CC BY
67
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1 Антипов И.В. Действие быстрых нейтронов на функциональное и морфологическое состояние щитовидной железы. //Биофизика и радиология.- Киев: 1972. - В.3. - С. 90 -93.
2 Ватулина Г.Г., Тужилкова Т.Н., Голощапова Ж.А. Пострадиационные изменения в щитовидной железе и скелетной мышце при поражении организма йодом-131.// Радиобиология, 1986. - Т. 26. - В. 4. - С. 499-505.
3 Жарикова Н.А., Чеблытко А.А. Структура щитовидной железы собак при острой лучевой болезни и после клинического выздоровления.// Морфогенез и структура органов человека и животных.- Минск: 1970. - С. 199-202.
4 Жорно Л.Я., Ильин Б.Н., Михайдарова П.П. Морфофункциональные изменения щитовидной железы при изолированном и комбинированном воздействии радиойода // Радиобиология, 1982.- Т. 22.- В. 4.- С. 553-556.
ЛАБОРАТОРИЯЛЫК ЕГЕУК¥ЙРЫКТАРДЫН ВЕНАСЫНА РАДИОАКТИВТ1 ИОДТЫН ДИАГНОСТИКАЛЫК ДОЗАСЫН ЕНПЗГЕННЕН КЕЙ1Н
КАЛКАНША БЕЗ1НДЕ БАЙКАЛАТЫН К*РЫЛЫМДЫК ©ЗГЕР1СТЕР
ТYйiн: Авторлар гистологиялы^ морфометрияльи^ эдiстердi ^олдана отырып, радиоактивтi иодтыц диагностикалы^ дозасыныц эсерЫе ^ал^анша безЫщ реакциясын зерттедi.
STRUCTURAL CHANGES OF THE THYROID GLAND OF LABORATORY RATS AS A RESULT OF INTRAVENOUS INTRODUCTION
OF DIAGNOSTIC DOSES OF RADIOIODINE
Resume: With the help of histologic and morphometric methods the authors investigated reaction of the thyroid gland to intravenous introduction of diagnostic doses of radioidine.
УДК: 611.24:599.323.4
Е.С. ДЖАДРАНОВ, Р.Б. АБИЛЬДИНОВ, М. Ж. ЕРГАЗИНА, З.Н. ДЖАНГЕЛЬДИНА, А.В. КРАСНОШТАНОВ
КазНМУ им. С.Д. Асфендиарова
СТРУКТУРНЫЕ ОСОБЕННОСТИ ЛЕГОЧНОЙ ТКАНИ ЛАБОРАТОРНЫХ КРЫС И МЫШЕЙ
На современном этапе развития медицины биологическое моделирование болезней становится важнейшим методом научного познания, что обусловливает необходимость создания на лабораторных животных таких экспериментальных моделей, которые наиболее адекватно отражали бы механизмы возникновения и развития заболеваний человека, а также механизмы выздоровления. Отсутствие необходимой информации о видовых структурно-функциональных особенностях органов лабораторных животных уменьшает возможность правильного проведения эксперимента. Поэтому изучение морфологии органов лабораторных животных как экспериментальных объектов является важной задачей. Ключевые слова: лёгкие, альвеолы
Актуальность. На современном этапе развития медицины биологическое моделирование болезней становится важнейшим методом научного познания, что обусловливает необходимость создания на лабораторных животных таких экспериментальных моделей, которые наиболее адекватно отражали бы механизмы возникновения и развития заболеваний человека, а также механизмы выздоровления. Постановка подобных экспериментов немыслима без детального знания биологии лабораторных животных, которые являются наиболее важной составной частью эксперимента по моделированию и до настоящего времени мало изучены. Отсутствие необходимой информации о видовых структурно-функциональных особенностях органов лабораторных животных уменьшает возможность правильного выбора животного для целенаправленного моделирования, повышает вероятность ошибки в интерпретации результатов эксперимента. Поэтому изучение морфологии органов лабораторных животных как экспериментальных объектов является важной задачей. Анализ доступной литературы показывает, что имеющаяся информация о структурно-функциональном состоянии лабораторных грызунов фрагментарна [1, 2, 3]. Исходя из выше изложенного, нами была поставлена задача изучить видовые гистологические особенности лёгочной ткани беспородных лабораторных крыс и мышей.
Материал и методы. Материалом для данного исследования послужили лёгкие белых беспородных крыс и мышей
репродуктивного возраста. После убоя животных и вскрытия грудной полости лёгкие извлекались и фиксировались в 10%-ном растворе нейтрального формалина. Парафиновые срезы каудальных участков органа окрашивались гематоксилин-эозином. Гистологические препараты изучались под оптическим микроскопом.
Собственные исследования. Снаружи лёгкие крыс покрыты серозной оболочкой, состоящей из плоского мезотелия (высотой 4,13±0,19 мкм) с гиперхромными ядрами овально-вытянутой и палочковидной формы) и подэпителиального соединительнотканного слоя, пронизанного густой сетью капилляров. Соединительнотканный слой, в свою очередь, образован большим количеством клеточных элементов с овальными гиперхромными ядрами, а также волокнами, ориентированными вдоль поверхности органа и в отдельных участках характеризующимися волнообразным расположением. Общая толщина серозной оболочки лёгких составляет 19,2±1,1 мкм.
Большую часть паренхимы лёгких занимает масса легочных альвеол, между которыми располагаются бронхи разного калибра. Альвеолы выстланы уплощённым альвеолярным эпителием с палочковидными и изогнутыми ядрами. Существенной разницы в диаметре просвета альвеол, расположенных ближе к периферии лёгких, и альвеол, расположенных ближе к центру органа, обнаружено не было.
Данный показатель составил соответственно: 21,1±1,6 мкм и 23,63±1,26 мкм.
Также отсутствует выраженная разница в плотности расположения альвеол в различных исследованных участках лёгкого. В одном поле зрения микроскопа (ок. 15, об. 40) ближе к периферии органа количество альвеол составляет в среднем 6,73±0,26, ближе же к центру органа - 7,66±0,33. Альвеолы отделены друг от друга тонкими альвеолярными перегородками, пронизанными капиллярами.
Межальвеолярные перегородки состоят из густо расположенных клеточных элементов (с округлыми и овальными ядрами, в которых хорошо различимы ядрышки и глыбки хроматина), а также из тонких соединительнотканных волокон. Ближе к периферии лёгких толщина межальвеолярных стенок равна 9,75±0,49 мкм, ближе же к центру органа -8,73±0,43 мкм.
Бронхи (независимо от их калибра) сопровождаются кровеносными сосудами. Артерии характеризуются развитостью гладкомышечных элементов медии. В крупных венах (имеющих клапаны) удельный вес гладкомышечных элементов значительно меньше, чем в артериях аналогичного размера. В мелких венах гладкомышечные элементы не обнаруживаются, в виду чего их часто сложно оттифференцировать от альвеол. В стенке тех бронхов, диаметр просвета которых составляет 8001000 мкм, обнаруживаются хрящевые пластинки, толщиной 54,05±3,06 мкм. Внутри пластинок плотно располагаются хрящевые клетки овальной и неправильной формы с хорошо различимыми границами и диаметром 15,44±0,8 мкм. Ядра хрящевых клеток (диаметром 5,38±0,21 мкм) овальные или округлые с отчётливо видимыми ядрышками и глыбками хроматина. Хрящевые пластинки довольно чётко отграничены от окружающей гладкомышечной ткани. При этом пучки гладкомышечных клеток, примыкаюшие к пластинкам ориентированы вдоль их поверхности.
Слизистая оболочка бронхов любого калибра образует складки (фестоны), в формировании которых участвуют эпителий и собственный слой слизистой оболочки. В бронхах с диаметром просвета 800 - 1000 мкм фестоны имеют высоту 62,01±3,01 мкм, при этом отношение просвета бронха к высоте фестонов составляет 1 / 0,068, т.е. фестоны перекрывают незначительную часть просвета бронха, что, очевидно, обусловливается присутствием мощного каркаса в виде хрящевых пластинок, предотвращающих сокращение. По ходу бронхиального дерева данное отношение уменьшается, ибо фестоны постепенно перекрывают всё большую и большую часть просвета бронха. Так, в бронхах с диаметром просвета 650 - 750 мкм, при высоте фестонов 103,89±5,09 мкм, данное отношение равно 1 / 0,15. В бронхах, диаметром 350 - 450 мкм, при высоте фестонов 60,38±3,01 мкм, данное отношение составляет 1 / 0,2. В бронхах с диаметром просвета 200 - 250 мкм, при высоте фестонов 64,35±3,2 мкм, оно равно 1 / 0,39. В бронхах с диаметром просвета 80 - 100 мкм, при высоте фестонов 39,25±1,9 мкм, отношение диаметра просвета бронха к средней высоте фестонов уменьшается до 1 / 0,39.
Изнутри бронхи выстланы однослойным многорядным призматическим эпителием, гиперхромные ядра которого имеют овальную форму и располагаются главным образом в средних и дистальных частях клеток. Границы между эпителиоцитами неразличимы, базальная мембрана слабо выражена. По ходу бронхиального дерева наблюдается уменьшение величины эпителиальных клеток, что происходит, в основном, за счёт снижения удельного веса их цитоплазмы. В бронхах с диаметром просвета 800 - 1000 мкм высота эпителия составляет 27,69±1,26 мкм. В бронхах с диаметром просвета 650 - 750 мкм данный показатель равен 20,36±0,86 мкм. В бронхах с диаметром просвета 350 - 450 мкм эпителий имеет высоту 15,56±0,53 мкм. В бронхах с диаметром просвета 200 - 250 мкм толщина эпителия - 13,33±0,64 мкм. При диаметре просвета бронхов 80 - 100 мкм (в этом случае многорядность эпителия выражена очень слабо) данный показатель снижается до 10,8±0,5 мкм.
Расположенный под эпителием собственный слой слизистой оболочки состоит из большого количества клеточных элементов с довольно интенсивно окрашенными ядрами различной формы, а также из тонких соединительнотканных волокон. Мышечную пластинку бронхов составляют плотные пучки гладкомышечных клеток, которые разделены
соединительнотканными прослойками. Бледноокрашенные ядра миоцитов имеют овально-вытянутую форму. Чем больше диаметр бронха, тем менее равномерна выраженность мышечной пластинки вдоль окружности его поперечного сечения.
В целом толщина пластинки уменьшается по ходу бронхиального дерева. В бронхах с диаметром просвета 800 -1000 мкм толщина мышечной пластинки составляет 73,0±3,6 мкм. В бронхах с диаметром просвета 650 - 750 мкм данный показатель равен 41,65±2,0 мкм. В бронхах с диаметром просвета 350 - 450 мкм мышечная пластинка имеет толщину 21,72±1,08 мкм. В бронхах с диаметром просвета 200 - 250 мкм толщина мышечной пластинки составляет 17,94±0,8 мкм. В бронхах с диаметром просвета 80 - 100 мкм данный показатель уменьшается до 7,89±0,3 мкм.
Адвентиция бронхов состоит из многочисленных клеточных элементов с округлыми и овальными ядрами, интенсивно окрашенными гематоксилином, а также из тонких волокон, имеющих различную ориентацию. Соединительная ткань адвентиции бронхов плавно переходит в близлежащие альвеолярные перегородки и в адвентицию примыкающих кровеносных сосудов, следовательно, точные наружные границы бронхиальной адвентиции нередко трудно определимы.
В составе бронхов обнаруживаются лимфатические фолликулы, охватывающие всю толщину бронхиальной стенки, вплоть до подэпителиального слоя. В мелких бронхах, в области локализации лимфатического фолликула, мышечная пластинка не обнаруживается. В крупных бронхах (с диаметром просвета более 500 мкм) в области локализации лимфатического фолликула мышечная пластинка либо сохраняет непрерывную структуру, либо имеет вид разрозненных фрагментов. В лёгочной ткани мышей в большей степени, чем у крыс, выражена разница в диаметре просвета альвеол периферических и центральных участков органа. Данный показатель составляет соответственно 17,94±0,55 мкм и 20,75±1,0 мкм. Также в большей степени выражена разница в плотности расположения альвеол в различных участках лёгкого. В одном поле зрения микроскопа (окуляр 15, объектив 40) ближе к периферии органа количество альвеол составляет 14,3±0,47, а ближе к центру органа 12,6±0,35. Удельный вес межальвеолярных перегородок выше в перниферических участках лёгкого, здесь их толщина составляет 8,27±0,3 мкм. Ближе к центру органа они истончаются в среднем до 6,86±0,23 мкм.
Бронхи (независимо от их калибра) сопровождаются кровеносными сосудами, при этом отсутствует чёткая структурная разница между артериями и венами. В отличие от крыс, в слизистой оболочке бронхов мышей фестоны расположены настолько плотно друг к другу, что их контуры не просматриваются, а, следовательно, отсутствует возможность точного определения высоты эпителиальных клеток. Измерение толщины эпителиального пласта вместе с фестонами дало следующие результаты: в бронхах диаметром менее 100 мкм данный показатель составил 17,0±0,63 мкм, в бронхах диаметром 100-150 мкм - 16,8±0,56 мкм, в бронхах диаметром 150-200 мкм - 17,37±0,59 мкм, в бронхах диаметром более 200 мкм - 18,25±0,74 мкм.
Мышечная пластинка слизистой оболочки бронхов выражена очень слабо. Лимфатические фолликулы в составе бронхов обнаруживаются редко.
Выводы. Возрастные изменения лёгочной ткани крыс характеризуются выраженными атрофическими признаками.
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1 Белобрагина Г.В., Медведев Л.А. Изменение содержания ряда компонентов соединительной ткани лёгких крыс в процессе старения. // Вопросы медицинской химии, 1978. - Т. 24. - В.1.- С. 123-126.
2 Серебряков И.С., Романова Л.К. Респираторный отдел лёгких интактных мышей линии BALB.// Архив анатомии, гистологии и эмбриологии, 1984. - Т.86.- В. 5. - С . 56-63.
3 Устюжанова Н.В., Шишкин Г.С. Размеры и альвеолярная поверхность межальвеолярных перегородок лёгкого крыс. // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии, 1975.- Т. 68.- В. 4.- С. 59-63.
ЛАБОРАТОРИЯЛЫК ЕГЕУК¥ЙРЫКТАР МЕН ТЫШКАНДАРДЫН 0КПЕ Т1НДЕР1Н1И К*РЫЛЫМДЫК ЕРЕКШЕЛ1КТЕР1
Туйш: Авторлар гистологиялы^, морфометриялы^ эдiстердi ^олдана отырып, репродуктивт жастагы лабораториялы^ егеу^йры^тар мен тыш^андардыц екпе тЫдерЫщ ^урылымды^ ерекшелттерЫ аны^тау ма^сатында зерттеу жумыстарын журпздк
E.S. DZHADRANOV, R.B. ABILDINOV, M.J.ERGAZINA, Z.N. DZHANGELDIN, A.V. KRASNOSHTANOV
STRUCTURAL FEATURES OF THE PULMONARY TISSUE OF LABORATORY RATS AND MICE
Resume: The authors investigated structural features of the pulmonary tissue of the adult laboratory rats and mice with the help of histologic and morphometric methods.
At the present stage of development of medicine biological modeling disease becomes the most important method of scientific knowledge, which necessitates the creation of laboratory animals for experimental models that most accurately reflect the mechanisms of emergence and development of human diseases, as well as mechanisms for recovery. Formulation of such experiments is inconceivable without a detailed knowledge of the biology of laboratory animals, which are the most important part of the experimental modeling and hitherto little studied. Lack of information about the species of structural and functional features of laboratory animals reduces the possibility of a correct choice for the targeted animal modeling, increases the likelihood of errors in the interpretation of experimental results. Therefore, study of the morphology of laboratory animals as experimental objects is an important task. Analysis of the available literature shows that the available information on structural and functional condition of laboratory rodents fragmented
