CC BY
21УДК: 619:614.48
Карпущенко К. А.
к.в.н.
ФГБНУ Прикаспийский зональный НИВИ
Алиев А. А.
д.б.н.
ФГБНУ Прикаспийский зональный НИВИ
Кабардиев С. Ш.
д.в.н.
ФГБНУ Прикаспийский зональный НИВИ
ВЛИЯНИЕ ЭЛЕКТРОХИМИЧЕСКИ АКТИВИРОВАННОГО НЕЙТРАЛЬНОГО АНОЛИТА В СОЧЕТАНИИ С МОЛОЧНОЙ КИСЛОТОЙ НА МИКРОБНУЮ ОБСЕМЕНЕННОСТЬ ВОЗДУХА ПТИЦЕВОДЧЕСКИХ ПОМЕЩЕНИЙ В ПРИСУТСТВИИ ЦЫПЛЯТ-БРОЙЛЕРОВ
В статье приведены результаты влияния электрохимически активированного нейтрального анолита в сочетании с молочной кислотой на микробную обсемененность воздуха птичника при выращивании цыплят-бройлеров.
Ключевые слова: электрохимически активированный нейтральный анолит, патогенная микрофлора, птицеводческие помещения, птице поголовье, обеззараживание воздуха, бактерицидные свойства.
Введение. В условиях промышленного производства выращивание сельскохозяйственной птицы, как правило, сопряжено с ухудшением зоогигиенических параметров содержания с увеличением количества и разнообразия микрофлоры в воздухе, многократным пассированием и циркуляцией микроорганизмов. Это приводит к увеличению вероятности образования патогенной микрофлоры, представляющей потенциальную опасность для возникновения заболеваний [3].
Как указывают [6], микробная обсемененность воздушной среды и других объектов животноводческих помещений является важным параметром микроклимата, оказывающим значительное влияние на здоровье и продуктивность птице поголовья. Многими исследователями предложено устанавливать санитарно-гигиеническую оценку воздуха животноводческих помещений по выявлению в 1 м3 численности E.coli. При этом другой исследователь [5] Прокопенко П.С. гигиенически предельно допустимой нормой в 1м3 воздуха помещений для содержания ремонтного молодняка считает 250 тыс. микроорганизмов. По данным [2], предельно допустимые концентрации вредных газов в воздухе птичника для содержания цыплят-бройлеров составляют СО2- 0,25%, NH3 -15мг/м3, Н2S-5мг/м3, пыли, не более 2мг/м3, микроорганизмов — не более 50тыс. микробных тел в 1м3. Результаты исследований авторов [3] показали, что продуктивность птиц, особенно молодняка, начинает снижаться тогда, когда общая микробная загрязненность воздуха достигает 80-100 тыс. м.т./м3, а санитарный показатель (количество Е. coli) составляет не менее 5-10 тыс. м.т./м3. Обнаружение в воздухе птичников различных видов микроорганизмов, постоянное изменение их концентрации указывают на то, что существует определенный источник их поступления. Кожемяка Н. отводит роль заноса возбудителей инфекции в птицеводческие хозяйства следующим отдельным источникам: инкубационным яйцам молодняка других хозяйств — 20%; таре многократного использования — 15%; комбикормам — 5%; дикой птице — 5%; грызунам, насекомым — 5%; питьевой воде — 0,5%; подстилочному материалу — 3,0%; воздуху (пыли) — 5% [2]. Степень обсемененности
помещений зависит от чистоты наружного воздуха. Доказано, что при озеленении территории птицефабрик общее количество микробов заметно снижается и внутри помещений.
Установлено, что за 60-дневный период выращивания цыплят в клеточных батареях при удовлетворительном общем санитарном состоянии птицеводческих помещений и благополучии цыплят по инфекционным болезням на 1см2 вертикальных поверхностей выделяли до 85 тыс. микроорганизмов, горизонтальных поверхностях-до 1,4 млн. микроорганизмов. Наряду с сапрофитной бактериальной микрофлорой из многих проб были выделены энтеропатогенные штаммы E.coli, сальмонеллы, стафилококки, стрептококки и другие. Поэтому обеззараживание воздуха в присутствии птицы необходимо проводить не только при вынужденной дезинфекции, но и для профилактики бактериальных инфекций. Чаще всего с этой целью применяют йод, хлор, перекись водорода, молочную кислоту и другие дезинфицирующие препараты, а также антибиотики. Данные препараты небезопасны для человека и окружающей среды. Кроме того, многолетний опыт использования антибиотиков показал, что бесконтрольное и продолжительное их применение ведет к развитию антибиотикорезистентности у микроорганизмов, снижает эффективность лечебно-профилактических мероприятий, в связи с чем возникает необходимость изыскания новых противомикробных и дезинфицирующих средств [6].
Альтернативой известным дезинфицирующим препаратам, как отечественного, так и зарубежного производства, являются электрохимически активированные (ЭХА) растворы, получаемые в установках СТЭЛ, которые основаны на использовании электрохимической активации малоконцентрированного раствора поваренной соли, в проточных электрохимических модулях при воздействии на раствор электрического поля высокой напряжённости. Синтезируемые ЭХА-растворы — анолит и католит характеризуются ярко выраженными окислительными и восстановительными свойствами. Кроме этих растворов синтезируется ещё нейтральныйанолит АНК. Это раствор нового типа, обладающий уникальным биоцидным действием и сочетающий в себе одновременно моющие, дезинфицирующие и стерилизующие свойства [1].
Целью исследований — изучение влияния нового экологически безвредного электрохимически активированного нейтрального анолита в сочетании с молочной кислотой на микробную обсемененность воздуха птичника при выращивании цыплят-бройлеров.
Материалы и методы исследований
Исследования проводили на птицефабрике «Каспийская» Республики Дагестан.
Бактериологические исследования воздуха осуществляли седиментационным методом на чашках Петри с мясопептонным агаром — для определения общей бактериальной обсемененности, среду Эндо-идентификации кишечной палочки (Esherichia coli) и среду Чапека — спор микроскопических грибов. Посевы инкубировали в термостате при 370С в течение 24-48 часов, на грибы 24-260С — 72 часа. Количество микроорганизмов в 1 м3 определяли по методу Омелянского [3, 4].
Обеззараживание воздуха птичника при выращивании цыплят-бройлеров в осенний период в возрасте 10-11 суток проводили с применением электрохимически активированного нейтрального анолита концентрацией активного хлора 0,1мг/мл в сочетании с 40% -ной молочной кислотой, из расчета 0,25мг на мл препарата. Аэрозольную дезинфекцию проводили с помощью САГ-1, из расчета 10 мл электрохимически активированного нейтрального анолита с концентрацией активного хлора 0,1мг/мл в сочетании с 40%-ной молочной кислотой на 1м3 воздуха.
Контроль микрофлоры воздуха проводили перед применением препарата и через 2 и 24 часа после обработки.
Результаты исследований
Результаты исследований показали, что применение электрохимически активированного нейтрального анолита, с концентрацией активного хлора 0,1мг/мл в
сочетании с 40%-ной молочной кислотой в аэрозольной форме, позволяет за 2 часа экспозиции уменьшить в воздухе общее количество бактерий, кишечной палочки и спор микроскопических грибов, соответственно, в 4,6; 6,02 и 2,8 раза за 24 часа — 10,51; 12,45 и 7,47 (таблица 1).
Таблица 1 — Результаты влияния аэрозольной обработки электрохимически активированным нейтральным анолитом с концентрацией активного хлора 0,1мг/мл в сочетании с 40%-ной молочной кислотой в присутствии птицы_
Возраст цыплят Экспозиция, (час) Общая бактериальная обсемененность тыс./м3 Кишечная палочка, тыс./м3 Количество спор микроскопических грибов тыс./м3
10 До обработки 55,2 28,9 14,5
10 2 12,6 4,8 5,18
11 24 5,25 2,32 1,94
Эффективность, % 90,5 92,0 86,6
Результатами исследований установлено, что электрохимически активированный нейтральный анолит с концентрацией активного хлора 0,1мг/мл в сочетании с 40%-ной молочной кислотой обладает выраженными бактерицидными и фунгицидными свойствами.
Применение электрохимически активированного нейтрального анолита, с концентрацией активного хлора 0,1мг/мл в сочетании с 40%-ной молочной кислотой, в аэрозольной форме, из расчета 10мл на 1м3 воздуха птичника за 24 часа позволяет снизить общую бактериальную и грибковую обсемененность и количество кишечной палочки в 10,51; 7,47 и 12,45 раз, соответственно, 90,5; 92,0 и 86,6%.
Заключение. Таким образом, электрохимически активированный нейтральный анолит с концентрацией активного хлора 0,1мг/мл в сочетании с 40%-ной молочной кислотой можно рекомендовать в птицеводческую отрасль для проведения профилактической дезинфекции воздуха помещений в присутствии птицы.
Литература
1. Алиев А. А., Карпущенко К. А. Гаджимурадова З. Т., Дагаева А. М. Инсектоакарицидная активность ЭХА-нейтрального анолита в сочетании с салицилово-скипидарной суспензией // Мат. Межд. н/ практ. конференции, посвящ. 75-летию факультета вет. медицины. Современные проблемы и перспективы развития ветеринарной науки. -Махачкала. — 2014. — С. 43-46.
2. Бодунов А. В. Обеспеченность параметров микроклимата в сельскохозяйственных зданиях с воздухопроницаемыми наружными ограждениями // Автореф. на соискание уч. степени канд. техн. наук. — Нижний Новгород. — 2003. — 22с.
3. Кот А. П.О микробной загрязненности воздуха птичников // Ветеринария. — 1986. — №4. — С. 26-29.
4. Лысько С. Б., Сунцова О. А., Панфилов Р. Ю.Влияние сапропелевого дегтя и его фракции на микробную обсемененность воздуха в птицеводческих помещениях // Мат. 7-й межрег. н/практ. конф. / СО РАСХН ВНИИБТЖ УВО ИВМ Ом ГАУ. — Омск. — 2008. — С. 162-165.
5. Прокопенко П. С. Формирование микроклимата под влиянием аэроионизации //Ветеринария. — 1987. — № 2 — С. 18.
6. Селиверстов В. В., Дудницкий И. А., Попов Н. И. Дезинфекция в системе ветеринарно-санитарных мероприятий // Ветеринария. — 1999. — № 2. — С. 3-8.
