CC BY
33
УДК 636.32/.38:612.11
ИММУНОГЕНЕТИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА КРОВИ МОЛОДНЯКА ОВЕЦ, ПОЛУЧЕННОГО ОТ РАЗНЫХ ВАРИАНТОВ ПОДБОРА
Л.В. Ольховская, С.Ф. Силкина,
Г.Н. Шарко, ГНУ Ставропольский НИИЖК
Разводимая в КПЗ им. Ленина Апанасенковского района Ставропольского края тонкорунная порода овец манычский меринос была создана на основе межпородного скрещивания, а затем «прилития крови» выдающихся по настригу и качеству шерсти баранов породы австралийский меринос. С целью совершенствования стада за период 1971 г., а также в 1980-1981, 1984-1985, 1987-1990 гг. было завезено 45 баранов, 22 из них принадлежали лучшему в Австралии племенному заводу Коллинсвилл, 17 - его дочерним хозяйствам и 6 - второму по значимости племенному заводу Хаддон Риг. В 1993 году приказом № 150 от 8 июня Минсельхоза России была утверждена новая тонкорунная порода под названием «манычский меринос», установлены минимальные требования по продуктивности к овцам новой породы.
Высокий уровень проводимой совместно с учеными ВНИИОК селекционно-племенной работы достиг предела, когда традиционно применяемые в зоотехнии приемы не могут удовлетворить требования селекционеров. Дальнейшее совершенствование этой породы невозможно без разработки и применения новых, точных, доступных методов в решении ряда вопросов селекции, к числу которых относятся методы системы иммуногенетического мониторинга.
Иммуногенетическая аттестация баранов пород австралийский (п=1 завоза 2004 г., племзавод Коллинсвилл), манычский меринос (п=2), маточного поголовья овец породы манычский меринос (п=300), отобранного для эксперимента потомства (п = 245), генетическая экспертиза достоверности происхождения проведены в 2006 году по 6 системам ^, B, M, ^ R, D), включающим 13 антигенов групп крови (Aa, Ab, Bb, Bq, Bd, Be, Bi, Ca, ЗД, Ma, Mb, R, Da), и четырем полиморфным системам белков, ферментов (трансферрин - Tf, гемоглобин - НЬ, арилэстераза- AЕs, щелочная фосфатаза - Ар) согласно методическим указаниям ВНИИОК (1994), генетико-статистические расчеты -по методическим указаниям ВНИИОК (1989).
Изучение и оценка наследуемости иммуногенетических параметров крови проводились по следующим вариантам родительского подбора: I вариант - АМхММ (баран № А34), II вариант - ММхММ (баран № Ж2291), III вариант - ММхММ (баран № Ж2365) на потомках, имеющих истинное происхождение.
Установлено, что для помесного молодняка I варианта подбора родительских пар характерна высокая частота встречаемости антигенных факторов Aa, Bi, Ca, (0,646-0,793), аллелей D локуса трансферрина, В - гемоглобина, сывороточной арилэстеразы и С -щелочной фосфатазы (0,415-0,909), низкой - антигенов Bb, R, Da (0,037-
0,085), аллелей Е системы трансферрина, А - гемоглобина (0,0120,091). Фенотипически подобное распределение аллелей проявилось в высокой концентрации фенотипов АД локуса трансферрина (41,3%), ВВ
- гемоглобина (81,7%), ВВ и НВ - локуса сывороточной арилэстеразы (35,4 и 64,6% соответственно), ВС - щелочной фосфатазы (67,1%, табл. 1).
В исследованной группе молодняка наблюдается нарушение генетического равновесия по трем из четырех изученных локусов (х2 = 18,6-64,63), за исключением локуса гемоглобина (фактическое распределение фенотипов в этой системе соответствует теоретически ожидаемому, х2 = 0,85). Степень гетерозиготности, как показателя генотипического разнообразия, колебалась по локусам в пределах 16,7 -71,1%, в среднем - 55,9%. Степень генетической изменчивости популяции оказалась высокой и составила 56,6%. Уровень полиморфности (число эффективно действующих аллелей) по локусу трансферрина составил 3,46, гемоглобина - 1,13, сывороточной арилэстеразы - 1,78, щелочной фосфатазы - 1,81.
Для чистопородного молодняка II варианта подбора характерна высокая частота встречаемости антигенных факторов Aa, Bi, (0,5950,722) и аллелей А локуса трансферрина, В - локусов гемоглобина и арилэстеразы, С - щелочной фосфатазы (0,614); низкая - Mb, R (0,0380,063) - групп крови, аллелей С и Е (по 0,006) локуса трансферрина, что фенотипически выразилось в высокой частоте встречаемости фенотипов АД локуса трансферрина (62,0%), АВ - гемоглобина (60,8%), ВВ и НВ - локуса сывороточной арилэстеразы (30,4 и 68,4% соответственно), вС - щелочной фосфатазы (67,0%). В данной группе молодняка выявлено нарушение генетического равновесия по четырем изученным локусам, то есть фактическое распределение фенотипов не соответствует теоретически ожидаемому (х2 = 11,18-40,19).
Степень гетерозиготности, как показатель генотипического разнообразия, колебалась по локусам в пределах 44,2 - 55,6%, в среднем - 51,8%. Степень генетической изменчивости популяции составила 52,5%, уровень полиморфности колебался по локусам в пределах 1,79 - 2,14.
Для молодняка, полученного от III варианта подбора, характерна высокая частота встречаемости антигенных факторов Aa, Bi, Ca, ЗД, Da (0,527-0,703), аллелей В - локусов гемоглобина и арилэстеразы (0,6150,858), С - щелочной фосфатазы (0,574), низкой - аллеля Е (0,007) локуса трансферрина, что фенотипически проявилось в высокой концентрации фенотипов АД и СД локуса трансферрина (35,1 и 20,3% соответственно), ВВ - гемоглобина (71,6%), НВ - локуса сывороточной арилэстеразы (74,3%), ВС - щелочной фосфатазы (68,9%).
Таблица 1. - Генетический спектр крови помесного молодняка различных вариантов подбора родительских пар
Систем а Факторы, аллели I вариант II вариант III вариант
Группы крови
А Аа 0,793 0,595 0,622
Ав 0,122 0,165 0,095
В Вв 0,085 0,127 0,122
Bg 0,427 0,354 0,311
Вd 0,390 0,253 0,432
Be 0,488 0,177 0,378
Bi 0,646 0,722 0,703
К R 0,073 0,063 0,230
М Ma 0,244 0,241 0,189
Мв 0,037 0,038 0,054
С Ca 0,720 0,443 0,568
0,744 0,481 0,527
О Da 0,085 0,113 0,622
Полиморфные системы
Tf A 0,220 0,583 0,331
В 0,152 0,095 0,176
С 0,201 0,006 0,108
D 0,415 0,310 0,378
Е 0,012 0,006 0,007
НЬ А 0,091 0,329 0,142
В 0,909 0,671 0,858
Ар А - - -
В 0,335 0,386 0,426
С 0,665 0,614 0,574
АБб В 0,677 0,646 0,615
Н 0,323 0,354 0,385
В исследованной группе молодняка наблюдается нарушение генетического равновесия по трем из четырех изученных локусов (х2 = 12,4-42,41), за исключением локуса гемоглобина (х2 = 2,03), то есть фактическое распределение фенотипов в этом локусе соответствует теоретически ожидаемому. Степень гетерозиготности колебалась по локусам в пределах 24,4 - 70,4%, в среднем - 52,2%. Степень генетической изменчивости популяции составила 52,9%. Следует отметить значительные колебания уровня полиморфности по локусам -от 1,32 до 3,38.
Поскольку проведенными ранее исследованиями с достаточно высокой повторяемостью по годам (г=0,48-0,56) установлено, что высокую шерстную продуктивность, белый цвет и оптимальное количество жиропота, нейтральную среду пота маркируют антигены Ab,
Be, Bg, Ma, Da, фенотипы НВ локуса сывороточной арилэстеразы, ВС -щелочной фосфатазы, АВ - гемоглобина (связан с повышенной густотой шерсти), живую массу - антигены Bd, Bf, фенотип АД локуса трансферрина, ВВ - гемоглобина, нас интересовала наследуемость маркеров продуктивности потомками от различных вариантов подбора родительских пар (табл. 2).
Таблица 2. -Наследование полигенных систем крови баранов потомками
Инд. № барана п Полигенные системы крови баранов Количество потомков-носителей полигенных систем крови отцов, %
А34 (I вар.) 82 Aa, Bg, Bi, Ca, ЗД, Tf CD, Hb BB, AEs HB, Ap ^ 79,3; 42,7; 64,6; 72,0; 74,4; 21,0; 81,7; 35,4; 32,9
Ж2291 (II вар.) 79 Bi, Tf АА, Hb АB, AEs HB, Ap ВC 72,2; 16,5; 60,8; 68,4; 67,0
Ж2365 (III вар.) 74 Bd, Be, Bi, Da, Tf АD, Hb BB, AEs HB, Ap ВC 43,2; 37,8; 70,3; 62,2; 35,1; 71,6; 74,3; 68,9
Оказалось, что в генном наборе барана австралийский меринос содержатся Aa, Bg - факторы крови и фенотип HB локуса сывороточной арилэстеразы, сопряженные с шерстной продуктивностью, и BB локуса гемоглобина - с высокой живой массой. В крови барана № Ж2291 породы манычский меринос выявлены маркеры шерстной продуктивности - фенотип АB локуса гемоглобина, HB - сывороточной арилэстеразы, ВC - щелочной фосфатазы; барана № Ж2365 -антигенные факторы Be, Da, фенотип HB сыворочной арилэстеразы, ВC
- щелочной фосфатазы - маркеры шерстной продуктивности и антиген Bd, фенотипы АD локуса трансферрина, BB - локуса гемоглобина -высокой живой массы.
Установлена высокая степень наследования антигена Aa (79,3%), ниже - Bg и фенотипа HB локуса сывороточной арилэстеразы (35,442,7%), маркирующих шерстную продуктивность, живую массу -фенотип BB локуса гемоглобина (в 81,7% случаев) - потомками, полученными в результате межпородного подбора от барана австралийский меринос. Потомки чистопородного варианта подбора родительских пар (II вариант подбора) наследовали маркеры только шерстной продуктивности - Hb АB, AEs HB, Ap ВC (60,8-68,4%). Животные III варианта подбора являлись носителями маркеров шерстной продуктивности - антиген Da и фенотипа сывороточной арилэстеразы НВ, ВС - щелочной фосфатазы в 68,9-74,3% случаев, реже - эритроцитарного антигена Be (37,8%), маркеров живой массы -антигенного фактора Bd (43,2%), фенотипа АД локуса трансферрина (35,1%), ВВ - гемоглобина (71,6%), что отразилось на показателях живой массы.
Так, сравнительным анализом показателей живой массы и среднесуточных приростов потомства, полученного от различных вариантов породного подбора, установлено, что чистопородный молодняк II и III вариантов родительского подбора превосходил своих помесных сверстников I группы по величине живой массы при рождении на 17,1 и 11,4% соответственно. Превосходство чистопородного молодняка по величине живой массы в 4-месячном возрасте над помесным I варианта подбора сохранилось у животных III варианта и составило 5,6% (Р<0,05). Наиболее низким этот показатель был у чистопородных животных II варианта подбора (на 2,0% ниже помесного молодняка I варианта подбора и 7,6% - потомства III варианта, табл. 2), что подтверждает наше предположение об отсутствии в крови молодняка этого варианта подбора генетических маркеров высокой живой массы и присутствие таковых в генном наборе чистопородных животных III варианта подбора.
Интенсивностью роста, выраженной через среднесуточные приросты, отличались животные III варианта подбора. Так, от рождения до 4-месячного возраста среднесуточный прирост у животных этого варианта был на 4,6% выше по сравнению с I вариантом подбора и на 9,9% - II, что, по-видимому, связано с присутствием в крови потомков от этого варианта подбора антигена Bd (43,2%) и гемоглобина ВВ (71,6%), которые, как указывалось выше, сопряжены с высокой живой массой.
Таким образом установлены иммуногенетические особенности крови потомства овец разных вариантов подбора с высокими потенциальными возможностями продуктивности животных, выявлены генетические маркеры шерстной и мясной продуктивности производителей. В последующие возрастные периоды будет дана окончательная оценка шерстной и мясной продуктивности овец различных вариантов подбора родительских пар и их взаимосвязь с генетическими маркерами крови.
