CC BY
100
УДК 576.8.095.38 + 581.557(575)
© Д. в. Залетаев, в. в. Огрельников, т. в. кекеева, в. в. Землякова, Е. Б. Кузнецова, Д. С. Михайленко
Медико-генетический научный центр РАМН, Москва
АНОМАЛИИ МЕТИЛИРОВАНИЯ В ПРОЦЕССАх КАНЦЕРОГЕНЕЗА: ПОИСК НОВЫх ГЕНОВ, РАЗРАБОТКА МЕТОДОВ И СИСТЕМ ДНК-МАРКЕРОВ ДЛЯ ДИАГНОСТИКИ
роль МЕТИЛИРОВАНИЯ ДНК В КАНЦЕРОГЕНЕЗЕ
& в статье рассматриваются эпигенетические дефекты, происходящие в опухолевых клетках. Аномальное метилирование СрG-островков в промоторных и регуляторных районах генов приводит к их функциональной инактивации, подобно структурной делеции. Гены-супрессоры опухолевого роста инактивируются таким образом практически во всех типах злокачественных опухолей. Опухоли различаются по спектру генов и частотам метилирования. Аномальное метилирование генов-супрессоров появляется на самых ранних этапах канцерогенеза и позволяет осуществлять пресимптоматическую и неинвазивную диагностику злокачественных новообразований.
& Ключевые слова: гены-супрессоры; метилирование ДНК; рак молочной железы; рак предстательной железы; рак почки; интраэпителиальная неоплазия шейки матки.
Поступила в редакцию 15.09.2010. Принята к публикации 28.07.201 1.
В настоящее время установлено, что не только генетические факторы могут определять развитие патологического процесса, но и, так называемые, эпигенетические факторы — наследственные и ненаследственные изменения в экспрессии конкретного гена без каких-либо соответствующих структурных изменений в его нуклеотидной последовательности. В качестве причин возникновения онкологических заболеваний большая роль отводится эпигенетической регуляции активности генов, основанной на аномальном метилировании/деметилировании (рис. 1). Во всех без исключения исследованных неопластических клетках был показан дисбаланс метилирования. Сочетанно с гипометилированием генома происходит аномальное метилирование CpG-островков в промоторных районах генов, участвующих в регуляции клеточного цикла, что приводит к их полной инактивации. Так же метилируются гены, участвующие в апоптозе, ангиогенезе, дифференцировке, репарации ДНК, метастазировании, передаче сигнала, детоксикации, лекарственной резистентности и др. Таким образом, при отсутствии каких-либо структурных изменений нуклеотидной последовательности гена, он полностью теряет свою активность (Залетаев и др., 2010).
Метилирование является обратимой ковалентной модификацией ДНК, когда цитозиновый остаток в CG-динуклеотиде метилируется в позиции N5 пиримидинового кольца. Метилирование осуществляется с помощью ферментов ДНК-метилтрансфераз, которые переносят метильную группу S-аденозилметионина. Такая модификация является единственно допустимой в физиологических условиях химической модификацией ДНК у позвоночных и стабильно поддерживается в ряду клеточных делений. CpG-островки промоторных районов в нормальных тканях не метилированы, что свидетельствует о функционально нормальном состоянии гена. Механизмы значительных изменений картины метилирования ДНК в опухолях только начинают исследовать. К сегодняшнему дню детально описана картина метилирования не более 0,1 % генома. Знание эпигенетических нарушений в опухолевых клетках исключительно важно с точки зрения понимания этиологии новообразований, а также, учитывая обратимость эпигенетических изменений, для разработки новых эпигенетических подходов к терапии опухолей.
Исследования эпигенетической регуляции экспрессии генов в онкологии сейчас приобрели особенно большой вес, причем, как научный, так и практический. Для некоторых генов показано, что именно метилирование как одного, так и обоих аллелей является причиной развития опухоли. Аномальное метилирование/деметилирование может служить диагностическим и прогностическим маркером, а также позволяет дифференцировать определенные типы опухолей. Характеристика профиля метилирования генов в различных тканях и типах опухолей вносит существенный вклад в понимание процессов дифференцировки тканей и канцерогенеза. Существующие методические подходы (метил-чувствительная ПЦР (МЧ-ПЦР), метил-специфическая ПЦР (МС-ПЦР) и метил-специфическое секвенирование) позволяют проводить экспресс-анализ и в операционном материале опухоли, и в лимфоцитах
| | неметилированный Срв Т метилированный Ср(Г| Рис. 1. Изменение метилирования генома в процессе канцерогенеза
крови, что имеет большое значение для выбора тактики лечения конкретного больного.
Анализ метилирования промоторных районов генов, вовлеченных в канцерогенез, посредством указанных подходов, имеет ряд преимуществ по сравнению с традиционными молекулярно-генетическими методами: однозначность и легкость интерпретации результатов, возможность поставить диагноз в течение 2—3 дней, технологическая эффективность и низкая себестоимость (Стрельников и др., 2009).
В связи с тем, что частота онкопатологии постоянно растет, а возраст манифестации заболевания уменьшается, большую актуальность приобретает проспективная диагностика онкопатологии (до явной манифестации) в рамках ежегодных диспансеризаций и в группах риска. Мониторинг молекулярных маркеров, которые обнаруживаются задолго до клинических признаков, позволяет вовремя начать более тщательную диагностику и превентивную терапию. В пользу того, что аномальное метилирование является одним из наиболее ранних событий в геноме трансформированной клетки, свидетельствует обнаружение метилирования гена Р16 в гиперплазиро-ванном эпителии бронхолегочной системы, а метилирование в мокроте может свидетельствовать о возникновении рака легких задолго до клинических проявлений
(3—5 лет). Проспективная неинвазивная диагностика основана на исследовании ДНК из биологических жидкостей организма. Наличие аномального метилирования генов-супрессоров опухолевого роста, микросателлит-ной нестабильности, потери гетерозиготности по определенным хромосомным районам и мутаций ряда онкогенов в плазме крови с высокой вероятностью свидетельствует о возникновении злокачественного процесса (Залетаев и др., 2009).
поиск и характеристика новых маркеров метилирования для диагностики рака молочной железы
Проводится поиск новых генов, подверженных эпигенетической регуляции, в различных типах опухолей. Нами разработан метод поиска дифференциально метилированных районов генома — метилчувствительный фингерпринтинг. При использовании этого метода обнаружено 7 генов — SEMA6B, БШ1, УСР1Р1, 1ЛМС3, КСЫН2, CACNG4 и PSMF1, подвергающихся аномальной эпигенетической регуляции при раке молочной железы (РМЖ), что было показано впервые (Кузнецова и др., 2007). Определены частоты метилирования промоторных областей для каждого из выявленных генов. Зна-
Цервикальные Цервикальные Смежная ткань Дисплазия II-III мазки здоровых мазки с фоновыми степени
женщин изменениями
Рис. 2. Динамика изменения частот метилирования ряда генов от воспалительных до предраковых состояний шейки матки
чимые частоты аномального метилирования показаны для генов SEMA6B, BIN1, LAMC3 (38 %, 18 % и 8 % соответственно). Функциональные нарушения генов SEMA6B и LAMC3 выражены в наибольшей степени, что позволяет рекомендовать включение этих генов в системы диагностических маркеров канцерогенеза при РМЖ. Проведено тонкое картирование метилирования CpG-островков генов с наиболее высокими частотами метилирования, что создает фундаментальную базу для разработки эффективных тест-систем анализа метилирования указанных генов.
разработка системы эпигенетических маркеров для ранней диагностики рака шейки матки
Нами исследовано метилирование генов Р16, MLH1, HIC1, MGMT, RB1 и N33 в образцах дисплазий II — III степеней и смежных с ними морфологически неизмененных тканей шейки матки (рис. 2). Так же было изучено метилирование этих генов в образцах церви-кальных мазков, взятых у женщин с воспалительными изменениями шейки матки и в образцах цервикальных мазков женщин, не имеющих гинекологической патологии. При воспалительных изменениях шейки матки метилирование изучаемых генов не меняется по сравнению с образцами, полученными от женщин без гинекологической патологии.
Высокая частота гиперметилирования определена для генов Р16 (58 %), MLH1 (51 %), HIC1 (84 %) и N33 (27 %) при диспластических процессах II — III степеней. В образцах ткани шейки матки, смежной с дисплазией, но морфологически не отличающейся от нормы, выявлены частоты метилирования, близкие к частотам диспластических образцов (Р16 — 50 %; MLH1 — 36 %; HIC1 — 79 %; N33 — 10 %; MGMT — 4 %; RB1 — 12 %). Достоверных различий между частотами метилирования этих генов при диспластических процессах и в морфологически неизмененной ткани не
обнаружено. Высокий уровень метилирования в морфологически неизмененной ткани указывает на то, что молекулярные методы являются более строгим контролем наличия или отсутствия злокачественных изменений в тканях, чем цитологический.
Для оценки диагностической значимости выбранных маркеров метилирования (генов Р16, MLH1 и N33) была рассчитана чувствительность и специфичность такой системы. Наибольшая чувствительность определена для гена Р16 — 54 %, а наибольшая специфичность — для гена N33 — 100 %, его метилирование выявлено только в образцах дисплазии II—III степеней (27 %) и в смежной с ней ткани (10 %). Система маркеров из 3 генов имеет чувствительность и специфичность 85 % (Кекеева и др., 2006).
Результаты показывают, что исследование гиперметилирования генов-супрессоров вместе с цитологическим исследованием и тестированием вируса папилломы человека может служить основой для мониторинга женщин с высоким риском развития рака шейки матки.
клинически значимые маркеры метилирования
при раке предстательной железы
Анализ метилирования промоторных областей генов Р16, HIC1, N33 и GSTP1 проведен на опухолевом материале, полученном в результате лазерной микродис-секции, от пациентов с диагнозами: аденокарцинома, простатическая интраэпителиальная неоплазия (ПИН), доброкачественная гиперплазия предстательной железы (ДГПЖ) и аутопсийном материале нормальной железы. Высокие частоты метилирования были установлены для аденокарциномы: HIC1 — 89 %; Р16 — 78 %, GSTP1 — 100 %, N33 — 33 %. Похожие частоты показаны для ПИН высокой степени: HIC1 — 71 %; Р16 — 57 %, GSTP1 — 71 %, N33 — 33 %. В близлежащей строме практически во всех анализируемых образцах показано наличие метилирования, кроме гена N33. Для генов N33
и GSTP1 показано статистически достоверное отличие между группами пациентов с ПИН и пациентов с аде-нокарциномами. Использование системы прогностических маркеров метилирования, в частности генов N33 и GSTP1, как дополнительного метода к гистологическому исследованию, может помочь в диагностике и прогнозе РПЖ (Кекеева и др., 2007).
Для оценки возможности неинвазивной диагностики проведен анализ метилирования генов Р16, CD44, CADH, N33 и GSTP в образцах плазмы крови пациентов с РПЖ и пациентов с ДГПЖ. Метилирование гена GSTP1 у пациентов с ДГПЖ не обнаружено, в то же время для пациентов с аденокарциномой частота метилирования гена GSTP1 в плазме составила (28 %) (р = 0,05). В плазме пациентов с ДГПЖ метилирование гена Р16 не выявлено, тогда как частота метилирования этого гена в плазме пациентов с аденокарциномой составила 19 %. Гиперметилирование генов CD44 и CЛDH обнаружено в 32 % и 33 % образцов плазмы пациентов с РПЖ, схожая частота метилирования выявлена для гена N33 (30 %). Для гена GSTP1 обнаружены достоверные различия в плазме между пациентами с предраковыми состояниями и РПЖ, чувствительность маркера составляет 28 %.
характеристика эпигенетических нарушений при раке почки и разработка протокола молекулярной диагностики
Возникновение опухолей почки связано с инактивацией генов-супрессоров, в значительной доле случаев обусловленной аномальным метилированием. Нами исследовано метилирование генов УНЬ, RЛSSF1, FHIT, CDH1 и SFR.P1 в образцах рака почки методами метил-чувствительной ПЦР и бисульфитного секвенирова-ния с целью поиска диагностических и прогностических критериев этого заболевания. Аномальное метилирование VHL было выявлено в 14,2 %, RASSF1 — 52,8 %, FHIT — 54,3 %, CDH1 — 41,7 % и SFRP1 — 33,1 %. Метилирование RASSF1 достоверно чаще присутствует при степени дифференцировки G2, чем при G1 (Р = 0,047). Метилирование как минимум одного из исследованных генов обнаружено в 85,0 % исследованных образцов. Диагностическая чувствительность системы маркеров, состоящей из генов УНЬ, RASSF1 и FHIT, в плазме крови составила 44 %, диагностическая специфичность — 85 %. Полученные результаты могут служить основой для выбора оптимальных диагностических маркеров метилирования при раке почки (Михайленко и
др., 2010).
Разработан протокол анализа структурных и функциональных аномалий гена УНЬ, который может быть использован в клинической практике для оценки эффективности таргетной терапии заболевания Сорафенибом (Нексаваром).
разработка биологических микро чипов для детекции аномального метилирования генов в процессах канцерогенеза
Особую актуальность приобретает разработка новых методов крупномасштабного и высокопроизводительного анализа метилирования ДНК, с помощью которых можно одновременно анализировать характер метилирования множества генов в нескольких биологических образцах в ходе одного эксперимента. Нами разработана стратегия создания биологических микрочипов для диагностики аномального метилирования в опухолях. Микрочипы низкой плотности удовлетворяют практически всем требованиям, необходимым для использования в практической диагностике. Результаты, получаемые с помощью чипов низкой плотности, отличаются высокой степенью точности и достоверности. Высокая чувствительность при этом обеспечивается возможностью применения ПЦР для обогащения исследуемого материала таргетными фрагментами ДНК. Специфичность значительно повышается с уменьшением количества зондов, наносимых на микрочип, вследствие снижения количества высоко гомологичных фрагментов, склонных к перекрестной гибридизации. Воспроизводимость результатов достигается как значительным повышением чувствительности и специфичности, так и упрощенной процедурой выполнения анализов и детекции результатов. При этом в полной мере сохраняется возможность одновременного анализа множества параметров (по крайней мере, такого их количества, которое достаточно для проведения эффективной диагностики конкретного заболевания), а стоимость работ на всех этапах производственного цикла значительно снижается. Нами разработана система определения наиболее часто метилируемых в большинстве типов опухолей промоторов генов: MGMT, RASSF1, GSTP1, RAR.fi, CDKN2A, SFR.P1 и Н1С1 (рис. 3). Частоты метилирования указанных промоторов, определены по результатам собственных исследований (Стрельников и др. 2008).
заключение
Метилирование ДНК является ценным биомаркером для диагностики рака, потому что: 1) значительное количество генов, вовлеченных в канцерогенез, инактивируется посредством метилирования; 2) метилирование генов, вовлеченных в канцерогенез, не наблюдается в ДНК из нормальных тканей; 3) метилирование генов может быть определено в сыворотке крови, в других биологических жидкостях организма и соответствует профилю метилирования ДНК, выделенной из соответствующей опухоли; 4) исследования подтверждают, что метилирование является одним из
Рис. 3. Примеры анализа образцов клинического материала с применением микрочипа низкой плотности для анализа метилирования. Вверху слева: гибридизация ПЦР-продуктов, полученных с интактной геномной ДНК (видны сигналы гибридизации во всех используемых позициях); вверху справа: гибридизация продуктов метилчувствительной ПЦР, полученных с геномной ДНК здорового человека (присутствуют только сигналы, соответствующие положительному контролю амплификации); внизу слева: метилирование генов RASSF1 и CDKN2A; внизу справа: метилирование генов MGMT, SFRP1 и Н1С1
наиболее ранних событий в канцерогенезе; 5) исследования показывают, что метилирование ДНК, как биомаркер, является высоко специфичным и чувствительным; 6) разработаны эффективные методы, позволяющие проводить качественный и количественный анализ метилирования ДНК.
Исследование эпигенетической регуляции экспрессии генов в норме и при патологии является самостоятельным направлением в молекулярной генетике человека. Разработка стандартного набора ДНК-маркеров для наиболее часто встречающихся онкологических заболеваний позволит эффективно проводить скрининг и бороться с онкопатологией на самых ранних этапах ее возникновения, проводить мониторингзаболевания в периоды ремиссий, определять микрометастазы в период лечения и определять тактику лечения в случае инактивации определенных генов-рецепторов. Результаты дальнейших исследований позволят получить новую информацию о закономерностях функционирования генома человека. Это, в свою очередь, приведет к разработке новых эффективных диагностических подходов, новых лекарственных средств и методов терапии.
Литература
1. Залетаев Д. В., Стрельников В. В., Немцова М. В., 2009. Системы генетических и эпигенетических маркеров в ДНК-диагностике злокачественных новообразований // Системы генетических и эпигенетических маркеров в диагностике онкологических заболеваний / под ред. М. А. Пальцева и Д. В. Зале-таева. М.: Медицина. С. 7—75.
2. Залетаев Д. В., Стрельников В. В., Немцова М. В., Бабенко О. В., Кузнецова Е. Б., Землякова В. В., Кекеева Т. В., Михайленко Д. С., Шкарупо В. В., Та-нас А. С., 2010. Маркеры метилирования в диагностике онкологических заболеваний // Медицинская генетика. Т. 9. № 1. С. 15-21.
3. Кекеева Т. В., Жевлова А. И., Подистов Ю. И., Соловьева Ю. В., Залетаев Д. В., Немцова М. В., 2006 // Аномальное метилирование генов-супрес-соров опухолевого роста и микросателлитная нестабильность в предраковых состояний шейки матки // Молекулярная биология. № 2. С. 224-230.
4. Кекеева Т. В., Попова О. П., Шегай П. В., Алексеев Б. Я., Андреева Ю. Ю., Залетаев Д. В., Немцо-
ва М. В., 2007 // Аномальное метилирование генов-супрессоров опухолевого роста Р16, Н1С1, N33 и GSTP1 в опухолевом эпителии и стромальных клетках предстательной железы // Молекулярная биология. Т. 41, № 1, С. 79-85.
5. Кузнецова Е. Б., Кекеева Т. В., Ларин С. С., Земля-кова В. В., Бабенко О. В., Немцова М. В., Залета-ев Д. В., Стрельников В. В., 2007 // Новые маркеры метилирования и экспрессии генов // Молекулярная биология. Т. 41, № 4, С. 624-633.
6. Михайленко Д. С., Григорьева М. В., Землякова В. В., Шкарупо В. В., Яковлева Е. С., Носов Д. А., Любчен-ко Л. Н., Курынин Р. В., А. М. Попов, Д. В. Залетаев, И. Г. Русаков, 2010. Молекулярно-генетические нарушения в гене УНЬ и метилирование некоторых генов-супрессоров в спорадических светлоклеточных карциномах почки // Онкоурология. № 2. С. 32-36.
7. Стрельников В. В., Землякова В. В., Белецкий И. П., Грановский И. Э., Пальцева Е. М., Залетаев Д. В., 2008. ДНК-микрочипы в диагностике онкологических заболеваний // Молекулярная медицина. № 4, С. 4-11.
8. Стрельников В. В., Кузнецова Е. Б., Залетаев Д. В., 2009. Поиск и характеристика новых маркеров метилирования и генов, вовлеченных в канце-
рогенез // Системы генетических и эпигенетических маркеров в диагностике онкологических заболеваний под ред. М. А. Пальцева и Д. В. Залетаева. Москва. Издательство Медицина. С. 76-113.
METHYLATION ANOMALIES IN CANCEROGENESIS: SEARCH FOR NEW GENES, DEVELOPMENT OF METHODS AND DNA-MARKERS FOR DIAGNOSIS
Zaletaev D. V., Strelnikov V. V., Kekeeva T. V., Zemlyakova V. V., Kuznetsova E. B., Mikhailenko D. S.
■ SUMMARY: The report considers the epigenetic defects and their diagnostics in tumors. Aberrant methylation of the promoter or regulatory region of a gene results in its functional inactivation, which is phenotypi-cally similar to structural deletion. Cancerogenesis-associated genes are often methylated in tumors. Tumors differ in methylation frequencies, allowing differential diagnostics. Aberrant methylation of tumor suppressor genes occurs in early cancerogenesis, and its detection may be employed in presymptomatic and noninvasive diagnostics of tumors.
■ KEY WORDS: tumor suppressor genes; DNA-methylation; breast cancer; prostate cancer; clear cell kidney cancer; cervical intraepithelial neoplasia
Ф Информация об авторах
Залетаев Дмитрий Владимирович — д. б. н., проф., заведующий лабораторией эпигенетики. Медико-генетический научный центр РАМН. 115478, Москва, ул. Москворечье, д. 1. E-mail: [email protected].
Стрельников Владимир Викторович — к. б. н., в. н. с., лаборатории эпигенетики. Медико-генетический научный центр РАМН. 115478, Москва, ул. Москворечье, д. 1. E-mail: [email protected].
Кекеева Татьяна Владимировна — к. м. н., н. с. лаборатории эпигенетики. Медико-генетический научный центр РАМН. 115478, Москва, ул. Москворечье, д. 1. E-mail: [email protected].
Землякова Валерия Владимировна — к. б. н., с. н. с. лаборатории эпигенетики. Медико-генетический научный центр РАМН. 115478, Москва, ул. Москворечье, д. 1. E-mail: [email protected].
Кузнецова Екатерина Борисовна — к. б. н., с. н. с. лаборатории эпигенетики. Медико-генетический научный центр РАМН. 115478, Москва, ул. Москворечье, д. 1. E-mail: [email protected].
Михайленко Дмитрий Сергеевич — к. б. н., с. н. с. лаборатории эпигенетики. Медико-генетический научный центр РАМН. 115478, Москва, ул. Москворечье, д. 1. E-mail: [email protected].
Zaletaev Dmitri V. — DSci, prof., head of epigenetics lab. Research Centre for Medical Genetics. 115478, Moscow, Moskvorechiest. 1. E-mail: [email protected].
Strelnikov Vladimir V. — leading scientist of epigenetics lab. Research Centre for Medical Genetics. 115478, Moscow, Moskvorechiest. 1. E-mail: [email protected].
Kekeeva Tatiana V. — Phd, scientist of epigenetics lab. Research Centre for Medical Genetics. 115478, Moscow, Moskvorechiest. 1. E-mail: [email protected].
Zemliakova Valeria V. — Phd, scientist of epigenetics lab. Research Centre for Medical Genetics. 115478, Moscow, Moskvorechiest. 1. E-mail: [email protected].
Kuznetsova Ekaterina B. — Phd, scientist of epigenetics lab. Research Centre for Medical Genetics. 115478, Moscow, Moskvorechiest. 1. E-mail: [email protected].
Mikhaylenko Dmitri S. — Phd, scientist of epigenetics lab. Research Centre for Medical Genetics. 115478, Moscow, Moskvorechiest. 1. E-mail: [email protected].
