CC BY
13
СТРУКТУРНАЯ ОРГАНИЗАЦИЯ КРАСНОГО ЯДРА СОБАК Е.Р. Эрастов, д-р мед. наук, доцент
Приволжский исследовательский медицинский университет (Россия, г. Нижний Новгород)
Аннотация. Работа произведена на 26 беспородных интактных собаках-самцах, содержащихся в стандартных условиях вивария. Выраженный разброс ключевых показателей, характеризующих нейроглиальную систему красного ядра, позволяет говорить об исключительном полиморфизме этой структуры, являющейся одним из ключевых образований, по состоянию которых можно судить о неврологической конституции индивида.
Ключевые слова: интактные животные - красное ядро.
Развитие локомоторной системы было сложным и противоречивым. В настоящее время нет ответа на вопрос, почему локомоторный аппарат так сложно организован, почему существует как минимум две системы, контролирующих сокращение поперечнополосатых мышц - пирамидная и экстрапирамидная. Известно одно - экстрапирамидная система представляет собой очень сложное, многоуровневое образование, одним из ключевых элементов которой является красное ядро.
Материал и методы исследования. Работа произведена на 26 беспородных собаках-самцах. Исследования проводились в соответствии с приказом Минвуза СССР № 742 от 13.11.84 «Об утверждении правил проведения работ с использованием экспериментальных животных» и № 48 от 23.01.85 «О контроле за проведением работ с использованием экспериментальных животных». Для получения более однородного морфологического материала мы соблюдали следующие условия:
1) объектом исследования избрали беспородных собак, отбор которых ограничили по полу (использовали только самцов) и возрасту - 2-3 года;
2) взятие материала проводили исключительно в первую половину дня;
3) все животные содержались в стандартных условиях вивария, получали одинаковое питание и использовались в эксперименте после карантина и снятия обстановочного рефлекса.
Для решения задач, поставленных в работе, изучалось красное ядро (КЯ) на
уровне верхних холмиков среднего мозга и четвертый поясничный сегмент спинного мозга.
Животному внутривенно вводили 10% раствор тиопентала натрия (из расчета 0,5 мл на кг массы тела). Взятие материала проводили через 30 минут после остановки сердца. При помощи безопасной бритвы извлекали участок среднего мозга на уровне верхнего двухолмия и разлагали на 2 кусочка. Первый кусочек помещали в 12% раствор формалина для дальнейшей заливки в блоки. Второй кусочек замораживали в охлажденном до -70° жидким азотом изооктане и после изготовления крио-статных срезов инкубировали в средах для выявления ферментов.
Кусочки нервной ткани, предназначенные для морфометрии, после стандартной спиртовой проводки помещали в парафинцеллоидиновые блоки, которые в дальнейшем резали на санном микротоме (толщина срезов 7 мк) и окрашивали по Нисслю крезиловым фиолетовым. Гистоэнзиматический метод включал постановку реакций на сукци-натдегидрогеназу (К.Ф.1.3.99.1).
На препаратах, окрашенных по Нисслю, на микроскопе МБИ-6 проводили количественную и качественную оценку нервных и глиальных клеток. У каждого животного подсчитывался процент нормохромных и гиперхром-ных нейронов, а также клеток с различными видами хроматолиза - частичным (перинуклеарным, периферическим, равномерным) и тотальным. При помощи окулярмикрометра МОВ-1-15хУ42
(увеличение 750) измерялись больший и меньший диаметры перикариона, ядра нервной клетки, глиального ядра. Объем нейронов, а также нервных и гли-альных ядер вычисляли по формуле трехосного эллипсоида
(V=л;/6•AB•(A+B) /3), к которому наиболее близки эти объекты и которая дает наименьшую ошибку [1].
Клетки измерялись только при обязательном наличии ядрышка, свидетельствующим о том, что измеряется вся клетка, а не часть ее. Обработку первичных данных по морфометрическим параметрам нейроглиальной системы проводили при помощи специально составленной программы, адаптированной для наших структур.
Фотометрию осуществляли на цифровом сканирующем интегрирующем микрофотометре, созданном на базе микроскопа МБИ-6.
Результаты собственного исследования и их обсуждение. На гистологических срезах среднего мозга, произведенных через верхнее двухолмие, КЯ идентифицируется в виде двух субъединиц. Вентрально располагается крупноклеточная часть неправильной овальной формы, дорзальнее и медиальнее -мелкоклеточная. Морфометрическое исследование проводили только в крупноклеточной части, цитофотометрию - в обеих частях.
Нейроны крупноклеточной части КЯ визуально ничем не отличаются от нервных клеток нижележащих структур ЦНС, в частности, мотонейронов спинного мозга [2]. Вещество Ниссля в виде крупных ромбовидных образований равномерно распределено по цитоплазме. В некоторых клетках хорошо окрашивается начальный участок аксона, лишенный тигроида. В каудальных зонах КЯ чаще отмечаются крупные нейроны, располагающиеся одиночно или небольшими группами по 2-3 клетки. Интересно, что похожая организация КЯ обнаружена и у человека [3].
Количество нормохромных клеток КЯ колебалось от 76% до 92%, а в среднем по группе это число составило 85,43+1,43%.
Количество клеток с перинуклеар-ным хроматолизом отличалось большим диапазоном. Оно колебалось от 4% до 16%. Характерно, что пояс просветления цитоплазмы в различных клетках был выражен по-разному. Глыбки тиг-роида, смещенные к периферии нейрона, визуально не отличались от глыбок, содержащихся в нормохромных клетках.
Число клеток с равномерным хроматолизом в среднем по группе составило 1,71+0,55 % (при колебаниях от 0 до 4%).
Нейроны с тотальным хроматолизом в интактной группе не обнаружены. Такие глубокие изменения нервных клеток отмечены при интоксикациях и экспериментальной ишемии [4, 5].
Среднее число гиперхромных клеток составило 4,00+0,59 % при колебаниях от 0 до 8%. Характерно, что лишь у двух животных такие клетки не наблюдались. Среди них часто встречались пикноморфные, сморщенные нейроны, с темным ядром и едва различимым ядрышком. Интересно, что некоторые авторы связывают появление подобных клеток с преждевременным старением [6]. У некоторых пикноморфных клеток хорошо окрашивался не только аксон-ный холмик, но и передний участок аксона. Как правило, все гиперхромные клетки отличались большими размерами.
Средний показатель объемов нейронов крупноклеточной части КЯ составил 8451,29 +380,73 мкм . Наименьшее
-2
значение было 7196,95 + 638,05 мкм , наибольшее - 10591,89+966,51 мкм3.
Объем цитоплазмы колебался от 5345,38 до 9652,84 мкм при среднем значении, равном 7576,57 + 334,11
3
мкм .
Объем ядер нейронов также показал значительные колебания. Минимальное значение составило 619,03+35,08 мкм . Интересно, что максимальная величина объема ядра выявлена у животного, обнаружившего сравнительно небольшие значения объема клетки и объема цитоплазмы и составила 1011,67 + 60,63
мкм3. Средний показатель был равен 874,72 +30,48 мкм3.
Объем глиального ядра колебался от 19,46 +2,98 до 31,41 + 3,40 мкм3 при среднем показателе, равном 25,70 + 1,14
3
мкм .
Глиальный индекс нервных клеток КЯ колебался от 0,96 до 1,76 при среднем показателе, составившем 1,29 + 0,07%. Такие большие колебания гли-
Выраженное колебание значений оптической плотности СДГ, отмеченное в нервных клетках, позволило разделить все нейроны на три класса - с высоким, средним и низким значением оптической плотности фермента. Показатель оптической плотности продукта реакции крупноклеточной части КЯ также обнаружил большие колебания у отдельных животных - от 0,135+0,001 до 0,199+0,002 у.е. В мелкоклеточной части КЯ оптическая плотность фермента варьировала еще в большей степени - от 0,138+0,001 до 0,206+0,002 у.е. Интересные результаты получены при типи-ровании нервных клеток КЯ (таб. 2). В мелкоклеточной части КЯ обнаружено значительное число нервных клеток, характеризующихся как высоким, так и
ального индекса, свидетельствующего о функциональной активности нейрона и тесно связанного с системой микроциркуляции [7] позволяют сделать вывод о различном исходном уровне работоспособности интактных животных.
Данные об оптической плотности продукта реакции СДГ в различных структурах КЯ представлены в таблице 1.
низким уровнем окислительного метаболизма за счет уменьшения числа «промежуточных» нейронов. Диапазон колебаний значений оптической плотности в глиальных элементах несколько уже, чем в нейронах. Так, в сателлитах нейронов крупноклеточной части КЯ этот показатель принимает минимальное значение, равное 0,095+0,002 у. е. и максимальное - 0,139+0,001 у.е. В глие мелкоклеточной части обнаружен более широкий диапазон колебаний - от 0,097+0,003 до 0,154+0,001 у. е. Оптическая плотность продукта реакции фермента в нейропиле КЯ, как и в спинном мозге, несколько меньше, чем в глиальной капсуле - в крупноклеточной части на 4,17 %, в мелкоклеточной -на 4,88% (р> 0,05).
Таблица 2. Относительная энтропия и распределение по типам нейронов различных отделов ЦНС на основе оптической плотности продукта реакции СДГ животных интактной группы (%)
Объекты Относительная Оптическая плотность
изучения энтропия низкая средняя высокая
Крупноклеточная 0,900+ 27,27+ 35,68+ 36,59+
часть КЯ 0,011 2,49 3,09 3,76
Мелкоклеточная 0,871+ 33,86+ 30,91+ 35,00+
часть КЯ 0,017 3,14 3,02 3,97
Таблица 1. Оптическая плотность продукта реакции СДГ в элементах КЯ (усл.
ед.)
Объекты изучения Оптическая
плотность
Нейроны крупноклеточной части КЯ 0,155+0,004
Сателлиты крупноклеточной части КЯ 0,120+0,003
Нейропиль крупноклеточной части КЯ 0,115+0,003
Нейроны мелкоклеточной части КЯ 0,161+0,004
Сателлиты мелкоклеточной части КЯ 0,123+0,003
Нейропиль мелкоклеточной части КЯ 0,117+0,003
Полученные нами морфологические лиальную систему красного ядра, пои гистоэнзиматические данные об ин- зволяет говорить об исключительном дивидуальных особенностях строения полиморфизме этой структуры, являю-нервных и глиальных клеток КЯ беспо- щейся одним из ключевых образований, родных собак-самцов свидетельствуют по состоянию которых можно судить о о крайней сложности этого образова- неврологической конституции индиви-ния. Выраженный разброс ключевых да. показателей, характеризующих нейрог-
Библиографический список
1. Гейнисман Ю.Я. Структурные и метаболические проявления функции нейрона.
- М.: Наука,1974. - 207 с.
2. Kochetkov A.G., Erastov E.R. Morphofunctional characteristics of spinal cord neurons after single integrative motor loads//Neuroscience and Behavioral Physiology. - 2004.
- Т. 34. - № 7. - С. 693-696.
3. Аверкиев А.А., Васильев Ю.Г. Ангиоархитектонические и нейроархитектониче-ские особенности красного ядра. //Морфологические ведомости. - 2006. - №1-2. -С. 3-4.
4. Структурно-метаболические нарушения в печени и головном мозге при экспериментальном синдроме Рейе/ Ю.Ю. Мельник, Л.А. Шамардина, И.В., Суходоло и др.// Бюллетень Сибирской медицины. - 2002. - № 14-15. - С. 80-82.
5. Эрастов Е.Р. Гистоэнзиматическая организация клеточных образований моторной коры при воздействии экспериментальной ишемии // Medicus. - 2015, №6. -С. 74-76.
6. Максимова К.Ю., Стефанова Н.А., Логвинов С.В. Морфологические изменения нейронов в гиппокампе крыс при преждевременном старении // Бюллетень сибирской медицины. -2014. - Т. 13, № 1. - С. 56-61.
7. Изучение нейроно- и глиоглиальных преобразований в клеточных системах головного мозга в норме и при моделировании цереброваскулярной патологии / А.Н. Макаренко, В.Н. Бибикова, Н.Н. Терещенко и др. // Сибирский журнал гастроэнтерологии и гепатологии. - 2014. - Т. 14, № 1. - С. 102-107.
STRUCTURAL ORGANIZATION OF THE RED NUCLEUS OF DOGS
E.R. Erastov, doctor of medicine sciences, associate professor Privolzhsky research medical university (Russia, Nizhny Novgorod)
Abstract. The work was performed on 26 mongrel intact male dogs, contained in standard vivarium conditions. The pronounced dispersion of the key indicators characterizing the neuroglycal system of the red nucleus allows us to speak about the exceptional polymorphism of this structure, which is one of the key entities, in terms of which one can judge the neurological constitution of the individual. Keywords: intact animals - red nucleus.
