Гистологические изменения в иммунотропных органах при установке остеофиксаторов, обогащённых ионами лантана
В.В. Анников, д.в.н., профессор, Е.С. Краснова, аспирантка, Саратовский ГАУ им. Н.И. Вавилова
Одним из признаков осложнений при переломах костей является кровопотеря [1]. Вязкость крови при костной травме увеличивается, что может привести к тромбоэмболии и, как следствие, к гибели животного [2, 3]. Для предотвращения негативных последствий травматической болезни предлагается несколько вариантов решения проблемы [3, 4].
Общими для травм любого генезиса являются иммунные изменения [5].
Известно, что лантан обладает антитромбо-генными свойствами [6, 7], поэтому мы решили использовать остеофиксаторы, обогащённые его ионами, для профилактики тромбоэмболии
при экспериментальном переломе бедренной кости.
Целью исследования стало изучение влияния остеофиксаторов с термооксидным покрытием, содержащим ионы лантана, на иммунотропные органы, в частности, на регионарные лимфатические узлы и селезёнку.
Для реализации поставленной цели определили следующие задачи.
1. На основании гистологических исследований оценить влияние остеофиксаторов, обогащённых ионами лантана, на селезёнку как кроветворный орган.
2. Провести сравнительный анализ гистологических изменений в лимфатических узлах травмированных и интактных конечностей.
3. Выявить динамику гистологических изменений лимфатических узлов и селезёнки.
Объектом исследования явились кролики. Было сформировано две группы животных по принципу аналогов, по три головы в каждой, с экспериментальным переломом бедренной кости. Первой (контрольной) группе установили остеофиксаторы из медицинской биотолерант-ной стали 12Х18Н9Т (ГОСТ 5632-72); второй (опытной) — эти же остеофиксаторы, но обогащённые ионами лантана. После операции животным обеих групп проводили превентивную антибиотикотерапию цефазолином в дозе 20 тыс. ед. на кг массы тела два раза в день в течение семи суток. Зону контакта остеофиксаторов с кожей санировали 3%-ным раствором перекиси водорода.
В работе использовали клинический и гистологический методы исследования.
При клиническом исследовании в первые дни после операции значимых отличий в состоянии животных обеих групп не наблюдали.
Локальное обследование всех кроликов показало выраженную картину воспаления в области контакта кожи с остеофиксаторами уже через сутки после операции. Установлена значительная отёчность и гиперемия мягких тканей, а также болезненность при пальпации.
К пятым суткам после операции у животных первой группы отмечалась небольшая отёчность, слабая гиперемия и незначительная экссудация, тогда как в опытной группе симптомы воспаления мягких тканей не наблюдались.
На 30-е сутки животных выводили из эксперимента. Отбирали лимфатические узлы, селезёнку для проведения гистологического исследования. После извлечения органы помещали в фиксирующий раствор (10%-ный водный нейтральный раствор формалина). Из зафиксированного материала на замораживающем микротоме модели
2515 (Reichert Wien) готовили гистологические срезы толщиной 15 мкм. Затем их исследовали микроскопически под увеличением 1300 раз.
При исследовании регионарных лимфоузлов кроликов опытной группы со стороны травмированных конечностей обнаружили, что фиброзная капсула тонкая, тинкториальные свойства сохранены, отдельные сосуды гипе-ремированы, лимфоидная ткань разряжена. Наблюдались незначительные периваскулярные отёки (рис. 1).
При микроскопии гистосрезов регионарных лимфатических узлов животных контрольной группы со стороны травмированных конечностей были отмечены следующие изменения: фиброзная капсула тонкая, не инфильтрированная; структура сохранена; лимфатические фолликулы гиперплазированы (рис. 2).
Помимо регионарных лимфатических узлов с травмированных конечностей исследовали таковые с интактных в опытной и контрольной группах животных. В лимфатических узлах ин-тактных конечностей второй группы животных обнаружено, что фиброзная капсула тонкая, тинкториальные свойства сохранены. Отмечалась гиперемия отдельных сосудов, лимфоидная ткань была умеренно выражена. Имелись также незначительные отёки стромы и лимфоидной ткани. Лимфоидные клетки при этом были расположены компактно (рис. 3).
В гистосрезах животных первой группы выявлено следующее: фиброзная капсула тонкая, окружена жировой клетчаткой, умеренно инфильтрирована лимфоидными элементами. Структура самого лимфоузла сохранена, отмечалась умеренная гиперплазия, лимфатические фолликулы умеренные (рис. 4).
При гистологическом исследовании селезёнки установлено, что в препаратах опытной группы животных соединительнотканная капсула была
Рис. 1 - Г истосрез лимфоузла кролика с травмированной конечности (опытная группа): а) некоторое разрежение лимфоидной ткани; б) отёчные явления; в) гиперемия отдельных сосудов. Окраска ге-мотоксилином и эозином. Ув. х50
Рис. 2 - Г истосрез лимфоузла с травмированной конечности (контрольная группа):
а) компактное расположение лимфоидной ткани; б) отёчные явления. Окраска гемотоксилином и эозином. Ув. х50
Рис. 3 - Гистосрез лимфоузла интактной конечности (опытная группа):
а) тинкториальные свойства сохранены; б) гиперемия отдельных сосудов; в) не значительные отёки стромы и лимфоидной ткани. Окраска гемотоксилином и эозином. Ув. х50
Рис. 5 - Гистосрез селезёнки (опытная группа):
а) лимфоидные фолликулы достаточно крупные, их количество не уменьшено; б) периваскулярные отёки; в) отёк стромы. Окраска гемотоксилином и эозином. Ув. х50
не инфильтрированная; лимфатические фолликулы в умеренном количестве, достаточно крупные, их границы хорошо заметны; вещество умеренно компактно расположено. Наблюдались незначительные периваскулярные отёки и отёки стромы (рис. 5).
В гистосрезах контрольной группы соединительнотканная капсула была не инфильтрированная, лимфоидные фолликулы — без светлых центров (первичные). В белой пульпе отмечалась воспалительная инфильтрация. Наблюдались также периваскулярные отёки (рис. 6).
На основании изложенного можно сделать вывод, что такие характерные изменения, как периваскулярные отёки, эозинофильная инфильтрация, свидетельствуют о сохраняющихся воспалительных явлениях у травматологически больных животных даже через месяц после операции. При этом имеющиеся изменения в опытной и контрольной группах значительно не отличаются. Следовательно, можно предположить, что остеофиксаторы с термооксидным
Рис. 4 - Гистосрез лимфоузла с интактной конечности (контрольная группа):
а) отёк стромы; б) несколько разреженное расположение лимфоидной ткани; в) структура сохранена. Окраска гемотоксилином и эозином. Ув. х50
Рис. 6 - Гистосрез селезёнки (контрольная группа):
а) фолликулы без светлых центров, б) периваскулярные отёки. Окраска гемотоксилином и эозином. Ув. х50
покрытием, обогащённым ионами лантана, не оказывают токсического влияния на иммуно-тропные органы.
Литература
1. Анников В.В. Анатомо-хирургические аспекты оптимизации репаративного остеогенеза в условиях внешней фиксации аппаратами стержневого типа: дисс....д. вет. наук. Саратов, 2006. 365 с.
2. Баркаган З.С. Геморрагические заболевания и синдромы. М., 1988. 258 с.
3. Васильенко Е.Е. Тромбоэмболия лёгочной артерии у пациентов с имплантированными электрокардиостимуляторами: дисс. ... канд. мед. наук. Томск, 2005. 233 с.
4. Ерюхин И.А., Алексеев А.В., Корнилов В.А. и др. Использование принципов военно-полевой хирургии при оказании медицинской помощи пострадавшим во время катастроф // Военно-медицинский журнал. 1991. №6. С. 22—26.
5. Ватников Ю.А., Краснова Н.В. Особенности посттравмати-ческой регенерации костной ткани под влиянием тирокаль-цитонина // Международный ветеринарный конгресс,11-й: матер. М., 2002. С. 29-30.
6. Родионов И.В. и др. Биоинтеграционные качества термооксидных покрытий чрескостных стержневых металло-фиксаторов при клиничеких испытаниях // Наукоемкие технологии. 2008. №8. Т.9. С. 57-66.
7. Родионов И.В., Бутовский К.Г., Бейдик О.В. Формирование антисептических и антитромбогенных качеств аноднооксидных биопокрытий остеофиксаторов за счет гальванических процессов // Вестник Саратовского государственного технического университета. 2007. №4 (28). Вып. 1. С. 81-85.