CC BY
8
Обзорные статьи / Reviews
vulva: systematic review and meta-analysis of the literature. Gynecol Oncol. 2013;130(1):237-45. DOI: 10.1016/j.ygyno.2013.04.023
31 Collège National des Gynécologues et Obstétriciens Français: Réunion du 28 janvier 2005 à lille. J. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. 2005;34(513). DOI: 10.1016/S0368-2315(05)82867-4
32 Giannini A., D'Oria O., Chiofalo B., Bruno V., Baiocco E., Mancini E., et al. The giant steps in surgical downsizing toward a personalized treatment of vulvar cancer. J Obstet Gynaecol Res. 2022;48(3):533-40. DOI: 10.1111/jog.15103
33 Zapardiel I., Alvarez J., Barahona M., Barri P., Boldo A., Bresco P., et al. Utility of intraoperative fluorescence imaging in gynecologic surgery: systematic review and consensus statement. Ann Surg Oncol. 2021;28(6):3266-78. DOI: 10.1245/s10434-020-09222-x
34 Vermersch C., Raia Barjat T., Perrot M., Lima S., Chauleur C. Place of indocyanine green coupled with fluorescence imaging in research of breast cancer sentinel node. Bull Cancer. 2016;103(4):381-8. DOI: 10.1016/j.bulcan.2016.01.015
35 Papadia A., Mueller M.D. ICG-Enhanced Fluorescence-Guided SLN Mapping in Gynecological Malignancies. Tuttlingen: Endo Press; 2018.
36 Raffone A., Raimondo D., Raspollini A., Oliviero A., Travaglino A., Renzulli F., et al. Comparison between laparoscopic and robotic approach for sentinel lymph node biopsy in endometrial carcinoma women. J Pers Med. 2022;13(1):29. DOI: 10.3390/jpm13010029
37 Verbeek F.P., Tummers Q.R., Rietbergen D.D., Peters A.A., Schaafsma
B.E., van de Velde C.J., et al. Sentinel lymph node biopsy in vulvar cancer using combined radioactive and fluorescence guidance. Int J Gyne-col Cancer. 2015;25(6):1086-93. DOI: 10.1097/IGC.0000000000000419
38 Hutteman M., van der Vorst J.R., Gaarenstroom K.N., Peters A.A., Mieog J.S., Schaafsma B.E., et al. Optimization of near-infrared fluorescent sentinel lymph node mapping for vulvar cancer. Am J Obstet Gynecol. 2012;206(1):89.e1-5. DOI: 10.1016/j.ajog.2011.07.039
39 Wang T., Xu Y., Shao W., Wang C. Sentinel lymph node mapping: current applications and future perspectives in gynecology malignant tumors. Front Med (Lausanne). 2022;9:922585. DOI: 10.3389/ fmed.2022.922585
40 Schaafsma B.E., Verbeek F.P., Peters A.A., van der Vorst J.R., de Kroon
C.D., van Poelgeest M.I., et al. Near-infrared fluorescence sentinel lymph node biopsy in vulvar cancer: a randomised comparison of lymphatic tracers. BJOG. 2013;120(6):758-64. DOI: 10.1111/14710528.12173
41 Mathéron H.M., van den Berg N.S., Brouwer O.R., Kleinjan G.H., van Driel W.J., Trum J.W., et al. Multimodal surgical guidance towards the sentinel node in vulvar cancer. Gynecol Oncol. 2013;131(3):720-5. DOI: 10.1016/j.ygyno.2013.09.007
42 Prader S., du Bois A., Harter P., Breit E., Schneider S., Baert T., et al. Sentinel lymph node mapping with fluorescent and radioactive tracers in vulvar cancer patients. Arch Gynecol Obstet. 2020;301(3):729-36. DOI: 10.1007/s00404-019-05415-2
43 Broach V., Abu-Rustum N.R., Sonoda Y., Brown C.L., Jewell E., Gardner G., et al. Evolution and outcomes of sentinel lymph node mapping in vulvar cancer. Int J Gynecol Cancer. 2020;30(3):383-6. DOI: 10.1136/ijgc-2019-000936
44 Deken M.M., van Doorn H.C., Verver D., Boogerd L.S.F., de Valk K.S., Rietbergen D.D.D., et al. Near-infrared fluorescence imaging compared to standard sentinel lymph node detection with blue dye in patients with vulvar cancer — a randomized controlled trial. Gynecol Oncol. 2020;159(3):672-80. DOI: 10.1016/j. ygyno.2020.09.044
45 Benmoulay-Rigollot C., Karpathiou G., Prevot-Bitot N., Heinemann M., Trombert-Paviot B., Barjat T., et al. Performance of indocyanine green compared to 99mTc-nanocolloids for sentinel lymph node detection in early vulvar cancer. Curr. Oncol. 2022;29:8084-92. DOI: 10.3390/curroncol29110638
46 Soergel P., Hertel H., Nacke A.K., Klapdor R., Derlin T., Hillemanns P. Sentinel lymphadenectomy in vulvar cancer using near-infrared fluorescence from indocyanine green compared with technetium 99m nanocolloid. Int J Gynecol Cancer. 2017;27(4):805-12. DOI: 10.1097/ IGC.0000000000000996
47 Crosbie E.J., Winter-Roach B., Sengupta P., Sikand K.A., Carrington B., Murby B., et al. The accuracy of the sentinel node procedure after excision biopsy in squamous cell carcinoma of the vulva. Surg Oncol. 2010;19(4):e150-4. DOI: 10.1016/j.suronc.2010.08.003
48 Milliken S., May J., Sanderson P.A., Congiu M.A., D'Oria O., Golia D'Augè T., et al. Reducing the radicality of surgery for vulvar cancer: are smaller margins safer? Minerva Obstet Gynecol. 2021;73(2):160-5. DOI: 10.23736/S2724-606X.20.04743-7
REFERENCES
1 Uzan C., Canlorbe G., Miangon P., Conforti R. Référentiel cancer de la vulve. Paris; 2018.
2 Siegel R.L., Miller K.D., Wagle N.S., Jemal A. Cancer statistics, 2023. CA Cancer J Clin. 2023;73(1):17-48. DOI: 10.3322/caac.21763
3 Network NCC. NCCN Clinical Practice Guidelines in oncology for vulvar cancer. NCCN; 2024.
4 Burger M.P., Hollema H., Emanuels A.G., Krans M., Pras E., Bouma J. The importance of the groin node status for the survival of T1 and T2 vulval carcinoma patients. Gynecol Oncol. 1995;57(3):327-34. DOI: 10.1006/gyno.1995.1151
5 Siegel R.L., Miller K.D., Fuchs H.E., Jemal A. Cancer statistics, 2022. CA Cancer J Clin. 2022;72:7-33. DOI:10.3322/caac.21708
6 Sedlis A., Homesley H., Bundy B.N., Marshall R., Yordan E., Hacker N., et al. Positive groin lymph nodes in superficial squamous cell vulvar cancer. A Gynecologic Oncology Group Study. Am J Obstet Gynecol. 1987;156(5):1159-64. DOI: 10.1016/0002-9378(87)90132-3
7 Lipatov H.E., Menshikov K.V., Tursumetov D.S., Pushkarev A.V., Men-shikov I.A., Lipatov D.O., et al. Comparative assessment of the quality of life in patients after surgical treatment of vulvar cancer. Palliative Medicine and Rehabilitation. 2020;1:20-4 (In Russ.).
8 Mahner S., Jueckstock J., Hilpert F., Neuser P., Harter P., de Gregorio N., et al. Adjuvant therapy in lymph node-positive vulvar cancer: the AGO-CaRE-1 study. J Natl Cancer Inst. 2015;107(3):dju426. DOI: 10.1093/jnci/dju426
9 Brincat M.R., Muscat Baron Y. Sentinel lymph node biopsy in the management of vulvar carcinoma: an evidence-based insight. Int J Gynecol Cancer. 2017;27(8):1769-73. DOI: 10.1097/IGC.0000000000001075
10 Levenback C.F. How safe is sentinel lymph node biopsy in patients with vulvar cancer? J Clin Oncol. 2008;26(6):828-9. DOI: 10.1200/ JCO.2007.14.7124
11 Schnürch H.G., Ackermann S., Alt C.D., Barinoff J., Böing C., Dannecker C., et al. Diagnosis, therapy and follow-up care of vulvar cancer and its precursors. Guideline of the DGGG and DKG (S2k-Level, AWMF Registry Number 015/059, November 2015. Geburtshilfe Frauenheilkd. 2016;76(10):1035-49. DOI: 10.1055/s-0042-103728
12 Hampl M., Hantschmann P., Michels W., Hillemanns P.; German Multicenter Study Group. Validation of the accuracy of the sentinel lymph node procedure in patients with vulvar cancer: results of a multicenter study in Germany. Gynecol Oncol. 2008;111(2):282-8. DOI: 10.1016/j. ygyno.2008.08.007
13 Te Grootenhuis N.C., van der Zee A.G., van Doorn H.C., van der Velden J., Vergote I., Zanagnolo V., et al. Sentinel nodes in vulvar cancer: Long-term follow-up of the GROningen INternational Study on Sentinel nodes in Vulvar cancer (GROINSS-V) I. Gynecol Oncol. 2016;140(1):8-14. DOI: 10.1016/j.ygyno.2015.09.077
14 Van der Zee A.G., Oonk M.H., De Hullu J.A., Ansink A.C., Vergote I., Verheijen R.H., et al. Sentinel node dissection is safe in the treatment of early-stage vulvar cancer. J Clin Oncol. 2008;26(6):884-9. DOI: 10.1200/JCO.2007.14.0566
15 Ramirez P.T., Levenback C. Long-term outcomes of sentinel node mapping in vulvar cancer: A time to cheer with enthusiasm or pause and question current practice? Gynecol Oncol. 2016;140(1):1-2. DOI: 10.1016/j.ygyno.2015.12.013
16 Cabanas R.M. An approach for the treatment of penile carcinoma. Cancer. 1977;39(2):456-66. DOI: 10.1002/1097-0142(197702)39:2<456::aid-cncr2820390214>3.0.co;2-i
17 Razumova Z., Bizzarri N., Pletnev A., Theofanakis C., Selcuk I., van der Steen-Banasik E., et al. 22nd meeting of the European Society of Gynaecological Oncology (ESGO 2021) report. Int J Gynecol Cancer. 2022;32(11):1363-9. DOI: 10.1136/ijgc-2022-003593
18 Stehman F.B., Bundy B.N., Dvoretsky P.M., Creasman W.T. Early stage I carcinoma of the vulva treated with ipsilateral superficial inguinal lymphadenectomy and modified radical hemivulvectomy: a prospective study of the Gynecologic Oncology Group. Obstet Gynecol. 1992;79(4):490-7. PMID: 1553164
19 Morton D.L., Wen D.R., Wong J.H., Economou J.S., Cagle L.A., Storm F.K., et al. Technical details of intraoperative lymphatic mapping for early stage melanoma. Arch Surg. 1992;127(4):392-9. DOI: 10.1001/ archsurg.1992.01420040034005
20 Balch C.M., Buzaid A.C., Soong S.J., Atkins M.B., Cascinelli N., Coit D.G., et al. Final version of the American Joint Committee on Cancer staging system for cutaneous melanoma. J Clin Oncol. 2001;19(16):3635-48. DOI: 10.1200/JCO.2001.19.16.3635
21 de Hullu J.A., Ansink A.C., Tymstra T., van der Zee A.G. What doctors and patients think about false-negative sentinel lymph nodes in vulvar
Обзорные статьи / Reviews
cancer. J Psychosom Obstet Gynaecol. 2001;22(4):199-203. DOI: 10.3109/01674820109049974
22 Collarino A., Fuoco V., Garganese G., Pereira Arias-Bouda L.M., Pe-rotti G., Manca G., et al. Lymphoscintigraphy and sentinel lymph node biopsy in vulvar carcinoma: update from a European expert panel. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 2020;47(5):1261-74. DOI: 10.1007/s00259-019-04650-8
23 Preti M., Borella F., Gallio N., Bertero L., Heller D.S., Vieira-Baptista P., et al. Superficially invasive vulvar squamous cell carcinoma: a 37-year-long experience of a tertiary referral center. Cancers (Basel). 2021;13(15):3859. DOI: 10.3390/cancers13153859
24 Tsopelas C. Particle size analysis of (99m)Tc-labeled and unlabeled antimony trisulfide and rhenium sulfide colloids intended for lymphoscintigraphy application. J Nucl Med. 2001;42(3):460-6. PMID: 11337524
25 Nunez E.G., Faintuch B.L., Teodoro R., Wiecek D.P., Martinelli J.R., da Silva N.G., et al. Influence of colloid particle profile on sentinel lymph node uptake. Nucl Med Biol. 2009;36(7):741-7. DOI: 10.1016/j. nucmedbio.2009.04.009
26 Jimenez I.R., Roca M., Vega E., Garcia M.L., Benitez A., Bajén M., et al. Particle sizes of colloids to be used in sentinel lymph node radiolo-calization. Nucl Med Commun. 2008;29(2):166-72. DOI: 10.1097/ MNM.0b013e3282f258d9
27 Mirzaei S., Rodrigues M., Hoffmann B., Knoll P., Riegler-Keil M., Kreuzer W., et al. Sentinel lymph node detection with large human serum albumin colloid particles in breast cancer. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 2003;30(6):874-8. DOI: 10.1007/s00259-003-1147-8
28 Meads C., Sutton A.J., Rosenthal A.N., Malysiak S., Kowalska M., Zapalska A., et al. Sentinel lymph node biopsy in vulval cancer: systematic review and meta-analysis. Br J Cancer. 2014;110(12):2837-46. DOI: 10.1038/bjc.2014.205
29 Wilke L.G., McCall L.M., Posther K.E., Whitworth P.W., Reintgen
D.S., Leitch A.M., et al. Surgical complications associated with sentinel lymph node biopsy: results from a prospective international cooperative group trial. Ann Surg Oncol. 2006;13(4):491-500. DOI: 10.1245/ ASO.2006.05.013
30 Hassanzade M., Attaran M., Treglia G., Yousefi Z., Sadeghi R. Lymphatic mapping and sentinel node biopsy in squamous cell carcinoma of the vulva: systematic review and meta-analysis of the literature. Gynecol Oncol. 2013;130(1):237-45. DOI: 10.1016/j.ygyno.2013.04.023
31 Collège National des Gynécologues et Obstétriciens Français: Réunion du 28 janvier 2005 à lille. J. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. 2005;34(513). DOI: 10.1016/S0368-2315(05)82867-4
32 Giannini A., D'Oria O., Chiofalo B., Bruno V., Baiocco E., Mancini
E., et al. The giant steps in surgical downsizing toward a personalized treatment of vulvar cancer. J Obstet Gynaecol Res. 2022;48(3):533-40. DOI: 10.1111/jog.15103
33 Zapardiel I., Alvarez J., Barahona M., Barri P., Boldo A., Bresco P., et al. Utility of intraoperative fluorescence imaging in gynecologic surgery: systematic review and consensus statement. Ann Surg Oncol. 2021;28(6):3266-78. DOI: 10.1245/s10434-020-09222-x
34 Vermersch C., Raia Barjat T., Perrot M., Lima S., Chauleur C. Place of indocyanine green coupled with fluorescence imaging in research of breast cancer sentinel node. Bull Cancer. 2016;103(4):381-8. DOI: 10.1016/j.bulcan.2016.01.015
35 Papadia A., Mueller M.D. ICG-Enhanced Fluorescence-Guided SLN Mapping in Gynecological Malignancies. Tuttlingen: Endo Press; 2018.
36 Raffone A., Raimondo D., Raspollini A., Oliviero A., Travaglino A., Renzulli F., et al. Comparison between laparoscopic and robotic approach for sentinel lymph node biopsy in endometrial carcinoma women. J Pers Med. 2022;13(1):29. DOI: 10.3390/jpm13010029
37 Verbeek F.P., Tummers Q.R., Rietbergen D.D., Peters A.A., Schaafs-ma B.E., van de Velde C.J., et al. Sentinel lymph node biopsy in vulvar cancer using combined radioactive and fluorescence guidance. Int J Gynecol Cancer. 2015;25(6):1086-93. DOI: 10.1097/ IGC.0000000000000419
38 Hutteman M., van der Vorst J.R., Gaarenstroom K.N., Peters A.A., Mieog J.S., Schaafsma B.E., et al. Optimization of near-infrared fluorescent sentinel lymph node mapping for vulvar cancer. Am J Obstet Gynecol. 2012;206(1):89.e1-5. DOI: 10.1016/j.ajog.2011.07.039
39 Wang T., Xu Y., Shao W., Wang C. Sentinel lymph node mapping: current applications and future perspectives in gynecology malignant tumors. Front Med (Lausanne). 2022;9:922585. DOI: 10.3389/ fmed.2022.922585
40 Schaafsma B.E., Verbeek F.P., Peters A.A., van der Vorst J.R., de Kroon C.D., van Poelgeest M.I., et al. Near-infrared fluorescence sentinel lymph node biopsy in vulvar cancer: a randomised comparison of lymphatic tracers. BJOG. 2013;120(6):758-64. DOI: 10.1111/14710528.12173
41 Matheron H.M., van den Berg N.S., Brouwer O.R., Kleinjan G.H., van Driel W.J., Trum J.W., et al. Multimodal surgical guidance towards the sentinel node in vulvar cancer. Gynecol Oncol. 2013;131(3):720-5. DOI: 10.1016/j.ygyno.2013.09.007
42 Prader S., du Bois A., Harter P., Breit E., Schneider S., Baert T., et al. Sentinel lymph node mapping with fluorescent and radioactive tracers in vulvar cancer patients. Arch Gynecol Obstet. 2020;301(3):729-36. DOI: 10.1007/s00404-019-05415-2
43 Broach V., Abu-Rustum N.R., Sonoda Y., Brown C.L., Jewell E., Gardner G., et al. Evolution and outcomes of sentinel lymph node mapping in vulvar cancer. Int J Gynecol Cancer. 2020;30(3):383-6. DOI: 10.1136/ijgc-2019-000936
44 Deken M.M., van Doorn H.C., Verver D., Boogerd L.S.F., de Valk K.S., Rietbergen D.D.D., et al. Near-infrared fluorescence imaging compared to standard sentinel lymph node detection with blue dye in patients with vulvar cancer — a randomized controlled trial. Gynecol Oncol. 2020;159(3):672-80. DOI: 10.1016/j.ygyno.2020.09.044
45 Benmoulay-Rigollot C., Karpathiou G., Prevot-Bitot N., Heinemann M., Trombert-Paviot B., Barjat T., et al. Performance of indocyanine green compared to 99mTc-nanocolloids for sentinel lymph node detection in early vulvar cancer. Curr. Oncol. 2022;29:8084-92. DOI: 10.3390/curroncol29110638
46 Soergel P., Hertel H., Nacke A.K., Klapdor R., Derlin T., Hillemanns P. Sentinel lymphadenectomy in vulvar cancer using near-infrared fluorescence from indocyanine green compared with technetium 99m nanocolloid. Int J Gynecol Cancer. 2017;27(4):805-12. DOI: 10.1097/ IGC.0000000000000996
47 Crosbie E.J., Winter-Roach B., Sengupta P., Sikand K.A., Carrington B., Murby B., et al. The accuracy of the sentinel node procedure after excision biopsy in squamous cell carcinoma of the vulva. Surg Oncol. 2010;19(4):e150-4. DOI: 10.1016/j.suronc.2010.08.003
48 Milliken S., May J., Sanderson P.A., Congiu M.A., D'Oria O., Golia D'Auge T., et al. Reducing the radicality of surgery for vulvar cancer: are smaller margins safer? Minerva Obstet Gynecol. 2021;73(2):160-5. DOI: 10.23736/S2724-606X.20.04743-7
Обзор литературы / Reviews
Обзорные статьи / Reviews
И]
https://doi.org/10.24060/2076-3093-2024-14-1-52-59
check for updates Стриктурирующая форма болезни Крона тонкой кишки (обзор литературы)
Аитова Лилия Ринатовна — к.м.н., кафедра факультетской хирургии, orcid. org/0000-0001-9689-0949
Гришина Елена Евгеньевна — к.м.н., кафедра факультетской хирургии, orcid. org/0000-0002-5621-8266
Сакаев Эрнест Маратович — к.м.н., кафедра факультетской хирургии, orcid. огд/0000-0003-0877-2729
Щекин Влас Сергеевич —
к.м.н., научно-морфологи-ческаялаборатория, orcid. org/0000-0003-2202-7071
Л.Р. Аитова' *, Е.Е. Гришина', Э.М. Сакаев', В.С. Щекин2
1 Башкирский государственный медицинский университет, Россия, Республика Башкортостан, Уфа
2 Институт фундаментальной медицины Башкирского государственного медицинского университета, Россия, Республика Башкортостан, Уфа
* Контакты: Аитова Лилия Ринатовна, e-mail: [email protected]
Аннотация
У трети пациентов с болезнью Крона встречается изолированное поражение тонкой кишки, из которых у 10 % болезнь сразу проявляется стриктурирующей формой. У таких больных диагноз зачастую выставляется только на операционном столе на фоне осложнений. Более того, после резекции тонкой кишки стриктуры анастомоза развиваются в 80 % случаев. Интерес представляют данные зарубежных авторов о снижении количества рецидивов стриктур тонкой кишки после резекции у пациентов с максимальным иссечением прилежащей брыжейки. В связи с этим представляются актуальными исследования, посвященные возможной роли брыжейки тонкой кишки в патогенезе болезни Крона. Если это так, то оптимальным методом оперативного лечения является резекция стриктурированного участка тонкой кишки с максимальным иссечением брыжейки пораженного сегмента с наложением противобрыжеечного анастомоза по типу «бок в бок», исключая контакт анастомоза с оставшейся частью брыжейки. В статье представлен современный обзор литературы, посвященный патогенезу, особенностям диагностики, выбору метода лечения стриктурирующей формы болезни Крона тонкой кишки, и собственные фотоматериалы.
Ключевые слова: болезнь Крона, стриктура, анастомоз, брыжейка тонкой кишки, противобрыжеечный анастомоз, стриктура тонкой кишки, адипоциты, стриктуропластика
Информация о конфликте интересов. Конфликт интересов отсутствует. Информация о спонсорстве. Данная работа не финансировалась.
Для цитирования: Аитова Л.Р., Гришина Е.Е., Сакаев Э.М., Щекин В.С. Стриктурирующая форма болезни Крона тонкой кишки (обзор литературы). Креативная хирургия и онкология. 2024;14(1):52-59. Ьйр8:/Мо1. о^/10.24060/2076-3093-2024-14-1-52-59
Поступила в редакцию: 01.10.2023
Поступила после рецензирования и доработки: 05.02.2024 Принята к публикации: 12.02.2024
Обзорные статьи / Reviews
Stricturing Small Bowel Crohn's Disease (Literature Review)
Lilia R. Aitova1 *, Elena E. Grishina1, Ernest M. Sakaev1, Vlas S. Shchekin2
1 Bashkir State Medical University, Ufa, Russian Federation
2 Institute of Fundamental Medicine, Bashkir State Medical University, Ufa, Russian Federation * Correspondence to: Liliya R. Aitova, e-mail: [email protected]
Abstract
One-third of Crohn's disease patients suffer from isolated small bowel lesions, 10% of whom immediately develop the stricturing form of this disease. In such patients, the diagnosis is often made only on the operating table in the setting of complications. Moreover, following small bowel resection, anastomosis strictures develop in 80% of cases. Of interest are the data of foreign authors on the decrease in the recurrences of small bowel strictures following resection in patients with maximal excision of the associated mesentery. In this connection, research on the possible role of small bowel mesentery in the pathogenesis of Crohn's disease seems relevant. If this is the case, the optimal surgical treatment consists in performing a resection of the strictured part of the small bowel with the maximal excision of the mesentery of the affected segment and with the creation of a side-to-side antimesenteric anastomosis, excluding the contact of the anastomosis with the remaining part of the mesentery. The article presents a modern literature review on the pathogenesis of the structuring form of small bowel Crohn's disease, its diagnostic specifics, and the selection of a treatment method, as well as original photo materials.
Lilia R. Aitova — Cand. Sci. (Med.), Department of Faculty Surgery, orcid.org/0000-0001-
Elena E. Grishina — Cand. Sci. (Med.), Department of Faculty Surgery, orcid.org/0000-0002-5621-8266
Ernest M. Sakaev — Cand. Sci. (Med.), Department of Faculty Surgery, orcid.org/0000-0003-0877-2729
Vlas S. Shchekin — Cand. Sci. (Med.), Scientific Morphology Laboratory, orcid.org/0000-0003-2202-7071
Keywords: Crohn's disease, stricture, anastomosis, small bowel mesentery, antimesenteric anastomosis, small bowel stricture, adipocytes, stricturoplasty
Conflict of interest. The authors declare no conflict of interest. Sponsorship data. This work is not funded.
For citation: Aitova L.P., Grishina E.E., Sakaev E.M., Shchekin V.S. Stricturing small bowel Crohn's disease (literature review). Creative Surgery and Oncology. 2024;14(1):52-59. https://doi.org/10.24060/2076-3093-2024-14-1-52-59
Received: 01.10.2023 Revised: 05.02.2024 Accepted: 12.02.2024
Обзорные статьи / Reviews
ВВЕДЕНИЕ
Болезнь Крона может поражать любой отдел желудочно-кишечного тракта, изолированное поражение тонкой кишки встречается в 27-30 % случаев [1]. Диагностика заболевания у таких пациентов до настоящего времени остается трудной задачей. У большинства больных на момент постановки диагноза наблюдается воспалительная форма болезни Крона, а приблизительно в 10 % случаев болезнь сразу проявляется в виде стриктуры тонкой кишки [2]. У 50 % пациентов развиваются стриктурирующие или пенетрирующие осложнения в течение первых 10 лет после постановки диагноза [3]. Необходимо отметить, что часто изолированное поражение тонкой кишки при болезни Крона протекает под маской различных гастроэнтерологических заболеваний. Зачастую данная патология диагностируется только на операционном столе на фоне уже резвившихся осложнений, и примерно 30-40 % пациентов нуждаются в повторной операции в течение 5-10 лет [4]. Причем было отмечено, что рецидив стриктуры возникает в непосредственной близости от анастомоза или на его месте. Это так называемые вторичные или анастомотические стриктуры. Частота рецидивов стриктуры без медикаментозной поддержки у оперированных больных составляет от 65 до 90 % в течение 12 месяцев и от 80 до 100 % в течение 3 лет [5].
Патофизиология болезни Крона. Роль брыжейки
Причины и патофизиология болезни Крона остаются не до конца изученными. Развитие данной патологии является результатом взаимодействия генетической предрасположенности, факторов окружающей среды и кишечной микрофлоры, что на фоне дефекта иммунного ответа приводит к активному, самоподдерживающемуся, не стихающему воспалению в слизисто-под-слизистом слое кишки, результатом которого являются язвы и эрозии [6]. Первоначальное поражение начинается с инфильтрата вокруг крипт кишки. При этом изъязвление сначала развивается на поверхности слизистой оболочки, а затем вовлекаются более глубокие слои кишечной стенки. По мере прогрессирования воспаления формируются неказеозные гранулемы, захватывающие все слои кишечной стенки [7, 8]. В последнее время в литературе все чаще появляются сообщения о значении брыжейки в развитии болезни Крона, представляющие мезентериальные изменения, подтвержденные данными магнитно-резонансной томографии, такие как выраженная васкуляризация брыжейки тонкой кишки, которые прослеживаются у пациентов до появления эндоскопических признаков поражения слизистой оболочки кишки [9]. Гистологически стриктурированная стенка кишки представляет собой двукратное утолщение за счет непропорциональных изменений внутри каждого слоя [10]. В результате эластичность стенки снижается примерно в 6 раз [11]. Известно, что включаются два основных параллельных процесса: расширение глад-комышечных слоев и процесс фиброзирования. В пораженных сегментах наблюдается повышенное отложе-
ние коллагена во всех слоях. Как правило, больше всего поражается подслизистый слой, который становится в 2-3 раза толще [12]. Тем не менее увеличение объема гладкомышечной ткани перевешивает увеличение коллагена; количественное расширение мышечного слоя больше способствует общему увеличению толщины кишечной стенки [13].
Основными гистологическими элементами брыжейки являются мезотелиальный покров и соединительнотканная сеть, в «ячейках» которой расположены популяции адипоцитов. На линии соприкосновения кишки и брыжейки брыжеечный мезотелий продолжается на кишку и входит в состав клеточного компонента серозного слоя последней. Далее соединительная ткань из серозной оболочки кишки переходит в соединительнотканные перегородки подлежащих слоев — мышечного и подслизистого, что свидетельствует о непрерывности соединительнотканных структур брыжейки и кишки. Место слияния стенки кишки и брыжейки называют «воротами» кишки, то есть это место входа и выхода сосудов. Выявленные при микроскопическом исследовании иссеченной брыжейки, прилежащей к стриктурированной кишке, фибросклероз сосудов с критическим стенозом просвета за счет продуктив-но-фибробластического процесса в интима-медиа, выраженное разрастание подэнтотелиальной соединительнотканной основы за счет увеличения количества коллагеновых волокон и тонкоядерных фибробластов, а также значительная лимфоцитарная инфильтрация и отложение депозитов гемосидерина по периферии сосудов (рис. 1), которые затем обнаруживаются и в кишечной стенке, в теории способны объяснить патогенез трансмурального язвенного поражения стенки кишки при болезни Крона [14].
Также убедительным фактом вовлечения брыжейки тонкой кишки в воспалительный процесс при болезни Крона является гипертрофия адипоцитов брыжейки, когда воспаленный брыжеечный жир выходит за пределы своего нормального анатомического расположения, огибает поверхность прилегающей кишки и занимает более 50 % ее окружности (рис. 2). Согласно некоторым исследованиям, степень жировой гипертрофии коррелирует с тяжестью воспаления в прилегающей кишке, гипертрофированные адипоци-ты являются главным источником провоспалительных цитокинов, а в случае наличия стриктуры расположение последней соответствует локализации гипертрофированного жира и так называемого «жирового обертывания» кишки [15-17].
Ранняя диагностика фиброзных стриктур
Стриктуры кишки при болезни Крона можно разделить на воспалительные, фиброзные и смешанные. Дифференциация состава стриктур, а именно относительных пропорций воспаления и фиброза, помогает принять решение о тактике лечения [18, 19]. Противовоспалительная терапия необходима для пациентов со стриктурами, которые имеют преимущественно активное воспаление, тогда как фиброзные стриктуры подлежат
Обзорные статьи / Reviews
как можно более раннему хирургическому лечению. Чувствительность рутинного пассажа бариевой взвеси по тонкой кишке для диагностики стриктур составляет всего 5 %. Эндоскопическая диагностика тонкой кишки ограничена поверхностным осмотром слизистой оболочки, недостаточной глубиной биопсии, риском ошибки из-за неоднородного распределения воспаления и фиброза в пределах участка стриктуры, а также невозможностью визуализации стриктур, находящихся за пределами досягаемости эндоскопа. Таким образом, компьютерная и магнитно-резонансная томография являются оптимальным методом диагностики стриктурирующей формы болезни Крона тонкой кишки (рис. 3).
Для определения степени фибротических и воспалительных изменений в стенке стриктурированной тонкой кишки перспективным методом считается магнитно-резонансная энтерография с контрастным усилением. Данный метод основан на повышенной ва-скуляризации воспалительного компонента стриктуры и пониженной васкуляризации фиброзного компонента кишечной стенки и, следовательно, неоднородном рисунке распределения контраста в тканях [20-23].
Варианты лечения стриктурирующей формы болезни Крона тонкой кишки
В настоящее время стриктуры тонкой кишки при болезни Крона являются основным показанием к операционному лечению [24]. Описаны случаи успешной эндоскопической баллонной дилатации как при первичных стриктурах, так и при стриктурах анастомоза. Однако для выполнения эндоскопической баллонной дилатации стриктура должна быть короткой (не более 5 см), прямой и доступной для колоноскопа [25, 26]. Существуют и другие эндоскопические методы, такие как:
Рисунок 1. Микрофотография соединительнотканной перегородки брыжейки тонкой кишки, резецированной вместе со стриктурой при болезни Крона: Критическое сужение просвета артерии (а), двухслойный плоскоклеточный пролиферирующий эндотелий (б), утолщение субэндотелиальной соединительнотканной основы за счет разрастания коллагеновых волокон (в), тонкоядерные фи-бробласты (г), отложения гемосидерина в паравазальной области (д), гипертрофированные адипо-циты (е). Окраска гематоксилин-эозином, х100
Figure 1. Micrograph showing the connective tissue septum of small bowel mesentery resected together with a stricture in Crohn's disease: Critical narrowing of the arterial lumen (a), two-layer squamous proliferating endothelium (б), thickening of the subendothelial connective tissue base due to the growth of collagen fibers (в), thin-nuclear fibroblasts (г), deposits of hemosiderin in the perivascular region (д), hypertrophic adipocytes (e). Hematoxylin-eosin staining, 100х
установка стента, введение стероидов или инъекций ингибиторов фактора некроза опухоли в кишечную стенку, эндоскопическая стриктуротомия с помощью игольчатого ножа. Но они не могут быть рекомендованы для рутинной практики из-за ограниченных данных
Рисунок 2. Макропрепарат резецированного участка тонкой кишки со стриктурой. Гипертрофированный брыжеечный жир (а), стриктура (б) Figure2. Resected section of the small bowel with a stricture. Hypertrophic mesenteric fat (a) and stricture (б)
* , 1
Рисунок 3. Компьютерная энтерография, переднебоковая проекция. Расширение престенотического отдела тонкой кишки до 3,47 см (а), стриктура терминального отдела подвздошной кишки (б) Figure 3. Computed enterography, anterolateral view. Prestenotic small bowel dilatation up to 3.47 cm (a), stricture of the terminal ileum (б)
Обзорные статьи / Reviews
о ближайших и отдаленных результатах и сложности их выполнения [27-29]. Следует отметить, что сроки выполнения операции имеют большое значение. Раннее удаление стриктурированного участка тонкой кишки приводит к более длительной клинической ремиссии [30], снижению риска повторной операции [31] и снижению общего воздействия стероидов и биологической терапии на организм пациента [32]. Поэтому решение о хирургическом вмешательстве в более ранние сроки после диагностики стриктуры следует рассматривать как приоритетное.
Если операция считается необходимой, возникает вопрос: стриктуропластика или резекция? Стрикту-ропластика подходит для множественных стриктур. По данным литературы, описано более 15 способов стриктуропластики. Наиболее популярными остаются стриктуропластики по Heineke-Mikulic, Finney и Michelassi. Ту или иную методику применяют при стриктурах различной протяженности. Так, при стриктурах менее 10 см применяют стриктуропластику по Heineke-Mikulic, при стриктурах 10-25 см — стрик-туропластику Finney. Нетрадиционные стриктуропла-стики, такие как стриктуропластика по Michelassi, применяют при более длинных стриктурах до 68 см [33]. Во всех трех видах стриктуропластика предполагает продольный разрез по противобрыжеечному краю, и в зависимости от типа применяется определенный метод наложения швов на стриктурированный участок. Несмотря на то что достоверно измерить протяженность стриктурированного сегмента может быть затруднительно, стриктуропластика не показана пациентам с длинными стриктурами (>68 см). Противопоказания к такого рода операциям включают множественные стриктуры или протяженные стриктуры в коротком сегменте кишки, стриктуры рядом с местом резекции, наличие абсцессов, перфораций, свищей. Стриктуропластика имеет такой же долгосрочный результат, как и резекция стрикту-рированного участка тонкой кишки, и особенно рекомендуется при множественных стриктурах, предшествующих длинносегментных резекциях, ранних рецидивах, синдроме короткой кишки и у истощенных больных [34].
В большинстве случаев основным методом оперативного лечения стриктурирующей формы болезни Крона остается резекция тонкой кишки с наложением анастомоза либо «конец в конец», либо «бок в бок». Консенсус ECCO по хирургическому лечению болезни Крона на основании нескольких метаанализов высказывается в пользу широкого анастомоза типа «бок в бок», так как диаметр анастомоза при болезни Крона имеет первостепенное значение в контексте прогнозируемых рецидивов стриктуры и фиброза анастомоза [35-37]. Рецидив стриктуры в месте анастомоза возникает у 80-90 % пациентов в течение 3 лет после операции, а от 30 до 40 % пациентам требуется повторная операция после первичной резекции [37]. Как правило, при резекции тонкой кишки на фоне болезни Крона утолщенная воспаленная брыжейка отсекается максималь-
но близко к кишечной стенке из соображений минимизации риска кровотечения [38, 39]. Учитывая последние данные о возможном участии брыжейки в патогенезе болезни Крона, операцией выбора представляется противобрыжеечный анастомоз с иссечением пораженного сегмента брыжейки. Частота повторных операций после резекции тонкой кишки с отключенным от брыжейки анастомозом составляет 2,9 % по данным некоторых зарубежных авторов [40, 41]. Преимуществом данной методики является ширина анастомоза и его полная изоляция от брыжейки. Многие авторы признают безопасность такого анастомоза, а также значительное снижение случаев рецидива стриктуры и необходимости повторного оперативного лечения [42].
Методика наложения анастомоза заключается в следующем. Брыжейка кишки должна быть мобилизована в пределах пораженного сегмента с сохранением адекватной васкуляризации в зоне анастомоза. Пораженная часть кишки резецируется после прошивания приводящей и отводящей культей сшивающим аппаратом. Культи сшиваются вместе для создания опорного каркаса для размежевания анастомоза и брыжейки. Продольная энтеротомия выполняется с противобрыжееч-ной стороны, на расстоянии 1 см от линии швов между культями. Затем в поперечном направлении накладывается двухрядный ручной анастомоз по типу «бок в бок». Протяженность энтеротомии позволяет добиться просвета анастомоза приблизительно 7-8 см. В результате получается широкий анастомоз, а непосредственный контакт с брыжейкой отсутствует. Данный хирургический метод, конфигурация анастомоза и разобщение с брыжейкой патофизиологически объясняют весьма низкий процент послеоперационных рецидивов [43].
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
Таким образом, современной стратегией лечения стрик-турирующей формы болезни Крона тонкой кишки является как можно более раннее выявление стриктуры и резекция стриктурированного участка до развития осложнений. Стоит рассмотреть возможную первичную роль брыжейки в патогенезе заболевания и предпочесть наложение противобрыжеечного широкого анастомоза «бок в бок» с максимальным клиновидным иссечением прилегающей брыжейки с целью разобщения кишки с анастомозом и оставшейся брыжейкой.
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1 Ranasinghe I.R., Hsu R. Crohn Disease. In: StatPearls. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2023 [cited 2023 Feb 20]. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK436021/
2 Myrelid P., Soop M., George B.D. Surgical planning in penetrating abdominal Crohn's disease. Front Surg. 2022;9:867830. DOI: 10.3389/ fsurg.2022.867830
3 Hibiya S., Ohtsuka K., Takenaka K., Kawamoto A., Matsuyama Y., Udagawa Y., et al. Mucosal healing of small intestinal stricture is associated with improved prognosis post-dilation in Crohn's disease. BMC Gastroenterol. 2022;22(1):218. DOI: 10.1186/s12876-022-02300-2
4 2015 European Society of Coloproctology collaborating group. Risk factors for unfavourable postoperative outcome in patients with Crohn's disease undergoing right hemicolectomy or ileocaecal resection An international audit by ESCP and S-ECCO. Colorectal Dis. 2017, Sep 15. DOI: 10.1111/codi.13889
Обзорные статьи I Reviews
5 Li Y., Mohan H., Lan N., Wu X., Zhou W., Gong J., et al. Mesenteric excision surgery or conservative limited resection in Crohn's disease: study protocol for an international, multicenter, randomized controlled trial. Trials. 2020;21(1):210. DOI: 10.1186/s13063-020-4105-x
6 Головенко О.В., Хомерики С.Г., Иванова Е.В., Федоров Е.Д., Лоранская И.Д., Ситкин С.И. и др. Воспалительные заболевания кишечника. Клинические, эндоскопические, морфологические аспекты диагностики. Принципы современной терапии. М: Прима Принт, 2022.
7 Luglio G., Rispo A., Imperatore N., Giglio M.C., Amendola A., Tropeano F.P., et al. Surgical prevention of anastomotic recurrence by excluding mesentery in Crohn's disease: The SuPREMe-CD Study — a randomized clinical trial. Ann Surg. 2020;272(2):2107. DOI: 10.1097/ SLA.0000000000003821
8 Greuther T., Piller A., Fournier N., Safroneva E., Straumann A., Biedermann L., et al. Upper gastrointestinal involvement in Crohn's disease: incidence, risk factors and course of the disease. J Crohn's Colitis. 2018;12(12):1399409. DOI: 10.1093/ecco-jcc/jjy121
9 Desreumaux P., Ernst O., Geboes K., Gambiez L., Berrebi D., Müller-Alouf H., et al. Inflammatory alterations in mesenteric adipose tissue in Crohn's disease. Gastroenterology. 1999;117(1):73-81. DOI: 10.1016/ s0016-5085(99)70552-4
10 Zhang X., Ko H.M., Torres J., Panchal H.J., Cai Z., Wagner M., et al. Luminally polarized mural and vascular remodeling in ileal strictures of Crohn's disease. Hum Pathol. 2018;79:42-9. DOI: 10.1016/j.hump-ath.2018.03.004
11 Alfredsson J., Wick M.J. Mechanism of fibrosis and stricture formation in Crohn's disease. Scand J Immunol. 2020;92(6):e12990. DOI: 10.1111/sji.12990
12 Scheibe K., Kersten C., Schmied A., Vieth M., Primbs T., Carlé B., et al. Inhibiting interleukin 36 receptor signaling reduces fibrosis in mice with chronic intestinal inflammation. Gastroenterology. 2019;156(4):108297.e11. DOI: 10.1053/j.gastro.2018.11.029
13 Chen W., Lu C., Hirota C., Iacucci M., Ghosh S., Gui X. Smooth muscle hyperplasia/hypertrophy is the most prominent histological change in Crohn's fibrostenosing bowel strictures: a semiquantitative analysis by using a novel histological grading scheme. J Crohns Colitis. 2017;11(1):92 - 104. DOI: 10.1093/ecco-jcc/jjw126
14 Yin Y., Zhu Z.X., Li Z., Chen Y.S., Zhu W.M. Role of mesenteric component in Crohn's disease: A friend or foe? World J Gastrointest Surg. 2021;13(12):153649. DOI: 10.4240/wjgs.v13.i12.1536
15 Rivera E.D., Coffey J.C., Walsh D., Ehrenpreis E.D. The mesentery, systemic inflammation, and Crohn's disease. Inflamm Bowel Dis. 2019;25(2):226 - 34. DOI: 10.1093/ibd/izy201
16 Crohn B.B., Ginzburg L., Oppenheimer G.D. Regional ileitis: a pathologic and clinical entity. JAMA. 1932;99(16):1323 - 9. DOI: 10.1001/ jama.1932.02740680019005
17 Sheehan A.L., Warren B.F., Gear M.W., Shepherd N.A. Fat-wrapping in Crohn's disease: pathological basis and relevance to surgical practice. Br J Surg. 1992;79(9):955-8. DOI: 10.1002/bjs.1800790934
18 Sleiman J., Chirra P., Gandhi N.S., Baker M.E., Lu C., Gordon I.O., et al. Crohn's disease related strictures in cross-sectional imaging: More than meets the eye? United European Gastroenterol J. 2022;10(10):1167 - 78. DOI: 10.1002/ueg2.12326
19 Zhong Y.K., Lu B.L., Huang S.Y., Chen Y.J., Li Z.P., Rimola J., et al. Cross-sectional imaging for assessing intestinal fibrosis in Crohn's disease. J Dig Dis. 2020;21(6):34250. DOI: 10.1111/1751-2980.12881
20 Демидова А.А., Данилов М.А., Леонтьев А.В., Абдулатипова З.М., Саакян Г.Г. Расширенная резекция брыжейки тонкой кишки при болезни Крона (обзор литературы). Наука молодых (Eruditio Juve-nium). 2022;10(2):213 - 24. DOI: 10.23888/HMJ2022102213-224
21 Seastedt K.P., Trencheva K., Michelassi F., Alsaleh D., Milsom J.W., Sonoda T., et al. Accuracy of CT enterography and magnetic resonance enterography imaging to detect lesions preoperatively in patients undergoing surgery for Crohn's disease. Dis Colon Rectum. 2014;57(12):1364-70. DOI: 10.1097/DCR.0000000000000244
22 Pous-Serrano S., Frasson M., Palasi Giménez R., Sanchez-Jorda G., Pamies-Guilabert J., Llavador Ros M., et al. Accuracy of magnetic resonance enterography in the preoperative assessment of patients with Crohn's disease of the small bowel. Colorectal Dis. 2017;19(5):O126-33. DOI: 10.1111/codi.13613
23 Taylor S.A., Mallett S., Bhatnagar G., Morris S., Quinn L., Tomini F., et al. Magnetic resonance enterography compared with ultraso-nography in newly diagnosed and relapsing Crohn's disease patients: the METRIC diagnostic accuracy study. Health Technol Assess. 2019;23(42):1-162. DOI: 10.3310/hta23420
24 Rieder F., Zimmermann E.M., Remzi F.H., Sandborn W.J. Crohn's disease complicated by strictures: a systematic review. Gut. 2013;62(7):1072-84. DOI: 10.1136/gutjnl-2012-304353
25 Bettenworth D., Gustavsson A., Atreja A., Lopez R., Tysk C., van Assche G., et al. A pooled analysis of efficacy, safety, and long-term outcome of endoscopic balloon dilation therapy for patients with stric-turing Crohn's disease. Inflamm Bowel Dis. 2017;23(1):133 - 42. DOI: 10.1097/MIB.0000000000000988
26 Taida T., Nakagawa T., Ohta Y., Hamanaka S., Okimoto K., Saito K., et al. Long-term outcome of endoscopic balloon dilatation for strictures in patients with Crohn's disease. Digestion. 2018;98(1):26-32. DOI: 10.1159/000486591
27 Lu C., Holubar S.D., Rieder F. How I approach the management of stricturing Crohn's disease. Am J Gastroenterol. 2019;114(8):1181 - 4. DOI: 10.14309/ajg.0000000000000199
28 Lan N., Shen B. Endoscopic stricturotomy with needle knife in the treatment of strictures from inflammatory bowel disease. Inflamm Bowel Dis. 2017;23(4):50213. DOI: 10.1097/MIB.0000000000001044
29 Navaneethan U., Lourdusamy D. Endoscopic stricturotomy and stric-tureplasty. Gastrointest Endosc Clin N Am. 2022;32(4):687 - 97. DOI: 10.1016/j.giec.2022.05.002
30 Aratari A., Papi C., Leandro G., Viscido A., Capurso L., Caprilli R. Early versus late surgery for ileo-caecal Crohn's disease. Aliment Pharmacol Ther. 2007;26(10):1303-12. DOI: 10.1111/j.1365-2036.2007.03515.x
31 Latella G., Cocco A., Angelucci E., Viscido A., Bacci S., Necozione S., et al. Clinical course of Crohn's disease first diagnosed at surgery for acute abdomen. Dig Liver Dis. 2009;41(4):269-76. DOI: 10.1016/j. dld.2008.09.010
32 Golovics P.A., Lakatos L., Nagy A., Pandur T., Szita I., Balogh M., et al. Is early limited surgery associated with a more benign disease course in Crohn's disease? World J Gastroenterol. 2013;19(43):7701-10. DOI: 10.3748/wjg.v19.i43.7701
33 Fousekis F.S., Mitselos I.V., Tepelenis K., Pappas-Gogos G., Katsanos K.H., Lianos G.D., et al. Medical, endoscopic and surgical management of stricturing Crohn's disease: current clinical practice. J Clin Med. 2022;11(9):2366. DOI: 10.3390/jcm11092366
34 Chandrasinghe P. Surgical management of small bowel Crohn's disease. Front Surg. 2022;9:759668. DOI: 10.3389/fsurg.2022.759668
35 Bemelman W.A., Warusavitarne J., Sampietro G.M., Serclova Z., Zmora O., Luglio G., et al. ECCO-ESCP Consensus on surgery for Crohn's disease. J Crohns Colitis. 2018;12(1):1-16. DOI: 10.1093/ecco-jcc/jjx061
36 Simillis C., Purkayastha S., Yamamoto T., Strong S.A., Darzi A.W., Tekkis P.P. A meta-analysis comparing conventional end-to-end anastomosis vs. other anastomotic configurations after resection in Crohn's disease. Dis Colon Rectum. 2007;50(10):1674-87. DOI: 10.1007/ s10350-007-9011-8
37 Guo Z., Li Y., Zhu W., Gong J., Li N., Li J. Comparing outcomes between side-to-side anastomosis and other anastomotic configurations after intestinal resection for patients with Crohn's disease: a meta-analysis. World J Surg. 2013;37(4):893-901. DOI: 10.1007/ s00268-013-1928-6
38 Sehgal R., Coffey J.C. Historical development of mesenteric anatomy provides a universally applicable anatomic paradigm for complete/total mesocolic excision. Gastroenterol Rep (Oxf). 2014;2(4):245-50. DOI: 10.1093/gastro/gou046
39 Culligan K., Walsh S., Dunne C., Walsh M., Ryan S., Quondamatteo F., et al. The mesocolon: a histological and electron microscopic characterization of the mesenteric attachment of the colon prior to and after surgical mobilization. Ann Surg. 2014;260(6):1048-56. DOI: 10.1097/ SLA.0000000000000323
40 Landerholm K., Reali C., Mortensen N.J., Travis S.P.L., Guy R.J., George B.D. Short- and long-term outcomes of strictureplasty for obstructive Crohn's disease. Colorectal Dis. 2020;22(9):115968. DOI: 10.1111/codi.15013
41 Coffey C.J., Kiernan M.G., Sahebally S.M., Jarrar A., Burke J.P., Kiely P.A., et al. Inclusion of the mesentery in ileocolic resection for Crohn's disease is associated with reduced surgical recurrence. J Crohns Colitis. 2018;12(10):1139 - 50. DOI: 10.1093/ecco-jcc/jjx187
42 Luglio G., Kono T. Surgical techniques and risk of postoperative recurrence in CD: a game changer. Inflamm Intest Dis. 2021;7(1):217. DOI: 10.1159/000515372
43 Peltrini R., Greco P.A., Manfreda A., Luglio G., Bucci L. Kono-S anastomosis after intestinal resection for Crohn's disease. Updates Surg. 2020;72(2):33540. DOI: 10.1007/s13304-019-00700-w
