CC BY
54
УДК 619:616.995.429.1 С.Ш. Чилаев, А.М. Биттиров, Л.З. Шекихачева
ФАУНА ГЕЛЬМИНТОВ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА
Сравнительный анализ гельминтофауны показал на высокую экстенсинвазиро-ванность крупного рогатого скота шведской породы разновидным составом гельминтинов. Исследуя продукты убоя у крупного рогатого скота швицкой породы авторы установили 23 видов гельминтов, в том числе два вида из трематод: Fasciola hepatica в печени (ЭИ - 48,3%, ИИ - 59,8 экз/гол.) и D. lanceatum (ЭИ - 70,6%, ИИ - 270,6 экз/гол.). Из имагинальных цестод было обнаружено Moniezia expansa в тонком отделе кишечника (ЭИ - 12,4%, ИИ - 9,5 экз/гол.); из ларвальных цестод в печени и легких - Ech.granulosus (ЭИ - 38,7%, ИИ - 57,6 экз/гол.). Большинство гельминтов (15 видов) принадлежали классу нематода.
Введение. Разведение крупного рогатого скота швицкой породы является перспективным направлением в мясном скотоводстве республики [1]. Имеются сведения о наличии в продуктах убоя крупного рогатого скота различных видов гельминтов (трематод, ларвальных цестод и нематод) [2]. По данным авторов [2], гельминтофауна в Северо-Кавказском регионе представлена F.hepatica, D.lanceatum, Ech.granulosus, Moniezia expansa, Oesophagastomum radiatum, Hemonchus placei, Cysticercus bovis, Dyctiocaulus viviparus, Thelazia rhodesi, стронгилятами желудочно-кишечного тракта шести видов. Однако до настоящих исследований гельминтофаунистический комплекс крупного рогатого скота в регионе абсолютно не изучен.
Материалы и методы исследований. В целях изучения видового состава гельминтов в различные сезоны 2002-2006 гг. методом гельминтологического вскрытия исследовано 24 головы крупного рогатого скота швиц-кой породы из разных хозяйств Кабардино-Балкарской республики. Большинство животных (17 гол.) было убито на Нальчикском мясокомбинате, а 7 голов подвергались убою и гельминтологическому вскрытию непосредственно в хозяйствах.
Для определения гельминтофауны применяли метод полного гельминтологического вскрытия (Скрябин К.И., 1928) [4]. Гельминтов из кишечника получали путем промывания его содержимого в специальном цилиндре с ситами уменьшающего диаметра. Для этого отдельные участки кишечника перевязывали лигатурами и разрезали. Содержимое каждой его части помещали в верхнее сито цилиндра и промывали теплой водой из шланга. Одновременно тщательно исследовали промываемую жидкость в кювете. Промывали до тех пор, пока жидкость в кювете не становилась прозрачной. Затем сита вынимали из цилиндра, содержимое вытряхивали в банки, фиксировали раствором Барбагалло и этикетировали. Кроме того, стенку кишки выворачивали и при ярком освещении собирали с ее поверхности гельминтов. Определение видового состава гельминтов проводили путем просмотра их небольшими порциями (по 5-10 г) в кювете, разделенном на сектора с черным и белым фоном. Порцию осадка заливали водой, перемешивали и выбирали всех гельминтов. В заключение содержимое просматривали под бинокулярной лупой. Другие органы и ткани (печень, легкие, селезенка, мышцы) на предмет обнаружения гельминтов исследованы общепринятыми методами (Рекомендации ВИГИС по диагностике гельминтозов животных и птиц, 1986). Сборы гельминтов от крупного рогатого скота швицкой породы использовали в дальнейшем для количественного анализа инвазированности их отдельными видами и характеристики структуры гельминтофаунистического комплекса. Определение нематод проводили в ВИГИСе. Индентификацию нематод семейства Strongylidae Baird (1853) осуществляли по методике Г.А. Котельникова (1983) [3]. При определении видов стронгилят обращали внимание на особенности строения ротовой капсулы, ее стенок, ротового воротника и пищевода, копулятивной бурсы самца, расположение ее бедер, форму полового конуса, дистального конца спикул, рулька, половых придатков и хвостового конца тела самок. Гельминтов других видов идентифицировали по определителю К.И. Скрябина (1935).
Результаты и обсуждение. К настоящему времени в регионе видовой состав гельминтов у яков и крупного рогатого скота в регионе мало изучен. Целенаправленная работа по определению гельминтофау-нистического комплекса этих животных показала на их многообразие. У крупного рогатого скота швицкой породы всего обнаружено 23 видов гельминтов, в том числе из трематод зарегистрированы два вида: Fasciola hepatica в печени (ЭИ - 48,3%, ИИ - 59,8 экз/гол.) и Dicrocoelium lanceatum (ЭИ - 70,6%, ИИ- 270,6 экз/гол.). Из имагинальных цестод обнаружена Moniezia expansa в тонком отделе кишечника (ЭИ - 12,4%, ИИ - 9,5 экз/гол.). Из ларвальных цестод в печени и легких обнаружено Echinococcus granulosus (ЭИ - 38,7%, ИИ - 57,6 экз/гол.). Большинство обнаруженных гельминтов (15 видов) принадлежали классу нематод. Из бионематод в шейных связках выделяли Onchocerca lienalis (ЭИ - 5,2%, ИИ - 5,8 экз/гол.). Thelazia thodesi зарегистрированы в слезных протоках крупного рогатого скота швицкой породы с ЭИ, равный 8,6% при ИИ - 4,2 экз/гол. Остальные 13 видов были отнесены к геонематодам. Из их числа: Dictyocau-
lus viviparus обнаружили в легких при экстенсивном показателе 22,8% и ИИ - 24,7 экз/гол.; Capillaria bovis -в печени гибридных яков (ЭИ - 7,2%, ИИ - 6,3 экз/гол.); Trichocephalus ovis в толстом отделе кишечника с ЭИ, равный 63,2% при ИИ - 562,0 экз/гол. Все другие нематоды (10 видов) были локализованы в тонком отделе кишечника. Результаты эпизоотологического и фаунистического анализа гельминтов крупного рогатого скота швицкой породы в Кабардино-Балкарской республике отражены в таблице. Крупный рогатый скот швицкой породы интенсивно заражается стронгилятами желудочно-кишечного тракта. Экстенсинвазирован-ность составила Ostertagia ostertagi - 100% при средней ИИ - 490,3 экз/гол.; Ostertagia circumcinta (ЭИ -86,2%, ИИ - 639,8 экз/гол.); Namatodirus spathiger (Эи - 88,2%, ИИ - 252,4 экз/гол.); Trichostrongylys columbri-formis (ЭИ - 79,7%, ИИ - 241,8 экз/гол.); Trichostrongulus axei (ЭИ - 82,6%, ИИ - 325,8 экз/гол.). Экстенсивность заражения крупного рогатого скота эзофагостомами и буностомами была также высокой: Oesophagas-tomum radiatum обнаружен у 77,5% особей с интенсивностью 43,2 экз/гол., Oesophagastomum сolumbianum -у 64,3% при ИИ - 96,4 экз/гол.; Bunostomum phlebotomum у 83,7% с ИИ - 306,2 экз/гол.; Bunostomum trigono-cephalum у 69,2% животных при ИИ, равный 189,0 экз/гол. Меньшие критерии ЭИ и ИИ у крупного рогатого скота швицкой породы имели Ostertagia trifurcata (ЭИ - 34,6%, ИИ - 186 экз/гол.), Ostertagia оceidentalis (ЭИ - 12,3%, ИИ - 29,6 экз/гол.), которые позаимствованы от других пород при совместной пастьбе на одних и тех же неблагополучных пастбищах. Анализ результатов исследований показал на доминирующее положение Fasciola hepatica, Dicrocoelium lanceatum и Ech. granulosus и стронгилят желудочно-кишечного тракта в гельминтофаунистическом комплексе крупного рогатого скота. Интенсивность отдельных видов гельминтов была существенно ниже. В среднем у одной инвазированной особи находили 7-20 и более видов гельминтов. Следует отметить, что у крупного рогатого скота специфических видов гельминтов не обнаружено. Их гельминтофаунистический комплекс сформирован гельминтами специфическими для крупного рогатого скота и других пород. Впервые установлены высокие параметры зараженности швицкой породы Hemonchus placei (Эи=66,9% при колебаниях интенсивности инвазии от 41 до 485 экз/гол.). У других пород крупного рогатого скота инвазированность этим гельминтом была больше (ЭИ - 52,1%, ИИ - 94,8 экз/гол.).
Видовая структура фаунистического комплекса гельминтов крупного рогатого скота швицкой породы (по данным ПГВ 24 гол.)
Вид гельминта эи,% Интенсивность, экз.
min max М
Fasciola hepatica (L., 1758) 48,3 12 118 59,8
Dicrocoelium lanceatum (Stilles et Hassell, 1896) 70,6 37 2162 270,6
Moniezia expansa 12,4 2 14 9,5
Echinococcus granulosus 38,7 5 128 57,6
Cysticercus bovis 17,3 3 74 41,5
Dictyocaulus viviparus 22,8 5 46 24,7
Nematodirus spathiger 88,2 12 393 252,4
Trichostrongylus columbriformis 79,7 9 422 241,8
Ostertagia ostertagi 100 36 1068 490,3
Ostertagia circumcinta 86,2 54 1502 639,8
Ostertagia trifurcata 34,6 21 473 186,0
Ostertagia oceidentalis 12,3 9 81 29,6
Oesophagostomum radiatum 77,5 16 127 43,2
Oesophagastomum columbianum 64,3 35 304 96,4
Trichostrougylus axei 82,6 40 572 325,8
Capillaria bovis 7,2 3 21 6,3
Bunostomum phlebotomum 83,7 18 494 306,2
Bunostomum trigonocephalum 69,2 13 262 189,0
Hemonchus placei 66,9 41 485 318,4
Strongyloides papillosus 14,8 11 136 43,4
Onchocerca lienalis 5,2 3 19 5,8
Thelazia rhodesi 8,6 3 12 4,2
Marchallagia marchalli 31,5 21 238 116,0
Условные обозначения: ЭИ - экстенсивность инвазии; Min - минимальная интенсивность инвазии; Max - максимальная ИИ; M - средняя интенсивность инвазии; Р - достоверность.
Сравнительный анализ гельминтофауны показал на высокую экстенсинвазированность крупного рогатого скота швицкой породы разновидовым составом гельминтов. Исследованиями установлено, что у швиц-кой породы к настоящему времени в регионе образованы семь устойчивых гельминтофаунистических комплексов: "F. hepatica - D. lanceatum”, "F. hepatica - Ech. granulosus”, - F. hepatica - D. lanceatum - стронгилята желудочно-кишечного тракта”, "D. viviparus - M. expansa”, " Ech. granulosus - C. bovis ”. Среди этих паразитарных систем наиболее распространенной у крупного рогатого скота швицкой породы является "Ech. granulosus - D. lanceatum”, которая регистрируется с экстенсивностью 58,2%, при слабой, средней и сильной интенсивности инвазии.
Литература
1. Биттиров, А.М. Формирование гельминтологических комплексов животных на Центральном Кавказе и способы регуляции численности гельминтов: автореф. дис. ... д-ра биол. наук / А.М. Биттиров; ГНУ Всерос. НИИ гельминтол. - М.: ВИГИС, 1999. - 43 с.
2. Бочарова, М.М. Фауна гельминтов животных Восточного Предкавказья / М.М. Бочарова, В.И Галазов // Биология и таксономия гельминтов животных и человека. - М., 1997. - С. 97-99.
3. Котельников, Г.А. Определение и индентификация нематод семейства Strongylidae Baird (1853) / Г.А. Котельников // Мат-лы науч. конф. ВОГ. - 1983. - С. 128-130.
4. Скрябин, К.И. Метод полного гельминтологического вскрытия животного и человека / К.И. Скрябин. - М.: Изд-во МГУ, 1928. - 23 с.
---------♦'----------
УДК 619:616.995.429.1 З.В. Балкизова, С.Ш. Чилаев
ГИДАТИДНЫЙ ТЕНИОЗ ПЛОТОЯДНЫХ ЖИВОТНЫХ В ЭКОСИСТЕМАХ РЕГИОНА ЦЕНТРАЛЬНОГО КАВКАЗА
Мониторинг показал на повсеместное распространение гидатидного тении-доза собак в Кабардино-Балкарской республике. При этом за последние 5 лет отмечается тенденция роста заболеваемости в 2,5 раза. Высокие показатели гидатидного тениидоза собак обусловлено ростом численности безнадзорных собак и отсутствием санитарного просвещения населения. Авторы статьи убеждены, что 5-кратные дегельминтизации всего поголовья чабанских собак в течение года, отстрел безнадзорных собак, просветительская работа будут способствовать снижению заболеваемости собак гидатидным те-ниидозом.
Введение. Большинство авторов указывают на повсеместное распространение гидатидного тениидо-за собак в РФ. В условиях приволжских пастбищ Волгоградской области биогеография Taenia gidatigena прямо связана с высокой степенью инвазированности приотарных и безнадзорных собак в течение круглого года (ЭИ - 80-100%) [1]. В Ростовской области зараженность безнадзорных собак гидатидным тениозом колеблется в пределах 70-100% [4]. По имеющимся данным в отдельных хозяйствах Кубани зараженность безнадзорных собак Taenia gidatigena достигает 70-100% при ИИ 3-10 экз/гол. [3]. В аридной зоне Калмыкии также отмечается 100%-я инвазированность приотарных собак Taenia gidatigena [2].
Материалы и методы исследований. Нами проведено изучение распространения Taenia gidatigena у собак по принципу содержания и их хозяйственного назначения. Гельминтологическому вскрытию тонкого кишечника подвергали домашних, безнадзорных и чабанских собак в количестве 15, 43, 33 голов. Вскрытиями тонкого кишечника собак определяли экстенсивность интенсивность инвазии Taenia gidatigena. Полученные результаты обработали статистически с расчетом средних величин по компьютерной программе «Биометрия».
Результаты и обсуждение. По данным вскрытия, из 15 домашних собак оказались зараженными Taenia gidatigena 11 голов, что составило 73,3%. ЭИ у безнадзорных и чабанских собак составило соответственно 100 и 94,0%. Как видно, собаки, используемые в овцеводстве региона, по данным копрологических
