CC BY
63
Биология
Вестник Нижегородского унив ерситета им. Н.И. Лобачевск ого, 2008, № 1, с. 67-72
УДК 616-006
© 2008 г.
ДЕЙСТВИЕ хорионического гонадотропина
НА РАЗВИТИЕ ЛИМФОСАРКОМЫ ПЛИССА И СОДЕРЖАНИЕ СБ4+ МОНОНУКЛЕАРНЫХ КЛЕТОК В ПЕРИФЕРИЧЕСКОЙ КРОВИ КРЫС
Е.Н. Филатова 1, Т.В. Аксёнова 1, Ю.Ю. Хахина 1, В.В. Новиков 1, И.М. Солопаева 2, Н.Л. Иванова 2
1 Нижегородский госуниверситет им. Н.И. Лобачевского
2 Нижегородская государственная медицинская академия
Поступила в редакцию 23.01.2008
Хорионический гонадотропин принадлежит к семейству гликопротеиновых гонадотропных гормонов. Он синтезируется во многих тканях и органах млекопитающих и играет исключительную роль, стимулируя процессы размножения, развития и регенерации. Нами проводилось исследование влияния хорионического гонадотропина человека на показатели развития лимфосаркомы Плисса и содержание СБ4+ мононуклеарных клеток в крови крыс-опухоленосителей. Было выявлено комплексное воздействие гормона, приводящее к торможению развития опухоли и коррекции онкозависимого иммунодефицита. Также было выявлено разнонаправленное действие хорионического гонадотропина человека на недифференцированные клетки ткани опухоли лимфосаркомы Плисса и дифференцированные клетки нормальных тканей организма.
Ключевые слива: хорионический гонадотропин, лимфосаркома Плисса, онкозависимый иммунодефицит.
Введение
Хорионический гонадотропин человека (ХГч) - гетеродимерный гликопротеин, принадлежащий семейству гонадотропных гормонов. Этот гормон состоит из консервативной, общей для всех гормонов этого семейства а-субъединицы и уникальной ^-субъединицы, которая определяет биологическую специфичность гормона. Видовой специфичности в отношении биологического действия гормона на организм млекопитающих не выявлено [1].
Известно, что ХГч синтезируется в хорионе трофобласта и плаценты, в тканях плода [2], в клетках многих органов и тканей детей и взрослых обоих полов на протяжении всего онтогенеза [3, 4]. ХГч является главным специфическим гормоном беременности и обеспечивает нормальное развитие организма [1].
В биологическом понимании развитие - это процесс тесно взаимосвязанных количественных (рост) и качественных (дифференцировка) преобразований [5]. Получены многочисленные данные о влиянии ХГч на клеточное размножение, процессы развития клеток и организма млекопитающих, на регенерацию, в том числе и патологически измененных органов [6].
Открыта закономерность структурно-функционального обеспечения организма млекопи-
тающих хорионическим гонадотропином, которая заключается в инициации и стимуляции размножения клеток и их развития на всех этапах онтогенеза, что приводит к развитию организма в эмбриогенезе и раннем постнатальном онтогенезе, физиологической, репаративной и внутриклеточной регенерации и нормализации структуры и функции патологически измененных органов [6].
Однако биологическая роль ХГч в организме млекопитающих остается до сих пор недостаточно изученной.
К настоящему времени появились публикации о благоприятных результатах лечения некоторых злокачественных опухолей у человека препаратами ХГч и антибластическом действии этого гормона на опухолевые клетки различного происхождения [7-9]. Эти данные свидетельствует о возможном последующем применении ХГч в клинике в составе комплексной терапии злокачественных новообразований.
Целью исследования было изучение влияния ХГч на такие показатели развития лимфосарко-мы Плисса (ЛСП), как рост, митотическая активность опухолевых клеток и васкуляризация опухолевого узла. Кроме того, определяли относительное содержание СБ4+ мононуклеарных клеток в периферической крови крыс-опухоле-носителей.
Материалы и методы
В работе использовали 350 самцов белых беспородных крыс массой тела 180-200 граммов. Животные были разделены на группы по 10-12 крыс в каждой: интактные, контрольные (нелеченые крысы с ЛСП) и опытные (животные с ЛСП, получавшие ХГч). Экспериментальные группы различались по объему перевиваемой взвеси опухолевых клеток, дозе и способу введения ХГч, а также по срокам забора материала.
Измельченную и отфильтрованную взвесь клеток ЛСП перевивали животным контрольных и опытных групп подкожно в правый бок, а ХГч вводили животным опытных групп подкожно в левый бок. В исследовании использовали различные штаммы ЛСП: первый был приобретён в Онкологическом научном центре РАМН им. академика Н.Н. Блохина, а второй получен из другой лаборатории. Статистическую обработку полученных результатов проводили с использованием критерия Стьюдента.
Для изучения темпов роста ЛСП под влиянием ХГч производили замеры линейных параметров новообразования по двум осям, определяя площадь поперечного сечения опухоли в мм2. Для оценки структуры опухоли и определения пролиферативной активности опухолевых клеток использовали парафиновые гистологические препараты ЛСП толщиной в 5-6 микрон, окрашенные гематоксилином с докрашиванием эозином. Митотически делящиеся клетки ЛСП подсчитывали в 400 полях зрения препарата с преимущественным содержанием неизмененных опухолевых клеток при увеличении
Влияние ХГ ч на
90x1.5x10, митотический индекс высчитывали по стандартной формуле. Влияние опухоли и ХГ ч на содержание СБ4+ мононуклеарных клеток в периферической крови крыс оценивали методом непрямой поверхностной иммунофлуоресценции с помощью моноклональных антител ИК0-101 против СБ4 антигена крыс. В каждом препарате просчитывали 200-300 моноклональных клеток крови.
Результаты и их обсуждение
Как указано в таблице 1, в первой серии экспериментов ХГч в дозе 150 ЕД, введенный как за сутки, так и 3 суток спустя после перевивки ЛСП, тормозит её рост на 23% и 17%, соответственно, к 5-м суткам развития опухоли. Во второй серии экспериментов у лабораторных крыс, которым вводили ХГч в дозе 25 ЕД на 3-и и 7-е сутки после перевивки ЛСП, выявлено снижение размеров новообразования на 37% спустя 11 суток его развития. ХГч, введённый животным на 3-и и 7-е сутки развития опухоли в дозе 50 ЕД, тормозил рост ЛСП в течение 8 суток на 42%.
Торможение роста ЛСП под влиянием ХГч было выявлено при различной биологической активности штаммов ЛСП, использованных в двух сериях экспериментов. О биологической активности опухолевых штаммов мы судили на основании различной способности клеток разных штаммов к пролиферации. Так, митотический индекс опухолевых клеток первого штамма у контрольных крыс составил 796.4±22.3, а у второго штамма он был равен 268.3±12.4, то есть в 3 раза меньше (табл. 2).
Таблица 1
емпы роста ЛСП
Опыт Группа Площадь поперечного сечения опухоли, мм2
Время после перевивки опухоли (сутки)
4 5 6 7 8 11
« с я Ы ё 1 ч-'/ <я ~ 1 1. Контрольная н.о. 328.8±24.5 407.4±49.1 562.3±31.5 713.8±68.4 н.о.
2. 150 ЕД ХГч за сутки до перевивки н.о. 253.1±22.5* 366.8±39.7 526.3±44.4 713.8±60.2 н.о.
3. 150 ЕД ХГч на 3-и сутки после перевивки н.о. 272.2±16.2* 360.2±22.4 566.4±32.9 754.1±35.8 н.о.
И 1 и § ч~'/ <я " 1 4. Контрольная 217.0±4.1 189.3±11.9 н.о. 222.0±13.3 338.0±18.9 810.0±33.5
5. 25 ЕД ХГч на 3-и и 7-е сутки после перевивки 80.0±5.8* 108.0±5.2* н.о. 228.5±20.4 187.0±12.7* 513.0±17.4*
6. 50 ЕД ХГч на 3-и и 7-е сутки после перевивки 131.3±21.3* 77.0±13.3* н.о. 208.2±40.6 195.0±34.0* 820.0±113.3
7. 75 ЕД ХГч на 3-и и 7-е сутки после перевивки 293.0±49.4 208.5±0.9 н.о. 278.3±47.9 361.0±22.7 820.0 ±1.2
Таблица 2
Влияние ХГ ч на митотический индекс клеток ЛСП
№ опыта Группы крыс Объем взвеси клеток опухоли, мл Митотический индекс, М±т
1 (первый штамм ЛСП) 1. Контрольная 1 796.4±22.3
2. 150 ЕД ХГч за сутки до перевивки 1 349.6±20.6*
3. 150 ЕД ХГч на 3-и сутки после перевивки 1 400.8±20.7*
2 (второй штамм ЛСП) 4. Контроль 0.3 307.3±22.7
5. 150 ЕД ХГч на 3-и сутки после перевивки 0.3 137.3±15.6*
3 (второй штамм ЛСП) 6. Контроль 1 268.3±12.4
7. 150 ЕД ХГч на 3-и сутки после перевивки 1 126.8±6.4*
8. 75 ЕД ХГч на 3-и сутки после перевивки 1 70.3±7.8*
- /><0.01 - достоверные различия относительно контрольной группы опыта
Таблица 3
Влияние ХГ ч на количество СБ4+ мононуклеарных клеток в периферической крови крыс-опухоленосителей
Относительное содержание СБ4+ мононуклеарных клеток
Время после перевивки опухоли (сутки)
4 5 8 11
4. Интактная 45.8±5.6
5. Контрольная 23.8 ±4.8* 21.9 ±3.9* 35.5 ±4.4 23.8 ±1.1*
6. 25 ЕД ХГч на 3-и и 7-е сутки после перевивки 22.7 ±4.8* 25.3 ±6.5* 29.5 ±2.2* 27.7 ±3.2*
7. 50 ЕД ХГч на 3-и и 7-е сутки после перевивки 28.3 ±5.5* 21.5 ±1.8* 32.5 ±4.9 30.9 ±2.6*
8. 75 ЕД ХГч на 3-и и 7-е сутки после перевивки 37.7 ±4.1 38.6 ±2.8** 46.7 ±5.8 24.9 ±2.4*
* - р<0.05 - достоверные отличия относительно интактной группы,
- р<0.05 - достоверные отличия относительно контрольной группы, н.о. - не исследовали.
Как в первой, так и во второй серии экспериментов более выраженное влияние ХГч на рост опухолевых клеток проявляется на ранних сроках развития ЛСП, то есть на 4-е и 5-е сутки после ее перевивки. В эти сроки опухоль ещё является относительно однородным образованием, состоящим из опухолевых клеток и небольшого количества сосудов. При дальнейшем росте она сильно прорастает кровеносными сосудами, в ней появляются участки некроза и фиброзирования, что существенно изменяет её структуру.
Полученные данные позволяют заключить, что ХГч в дозах 25, 50 и 150 ЕД достоверно тормозит рост ЛСП на разных сроках развития опухоли (табл. 1).
Исследовали влияние ХГч на митотическую активность клеток ЛСП на 10-е сутки после перевивки опухоли. Под влиянием ХГч в дозе 150 ЕД, введенной однократно как за сутки, так и на 3-и сутки после перевивки ЛСП в объеме 1 мл, достоверно снижалось количество митотически делящихся опухолевых клеток в 2.3 и 2.0 раза, соответственно. Угнетающий эффект проявлялся при разном количестве введенных животным
клеток ЛСП и различной биологической активности используемых штаммов опухоли. Так, введение ХГч в дозе 150 ЕД на 3-и сутки после перевивки опухолевых клеток в объеме 0.3 мл приводило к снижению количества делящихся клеток в 2.2 раза на 10-е сутки подкожного роста второго штамма ЛСП. При перевивке того же штамма в объёме 1 мл введение животным гормона в дозе 150 ЕД стимулировало снижение митотического индекса опухолевых клеток в 2.1 раза в течение 10 суток развития опухоли. Более выраженный эффект оказывало введение ХГч в дозе 75 ЕД, осуществленное на 3-и сутки после инокуляции опухолевых клеток. В этом случае митотический индекс понижался в 3.8 раза (табл. 2).
Таким образом, показано, что ХГч в разных дозах тормозит деление опухолевых клеток ЛСП при различной биологической активности опухолевых штаммов и различных объёмах перевиваемой опухоли. При этом среди изученных нами доз доза 75 ЕД оказалась наиболее эффективной.
При морфологическом анализе гистологических препаратов контрольной группы крыс бы-
ло видно, что большинство клеток имели признаки, присущие клеткам этой опухоли, и составляли основную массу клеток в препарате. В препарате встречались очаги молодой соединительной ткани и кровеносные сосуды, иногда с небольшими кровоизлияниями (рис. 1А). В препаратах опухоли крыс, получавших ХГч, наблюдались обширные участки разрушенной опухолевой ткани с сохранением очагов некроза и фиброзирования (рис. 1Б). Также было видно большое количество кровеносных сосудов разного диаметра, имеющих поврежденную сосудистую стенку и разной величины кровоизлияния, более выраженные, чем у контрольных животных (рис. 1В). Ранее было показано, что ХГч способен тормозить образование и пролиферацию сосудов в опухоли [10]. Все эти данные указывают на способность ХГч нарушать в ЛСП процесс ангиогенеза.
Рис. 1. Микрофотографии. Увеличение х400. А - ЛСП крысы из контрольной группы через 10 суток после перевивки опухоли. Б - ЛСП крысы через 10 суток после перевивки опухоли и введения ХГч в дозе 75 ЕД. Видно разрушение ткани опухоли. В - ЛСП крысы через 10 суток после перевивки опухоли и введения ХГч в дозе 150 ЕД. В поле зрения виден кровеносный сосуд с разрушенной стенкой
Нами было обнаружено снижение количества СБ4+ мононуклеарных клеток в периферической крови крыс на 10-е сутки развития ЛСП. При первоначальном исследовании у животных контрольной группы данный показатель был в 3.7 раза ниже, чем у интактных животных (рис. 2). Введение крысам ХГч в дозе 150 ЕД на третьи сутки развития опухоли стимулировало увеличение количества СБ4 мононуклеарных клеток в их крови в 3.2 раза по сравнению с по-
казателем контрольной группы и способствовало нормализации содержания СБ4 -клеток в периферической крови крыс.
£ 45-____________________________________________
Л 5 43
I Ш
Рис. 2. Изменение относительного содержания СБ4+ мононуклеарных клеток в периферической крови крыс-опухоленосителей под влиянием ХГч: 1 - интактная группа, 2 - контрольная группа, 3 - животные, получавшие 150 ЕД ХГч на 3-и сутки после перевивки опухоли
При дальнейших исследованиях у животных, дважды получавших по 75 ЕД ХГч, была выявлена нормализация содержания СБ4+ мононуклеарных клеток в периферической крови в течение 8 суток развития ЛСП (табл. 3).
Таким образом, ХГч в дозах 150 и 75 ЕД за короткие сроки препятствовал развитию онко-зависимого иммунодефицита и способствовал нормализации состояния Т-клеточного звена иммунитета крыс-опухоленосителей с ЛСП.
Заключение
При анализе полученных данных было обнаружено разнонаправленное действие ХГч на показатели развития опухолевых клеток ЛСП и дифференцированных клеток нормальных тканей.
Выявлено неодинаковое действие ХГч на рост как на показатель увеличения массы и размеров клеток и неклеточных образований. ХГч тормозит рост ЛСП на ранних сроках развития опухоли, когда она достаточно однородна и состоит в основном из недифференцированных опухолевых клеток. С другой стороны, показано, что ХГч инициирует и стимулирует рост клеток, органов и организма млекопитающих за счет стимуляции клеточного размножения, процессов развития и регенерации [11].
Было обнаружено разнонаправленное влияние ХГч на митотическую активность дифференцированных клеток организма млекопитающих и злокачественных клеток ЛСП. В клетках ЛСП ХГч тормозит митотическую активность опухолевых клеток, но стимулирует пролиферацию и увеличение количества СБ4+ мононук-
леарных клеток в периферической крови. Кроме того, гормон стимулирует все формы и стадии клеточного размножения, в том числе и митозы, в дифференцированных клетках организма [6].
Введение ХГч оказывает влияние на состояние ангиогенеза опухоли. Показано тормозящее влияние ХГч на пролиферацию сосудов в саркоме Капоши [10]. При изучении морфологических изменений в ткани ЛСП после введения ХГч нами были обнаружены многочисленные кровоизлияния различной величины, которые были результатом повреждения сосудистой стенки. Это приводит к значительному нарушению кровоснабжения опухолевой ткани. В регенерирующей ткани ряда органов после стимуляции регенерации ХГч таких явлений не было обнаружено [6]. Кроме того, интенсивное восстановление ткани без сопутствующего усиления кровоснабжения невозможно.
Известно, что ХГч является препаратом, вы-раженно влияющим на ангиогенез. In vitro показано, что он повышает число и степень разветвления сосудов и миграцию эндотелиальных клеток, но не влияет на их пролиферацию [12]. Следовательно, способность гормона индуцировать ангиогенез в злокачественных опухолях не проявляется. Наоборот, в ткани злокачественной опухоли ХГч, тормозя пролиферацию сосудов и разрушая сосудистые стенки, оказывает на систему ангиогенеза повреждающее действие.
Таким образом, полученные сведения говорят о том, что ХГч оказывает разнонаправленное действие на некоторые процессы в нормальных тканях организма, состоящих из дифференцированных клеток, в сравнении с действием на опухолевые клетки ЛСП. ХГч путем торможения митотической активности опухолевых клеток, снижения темпов роста и торможения ангиогенеза при сохранении в опухоли некроза и фибро-зирования оказывает губительное действие на ЛСП. Однако гормон нормализует количество CD4+ мононуклеарных клеток в периферической крови крыс с ЛСП и способствует коррекции онкозависимого иммунодефицита. Эти данные свидетельствуют о возможном последующем применении ХГч в клинике в составе комплексной терапии злокачественных новообразований после более детального изучения.
Список литературы
1. Димитров Д.Я. Хориальный гонадотропин человека / Пер. с болгарского И.П. Папазова. М.: Медицина, 1979. 143 с.
2. Meyden N.N., Menlendii R.P., Leusden H.A.J. Formation of HCG in the human Fetaplacentation Unit // Europ. J. Obstet. Gynec. 1979. V. 9. № 5. P. 313-316.
3. Yoshimoto J., Wolfen A.R., Hirose F., et al. Human chorionic Gonadotropin-like Material Present in normal Human Tissues // Amer. J. Obstet. and Gynec. 1979. V. 134. № 7. P. 729-733.
4. Braunstein C.D., Camadar V., Snaminathan N., Nade M.E. Widespread Distribtion Gonadotropin-like substance in normal Tissues // J. Clin. Endocrin. 1979. V. 49. № 6. P .917-925.
5. Ожегов С.И., Шведова Н.Ю. Толковый словарь русского языка. М.: АЗЪ, 1996. 907 с.
6. Солопаева И.М. Хорионический гонадотропин в онтогенезе и онкогенезе (по материалам двух научных открытий и одной научной гипотезы): Монография. Нижний Новгород: Изд-во «РАСТР-НН», 2007. 284 с.
7. Говалло В.И., Дубровский А.В. Длительное наблюдение больных раком легкого с метастазами после операции и иммунологического лечения // Вопр. онкол. 1981. № 6. С. 69-73.
8. Lunardi-Iscandar Y., Bryant J.L., Zeman R.A. et al. Tumorigenesis and metastasis of neoplastic Kaposi’s sarcoma cell line in immunodeficient mice blocked by a human pregnacy hormone // Nature. 1995. V. 375. P. 64-68.
9. Feldman T.S., Seiler R., Chio S.W. et al. In vitro effects and clinical evaluation of a human chorionic gonadotropin preparation in acute leukemia // Leukemia. 1998. Т. 12. № 11. P. 9-55.
10. Pfeffer U., Bissacchi D., Morini M. et al. Human chorionic gonadotropin inhibits Kaposi's sarcoma angio-genesis, matrix metalloprotease activity and tumor growth // Endocrinology. 2002. № 143 (8). P. 31143121.
11. Солопаева И.М. Закономерность структурнофункционального обеспечения онтогенеза млекопитающих хорионическим гонадотропином: Открытие. Диплом № 199 от 25.12.2001 // Вестник Рос. акад. естест. наук. 2002. Т. 2, № 2. С. 56.
12. Zygmun M., Herr F., Keller-Schoenwetter S. et al. Characterization of human chorionic gonadotropin as a novel angiogenic factor // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2002. Vol. 87, № 11. P. 5290-5296.
CHORIONIC GONADOTROPIN ACTION UPON THE PLISSE LYMPHOSARCOMA GROWTH AND THE NUMBER OF CD4+MONONUCLEAR CELLS IN THE RAT PERIPHERAL BLOOD
E N. Filatova, T. V. Aksyonova, Yu. Yu. Khakhina, V. V. Novikov, I.M. Solopaeva,
N.L. Ivanova
The human chorionic gonadotropin belongs to the glycoprotein gonadotropin hormone family. It is produced in many mammal tissues and organs and is of primary importance in the processes of cell reproduction, growth and reparation. We have studied the human chorionic gonadotropin impact upon the Plisse lymphosarcoma genesis and the number of CD4+mononuclear cells in the blood of tumor carrying rats. As a result, a complex hormone action has been revealed that leads to slowing down the tumor growth and correction of the tumor dependent immunodeficiency. We have also found a differently directed action of the human chorionic gonadotropin upon undifferentiated cells of Plisse lymphosarcoma and differentiated cells of normal body tissues.
