, MD, Cand. Sci. (Med.);
ORCID: https://orcid.org/0000-0003-3673-3209;
eLibrary SPIN: 2824-5870; e-mail: [email protected]
Кузнецова Мария Юрьевна, к.м.н., доцент;
ORCID: https://orcid.org/0000-0002-5488-8979;
eLibrary SPIN: 2857-9764; e-mail: [email protected]
Mariya Yu. Kuznetsova, MD, Cand. Sci. (Med.), Associate Professor;
ORCID: https://orcid.org/0000-0002-5488-8979;
eLibrary SPIN: 2857-9764; e-mail: [email protected]
* Автор, ответственный за переписку / Corresponding author
