CC BY
473
47
носчик катионных аминокислот (CAT-2B) принимает участие в транспорте L-аргинина и ADMA через плазматическую мембрану. Интересно, что ADMA и L-аргинин конкурируют за связывание с данным транспортером, что теоретически может приводить к ингибированию транспорта L-аргинина при повышении концентрации ADMA [17]. Остается неясным, участвует ли CAT-2B в транспорте ADMA in vivo, является ли данный переносчик единственной транспортной системой для ADMA, и, если нет, какие другие системы вовлечены в транспорт ADMA, и каков их относительный вклад.
Метаболизм и выведение ADMA
Наиболее важные данные, проливающие свет на метаболизм ADMA, представлены в работах Ogawa и соавт. [18]. В частности, при внутривенном введении крысам меченого ADMA было продемонстрировано следующее распределение радиоактивных молекул: 14% ADMA выводилось с мочой, 2% — с выдыхаемым углекислым газом, а оставшиеся 86% ADMA аккумулировались преимущественно в почках, печени и поджелудочной железе в форме цитруллина. В последующих работах Ogawa и соавт. идентифицировали два фермента, ответственных за гидролиз ADMA: ди-метиларгинин диметиламиногидролазу (ДДАГ) [19] и аланин-глиоксилат аминотрансферазу 2 (АГАТ-2) [20]. Активность указанных ферментов позволяет объяснить наличие всех наблюдаемых радиоактивных метаболитов ADMA, за исключением ацетилированного производного — №-ацетил-№,№-диметил^-аргинина [18, 21]. Ферментные системы, обеспечивающие ацетилирование ADMA, неизвестны, и их идентификация, равно как и оценка их вклада в метаболизм ADMA, требует дальнейших исследований.
В настоящее время установлено, что главный путь катаболизма ADMA связан с активностью ДДАГ, гидроли-зирующей приблизительно 80% ADMA с образованием цитруллина и диметиламина (рис. 2) [19]. У млекопитающих выделяют две изоформы ДДАг, ДДАг1 и ДДАг2, каждая из которых кодируется отдельным геном [22]. У человека ДДАГ1 экспрессируется преимущественно в центральной нервной системе, пищеварительной, дыхательной, выделительной системах, а также в половой системе мужчин, в то время как основными местами экспрессии ДДАг2 являются клетки крови, костный мозг, сердечно-сосудистая, пищеварительная, выделительная системы, а также половая система женщин [23-24]. Кроме того, при проведении иммуногистохимического исследования было показано, что ДДАГ2 является основной формой ДДАГ в сосудах [24]. Фармакологическое ингибирование активности ДДАг на изолированных сосудистых кольцах приводит к постепенной вазоконс-трикции, купируемой добавлением L-аргинина [25]. Это позволяет предположить, что ADMA постоянно продуцируется в сосудистом русле, причем накоплению ADMA препятствует действие ДДАГ.
Помимо этого, описан альтернативный путь метаболизма ADMA, связанный с деятельностью АГАТ-2 (рис. 2) [10, 26]. АГАТ-2 — пиридоксальфосфат-зави-симый митохондриальный фермент, экспрессируемый преимущественно в эпителиальных клетках петли Генле [27]. В результате АГАТ-2-опосредованного гидролиза
обзор
ADMA образуется а-кето-б-(^^диметилгуанидино-) валериановая кислота (ДМГВ), которая в дальнейшем превращается в у-(^^диметилгуанидино)масляную кислоту (ДМГМ) [19].
Так как нефропатии ассоциированы со значительным повышением концентрации ADMA в плазме [28], функция почек в настоящее время считается одним из главных факторов, определяющих метаболизм и уровень выведения ADMA. После инъекции меченого ADMA крысам мочевая фракция метиларгининов была представлена либо неизмененным ADMA, либо продуктами АГАТ-2-опосредованного гидролиза ADMA, а именно, ДМГВ и ДМГМ [18]. Таким образом, можно выделить два механизма почечного клиренса ADMA: прямой, если ADMA выводится в неизмененной форме, и АГАТ-2-зависимый, если ADMA метаболизируется посредством АГАТ-2 и выводится в форме ДМГВ и ДМГМ.
ADMA плазмы крови
В физиологических условиях концентрация ADMA в плазме крови колеблется от 0,3 до 1,4 мкмоль/л [29]. Masuda и соавт. рассчитали, что внутриклеточная концентрация ADMA в эндотелиальных клетках сонной артерии кролика составляет 5 мкмоль/л [30]. Faraci и соавт. показали, что добавление ADMA в концентрации 2 мкмоль/л в лизаты головного мозга достаточно для того, чтобы снизить активность NOS на 50% [5]. В совокупности указанные данные свидетельствуют, что концентрация ADMA в эндотелиальных клетках достаточна для того, чтобы ADMA мог играть важную роль в регуляции продукции оксида азота эндотелием in vivo.
Модели снижения уровня ADMA
В целях изучения физиологической роли ADMA несколькими группами исследователей были разработаны подходы, позволяющие понизить его уровень у лабораторных животных. Так, Dayoub и соавт. в опытах на трансгенных мышах показали, что гиперэкспрессия ДДАГ1 снижает уровень ADMA в плазме крови и тканях, а также увеличивает продукцию оксида азота [31]. Кроме того, у трансгенных по ДДАГ1 животных отмечалось усиление образования оксида азота в аорте и значительное ослабление вызванной ADMA эндотелиальной дисфункции в артериолах мозга [32]. Гиперэкспрессия второй изоформы ДДАГ также понижала уровень ADMA in vivo и предупреждала повышение артериального давления [33].
Существенные изменения фенотипа трансгенных по ДДАГ мышей свидетельствуют об эффективности данных моделей, демонстрирующих исключительно важную роль ADMA в метаболизме оксида азота. Однако необходимо учитывать важный недостаток трансгенных моделей, связанный с наличием у ДДАГ ряда ADMA-независимых внутриклеточных эффектов. В частности, имеются сведения о способности ДДАГ1 связываться с регулятором внутриклеточной передачи сигнала нейро-фибромином 1 (НФ1) и повышать его взаимодействие с протеинкиназой А, что ведет к усилению фосфорили-рования НФ1 [34]. Поскольку НФ1 регулирует пролиферацию и миграцию гладкомышечных клеток сосудов [35], логично предположить, что изменения сосудистого фенотипа, наблюдаемого у ДДАГ1-трансгенных мышей,
обзор
А?
могут быть частично связаны с изменением функциональной активности НФ1. Кроме того, в опытах на культуре клеток, гиперэкспрессирующих ДДАГ2, также были обнаружены изменения внутриклеточных сигнальных каскадов в эндотелиальных клетках, ведущие к активации транскрипционного фактора Sp1 и последующей гиперэкспрессии сосудистого эндотелиального фактора роста [36]. Нарушения этих и, возможно, других внутриклеточных путей передачи сигнала могут лежать в основе эффектов гиперэкспрессии ДДАг, не зависящих от ADMA.
Использование мышей, трансгенных по АГАТ-2, также может в перспективе позволить изучить эффекты снижения уровня ADMA на сосудистый тонус. Преимуществом данного подхода является отсутствие дополнительных эффектов ДДАг на внутриклеточные сигнальные пути.
Модели повышения уровня ADMA
В 1992 году Vallance и соавт. в пионерской работе показали, что внутривенная болюсная инфузия ADMA вызывает эндотелиальную дисфункцию плечевой артерии у здоровых волонтеров [1]. В дальнейшем Kielstein и соавт. продемонстрировали, что внутривенное введение ADMA у людей вызывает снижение кровотока в почках с одновременным повышением сопротивления сосудистой сети почки, что вызывало задержку натрия и повышение артериального давления [37]. Той же группой авторов на здоровых лицах было показано, что инфузия ADMA приводит к снижению перфузии головного мозга и увеличению ригидности мозговых артерий [38]. Во всех указанных исследованиях повышение концентрации ADMA в плазме крови было ассоциировано со снижением уровня оксида азота, что позволило авторам постулировать основополагающую роль ADMA в регуляции активности NOS. Однако Suda и соавт. предположили, что длительная инфузия ADMA может вызывать повреждение сосудов за счет механизмов, не зависящих от оксида азота. Авторами было показано, что введение ADMA в течение 4-х недель вызывало поражение мелких сосудов коронарного русла у мышей, не имеющих эндо-телиальной изоформы NOS (eNOS). Повреждение сосудистой стенки при этом предупреждалось назначением ингибиторов ангиотензин-превращающего фермента (АПФ) или блокаторов ангиотензиновых рецепторов I типа [39], что позволило авторам выдвинуть гипотезу о реализации повреждающих эффектов ADMA через активацию ренин-ангиотензиновой системы.
Другой подход, используемый для увеличения уровня ADMA в эксперименте, базируется на снижении экспрессии ДДАГ. В 2007 году Vallance и соавт. продемонстрировали, что снижение экспрессии фермента приводит к увеличению уровня ADMA в плазме и впоследствии к эндотелиальной дисфункции [40]. Кроме того, используя технологию выключения малой интерферирующей РНК, базирующуюся на избирательной блокаде гена, Wang и соавт. обнаружили, что прекращение функционирования ДДАГ2 вызывает эндо-телиальную дисфункцию артериол брыжейки у мышей [24]. Таким образом, снижение активности любой из изоформ ДДАГ вызывает эндотелиальную дисфункцию, однако, как и при гиперэкспрессии ДДАГ, сложно опре-
делить, в какой степени наблюдаемый фенотип связан с увеличением уровня ADMA, а в какой — с ADMA-не-зависимыми эффектами ДДАГ. Комбинированные методы увеличения уровня ADMA (например, понижение активности АГАТ-2 или увеличение продукции ADMA) могут помочь прояснить причинную роль ADMA в ге-незе сосудистых нарушений.
Уровень ADMA при сердечно-сосудистых заболеваниях
Повышенный уровень ADMA был обнаружен при самых различных сердечно-сосудистых заболеваниях, включая ишемическую болезнь сердца (ИБС) (табл. 1). В настоящее время ИБС является ведущей причиной смертности в промышленно развитых странах. В соответствии с данными последних исследований, повышенный уровень ADMA в плазме наблюдался в сочетании с такими факторами риска ИБС, как гиперхолестерине-мия [41], гипертензия [42-43], сахарный диабет тип 2 и инсулинорезистентность [44-45], гипертриглицериде-мия [46], гипергомоцистеинемия [47, 48], хроническая почечная недостаточность [43, 49] (табл. 1).
Таблица 1
КЛИНИЧЕСКИЕ СОСТОЯНИЯ, АССОЦИИРОВАННЫЕ
С ПОВЫШЕНИЕМ УРОВНЯ АЭМА В ПЛАЗМЕ КРОВИ
Заболевание или фактор риска Ссылка
Атеросклероз [78]
Диабет тип 2 [441
Эссенциальная гипертензия [421
Сердечная недостаточность [791
Инсульт [80]
Гиперхолестеринемия [411
Периферическая артериальная болезнь [811
Преэклампсия [82]
Гипергомоцистеинемия [83; 84]
Почечная недостаточность [11
Легочная гипертензия [851
Тромботическая микроангиопатия [861
Увеличение концентрации ADMA в плазме крови было выявлено у пациентов с инфарктом миокарда в сравнении с контрольной группой [47]; несколько клинических исследований выявили прямую зависимость смертности после перенесенного инфаркта миокарда от концентрации ADMA в плазме крови независимо от других традиционных факторов риска [49-54]. В одном из проспективных исследований было обнаружено, что уровень ADMA в плазме крови был повышен у пациентов с ИБС по сравнению со здоровыми лицами, причем нестабильная стенокардия сопровождалась значительно более выраженным повышением уровня ADMA, чем стабильная стенокардия [55]. The Ludwigshafen Risk and Cardiovascular Health Study, крупное проспективное исследование со средним периодом наблюдения 5,5 лет документировало, что концентрация ADMA в плазме крови связана со смертностью от сердечно-сосудистых и других причин у пациентов со стабильной и нестабильной стенокардией независимо от известных факторов риска [56]. В другом исследовании с периодом наблюдения 24 года Leong и соавт. обнаружили ассоциацию увеличенного уровня ADMA в крови с
обзор
AIT
таким образом, все больше экспериментальных данных свидетельствуют о том, что гиперэкспрессия ферментов, разрушающих ADMA, приводит к понижению уровня ADMA в плазме крови и предотвращению сосудистой дисфункции, однако требуется больше данных для того, чтобы определить терапевтическую и прогностическую эффективность снижения уровня ADMA в клинической практике.
Взаимодействие между ADMA и лекарственными препаратами, используемыми в лечении сердечно-сосудистых заболеваний
Существует несколько классов сердечно-сосудистых препаратов, способных усиливать образование оксида азота и оптимизировать функцию эндотелия у пациентов с сердечно-сосудистыми заболеваниями. Снижение уровня ADMA в плазме крови наблюдалось при применении ингибиторов АПФ [67-68], блокаторов ангиотензиновых рецепторов [67] и некоторых перораль-ных сахароснижающих препаратов [45, 69]. Несмотря на значимое снижение уровня ADMA в плазме крови (30%), достаточное для воздействия на сосудистую функцию, точный механизм влияния этих препаратов на уровень ADMA остается неисследованным [70]. Также неясно, в какой степени снижение концентрации ADMA приводит к улучшению эндотелиальной функции, наблюдаемой при назначении указанных групп препаратов.
Не ясно взаимодействие между ADMA и статинами. Хотя большинство исследований не показали эффектов статинов на уровень ADMA в крови, несмотря на значительное улучшение эндотелиальной функции [71-73], имеются данные, что ADMA может изменять сосудистый ответ на статины. Было показано, что правастатин и сим-вастатин улучшают параметры сосудистого тонуса у пациентов с низким уровнем ADMA, в то время как пациенты с высоким уровнем ADMA являются более резистентными к воздействию статинов [74-75]. Необходимо проведение дополнительных исследований, посвященных взаимодействию АDMА и лекарственных препаратов, а также влиянию уровня ADMA на эффективность терапии сердечно-сосудистых заболеваний.
Перспективы дальнейших исследований
ADMA — новый фактор риска сердечно-сосудистых заболеваний, ассоциированный со спектром клинических ситуаций, характеризующихся нарушением продукции оксида азота. Несмотря на клинические и экспериментальные доказательства взаимосвязи увеличения уровня ADMA в плазме крови с эндотелиальной дисфункцией и риском развития сердечно-сосудистых осложнений, причинная роль ADMA в патогенезе сердечно-сосудистых заболеваний все еще не доказана. Для того чтобы ответить на вопрос, является ли ADMA маркером сердечно-сосудистых заболеваний или их этиологическим фактором, требуется всесторонний биохимический, генетический и фармакологический подход.
В последние годы было получено большое количество данных относительно роли ДДАГ в метаболизме ADMA. Стало известно, что почки являются основным местом метаболизма и выведения ADMA. Хорошо известно, что хронические нефропатии сопровождаются повышенным риском развития сердечно-сосудистых
осложнений, важную роль в развитии которых может играть подъем уровня ADMA. Не вызывает сомнений, что должно быть выполнено больше работ, проливающих свет на значение ArAT-2-зависимого гидролиза ADMA, который происходит только в почках. Большинство работ было сконцентрировано только на ADMA, мало внимания уделялось NMMA и SDMA. Подобно ADMA, NMMA может функционировать как эндогенный ингибитор NOS. В отличие от них, SDMA не является ингибитором NOS, однако может косвенно снижать продукцию оксида азота посредством конкурентного взаимодействия с клеточным L-аргинином. Поэтому требуется больше исследований для того, чтобы определить патофизиологическую роль NMMA и SDMA в развитии сердечно-сосудистых заболеваний, факторы, регулирующие продукцию ADMA и его аналогов, а также экспрессию и функционирование ПAMT и катаболизм метилированных протеинов.
Относительный вклад ADMA в патогенез сердечнососудистых заболеваний может быть оценен в комбинированных экспериментально-клинических исследованиях посредством определения эффекта терапии, направленной на снижение уровня ADMA, и оценки результатов данной терапии на течение и прогноз заболевания. Разработан ряд подходов, позволяющих снизить уровень ADMA в эксперименте, однако механизмы заболевания у людей могут существенно отличаться от таковых у животных. Этиологическая роль ADMA в сердечно-сосудистых заболеваниях может быть убедительно доказана после разработки специфической терапии, направленной на снижение уровня ADMA. По этой причине разработка препаратов, снижающих уровень ADMA, является в настоящее время одной из наиболее приоритетных задач. Mногообещающим подходом является усиление активности ДДAГ1 или ДДAГ2 [70, 76]. В то же время известно, что гиперэкспрессия ДДAГ может стимулировать ангиогенез и опухолевый рост, что требует особенно тщательного анализа безопасности данного подхода [77]. Фармакологическое ингибирование ПAMT представляет собой другую возможность разработки препаратов, снижающих уровень ADMA. При выяснении патогенетических механизмов заболеваний, так или иначе связанных с изменениями метаболизма ADMA, эти и другие стратегии могут привести к появлению новых диагностических и терапевтических подходов, которые помогут бороться с сердечно-сосудистыми заболеваниями, которые сохраняют лидирующую позицию среди причин смертности в большинстве стран мира.
Литература
1. Vallance P., Leone A., Calver A., Collier J., and Moncada S. Accumulation of an endogenous inhibitor of nitric oxide synthesis in chronic renal failure. Lancet 1992;339:572-575.
2. Boger R.H., Cooke J.P., and Vallance P. ADMA: an emerging cardiovascular risk factor. Vasc Med 2005;l0 Suppl 1:S1-S2.
3. Creager M.A., Gallagher S.J., Girerd X.J., Coleman S.M., Dzau V.J., and Cooke J.P. L-Arginine improves endothelium-dependent vasodilation in hypercholesterolemic humans. J Clin Invest 1992;90:1248-1253.
4. Boger R.H., Bode-Boger S.M., Mugge A., Kienke S., Brandes R., Dwenger A., and Frolich J.C. Supplementation of hypercholesterolaemic rabbits with L-arginine reduces the vascular release of superoxide anions and restores NO production. Atherosclerosis 1995;117:273-284.
обзор
Гг
5. Boger R.H. Asymmetric dimethylarginine, an endogenous inhibitor of nitric oxide synthase, explains the „L-arginine paradox" and acts as a novel cardiovascular risk factor. J Nutr 2004;134:2842S-2847S.
6. Pollock J.S., Forstermann U., Mitchell J.A., Warner T.D., Schmidt H.H., Nakane M., and Murad F. Purification and characterization of particulate endothelium-derived relaxing factor synthase from cultured and native bovine aortic endothelial cells. Proc Natl Acad Sci U. S. A. 1991;88:10480-10484.
7. Leiper J., and Vallance P. Biological significance of endogenous methylarginines that inhibit nitric oxide synthases. Cardiovasc Res 1999;43:542-548.
8. Rees D.D., Palmer R.M., Schulz R., Hodson H.F., and Moncada S. Characterization of three inhibitors of endothelial nitric oxide synthase in vitro and in vivo. Br J Pharmacol 1990;101:746-752.
9. Faraci F.M., Brian J.E.J., and Heistad D.D. Response of cerebral blood vessels to an endogenous inhibitor of nitric oxide synthase. Am J Physiol 1995;269:H1522-H1527.
10. Ueno S., Morino H., Sano A., and Kakimoto Y. Purification and characterization of D-3-aminoisobutyrate-pyruvate aminotransferase from rat liver. Biochim Biophys Acta 1990;1033:169-175.
11. Nonaka S., Tsunoda M., Imai K., and Funatsu T. Highperformance liquid chromatographic assay of N(G)-monomethyl-L-arginine, N(G),N(G)-dimethyl-L-arginine, and N(G),N(G)'-dimethyl-L-arginine using 4-fluoro-7-nitro-2, 1,3-benzoxadiazole as a fluorescent reagent. J Chromatogr 2005;A 1066:41-45.
12. Ueno S., Sano A., Kotani K., Kondoh K., and Kakimoto Y. Distribution of free methylarginines in rat tissues and in the bovine brain. J Neurochem 1992;59:2012-2016.
13. Anthony S., Leiper J., and Vallance P. Endogenous production of nitric oxide synthase inhibitors. Vasc Med 2005;10 Suppl 1:S3-S9.
14. Ghosh S.K., Paik W.K., and Kim S. Purification and molecular identification of two protein methylases I from calf brain. Myelin basic protein — and histone-specific enzyme. J Biol Chem 1988;263:19024-19033.
15. Rawal N., Rajpurohit R., Paik W.K., and Kim S. Purification and characterization of S-adenosylmethionine-protein-arginine N-methyltransferase from rat liver. Biochem J 1994;300:483-489.
16. Tang J., Frankel A., Cook R.J., Kim S., Paik W.K., Williams K.R., Clarke S., and Herschman H.R. PRMT1 is the predominant type I protein arginine methyltransferase in mammalian cells. J Biol Chem 2000;275:7723-7730.
17. Closs E.I., Basha F.Z., Habermeier A., and Forstermann U. Interference of L-arginine analogues with L-arginine transport mediated by the y+ carrier hCAT-2B. Nitric Oxide 1997;1:65-73.
18. Ogawa T., Kimoto M., Watanabe H., and Sasaoka K. Metabolism of NG,NG-and NG,N'G-dimethylarginine in rats. Arch Biochem Biophys 1987;252:526-537.
19. Ogawa T., Kimoto M., and Sasaoka K. Purification and properties of a new enzyme, NG,NG-dimethylarginine dimethylaminohydrolase, from rat kidney. J Biol Chem 1989;264:10205-10209.
20. Ogawa T., Kimoto M., and Sasaoka K. Dimethylarginine: pyruvate aminotransferase in rats. Purification, properties, and identity with alanine:glyoxylate aminotransferase 2. J Biol Chem 1990;265:20938-20945.
21. Sasaoka K., Ogawa T., and Kimoto M. N-Acetyl conjugates of basic amino acids newly identified in rat urine. Arch Biochem Biophys 1982;219:454-458.
22. Leiper J.M., Santa M., Chubb A., MacAllister R.J., Charles I.G., Whitley G.S., and Vallance P. Identification of two human dimethylarginine dimethylaminohydrolases with distinct tissue distributions and homology with microbial arginine deiminases. Biochem J 1999;343 Pt 1:209-214.
23. Tran C.T., Fox M.F., Vallance P., and Leiper J.M. Chromosomal localization, gene structure, and expression pattern
of DDAH1: comparison with DDAH2 and implications for evolutionary origins. Genomics 2000;68:101-105.
24. Wang D., Gill P.S., Chabrashvili T., Onozato M.L., Raggio J., Mendonca M., et al. Isoform-specific regulation by N(G),N(G)-dimethylarginine dimethylaminohydrolase of rat serum asymmetric dimethylarginine and vascular endothelium-derived relaxing factor/NO. Circ Res 2007;101:627-635.
25. MacAllister R.J., Parry H., Kimoto M., Ogawa T., Russell R.J., Hodson H., et al. Regulation of nitric oxide synthesis by dimethylarginine dimethylaminohydrolase. Br J Pharmacol 1996;119:1533-1540.
26. Kontani Y., Kaneko M., Kikugawa M., Fujimoto S., and Tamaki N. Identity of D-3-aminoisobutyrate-pyruvate aminotransferase with alanine-glyoxylate aminotransferase 2. Biochim Biophys Acta 1993;1156:161-166.
27. Lee I.S., Nishikimi M., Inoue M., Muragaki Y., and Ooshima A. Specific expression of alanine-glyoxylate aminotransferase 2 in the epithelial cells of Henle's loop. Nephron 1999;83:184-185.
28. Teerlink T. ADMA metabolism and clearance. Vasc Med 2005;10 Suppl 1:S73-S81.
29. Jacobi J., and Tsao P.S. Asymmetrical dimethylarginine in renal disease: limits of variation or variation limits? A systematic review. Am J Nephrol 2008;28:224-237.
30. Masuda H., Goto M., Tamaoki S., and Azuma H. Accelerated intimal hyperplasia and increased endogenous inhibitors for NO synthesis in rabbits with alloxan-induced hyperglycaemia. Br J Pharmacol 1999;126:211-218.
31. Dayoub H., Achan V., Adimoolam S.,Jacobi J., Stuehlinger M. C., Wang B.Y., et al. Dimethylarginine dimethylaminohydrolase regulates nitric oxide synthesis: genetic and physiological evidence. Circulation 2003;108:3042-3047.
32. Dayoub H., Rodionov R., Lynch C., Cooke J.P., Arning E., Bottiglieri T., et al. Overexpression of dimethylarginine dimethylaminohydrolase inhibits asymmetric dimethylarginine-induced endothelial dysfunction in the cerebral circulation. Stroke 2008;39:180-184.
33. Hasegawa K., Wakino S., Tatematsu S., Yoshioka K., Hom-ma K., Sugano N., et al. Role of asymmetric dimethylarginine in vascular injury in transgenic mice overexpressing dimethylarginie dimethylaminohydrolase 2. Circ Res 2007;101:e2-10.
34. Tokuo H., Yunoue S., Feng L., Kimoto M., Tsuji H., Ono T., et al. Phosphorylation of neurofibromin by cAMP-dependent protein kinase is regulated via a cellular association of N(G),N(G)-dimethylarginine dimethylaminohydrolase. FEBS Lett 2001;494:48-53.
35. Li F., Munchhof A.M., White H.A., Mead L.E., Krier T. R., Fenoglio A., et al. Neurofibromin is a novel regulator of RAS-induced signals in primary vascular smooth muscle cells. Hum Mol Genet 2006;15:1921-1930.
36. Hasegawa K., Wakino S., Tanaka T., Kimoto M., Tatematsu S., Kanda T., et al. Dimethylarginine dimethylaminohydrolase 2 increases vascular endothelial growth factor expression through Sp1 transcription factor in endothelial cells. Arterioscler Thromb Vasc Biol 2006;26:1488-1494.
37. Kielstein J.T., Impraim B., Simmel S., Bode-Boger S.M., Tsikas D., Frolich J.C., et al. Cardiovascular effects of systemic nitric oxide synthase inhibition with asymmetrical dimethylarginine in humans. Circulation 2004;109:172-177.
38. Kielstein J.T., Donnerstag F., Gasper S., Menne J., Kielstein A., Martens-Lobenhoffer J., et al. ADMA increases arterial stiffness and decreases cerebral blood flow in humans. Stroke 2006;37:2024-2029.
39. Suda O., Tsutsui M., Morishita T., Tasaki H., Ueno S., Nakata S., et al. Asymmetric dimethylarginine produces vascular lesions in endothelial nitric oxide synthase-deficient mice: involvement of renin-angiotensin system and oxidative stress. Arterioscler Thromb Vasc Biol 2004;24:1682-1688.
обзор
AT
40. Leiper J., Nandi M., Torondel B., Murray-Rust J., Malaki M., O'Hara B., et al. Disruption of methylarginine metabolism impairs vascular homeostasis. Nat Med 2007;13:198-203.
41. Böger R.H., Bode-Böger S.M., Szuba A., Tsao P.S., Chan J. R., Tangphao O., et al. Asymmetric dimethylarginine (ADMA): A novel risk factor for endothelial dysfunction — its role in hypercholesterolemia. Circulation 1998;98:1842-1847.
42. Surdacki A., Nowicki M., Sandmann J., Tsikas D., Boeger R. H., Bode-Boeger S.M., et al. Reduced urinary excretion of nitric oxide metabolites and increased plasma levels of asymmetric dimethylarginine in men with essential hypertension. J Cardiovasc Pharmacol 1999;33:652-658.
43. Fleck C., Schweitzer F., Karge E., Busch M., and Stein G. Serum concentrations of asymmetric (ADMA) and symmetric (SDMA) dimethylarginine in patients with chronic kidney diseases. Clin Chim Acta 2003;336:1-12.
44. Abbasi F., Asagmi T., Cooke J.P., Lamendola C., McLaughlin T., Reaven G.M., et al. Plasma concentrations of asymmetric dimethylarginine are increased in patients with type 2 diabetes mellitus. Am J Cardiol 2001;88:1201-1203.
45. Stuhlinger M.C., Abbasi F., Chu J.W., Lamendola C., McLaughlin T.L., Cooke J.P., et al. Relationship between insulin resistance and an endogenous nitric oxide synthase inhibitor. JAMA 2002;287:1420-1426.
46. Lundman P., Eriksson M.J., Stuhlinger M., Cooke J.P., Hamsten A., and Tornvall P. Mild-to-moderate hypertriglyceridemia in young men is associated with endothelial dysfunction and increased plasma concentrations of asymmetric dimethylarginine. J Am Coll Cardiol 2001;38:111-116.
47. Korandji C., Zeller M., Guilland J.C., Vergely C., Sicard P., Duvillard L., et al. Asymmetric dimethylarginine (ADMA) and hyperhomocysteinemia in patients with acute myocardial infarction. Clin Biochem 2007;40:66-72.
48. Rodionov R.N., and Lentz S.R. The homocysteine paradox. Arterioscler Thromb Vasc Biol 2008;28:1031-1033.
49. Zoccali C., Bode-Boger S., Mallamaci F., Benedetto F., Tripepi G., Malatino L., et al. Plasma concentration of asymmetrical dimethylarginine and mortality in patients with end-stage renal disease: a prospective study. Lancet 2001;358:2113-2117.
50. Zeller M., Korandji C., Guilland J.C., Sicard P., Vergely C., Lorgis L., et al. Impact of asymmetric dimethylarginine on mortality after acute myocardial infarction. Arterioscler Thromb Vasc Biol 2008;28:954-960.
51. Schnabel R., Blankenberg S., Lubos E., Lackner K. J., Rupprecht H.J., Espinola-Klein C., et al. Asymmetric dimethylarginine and the risk of cardiovascular events and death in patients with coronary artery disease: results from the AtheroGene Study. Circ Res 2005;97:e53-e59.
52. Duckelmann C., Mittermayer F., Haider D.G., Altenber-ger J., Eichinger J., and Wolzt M. Asymmetric dimethylarginine enhances cardiovascular risk prediction in patients with chronic heart failure. Arterioscler Thromb Vasc Biol 2007;27:2037-2042.
53. Krzyzanowska K., Mittermayer F., Wolzt M., and Schernthaner G. Asymmetric dimethylarginine predicts cardiovascular events in patients with type 2 diabetes. Diabetes Care 2007;30:1834-1839.
54. Schulze F., Lenzen H., Hanefeld C., Bartling A., Osterziel K. J., Goudeva L., et al. Asymmetric dimethylarginine is an independent risk factor for coronary heart disease: results from the multicenter Coronary Artery Risk Determination investigating the Influence of ADMA Concentration (CARDIAC) study. Am Heart J 2006;152:493-498.
55. Krempl T.K., Maas R., Sydow K., Meinertz T., Boger R.H., and Kahler J. Elevation of asymmetric dimethylarginine in patients with unstable angina and recurrent cardiovascular events. Eur Heart J 2005;26:1846-1851.
56. Meinitzer A., Seelhorst U., Wellnitz B., Halwachs-Bau-mann G., Boehm B.O., Winkelmann B.R., et al. Asymmetrical
dimethylarginine independently predicts total and cardiovascular mortality in individuals with angiographic coronary artery disease (the Ludwigshafen Risk and Cardiovascular Health study). Clin Chem 2007;53:273-283.
57. Leong T., Zylberstein D., Graham I., Lissner L., Ward D., Fogarty J., et al. Asymmetric dimethylarginine independently predicts fatal and nonfatal myocardial infarction and stroke in women: 24-year follow-up of the population study of women in Gothenburg. Arterioscler Thromb Vasc Biol 2008;28:961-967.
58. Bae S.W., Stuhlinger M.C., Yoo H.S., Yu K.H., Park H.K., Choi B.Y., et al. Plasma asymmetric dimethylarginine concentrations in newly diagnosed patients with acute myocardial infarction or unstable angina pectoris during two weeks of medical treatment. Am J Cardiol 2005;95:729-733.
59. Yada T., Kaji S., Akasaka T., Mochizuki S., Ogasawara Y., Tanemoto K., et al. Changes of asymmetric dimethylarginine, nitric oxide, tetrahydrobiopterin, and oxidative stress in patients with acute myocardial infarction by medical treatments. Clin Hemorheol Microcirc 2007;37:269-276.
60. Stuhlinger M.C., Tsao P.S., Her J.H., Kimoto M., Balint R. F., and Cooke J.P. Homocysteine impairs the nitric oxide synthase pathway: role of asymmetric dimethylarginine. Circulation 2001;104:2569-2575.
61. Dayal S., Rodionov R.N., Arning E., Bottiglieri T., Kimoto M., Murry D.J., et al. Tissue-specific Downregulation of Dimethylarginine Dimethylaminohydrolase in Hyperhomo-cysteinemia. Am J Physiol Heart Circ Physiol 2008;295(2): H816-25.
62. Leiper J.M., and Vallance P. The synthesis and metabolism of asymmetric dimethylarginine (ADMA). Eur J Clin Pharmacol 2006;62 Suppl 13:33-38.
63. Boger R.H., Sydow K., Borlak J., Thum T., Lenzen H., Schubert B., et al. LDL cholesterol upregulates synthesis of asymmetrical dimethylarginine in human endothelial cells: involvement of S-adenosylmethionine-dependent methyltransferases. Circ Res 2000;87:99-105.
64. Li D., Xia K., Li N.S., Luo D., Wang S., Jiang D.J., et al. Reduction of asymmetric dimethylarginine involved in the cardioprotective effect of losartan in spontaneously hypertensive rats. Can J Physiol Pharmacol 2007;85:783-789.
65. Di N.P., Taccardi A.A., Grilli A., De Lutiis M.A., Barsotti A., Felaco M., and De C.R. Chronic treatment with rosuvastatin modulates nitric oxide synthase expression and reduces ischemia-reperfusion injury in rat hearts. Cardiovasc Res 2005;66:462-471.
66. Stuhlinger M.C., Conci E., Haubner B.J., Stocker E.M., Schwaighofer J., Cooke J.P., et al. Asymmetric dimethyl L-arginine (ADMA) is a critical regulator of myocardial reperfusion injury. Cardiovasc Res 2007;75:417-425.
67. Delles C., Schneider M.P., John S., Gekle M., and Schmieder R.E. Angiotensin converting enzyme inhibition and angiotensin II AT1-receptor blockade reduce the levels of asymmetrical N(G), N(G)-dimethylarginine in human essential hypertension. Am J Hypertens 2002;15:590-593.
68. Chen J.W., Hsu N.W., Wu T.C., Lin S.J., and Chang M. S. Long-term angiotensin-converting enzyme inhibition reduces plasma asymmetric dimethylarginine and improves endothelial nitric oxide bioavailability and coronary microvascular function in patients with syndrome X. Am J Cardiol 2002;90:974-982.
69. Asagami T., Abbasi F., Stuelinger M., Lamendola C., McLaughlin T., Cooke J.P., et al. Metformin treatment lowers asymmetric dimethylarginine concentrations in patients with type 2 diabetes. Metabolism 2002;51:843-846.
70. Maas R. Pharmacotherapies and their influence on asymmetric dimethylargine (ADMA). Vasc Med 2005;10 Suppl 1:S49-S57.
71. Janatuinen T., Laaksonen R., Vesalainen R., Raitakari O., Lehtimaki T., Nuutila P., and Knuuti J. Effect of lipid-lowering
обзор
AT
therapy with pravastatin on myocardial blood flow in young mildly hypercholesterolemic adults. J Cardiovasc Pharmacol 2001;38:561-568.
72. Paiva H., Laakso J., Lehtimaki T., Isomustajarvi M., Ruokonen I., and Laaksonen R. Effect of high-dose statin treatment on plasma concentrations of endogenous nitric oxide synthase inhibitors. J Cardiovasc Pharmacol 2003;41:219-222.
73. Panichi V., Mantuano E., Paoletti S., Santi S., Manca R.G., Cutrupi S., et al. Effect of simvastatin on plasma asymmetric dimethylarginine concentration in patients with chronic kidney disease. J Nephrol 2008;21:38-44.
74. Janatuinen T., Laakso J., Laaksonen R., Vesalainen R., Nuutila P., Lehtimaki T., et al. Plasma asymmetric dimethylarginine modifies the effect of pravastatin on myocardial blood flow in young adults. Vasc Med 2003;8:185-189.
75. Boger G.I., Rudolph T.K., Maas R., Schwedhelm E., Dumbadze E., Bierend A., et al. Asymmetric dimethylarginine determines the improvement of endothelium-dependent vasodilation by simvastatin: Effect of combination with oral L-arginine. J Am Coll Cardiol 2007;49:2274-2282.
76. Singh J.P. Dimethylarginine dimethylaminohydrolase: a new therapeutic target for the modulation of nitric oxide and angiogenesis. Curr. Opin. Investig. Drugs 2007;8:736-741.
77. Kostourou V., Robinson S.P., Cartwright J.E., and Whitley G.S. Dimethylarginine dimethylaminohydrolase I enhances tumour growth and angiogenesis. Br J Cancer 2002;87:673-680.
78. Miyazaki H., Matsuoka H., Cooke J.P., Usui M., Ueda S., Okuda S., and Imaizumi T. Endogenous nitric oxide synthase inhibitor: a novel marker of atherosclerosis. Circulation 1999;99:1141-1146.
79. Usui M., Matsuoka H., Miyazaki H., Ueda S., Okuda S., and Imaizumi T. Increased endogenous nitric oxide synthase inhibitor in patients with congestive heart failure. Life Sci 1998;62:2425-2430.
80. Yoo J.H., and Lee S.C. Elevated levels of plasma homocyst(e)ine and asymmetric dimethylarginine in elderly patients with stroke. Atherosclerosis 2001;158:425-430.
81. Boger R.H., Bode-Boger S.M., Thiele W., Junker W., Alexander K., and Frolich J.C. Biochemical evidence for impaired nitric oxide synthesis in patients with peripheral arterial occlusive disease [see comments]. Circulation 1997;95:2068-2074.
82. Pettersson A., Hedner T., and Milsom I. Increased circulating concentrations of asymmetric dimethyl arginine (ADMA), an endogenous inhibitor of nitric oxide synthesis, in preeclampsia. Acta Obstet Gynecol Scand 1998;77:808-813.
83. Boger R.H., Bode-Boger S.M., Sydow K., Heistad D.D., and Lentz S.R. Plasma concentration of asymmetric dimethylarginine, an endogenous inhibitor of nitric oxide synthase, is elevated in monkeys with hyperhomocyst(e)inemia or hypercholesterolemia. Arterioscl Thromb Vasc Biol 2000;20:1557-1564.
84. Boger R.H., Lentz S.R., Bode-Boger S.M., Knapp H.R., and Haynes W.G. Elevation of asymmetric dimethylarginine may mediate endothelial dysfunction during experimental hyperhomocyst(e)inemia in humans. Clin Sci 2001;100:161-167.
85. Gorenflo M., Zheng C., Werle E., Fiehn W., and Ulmer H.E. Plasma levels of asymmetrical dimethyl-L-arginine in patients with congenital heart disease and pulmonary hypertension. J Cardiovasc Pharmacol 2001;37:489-492.
86. Herlitz H., Petersson A., Sigstrom L., Wennmalm A., and Westberg G. The arginine-nitric oxide pathway in thrombotic microangiopathy. Scand J Urol Nephrol 1997;31:477-479.
