CC BY
94
Азотфиксация в ассоциациях организмов / М.М. Умаров // Проблемы агрохимии и экологии, 2009. - №2. - С.22-26.
РИЗОСФЕРНЫЕ АБОРИГЕННЫЕ МИКРООРГАНИЗМЫ, СПОСОБСТВУЮЩИЕ
РОСТУ И РАЗВИТИЮ РАСТЕНИЙ
Дмитричева Д.С., Яппаров А.Х., Дегтярева И.А.
Резюме
Из корневой зоны различных сельскохозяйственных культур выделены эффективные микроорганизмы с полифункциональными положительными свойствами, способные в ассоциации с корнями небобовых растений фиксировать атмосферный азот и мобилизовывать фосфор. Установлено более эффективное использование сформированного на их основе комплекса.
RHIZOSPHERE NATIVE MICROORGANISMS PROMOTING GROWTH AND
DEVELOPMENT OF PLANTS
Dmitricheva D.S., Yapparov A.H., Degtereva I.A.
Summary
From a root zone of various agricultural crops effective microorganisms with the multifunctional positive properties are allocated, capable in association with roots of not bean plants to fix atmospheric nitrogen and to mobilize phosphorus. Established a more efficient use formed on the basis of their complex.
УДК: 619:614.8
УНИВЕРСАЛЬНАЯ КОПРОСКОПИЧЕСКАЯ ДИАГНОСТИКА
КИШЕЧНЫХ ПАРАЗИТОВ
Долбин Д.А.*, Лутфуллин М.Х., Хайруллин Р.М.
ФГУН Казанский НИИ Эпидемиологии и микробиологии
Роспотребнадзора*
ФГОУ ВПО «Казанская государственная академия ветеринарной медицины имени Н.Э. Баумана»
Ключевые слова: гельминты, копроскопия, алгоритм диагностики.
Key words: helminth, coproscopy, algorithm of diagnostic.
Как уже неоднократно отмечалось в литературе (Сергиев В. П., Лобзин Ю.В., 2006; Фассахов Р.С., Тюрин Ю.А., Долбин Д.А., 2010) диагностика кишечных протозоозов и гельминтозов до сих пор является актуальной проблемой, требующей по-прежнему своего решения.
Для достоверного диагноза этих заболеваний остается недостаточным применение серологических методов (особенно это касается лямблиоза у детей, так как у некоторых больных с длительнотекущим лямблиозом антитела в сыворотке крови могут отсутствовать, что свидетельствует о неэффективности механизмов гуморальной защиты) (Dianne T. L., Michael P. H. et al., 2002). Крайне желательно подтвердить наличие инвазии копроскопическими методами, которые до сих пор являются неотъемлемой частью диагностики кишечных паразитозов (Покровский В. И., Онищенко Г. Г. и др., 2003).
Практически все кто имеет отношение к диагностике паразитарных заболеваний, сталкивались либо с низкой диагностической эффективностью методов, предназначенных для выявления всех возбудителей кишечных инвазий, либо с их не пригодностью из-за низкой степени инвазии материала и разрушения вегетативных форм простейших в образце фекалий.
Целью работы явилось создание алгоритма исследования с целью выявления яиц кишечных гельминтов человека.
Материалы и методы. Метод Като в настоящий момент является самым широко используемым и известным методом, предназначенным для выявления в фекалиях яиц гельминтов, их фрагментов и личинок, а так же цист и ооцист простейших.
Данный метод основан на приготовлении препарата кала для гельминтоовоскопии в виде толстого мазка, который покрывают гидрофильным целлофаном и выдерживают в течение 24 часов в смеси глицерина, 6% раствора фенола и водного раствора малахитового зеленого.
Но данный метод обладает рядом существенных недостатков (в нем используется токсичный фенол, очень велики непроизводительные затраты времени и др.). Комбинированные гельминтоовоскопические методы исследования фекалии, основанные на сочетании принципов седиментации и флотации, позволяют избавиться от данных недостатков.
Сейчас не существует алгоритмов разработки подобных методов и не все закономерности между составом, плотностью флотационной системы и диагностической эффективностью являются выявленными. Поэтому приемлемых результатов в этой области можно добиться, только проведя большую эмпирическую работу и подобрав оптимальные компоненты и их концентрации.
Нами разработан трехкомпонентный комбинированный гельминтоовооскопический метод, где в качестве флотационной смеси используется комбинация растворов, каждый из которых выполняет
определенные функции - снижает себестоимость анализа, повышает удельную плотность раствора, увеличивает время кристаллизации раствора на предметном стекле и пр.. Данный способ диагностики был запатентован (патент РФ № 2368324 27. 09. 2009 г.).
Своевременная диагностика такого распространенного гельминтоза, как описторхоз затруднительна в связи со своеобразным и доброкачественным течением этого трематодза у большинства пациентов в первые месяцы после заражения, а так же в связи с тем, что гельминты начинают выделять яйца только через 5 - 7 нед. после заражения.
Для серологической диагностики применяют иммунологические тест-системы. Однако повышенные титры специфических антител, определяемые в серологических тестах, не дают основания для установления окончательного диагноза.
Окончательный диагноз описторхоза устанавливается только при обнаружении в дуоденальном содержимом или фекалиях яиц возбудителя.
Имеется широкий спектр копроскопических методов рекомендованных для выявления яиц Opistrhis у людей и животных: метод Фюллеборна (Сидоркин В. А, 2001), формалин-эфирный (Сергиев В. П., Лобзин Ю. В. и др., 2006), Горячева, Като, Калантарян (Генис Д. Е., 1991), Щербовича и Котельникова-Вареничева (Лутфуллин М. Х., Латыпов Д. Г., Корнишина М. Д, 2006).
Самым распространенным на практике методом исследования фекалий является метод Като. На практике из-за высокого удельного веса яиц описторхисов они почти не всплывают в солевых флотационных растворах, и большинство флотационных методов диагностики не будет эффективно, за исключением метода Котельникова-Вареничева, в котором в качестве флотационного раствора используется насыщенный раствор ZnCl2 (р - 1,83).
Методами Като, Котельникова-Вареничева и методом, запатентованным авторами для копроскопической диагностики аскаридоза человека, исследовались фекалии пациентов (11 проб), направленных с подозрением на описторхоз, по данным ИФА («Вектор-Бест») и клиническим показаниям.
Исследования данными методами проводились по общепринятым схемам.
Результаты исследований. В 37 пробах фекалий от пациентов, обследованных в поликлинике ФГУН КНИИЭМ определяли наличие яиц гельминтов двумя методами. В 4 пробах комбинированный копроскопический метод позволил выявить отдельные яйца Ascaris lumbricoides. Метод Като не смог выявить ни одного случая аскаридоза (таблица).
Результаты изучения диагностической эффективности различных копроскопических методов при описторхозе и аскаридозе
Количество Количество Количество Количество
Метод положительных выявленных положительных выявленных
№ исследования проб на описторхоз яиц O. felineus (шт.) проб на аскаридоз яиц A. lumbricoides (шт.)
1. Котельникова- Вареничева 3 1 - 5 1 1
2. Като 0 0 0 0
3. Авторский (патент РФ № 2368324 27. 09. 2009 г.) 0 0 4 1 - 5
4. Нативного мазка 0 0 0 0
5. Дарлинга 1 1 2 1 - 2
6. Фюллеборна 0 0 0 0
7. Формалин- эфирный 1 1 1 2
8. Уксусно-эфирный 0 0 0 0
9. Г орячева 0 0 0 0
10. Калантарян 0 0 0 0
Следует отметить, что в одном случае отрицательного результата копроскопии серологический анализ сывороток методом ИФА этих пациентов показал высокий диагностический титр (1 : 800). Это может быть связано либо с острой фазой инвазии червями, на которой яйца не выделяются, либо с паразитированием в организме 1 -2 самцов A. lumbricoides, либо остаточными иммуноглобулинами после элиминации паразита из организма. Кроме яиц аскарид комбинированным методом в 7 случаях были выявлены цисты L. intestinalis. Причем в 3 случаях наблюдалась совместная инвазия аскарид и лямблий. Метод Като позволил выявить всего четыре случая инвазированности лямблиями (что при оценке методом Стьюдента статистически достоверно отличается от результатов, полученных комбинированным методом). Так же оба метода позволили выявить в одной из проб наличие транзиторных ооцист эймерий, часто попадающих в кишечник человека вместе с колбасной продукцией и не вызывающих заболеваний у человека.
Таким образом, комбинированные копроскопические методы значительно более эффективны для выявления возбудителей кишечных паразитозов, чем метод Като.
Метод Котельикова-Вареничева позволил выявить яйца O. felineus в 3 пробах. Во всех 3 случаях наблюдалась низкая степень инвазии (обнаруживались одиночные яйца) (таблица).
Отметим, что в одном случае положительная проба принадлежала пациенту, у которого проводили терапию описторхоза и который был направлен контрольное исследование фекалий.
Ни метод Като, ни авторский способ исследования фекалий не выявили ни одного случая заражения описторхозом при параллельном исследовании. Таким образом, установлено, что метод Котельикова-Вареничева является наиболее оптимальным для выявления яиц O. felineus в фекалиях, особенно в случае слабой степени инвазии.
Выводы. 1. Для диагностики аскаридоза человека из рассмотренных способов копроскопической диагностики наиболее рационально применять комбинированный метод исследования фекалий, в основе которой лежит несколькокомпонентная флотационная система (например, авторский (патент РФ № 2368324 от 27. 09. 2009 г.)). 2. Для диагностики описторхоза наиболее оптимальным является метод Котельникова-Вареничева. 3. Для скрининговой диагностики кишечных паразитозов оптимально использовать 2 - 3 метода различных групп одновременно.
ЛИТЕРАТУРА: 1. Авторское свидетельство на изобретение РФ № 2368324 «Способ диагностики аскаридоза у человека», зарегистрировано 27. 09. 2009 г. 2. Генис Д.Е. Медицинская паразитология. - М. «Медицина», 1991. - С. 62 - 66. 3. Лутфуллин М.Х., Латыпов Д.Г., Корнишина М.Д. Ветеринарная гельминтология. - Казань, «Идель-Пресс». - 2006. - С. 39 - 41. 4. Покровский В.И., Онищенко Г.Г. и др. - Эволюция инфекционных болезней в России в ХХ веке. - М., «Медицина», 2003. - С. 599 - 616. 5. Сергиев В.П., Лобзин Ю.В. и др. Паразитарные болезни человека (протозоозы и гельминтозы). - С.-П. «Фолиант», 2006. - С. 222 -232. 6. Сидоркин В. А. Справочник по диагностике и терапии гельминтозов животных и птиц. - М. «Аквариум». - 2001. - С. 72 - 73. 7. Фассахов Р.С., Тюрин Ю.А., Долбин Д.А. Основные гельминтозы человека (клиника, лечение, современная гельминтоовооскопическая диагностика) - Казань, 2010. - С. 30 - 52. 8. Dianne T.L., Michael P.H., Marianne B., Jianzhu C., Martin F. Kagnoff, F.D. Gillin, L.E. Central importance of immunoglobulin A in host defense against Giardia spp. // Infection and Immunity. - 2002. - Vol. 70. -№ 1. - P. 11 - 18.
УНИВЕРСАЛЬНАЯ КОПРОСКОПИЧЕСКАЯ ДИАГНОСТИКА КИШЕЧНЫХ
ПАРАЗИТОВ
Долбин Д.А., Лутфуллин М.Х., Хайруллин Р.М.
Резюме
Для диагностики аскаридоза из рассмотренных способов копроскопической диагностики наиболее рациональным является метод, предложенный авторами, а для диагностики описторхоза - метод
Котельникова-Вареничева. Для скрининговой диагностики кишечных паразитозов оптимально использовать 2 - 3 метода различных групп.
UNIVERSL COPROSCOPY DIAGNOSIS OF INTESTINSL PARASITES
Dolbin D A., Lutfullin M.H., Hayrullin R.M.
Summary
The most efficient method of the above coproscopy diagnostic methods for the diagnosis of ascariasis is proposed by the authors. For the diagnosis of opisthorchiasis - Kotelnikov-Varenichev’s method. It is best to use 2 - 3 methods of different groups for screening diagnosis of intestinal parasitosis.
УДК 619:616.136.41 [42]:636.5-085)(063)
ИНВОЛЮТИВНЫЕ ПРОЦЕССЫ В ФАБРИЦИЕВОЙ БУРСЕ ПРИ ВАКЦИНАЦИИ ПРОТИВ БОЛЕЗНИ ГАМБОРО
Дроздова Л.И., Кундрюкова У.И.
ФГОУ ВПО «Уральская государственная сельскохозяйственная академия»
Ключевые слова: цыплята, фабрициева бурса, инволюция, болезнь Гамборо.
Key words: chickens, fabritsieva bursa, involution, Gumboro disease.
Фабрициева бурса относится к лимфо-эпителиальным органам, инволюция которой развивается по одним данным [2] после 35 суток, по другим [1, 3] в более поздние сроки - в 160 и даже 220 дней. По-видимому, такой разбег в сроках инволюции связан с активной иммунизацией или инфекцией птицы, поскольку данный орган отвечает за выработку гуморального иммунитета и все процессы, происходящие в нем, имеют непосредственное отношение к иммуноморфологии. Известно, что состояние фабрициевой бурсы и степень ее развития находится в непосредственной взаимосвязи с резистентностью организма по отношению к инфекционным болезням.
Исходя из имеющихся данных, нами проведены исследования морфологии фабрициевой бурсы разновозрастной птицы при вакцинации против болезни Гамборо. Данная болезнь выбрана не случайно, поскольку наиболее глубокие при данной инфекции изменения претерпевает фабрициева бурса.
Исследования проведены в ОАО ППЗ «Свердловский» в период выращивания и вакцинации цыплят против болезни Гамборо на 20 сутки.
