CC BY
119
ГУМОРАЛЬНЫЙ ОТВЕТ НА ВИРУС ЭПШТЕЙНА-БАРР ПРИ АЛЛЕРГИИ
Е. В. Свирщевская1 М. А. Симонова1, Е. В. Матушевская2, Г. В. Фаттахова1, С. В. Хлгатян3, Д. Ю. Рязанцев1, Д. Б. Чудаков1, С. К. Завриев1
1 Институт биоорганической химии имени М. М. Шемякина и Ю. А. Овчинникова, Москва, Россия
2 Институт повышения квалификации Федерального медико-биологического агентства, Москва, Россия
3 Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток имени И. И. Мечникова, Москва, Россия
Аллергия I типа опосредована формированием IgE-антител к безвредным веществам. Механизмы возникновения аллергии остаются дискуссионными. Одним из факторов риска может быть снижение защитных функций барьерных тканей. Целью работы было проанализировать гуморальный иммунный ответ на вирус Эпштейна-Барр (ВЭБ) у больных с аллергией на гриб A. alternats и клещей домашней пыли D. farinae (КДП) и у здоровых людей. Известно, что до 90% населения инфицированы ВЭБ. Инфицирование происходит в раннем возрасте параллельно с формированием аллергических реакций. Анализ антител проводили методом иммуно-ПЦР с использованием рекомбинантного белка ВЭБ rEBNA1. Показали, что инфицирование как у больных, так и у доноров происходит в детстве; доля сероположительных по ВЭБ индивидов была сравнимой в группах (75 и 74%). Доля пациентов с высокими титрами IgG1 среди больных с аллергией была ниже (7%) по сравнению с донорами (18%), что соответствует меньшей вирусной нагрузке. У больных с аллергией, но не у здоровых людей, наблюдали снижение титров IgG1 с возрастом (р = 0,037). Кроме того, при аллергии повышены титры IgA1 по сравнению с донорами, однако ^А^ответы при аллергии на гриб A. alternata и на КДП различались. При аллергии также раньше формировались IgM к ВЭБ. Таким образом, при аллергии быстрее формируется IgM и IgA1 гуморальный ответ, что приводит к снижению с возрастом ^Э^титров. Ключевые слова: аллергия, клещи домашней пыли, грибы A. alternata, рекомбинантные аллергены, вирус Эпштейна-Барр, иммуно-ПЦР
Информация о вкладе авторов: Е. В. Свирщевская — определение IgE титров на аллергены в сыворотках больных с аллергией и доноров, обработка данных, написание статьи; С. В. Хлгатян — подбор сывороток больных с аллергией и доноров различного возраста, типирование методом RIDA; Г В. Фаттахова, Д. Б. Чудаков — определение IgE титров на аллергены в сыворотках больных с аллергией и доноров; Е. В. Матушевская — сбор сывороток больных с аллергией, обсуждение результатов и написание статьи; М. А. Симонова, Д. Ю. Рязанцев — постановка ПЦР; Д. Ю. Рязанцев — экспрессия в E. coli рекомбинантных белков ВЭБ, A. alternata и D. Farinae; Д. Ю. Чудаков — наработка, очистка и характеристика рекомбинантных белков; С. К. Завриев — оптимизация ПЦР, участие в обсуждении результатов.
Соблюдение этических стандартов: исследование одобрено этическим комитетом Института вакцин и сывороток им. И. И. Мечникова (протокол № 35 от 12 сентября 2018 г).
[><] Для корреспонденции: Елена Викторовна Свирщевская
ул. Миклухо-Маклая, 16/10, г. Москва, 117997; [email protected]
Статья получена: 12.09.2018 Статья принята к печати: 15.02.2019 Опубликована онлайн: 01.03.2019 DOI: 10.24075/vrgmu.2019.004
HUMORAL RESPONSE TO EPSTEIN-BARR VIRAL INFECTION IN PATIENTS WITH ALLERGIES
Svirshchevskaya EV1 Simonova MA1, Matushevskaya EV2, Fattakhova GV1, Khlgatian SV3, Ryazantsev DYu1, Chudakov DB1, Zavriev SK1
1 Shemyakin-Ovchinnikov Institute of Bioorganic Chemistry, Moscow, Russia
2 Institute of Continuing Vocational Education, Federal Medical Biological Agency, Moscow, Russia
3 Mechnikov Research Institute of Vaccines and Sera, Moscow, Russia
Type I hypersensitivity is mediated by the production of IgE antibodies in response to normally harmless substances. Debate still continues about the mechanisms underlying allergic reactions. Reduced barrier tissue function can be one of the risk factors for allergies. The aim of the present work was to compare the humoral immune response to Epstein-Barr virus in patients allergic to the A. alternata fungus or D. farinae house dust mites and healthy donors. It is known that up to 90% of the world population are infected with EBV This infection occurs at early age when a child develops allergy. The antibodies were analyzed using immuno-PCR and the recombinant EBV protein rEBNA. We were able to demonstrate that infection occurs at early age in both allergic patients and healthy donors. The proportion of EBP-seropositive individuals was comparable between the groups (75 and 74%). The proportion of patients with high IgG1 titers among patients with allergies was lower (7%) than in healthy donors (18%), suggesting a lower viral load. In patients with allergies (but not in healthy donors) IgG1 titers declined as children grew older p = 0.037). Besides, IgA1 titers were increased in patients with allergies in comparison with healthy donors, but differed between patients allergic to A. alternata and house dust mites. In allergic individuals, production of IgM against EBV was triggered earlier than in healthy donors. We conclude that IgM production and the IgA^mediated humoral response occur earlier in patients with allergies, causing a decline in IgG1 titers over time. Keywords: allergy, house dust mites, A. alternata, recombinant allergens, Epstein-Barr virus, immuno-PCR
Author contribution: Svirshchevskaya EV measured IgE titers against allergens in the sera of allergic individuals and healthy donors, processed the obtained data and participated in the writing of this article; Khlgatian SV selected sera samples for the study and conducted RIDA assays; Fattakhova GV and Chudakov DB measured IgE titers against allergens in the sera of patients with allergies and healthy donors; Matushevskaya EV collected sera samples from patients with allergies, participated in the discussion of the study results and in the writing of this article; Simonova MA and Ryazantsev DYu performed iPCR; Ryazantsev DYu expressed recombinant proteins of EBV, A. alternata and D. farinae; Chudakov DB synthesized, purified and characterized the sufficient amount of recombinant proteins for the study; Zavriev SK optimized PCR and participated in the discussion of the study results.
Compliance with ethical standards: the study was approved by the Ethics Committee of Mechnikov Research Institute of Vaccines and Sera (Protocol 35 dated September 12, 2018).
[>g Correspondence should be addressed: Elena V. Svirshchevskaya Miklouho-Maclay 16/10, Moscow, 117997; [email protected]
Received: 12.09.2018 Accepted: 15.02.2019 Published online: 01.03.2019
DOI: 10.24075/brsmu.2019.004
Вирус Эпштейна-Барр (ВЭБ) относится к ДНК-содержащим вирусам, входящим в семейство НегреэуШае и вызывающим у человека различные заболевания — от респираторных до онкологических. Известно 8 типов герпесвирусов, поражающих человека. Вирус простого герпеса 1-го и 2-го типов, варицелла-зостер (тип 3), ВЭБ (тип 4) и цитомегаловирус (тип 5) широко распространены в человеческой популяции. Инфицирование герпесвирусами типов 6 и 7 и ассоциированным с саркомой Капоши вирусом типа 8 встречается реже. Каждый взрослый человек инфицирован хотя бы одним типом герпесвируса, что диагностируют по наличию специфических антител в сыворотке крови. Так, 80-95% людей — латентные носители ВЭБ и цитомегаловируса [1]. Латентная ВЭБ-инфекция ассоциирована с некоторыми онкологическими заболеваниями [1-3], рассеянным склерозом [4-5], системной красной волчанкой [6], отягощает течение вирусного иммунодефицита человека [7], провоцирует формирование аутоантител к ДНК и белкам человека [8-9]. Основные антигены ВЭБ — вирусный капсидный антиген, ранний антиген и ядерный антиген 1 (ЕВЫД1) [10-11]. Белок ЕВЫД1 необходим для латентной стадии персистенции вируса. Антитела Э-класса вырабатываются против этого антигена каждый раз при реактивации вируса и отражают суммарную латентную вирусную нагрузку.
Инфицирование ВЭБ происходит контактным путем через поцелуи, общую посуду, предметы личной гигиены. Заражение воздушно-капельным путем также возможно, но встречается реже. Передача вируса может происходить от матери к ребенку во время вынашивания и родов, а также при грудном вскармливании. По данным различных исследований, у 50% детей в возрасте до 3 лет выявляют антитела к ВЭБ [12-13]. Передача осуществляется, по-видимому, через общую посуду и поцелуи.
Аллергия I типа характеризуется формированием гуморального 1дЕ-опосредованного ответа на белки, входящие в состав безвредных микрочастиц — пыльцы, мертвых клещей домашней пыли, эпидермис домашних животных и др. [14-15]. Показано, что в коже и бронхиальном эпителии больных с аллергией имеются значительные отличия от здоровых барьерных тканей [16-17]. Целью данной работы была оценка гуморального ответа на ВЭБ у больных с аллергией на А. аКета1а и й. farinae.
Ранее нами был разработан метод анализа антител 1дЭ1 к ВЭБ и 1дЕ к различным аллергенам с помощью количественной полимеразной цепной реакции (ПЦР) [18-19]. Иммуно-ПЦР (иПЦР) является чувствительным методом, используемым для детекции антител в биологических жидкостях [20-21]. Среди преимуществ иПЦР — линейность дозовых кривых в широком диапазоне концентраций, что позволяет определять титры специфичных антител с помощью меньшего количества разведения сывороток [18-19].
ПАЦИЕНТЫ И МЕТОДЫ
Сыворотки
В работе использовали сыворотки детей и взрослых с гиперчувствительностью к клещам домашней пыли и грибу АНетапа аПета1а. Все сыворотки получены из КПО ФГБНУ НИИ вакцин и сывороток им. И. И. Мечникова (Москва, РФ) с информированного добровольного согласия участников и собраны за период с 2009 по 2017 г. Пациенты проходили аллергодиагностику с
использованием коммерческих наборов RIDA (Германия). Критерии включения в исследование сывороток больных с аллергией: наличие в них IgE к A. alternata или КДП D. farinae по анализу RIDA с классом 3 и более (максимум 6). Критерии исключения: пациенты, прошедшие аллерген-специфическую иммунотерапию; наличие перекрестной аллергии на A. alternata или КДП D. farinae. Донорами считали людей разных возрастов, у которых не были выявлены IgE к пыльцевой, бытовой или грибной панелям аллергенов.
Материалы
Для иПЦР использовали планшеты c высокой сорбирующей способностью (Costar; США), стрипованные планшеты для qiPCR Top Yield strips (ThermoFisher Scientific; США), твин-20, готовый раствор 3,3'5,5'-тетраметилбензидина (Sigma; США), козью сыворотку (Bovogen Biologicals; Австралия), биотинилированные моноклональные антитела к человеческим IgG1-IgG4 и IgE (Southern Biotech; США), мышиные антитела к IgA1, IgA2 человека, конъюгат козьих антител против IgG мыши с биотином и конъюгат стрептавидина с пероксидазой хрена (BD Pharmigen; США), биотинилированный олигодезоксирибонуклеоид (ОДН) (Lumiprobe; Москва), стрептавидин (Sigma; США). В работе использовали рекомбинантные белки rEBNAI, Der f 2 и Alt a 1, полученные ранее в нашей лаборатории [18, 2223]. Остальные реактивы — фирмы Fluka (Швейцария).
Постановка иПЦР
Раствор рекомбинантного антигена rEBNAI (10 мкг/мл) в карбонат-бикарбонатном буфере (0,05 М, pH 9,6) вносили в лунки стрипованного планшета для иПЦР в объеме 50 мкл на лунку и инкубировали в течение ночи при 4 °C. По окончании инкубации лунки промывали трижды буфером TETBS (20 мМ Tris-HCl, 150 мМ NaCl, 0,1 мМ ЭДТА, 0,1% твин-20, pH 7,5). Образцы сывороток разбавляли в 10 раз буфером TETBS с 20%-й козьей сывороткой, делали пятикратные серии разведений и вносили в лунки планшета в объеме 25 мкл на лунку. Каждый образец вносили в трех повторах. В качестве отрицательного контроля использовали фетальную коровью сыворотку (FBS) в 6 повторах. Планшет инкубировали на шейкере в течение 30 мин при комнатной температуре. После инкубации с образцами сывороток планшет отмывали три раза буфером TETBS и вносили в его лунки раствор биотинилированных антител к человеческим иммуноглобулинам IgG1-IgG4 или мышиных антител к человеческим IgA1, IgA2 или IgM в TETBS с 20%-й козьей сывороткой (1 : 1000) в объеме 50 мкл на лунку. Планшеты инкубировали на шейкере в течение 30 мин при комнатной температуре и далее промывали три раза буфером TETBS. Для анализа IgA1, IgA2 или IgM планшеты далее инкубировали с конъюгатом козьих антител против IgG мыши с биотином. После отмывки в лунки планшетов вносили 50 мкл стрептавидина (1 мкг/мл), инкубировали 10 мин, отмывали и вносили 5 пМ раствора ОДН в буфере TETBS с 20%-й козьей сывороткой в объеме 50 мкл на лунку и инкубировали на шейкере в течение 10 мин при комнатной температуре. По окончании инкубации лунки планшета промывали 3 раза буфером TBS (20 мМ Tris-HCl, 150 мМ NaCl, pH 7,5). В лунки планшета вносили смесь для ПЦР в объеме 35 мкл на лунку, сверху вносили минеральное масло в объеме 30 мкл на лунку. ПЦР в реальном времени проводили на
амплификаторе DTprime (ДНК-Технология; Россия) по следующему протоколу: начальная денатурация в течение 5 мин при 94 °C и далее 40 циклов: 15 с отжиг и элонгация при 60 °C, 5 с денатурация при 94 °C. На каждом цикле проводили измерение величины флуоресцентного сигнала от зонда при длине волны 520 нм. Результаты ПЦР анализировали с использованием программного обеспечения амплификатора. Для каждого образца вычисляли среднюю величину порогового цикла (Cq) и стандартное отклонение. Порог детекции рассчитывали как три стандартных отклонения для (Cq-), где (Cq-) — величина порогового цикла в отрицательных образцах. Титр сыворотки оценивали как максимальное разведение сыворотки, при котором соответствующий образец считали положительным.
Статистический анализ
Среднее и стандартное отклонения рассчитывали с помощью программного обеспечения Excel (Microsoft Office, 2003). Корреляцию между титрами IgGI-антител и группами пациентов оценивали с помощью параметрического х2-теста Пирсона и f-теста Стьюдента. Результат считали статистически значимым при значении p < 0,05 в двустороннем анализе.
сывороток отбирали образцы с классом выше 3. На рис. 1 представлено распределение больных по классам RIDA. В части образцов сывороток IgE-антитела не были выявлены ни к одному из 15 аллергенов трех групп (пыльцевая, бытовая и грибная). Такие сыворотки использовали в качестве донорских. Далее из имеющейся коллекции отобрали по 30 сывороток больных и доноров в возрасте 0-15 лет.
Характеристика общего гуморального ответа на ВЭБ
Для анализа профиля антител к ВЭБ у больных с респираторной аллергией на КДП и гриб A. alternata использовали пул 10 сывороток с классом 5-6, полученных от больных в возрасте 3-15 лет. В качестве контроля использовали пул сывороток 10 доноров такого же возраста. Титры антител в rEBNA1 падали в ряду IgM > IgG1 > IgA1 > IgA2 > gG2 (рис. 2) у доноров и в ряду IgM > IgA1 > IgG1 > IgA2 > IgG2 у больных. Титры IgG3 и IgG4 были низкими в обеих группах. Достоверные различия между больными и донорами наблюдали только по уровням IgG1 и IgA1. Отношение титров IgG1 к IgA1 для доноров и больных составило 9 и 0,4 соответственно, что показывает доминирование IgA ответа у больных с аллергией и IgG1 — у здоровых доноров.
РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
Анализ IgG1 ответа на ВЭБ
Особенности иммуно-ПЦР
Все исследования проведены методом иПЦР (таблица). Стадии 0-3 аналогичны стадиям метода ИФА: нанесение антигена на подложку (стадия 0), инкубация с сывороткой крови (стадия 1), инкубация с биотинилированными антителами против IgG1 человека (стадия 2), инкубация со стрептавидином (ПЦР) или комплексом стрептавидин — перокисидаза хрена (ИФА) (стадия 3). Стадия 3 в иПЦР разделена на две и включает инкубацию со стрептавидином, а затем дополнительную инкубацию с ОДН, что позволяет увеличить чувствительность иПЦР. На стадии 4 проводили ПЦР или добавляли субстрат для пероксидазы хрена.
Стадия детекции в ИФА с помощью субстрата не является стандартизированной и варьирует от дня постановки и времени остановки реакции блоком. При анализе иПЦР сокращается примерно на 1 ч время постановки реакции; достигается стандартное проведение анализа, не зависимое от оператора; увеличивается чувствительность за счет получения более линейных данных [18-19].
Характеристика IgE-ответа на аллергены
Для работы отобрали сыворотки больных с диагностированным с помощью коммерческой системы RIDA IgE-ответом на клещей Dermatophagoides farinae и гриб Alternaria alternata. Среди имеющейся коллекции
Таблица. Схема постановки и ПЦР в сравнении с иммуноферментным анализом (ИФА)
При вирусных инфекциях в основном вырабатываются антитела класса !дЭг На рис. ЗА представлено распределение титров !дЭ1 к ВЭБ в сыворотках больных с аллергией (сыворотки с аллергией на КДП и/или A. altemata) и доноров в зависимости от возраста. Показано, что инфицирование возникает в раннем возрасте в обеих группах. У некоторых 4-6-летних детей в обеих группах выявлялись титры !дЭ1 > 1000. Средний титр !дЭ1 в группе пациентов в возрасте 3-10 лет у больных и доноров составил 330 и 1500 соответственно, в возрасте 11-20 лет — 720 и 490, что показывает тенденцию к более ранней инфицированности/реактивности доноров. Из-за значительного разброса данных достоверных различий между группами не было. Не было также различий по уровню антител к ВЭБ между больными аллергией на КДП, гриб A. altemata и донорами (рис. ЗБ).
Анализ доли индивидов, не имеющих антител к ВЭБ, имеющих низкие (< 100), средние (100-1000) и высокие (>1000) титры !дЭ1, показал, что в обеих группах 75% детей в возрасте 3-15 лет являются латентными носителями ВЭБ (рис. 4А); у 45% индивидов в обеих группах выявлялись антитела с низкими титрами. Различия наблюдались между группами по продукции антител с высокими титрами: 20% доноров имели титры антител больше 1000 (20008000); у больных с аллергией таких детей было только 7% (рис. 4А), что показывает большую резистентность к инфекции при аллергии. При этом титры антител к ВЭБ в соответствующих группах были близкими (рис 4Б).
Стадии 0 1 2 3 4
ПЦР Антиген Сыворотка Стрептавидин/ОДН ПЦР Время
Ночь 30 мин 30 мин 10/10 мин 1 ч 3-4 ч
ИФА Антиген Сыворотка Стрептавидин-ПХ** Субстрат
Ночь 1 ч 1 ч 1 ч 20 мин 4-5 ч
Примечание: * — а!дЭ1-Ью — битинилированное антитело к любому классу или субклассу антител (Э, А, Е); **ПХ — пероксидаза хрена.
Анализ ^А^ и IgM-ответов на ВЭБ
Выше было показано, что у больных с аллергией незначительно, но достоверно повышены антитела класса А1 (р = 0,03). Более детальный анализ показал, что основное различие наблюдается на ранней стадии инфицирования (рис. 5А). Средние титры 1дД1 к ВЭБ у больных и доноров в возрасте 3-10 лет составили 425 и 265, в возрасте 11-30 лет — 690 и 370 соответственно. В обеих группах наблюдали рост титров антител с возрастом (рис. 5А). Интересно, что по титрам 1дД1 к ВЭБ наблюдали разницу между больными с разным типом сенсибилизирующего аллергена. Титры 1дД1 к ВЭБ были достоверно выше при аллергии на КДП (рис. 5Б), чем у больных с 1дЕ к А. акета1а и доноров.
Средние титры 1дМ к ВЭБ на порядок превышали титры иммуноглобулинов классов Э и Д в сыворотках как доноров, так и больных. Индивидуальные данные разбивали на низкие (< 5000) и высокие (> 15 000) титры (рис. 5В, Г). Доля высокотитровых по 1дМ индивидуумов в
обеих группах составила 60%. В этой группе не наблюдали различий в изменении титров 1дМ в зависимости от возраста и среднего титра (рис. 5В). В группе с низкими титрами 1дМ у больных с аллергией антитела появлялись раньше, чем у доноров (рис. 5В) и средние титры были выше (рис. 5Г). Повышение титров 1дМ в этой группе наблюдали при аллергии как на КДП, так и на гриб А. акета1а (рис. 5Г).
ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
В процессе естественного инфицирования ВЭБ формируются антитела разных классов и субклассов. У человека имеются антитела классов М, Д, Э и Е, включающие субклассы 1дЭ1-1д04 и 1дД1-1дД2. Основной пул антител М-класса относится к врожденному иммунитету и их титры повышаются при первичном инфицировании; 1дД обеспечивают защиту слизистых оболочек; 1дЕ повышаются при паразитарных инфекциях и аллергии. В настоящее время считается, что 1дД и 1дЕ
А
Б
< а
7 -, 6 -5 -4 3 2
1 H
0
• •• • • •
0 10 20 30
Возраст (лет)
40
< а
с с
а3
10 20 Возраст (лет)
30
40
Рис. 1. Характеристика IgE ответа у больных с аллергией методом RIDA. Уровень IgE в сыворотках пациентов с аллергией на клещей домашней пыли (А) и гриб А. alternats (Б) оценивается в классах от 0 до 6, что пропорционально титрам IgE
А
Б
100 000
з 10 000 р
Доноры Аллергия
< га
Ч р
О
1000 H
100
10
10 000 -3
Доноры Аллергия
1000
100 -
О
10
lgA,
lgA2
lgM
"gG,
lgG2
"gG3
"gG4
Рис. 2. Анализ иммуноглобулинов, распознающих гЕВЫД1, в сыворотках здоровых доноров и пациентов с аллергией. Анализ 1дД1, 1дД2, 1дМ (А), |дЭ1, 1дЭ2, 1д03 и 1дЭ4 (Б) в пулированных сыворотках 10 доноров и 10 пациентов. Приведены средние значения ± стандартное отклонение. Планками отмечены достоверные (р < 0,05) различия
0
0
относятся к адаптивному иммунитету, поскольку для этого требуется переключение В-клеток с 1дМ на другие субклассы. Однако в последнее время ставится вопрос локального переключения В-клеток на синтез 1дД- и 1дЕ-антител без участия Т-клеток [23, 24], что соответствует функционированию врожденного иммунитета. Антитела А-класса обычно относят к ранним антигенам УСД и ЕД [25]. Антитела классов М и А к ранним антигенам служат маркерами реактивации вируса или вторичного заражения. Антитела А-класса к позднему антигену ВЭБ ЕВЫД1 также выявляются и значительно повышаются, например, при раке носоглотки [26].
Полученные нами данные показывают, что у больных с аллергическими реакциями в более ранний срок и в более высоких титрах повышаются титры 1дД1- и 1дМ-антител. При этом титры 1дД2 были ниже, чем титры 1дД1 и не различались между группами (данные не показаны). При аллергической реакции наблюдается воспалительная реакция в слизистых оболочках, повышается продукция
А
100 000 з
10 000
о" 1000
га
100
10
• Аллергия Доноры р = 0,037
9-9т » -т*
0 5 10 15
20
Возраст (лет)
25
30
цитокинов и хемокинов [17, 24], что способствует активации В-клеток. В случае высокотитровых сывороток продукция 1дМ в группах доноров и больных была сравнимой, что показывает равную эффективность иммунного ответа при реактивации вирусом В-клеток, синтезирующих 1дМ.
Основным протективным звеном адаптивного гуморального ответа являются 1дЭ. Переключение В-клеток на синтез 1дЭ происходит только при формировании антиген-специфичного Т-зависимого ответа на ВЭБ. Известно, что при противовирусном ответе доминирует 1дЭ1-ответ [27-28]. По литературным данным, при ответе на вирус гепатита В титры антител падают в ряду 1дЭ1 > 1дЭ4 > 1дЭ3 > 1дЭ2 [27], при ответе на ВЭБ 1дЭ1>> 1дЭ2, 1д03, 1дЭ4 [28]. Полученные нами данные для доноров характерны для ответа на ВЭБ с доминированием 1дЭ1. Для больных с аллергией средний уровень 1дЭ1 был ниже, чем в группе доноров, и сравним с уровнем 1дЭ2 (р = 0,14). Статистический анализ данных
Б
100 000 ц
10 000 2
о 1000
га
100
10
А. аНегпа(а
КПД
Доноры
Рис. 3. Анализ гЕВЫД1 специфичных |дЭ1 в сыворотках здоровых доноров и пациентов с аллергией. А. Анализ титров |дЭ1 в индивидуальных сыворотках пациентов с аллергией на гриб А. айета1а (п = 15), клещей домашней пыли (п = 9) и доноров (п = 38). Планками показаны средние значения ± стандартное отклонение. Б. Зависимость титров гЕВЫД1 специфичных |дЭ1 от возраста в индивидуальных сыворотках пациентов с аллергией (п = 53) и доноров (п = 34). Аппроксимация степенной функцией показана линиями
А
я ляо До
50 п
40 -
30 -
20 -
10 -
Аллергия Доноры
Б
10 000
1000 -
О га
100 -
Аллергия Доноры
10
<100
>100
>1000
<100
>100
>1000
Рис. 4. Анализ репертуара гЕВЫД1 специфичных |дЭ1 в сыворотках здоровых доноров и пациентов с аллергией. Доля (%) пациентов и доноров, у которых выявлены |дЭ1 с различными титрами (А), и средние титры в этих группах (Б)
0
0
А
В
10 000
,- 1000 , <
га
100
10
<* Аллергия • Доноры p = 0,037
100 000 q
I?
з 10 000
1000
« >15000 доноры 9 >15000 аллергия А <5000 аллергия i <5000 доноры
4С
» -» '
*
А
A Ï
p = 0,01
10 20 Возраст (лет)
30
10 20 Возраст (лет)
30
Б
10 000 ,
1000 -
А
га
100 -
10
• i
t X
> S m
100 000 ч
10 000 ,
I?
ы р
1000 :
100
+ - *
A. alternata КПД
Доноры
A. alternata КПД
Доноры
Рис. 5. Анализ rEBNA1 специфичных IgA1 и IgM в сыворотках здоровых доноров и пациентов с аллергией. Анализ титров IgA1 (А) и IgM (В) в индивидуальных сыворотках пациентов с аллергией на гриб A. alternata (n = 11), клещей домашней пыли (n = 21) и доноров (n = 23) в зависимости от возраста. Распределение титров rEBNA1 специфичных IgA1 (Б) и IgM (Г) в сыворотках пациентов с аллергией и здоровых доноров. Данные по IgM представлены для сывороток с низкими (серые кружки) и высокими (черные кружки) титрами антител IgM. Планками показаны средние значения ± стандартное отклонение. Верхними планками показаны достоверные отличия p < 0,05)
показал, что достоверные различия между больными с аллергией и донорами по титрам !дЭ1 возрастают с возрастом. Ранее противовирусный ответ у больных с аллергией не изучали. В целом, полученные данные позволяют предположить, что при респираторной аллергии можно наблюдать повышение количества !дА1- и !дМ-антител к ВЭБ, что снижает его проникновение через эпителиальные барьеры и уменьшает общую вирусную нагрузку.
ВЫВОДЫ
Аллергия характеризуется повышенной реактивностью эпителиальных барьеров, что вызвано взаимодействием !дЕ с аллергенами. Повышение реактивности врожденной системы иммунитета, по-видимому, приводит к повышению противовирусного ответа на вирус Эпштейна-Барр, повышению титров !дА1 и !дМ, снижению титров !дЭ1, коррелирующих с латентной вирусной нагрузкой.
0
0
Г
Литература
1. Kayamba V, Monze M, Asombang AW, Zyambo K, Kelly P. Serological response to Epsteln-Barr virus early antigen Is associated with gastric cancer and human Immunodeficiency virus infection in Zambian adults: a case-control study. Pan Afr Med J. 2016; (23): 45. DOI: 10.11604/pamj.2016.23.45.8503.
2. Banko AV, Lazarevic IB, Folic MM, Djukic VB, Cirkovic AM, Karalic DZ, Cupic MD, Jovanovic TP. Characterization of the Variability of Epstein-Barr Virus Genes in Nasopharyngeal Biopsies: Potential Predictors for Carcinoma Progression. PLoS One. 2016; 11 (4): e0153498. DOI: 10.1371/journal.pone.0153498.
3. Frappier L. EBNA1. Curr Top Microbiol Immunol. 2015; (391): 3-34. DOI: 10.1007/978-3-319-22834-1_1.
4. Myhr KM, Riise T, Barrett-Connor E, Myrmel H, Vedeler C, Granning M, Kalvenes MB, Nyland H. Altered antibody pattern to Epstein-Barr virus but not to other herpesviruses in multiple
sclerosis: a population based case-control study from western Norway. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 1998; 64 (4): 539-42.
5. Lomakin Y, Arapidi GP, Chernov A, Ziganshin R, Tcyganov E, Lyadova I, Butenko IO, Osetrova M, Ponomarenko N, Telegin G, Govorun VM, Gabibov A, Belogurov A Jr. Exposure to the Epstein-Barr Viral Antigen Latent Membrane Protein 1 Induces Myelin-Reactive Antibodies In Vivo. Front Immunol. 2017; (8): 777. DOI: 10.3389/fimmu.2017.00777.
6. Piroozmand A, Haddad Kashani H, Zamani B. Correlation between Epstein-Barr Virus Infection and Disease Activity of Systemic Lupus Erythematosus: a Cross-Sectional Study. Asian Pac J Cancer Prev. 2017; (18): 523-7.
7. Pan R, Liu X, Zhou S, Ning Z, Zheng H, Gao M, Ding Y, Yao W, Liao X, He N. Differential prevalence and correlates of whole blood Epstein-Barr virus DNA between HIV-positive and HIV-negative
men who have sex with men in Shanghai, China. Epidemiol Infect. 2017; 145 (11): 2330-40. DOI: 10.1017/S0950268817001054.
8. Lindsey JW, deGannes SL, Pate KA, Zhao X. Antibodies specific for Epstein-Barr virus nuclear antigen-1 cross-react with human heterogeneous nuclear ribonucleoprotein L. Mol Immunol. 2016 Jan; (69): 7-12. DOI: 10.1016/j.molimm.2015.11.007.
9. Lindsey JW. Antibodies to the Epstein-Barr virus proteins BFRF3 and BRRF2 cross-react with human proteins. Neuroimmunol. 2017; (310): 131-4.
10. Al Sidairi H, Binkhamis K, Jackson C, Roberts C, Heinstein C, MacDonald J, Needle R, Hatchette TF, LeBlanc JJ. Comparison of two automated instruments for Epstein-Barr virus serology in a large adult hospital and implementation of an Epstein-Barr virus nuclear antigen-based testing algorithm. J Med Microbiol. 2017; 66 (11): 1628-34. DOI: 10.1099/jmm.0.000616.
11. Maylin S, Feghoul L, Salmona M, Herda A, Mercier-Delarue S, Simon F, Legoff J. Evaluation the Architect EBV VCA IgM, VCA IgG, and EBNA-1 IgG chemiluminescent immunoassays to assess EBV serostatus prior transplantation. J Med Virol. 2017; 89 (11): 2003-10. DOI: 10.1002/jmv.24889.
12. Simon KC, Saghafian-Hedengren S, Sverremark-Ekstrom E, Nilsson C, Ascherio A. Age at Epstein-Barr virus infection and Epstein-Barr virus nuclear antigen-1 antibodies in Swedish children. Mult Scler Relat Disord. 2012; 1 (3): 136-8. DOI: 10.1016/j.msard.2012.03.002.
13. Xiong G, Zhang B, Huang MY, Zhou H, Chen LZ, Feng QS, Luo X, Lin HJ, Zeng YX. Epstein-Barr virus (EBV) infection in Chinese children: a retrospective study of age-specific prevalence. PLoS One. 2014; 9 (6): e99857. DOI: 10.1371/journal.pone.0099857.
14. Feng C, Kim JH. Beyond Avoidance: the Psychosocial Impact of Food Allergies. Clin Rev Allergy Immunol. 2018. DOI: 10.1007/ s12016-018-8708-x.
15. Licari A, Castagnoli R, Brambilla I, Marseglia A, Tosca MA, Marseglia GL, Ciprandi G. Asthma Endotyping and Biomarkers in Childhood Asthma. Pediatr Allergy Immunol Pulmonol. 2018; 31 (2): 44-55. DOI: 10.1089/ped.2018.0886.
16. Tsakok T, Woolf R, Smith CH, Weidinger S, Flohr C. Atopic dermatitis: the skin barrier and beyond. Br J Dermatol. 2018. DOI: 10.1111/bjd.16934.
17. Carsin A, Mazenq J, Ilstad A, Dubus JC, Chanez P, Gras D. Bronchial epithelium in children: a key player in asthma. Eur Respir Rev. 2016; 25 (140): 158-69. DOI: 10.1183/16000617.0101-2015.
18. Пивоваров В. Д., Рязанцев Д. Ю., Симонова М. А.,
Димитриева Т. В., Хлгатян С. В., Завриев С. К., Свирщевская Е. В. Разработка тест-системы для анализа антител к вирусу Эпштейна-Барр методом иммуно-ПЦР. Молекулярная биология. 2018; 52 (4): 727-34.
19. Simonova MA, Pivovarov VD, Ryazantsev DY, Dolgova AS, Berzhets VM, Zavriev SK, Svirshchevskaya EV. Comparative diagnostics of allergy using quantitative immuno-PCR and ELISA. Bioanalysis. 2018. DOI: 10.4155/bio-2017-0194.
20. Chang L, Li J, Wang L. Immuno-PCR: An ultrasensitive immunoassay for biomolecular detection. Anal Chim Acta. 2016; (910): 12-24. DOI:10.1016/j.aca.2015.12.039.
21. Jani D, Savino E, Goyal J. Feasibility of immuno-PCR technology platforms as an ultrasensitive tool for the detection of anti-drug antibodies. Bioanalysis. 2015; (7): 285-94.
22. Рязанцев Д. Ю., Дробязина П. Е., Хлгатян C. В., Завриев С. К., Свирщевская Е. В. Экспрессия аллергенов клещей домашней пыли Der f 1 и Der f 2 в листьях Nicotiana benthamiana. Биоорганическая химия. 2014; 40 (4): 468-78.
23. Svirshchevskaya E, Fattakhova G, Khlgatian S, Chudakov D, Kashirina E, Ryazantsev D, Kotsareva O, Zavriev S. Direct versus sequential immunoglobulin switch in allergy and antiviral responses. Clin Immunol. 2016; (170): 31-8. DOI: 10.1016/j. clim.2016.07.022.
24. Takaki H, Ichimiya S, Matsumoto M, Seya T. Mucosal Immune Response in Nasal-Associated Lymphoid Tissue upon Intranasal Administration by Adjuvants. J Innate Immun. 2018; (10): 515-21. DOI: 10.1159/000489405.
25. Bhaduri-McIntosh S, Landry ML, Nikiforow S, Rotenberg M, El-Guindy A, Miller G. Serum IgA antibodies to Epstein-Barr virus (EBV) early lytic antigens are present in primary EBV infection. J Infect Dis. 2007; 195 (4): 483-92.
26. Cai YL, Li J, Lu AY, Zheng YM, Zhong WM, Wang W, Gao JQ, Zeng H, Cheng JR, Tang MZ. Diagnostic significance of combined detection of Epstein-Barr virus antibodies, VCA/IgA, EA/IgA, Rta/ IgG and EBNA1/IgA for nasopharyngeal carcinoma. Asian Pac J Cancer Prev. 2014; 15 (5): 2001-6.
27. Wang L, Tsai TH, Huang CF, Ho MS, Lin DB, Ho YC, Lin SS, Wei JC, Chou MC, Yang CC. Utilizing self-prepared ELISA plates for a cross-population study of different anti-HBe IgG subclass profiles. J Med Virol. 2007; 79 (5): 495-2.
28. Wakiguchi H, Hisakawa H, Hosokawa T, Kubota H, Kurashige T. Analysis of IgG subclasses in chronic active Epstein-Barr virus infection. Pediatr Int. 2000; 42 (1): 21-5.
References
1. Kayamba V, Monze M, Asombang AW, Zyambo K, Kelly P. Serological response to Epstein-Barr virus early antigen is associated with gastric cancer and human immunodeficiency virus infection in Zambian adults: a case-control study. Pan Afr Med J. 2016; (23): 45. DOI: 10.11604/pamj.2016.23.45.8503.
2. Banko AV, Lazarevic IB, Folic MM, Djukic VB, Cirkovic AM, Karalic DZ, Cupic MD, Jovanovic TP. Characterization of the Variability of Epstein-Barr Virus Genes in Nasopharyngeal Biopsies: Potential Predictors for Carcinoma Progression. PLoS One. 2016; 11 (4): e0153498. DOI: 10.1371/journal.pone.0153498.
3. Frappier L. EBNA1. Curr Top Microbiol Immunol. 2015; (391): 3-34. DOI: 10.1007/978-3-319-22834-1_1.
4. Myhr KM, Riise T, Barrett-Connor E, Myrmel H, Vedeler C, Granning M, Kalvenes MB, Nyland H. Altered antibody pattern to Epstein-Barr virus but not to other herpesviruses in multiple sclerosis: a population based case-control study from western Norway. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 1998; 64 (4): 539-42.
5. Lomakin Y, Arapidi GP, Chernov A, Ziganshin R, Tcyganov E, Lyadova I, Butenko IO, Osetrova M, Ponomarenko N, Telegin G, Govorun VM, Gabibov A, Belogurov A Jr. Exposure to the Epstein-Barr Viral Antigen Latent Membrane Protein 1 Induces Myelin-Reactive Antibodies In Vivo. Front Immunol. 2017; (8): 777. DOI: 10.3389/fimmu.2017.00777.
6. Piroozmand A, Haddad Kashani H, Zamani B. Correlation
between Epstein-Barr Virus Infection and Disease Activity of Systemic Lupus Erythematosus: a Cross-Sectional Study. Asian Pac J Cancer Prev. 2017; (18): 523-7.
7. Pan R, Liu X, Zhou S, Ning Z, Zheng H, Gao M, Ding Y, Yao W, Liao X, He N. Differential prevalence and correlates of whole blood Epstein-Barr virus DNA between HIV-positive and HIV-negative men who have sex with men in Shanghai, China. Epidemiol Infect. 2017; 145 (11): 2330-40. DOI: 10.1017/S0950268817001054.
8. Lindsey JW, deGannes SL, Pate KA, Zhao X. Antibodies specific for Epstein-Barr virus nuclear antigen-1 cross-react with human heterogeneous nuclear ribonucleoprotein L. Mol Immunol. 2016 Jan; (69): 7-12. DOI: 10.1016/j.molimm.2015.11.007.
9. Lindsey JW. Antibodies to the Epstein-Barr virus proteins BFRF3 and BRRF2 cross-react with human proteins. Neuroimmunol. 2017; (310): 131-4.
10. Al Sidairi H, Binkhamis K, Jackson C, Roberts C, Heinstein C, MacDonald J, Needle R, Hatchette TF, LeBlanc JJ. Comparison of two automated instruments for Epstein-Barr virus serology in a large adult hospital and implementation of an Epstein-Barr virus nuclear antigen-based testing algorithm. J Med Microbiol. 2017; 66 (11): 1628-34. DOI: 10.1099/jmm.0.000616.
11. Maylin S, Feghoul L, Salmona M, Herda A, Mercier-Delarue S, Simon F, Legoff J. Evaluation the Architect EBV VCA IgM, VCA IgG, and EBNA-1 IgG chemiluminescent immunoassays to
assess EBV serostatus prior transplantation. J Med Virol. 2017; 89 (11): 2003-10. DOI: 10.1002/jmv.24889.
12. Simon KC, Saghafian-Hedengren S, Sverremark-Ekström E, Nilsson C, Ascherio A. Age at Epstein-Barr virus infection and Epstein-Barr virus nuclear antigen-1 antibodies in Swedish children. Mult Scler Relat Disord. 2012; 1 (3): 136-8. DOI: 10.1016/j.msard.2012.03.002.
13. Xiong G, Zhang B, Huang MY, Zhou H, Chen LZ, Feng QS, Luo X, Lin HJ, Zeng YX. Epstein-Barr virus (EBV) infection in Chinese children: a retrospective study of age-specific prevalence. PLoS One. 2014; 9 (6): e99857. DOI: 10.1371/journal.pone.0099857.
14. Feng C, Kim JH. Beyond Avoidance: the Psychosocial Impact of Food Allergies. Clin Rev Allergy Immunol. 2018. DOI: 10.1007/ s12016-018-8708-x.
15. Licari A, Castagnoli R, Brambilla I, Marseglia A, Tosca MA, Marseglia GL, Ciprandi G. Asthma Endotyping and Biomarkers in Childhood Asthma. Pediatr Allergy Immunol Pulmonol. 2018; 31 (2): 44-55. DOI: 10.1089/ped.2018.0886.
16. Tsakok T, Woolf R, Smith CH, Weidinger S, Flohr C. Atopic dermatitis: the skin barrier and beyond. Br J Dermatol. 2018. DOI: 10.1111/bjd.16934.
17. Carsin A, Mazenq J, Ilstad A, Dubus JC, Chanez P, Gras D. Bronchial epithelium in children: a key player in asthma. Eur Respir Rev. 2016; 25 (140): 158-69. DOI: 10.1183/16000617.01012015.
18. Pivovarov VD, Ryazantsev DYu, Simonova MA, Dimitrieva TV, Khlgatian SV, Zavriev SK, Svirshchevskaya EV. Razrabotka test-sistemy dlja analiza antitel k virusu Jepshtejna-Barr metodom immuno-PCR. Molekuljarnaja biologija. 2018; 52 (4): 727-34.
19. Simonova MA, Pivovarov VD, Ryazantsev DY, Dolgova AS, Berzhets VM, Zavriev SK, Svirshchevskaya EV. Comparative diagnostics of allergy using quantitative immuno-PCR and ELISA. Bioanalysis. 2018. DOI: 10.4155/bio-2017-0194.
20. Chang L, Li J, Wang L. Immuno-PCR: An ultrasensitive
immunoassay for biomolecular detection. Anal Chim Acta. 2016; (910): 12-24. DOI:10.1016/j.aca.2015.12.039.
21. Jani D, Savino E, Goyal J. Feasibility of immuno-PCR technology platforms as an ultrasensitive tool for the detection of anti-drug antibodies. Bioanalysis. 2015; (7): 285-94.
22. Ryazantsev DYu, Drobyazina PE, Khlgatian SV, Zavriev SK, Svirshchevskaya EV. Jekspressija allergenov kleshhej domashnej pyli Der f 1 i Der f 2 v list'jah Nicotiana benthamiana. Bioorganicheskaja himija. 2014; 40 (4): 468-78.
23. Svirshchevskaya E, Fattakhova G, Khlgatian S, Chudakov D, Kashirina E, Ryazantsev D, Kotsareva O, Zavriev S. Direct versus sequential immunoglobulin switch in allergy and antiviral responses. Clin Immunol. 2016; (170): 31-8. DOI: 10.1016/j. clim.2016.07.022.
24. Takaki H, Ichimiya S, Matsumoto M, Seya T. Mucosal Immune Response in Nasal-Associated Lymphoid Tissue upon Intranasal Administration by Adjuvants. J Innate Immun. 2018; (10): 515-21. DOI: 10.1159/000489405.
25. Bhaduri-McIntosh S, Landry ML, Nikiforow S, Rotenberg M, El-Guindy A, Miller G. Serum IgA antibodies to Epstein-Barr virus (EBV) early lytic antigens are present in primary EBV infection. J Infect Dis. 2007; 195 (4): 483-92.
26. Cai YL, Li J, Lu AY, Zheng YM, Zhong WM, Wang W, Gao JQ, Zeng H, Cheng JR, Tang MZ. Diagnostic significance of combined detection of Epstein-Barr virus antibodies, VCA/IgA, EA/IgA, Rta/ IgG and EBNA1/IgA for nasopharyngeal carcinoma. Asian Pac J Cancer Prev. 2014; 15 (5): 2001-6.
27. Wang L, Tsai TH, Huang CF, Ho MS, Lin DB, Ho YC, Lin SS, Wei JC, Chou MC, Yang CC. Utilizing self-prepared ELISA plates for a cross-population study of different anti-HBe IgG subclass profiles. J Med Virol. 2007; 79 (5): 495-2.
28. Wakiguchi H, Hisakawa H, Hosokawa T, Kubota H, Kurashige T. Analysis of IgG subclasses in chronic active Epstein-Barr virus infection. Pediatr Int. 2000; 42 (1): 21-5.
