Стеклянно-полимерные микрофлюидные чипы для электрофоретического разделения биомолекул Текст научной статьи по специальности «Нанотехнологии»

ISSN 0868-5886

НАУЧНОЕ ПРИБОРОСТРОЕНИЕ, 2014, том 24, № 4, c. 67-76 ФИЗИКА И ХИМИЯ ПРИБОРОСТРОЕНИЯ

УДК 532.69 + 543.545.2

© А. Л. Буляница, Я. С. Посмитная, Г. Е. Рудницкая, Т. А. Лукашенко, А. И. Цымбалов, А. А. Евстрапов

СТЕКЛЯННО-ПОЛИМЕРНЫЕ МИКРОФЛЮИДНЫЕ ЧИПЫ ДЛЯ ЭЛЕКТРОФОРЕТИЧЕСКОГО РАЗДЕЛЕНИЯ БИОМОЛЕКУЛ

Приведены результаты работ по созданию прототипа стеклянно-полимерного микрофлюидного чипа для экспресс-анализа биомолекул методом электрофореза. В качестве основного материала использован поли-диметилсилоксан Sylgard 184, в котором методом "мягкой" литографии сформирована сеть микроканалов. Обсуждаются результаты, полученные при разных способах физико-химической обработки рабочих поверхностей каналов микрофлюидного чипа, оценивается влияние способов обработки на электроосмотический поток. Микрофлюидные чипы протестированы при электрофоретическом разделении смеси олиго-нуклеотидов 10, 20, 30, 40 и 50 оснований. На основе анализа электрофореграмм предложены модели информационных сигналов (пиков) и помех, проверены базовые теоретические положения, определяющие механизм конвективно-диффузионного переноса компонентов смеси.

Кл. сл.: микрофлюидный чип, полидиметилсилоксан, "мягкая" литография, электрофорез, нуклеиновая кислота, конвективно-диффузионный перенос, модель сигнала

ВВЕДЕНИЕ

Развитие и совершенствование технологий и методов оперативного создания микрофлюидных чипов (МФЧ) вызывает неослабевающий интерес исследователей, т. к. позволяет изготавливать микрочипы в условиях лабораторий, не оснащенных специализированным оборудованием. Особое внимание уделяется методам "мягкой" литографии (soft lithography) термоотверждаемых полимеров [1, 2]. Наиболее используемым материалом для быстрого макетирования микрофлюидных чипов является полидиметилсилоксан (ПДМС), в частности Sylgard 184 (Dow Corning Corporation, США) [3]. Для создания микроразмерных структур в этом материале требуется мастер-форма, которая может быть изготовлена в организации, где есть необходимое оснащение для методов фотолитографии. Важными задачами при создании МФЧ являются: обеспечение герметичности микроканалов и реакционных камер; модификация рабочей поверхности ПДМС с целью придания необходимых свойств (например, регулирования и стабилизации электроосмотического потока). Для этого используется ряд физико-химических методов, которые и рассматриваются в данной статье.

Реализация методов электрофоретического разделения биологических проб на МФЧ позволяет достигнуть ряда дополнительных преимуществ по сравнению с классическим методом капилляр-

ного электрофореза: сверхмалые объемы анализируемой пробы и дорогостоящих реагентов, высокая скорость анализа, низкое энергопотребление. Поэтому, развитию и совершенствованию методов электрофореза на МФЧ до сих пор уделяется внимание многих исследователей [4, 5]. В работе обсуждается вариант гибридного (стеклянно-полимерного) микрофлюидного чипа для электрофоретического разделения биомолекул и приводятся результаты его апробации при разделении смеси олигонуклеотидов, меченных FITC (Fluorescein isothiocyanate).

ИЗГОТОВЛЕНИЕ ПРОТОТИПА СТЕКЛЯННО-ПОЛИМЕРНОГО МИКРОФЛЮИДНОГО ЧИПА

Процесс создания аналитического МФЧ включает стадии: выбора материалов; разработки топологии и конструкции микрочипа; изготовления микро- и наноразмерных структур; обработки поверхности; герметизации конструкции; контроля и испытаний готового устройства.

В качестве материалов для изготовления прототипов МФЧ применялись:

• стекло марки Крон 8 (К8) (ГОСТ 3514-76, Россия);

• ПДМС марки Sylgard® 184 (Dow Corning Corporation, США).

Рис. 1. Прототип МФЧ. На эскизе топологии МФЧ (а): Р1-Р5 — резервуары для загрузки пробы и буферного раствора, О1 и О2 — пересечения каналов. На изображении герметизированного МФЧ (б):

1 — стеклянная подложка,

2 — пленка ПДМС с системой каналов и резервуаров

а

б

На основании анализа литературных данных была выбрана универсальная топология, объединяющая в себе топологии "Т-инжектор" и "простой крест" [6].

С учетом приборных особенностей (имеющейся системы детектирования, расположения рабочих электродов и необходимой длины сепа-рационного канала) были определены соответствующие размеры, которые явились основой для топологии мастер-формы, состоящей из трех секций для получения трех реплик из полимера. Эскиз одной секции приведен на рис. 1, а, где О1Р1 = О1Р3 = О2Р2 = О2Р4 = 3.9 мм; О1О2 = 0.5 мм; О2Р5 = 41.0 мм; ширина каналов 60 мкм; диаметр резервуаров для загрузки пробы и слива отработанного раствора 2 мм. Высота полученных на мастер-форме структур контролировалась на профило-метре Ambios Technology (США) и составила 18 ±1 мкм.

На основании данной топологии методом фотолитографии была изготовлена мастер-форма из кремния и фоторезиста SU-8 2025 (MicroChem Corp., США) в Академическом университете — Научно-образовательном центре нанотехнологий РАН (Санкт-Петербург).

Методом "мягкой" литографии [7] осуществлялось получение отпечатков структур в ПДМС, основанное на отверждении раствора полимера, помещенного поверх мастер-формы. Затем проводилась герметизация сформированных микроразмерных структур посредством соединения отпечатка (реплики) из ПДМС (размером 54x14x2 мм)

со стеклянной пластиной (стекло К8, размером 60x15x1.5 мм) после их обработки высокочастотной (13.56 МГц) плазмой в среде кислорода при давлении -1 мбар на установке Diener Zepto (Германия). Изображение готовой конструкции МФЧ приведено на рис. 1, б.

Для мастер-формы на оптическом инвертированном микроскопе Axio Observer.D1m (Carl Zeiss, Германия) была измерена ширина каналов в двух крайних точках сепарационного канала О2, Р5. Для реплик из ПДМС контролировались ширина и глубина каналов. Измерения проводились на оптическом инвертированном микроскопе с объективом 20х. Было рассчитано среднее значение ширины каналов по трем репликам, среднее квадратичное отклонение (СКО) и оценен коэффициент вариации (КВ). В области Р5 среднее значение ширины составило 63.5 мкм, СКО — 4.2 мкм, КВ — 6.6 % при заданной ширине канала на мастер-форме 61.3 мкм.

ИССЛЕДОВАНИЕ ФИЗИКО-ХИМИЧЕСКИХ МЕТОДОВ И ВЫБОР УСЛОВИЙ ОБРАБОТКИ ПОВЕРХНОСТЕЙ В ПДМС

Целесообразность исследований физико-химических методов модификации ПДМС продиктована необходимостью придания поверхности гид-рофильности, уменьшения степени адсорбции биомолекул, создания функциональных слоев (иммобилизация гелевых сред, ферментов, сенсорных слоев) и др. Трудности при обработке по-

верхности связаны с тем, что в процессе отверждения полимера непрореагировавшие компоненты, обладающие высокой подвижностью, диффундируют к поверхности, что вызывает восстановление гидрофобных свойств полимера после обработки. Например, плазменная обработка в различных средах, часто применяемая для создания герметичных конструкций МФЧ, не позволяет получить стабильные во времени свойства поверхности. Поэтому обработка плазмой является лишь предварительным этапом подготовки поверхности к последующему осаждению (из газовой среды или растворов) различных функциональных слоев. В частности, при изготовлении МФЧ для электрофоретического разделения проб необходимым условием для получения воспроизводимых результатов при разделении компонентов является стабилизация электроосмотических свойств, которую можно достичь различными методами физико-химической модификации поверхности.

Все это является мотивацией исследований, направленных на выбор эффективных методов модификации, позволяющих получать требуемые (в зависимости от решаемых задач) стабильные во времени свойства поверхности. Например, в некоторых случаях для разделения нуклеиновых кислот необходимо создать условия для достижения низких значений электроосмотического потока.

Были исследованы следующие способы обработки и модификации открытых поверхностей ПДМС, а также каналов МФЧ:

1) высокочастотной (13.56 МГц) плазмой в среде кислорода (1.5 мин) и аргона (1 мин) при низком давлении «1 мбар (установка Diener Zepto, Германия);

2) 1 % водным раствором поливинилового спирта (ПВС) (Sigma-Aldrich Corp, США);

3) 3 % водным раствором Kolliphor (Sigma-Al-drich Corp., США).

За основу обработки раствором поливинилового спирта каналов МФЧ для электрофоретиче-ского разделения проб была принята методика, описанная в работе [8]. Предварительная обработка плазмой в среде кислорода придает не только выраженные гидрофильные свойства, но и вызывает образование на поверхности различных функциональных групп и свободных радикалов (в том числе С-ОН, Si-OH, СООН и др.). Таким образом, за счет образования водородных связей происходит адсорбция слоя ПВС из водного раствора на обработанную плазмой поверхность ПДМС.

Другим способом, позволяющим снизить краевой угол, а также влияющим на поверхностный заряд, образующийся на стенках канала МФЧ и вызывающий образование слоя противоионов из буферного раствора, является модификация

раствором КоШр^г. Обработка аналогичным линейным сополимером описана в [9]. В основе механизма закрепления слоя полимера лежит образование свободных радикалов на поверхности ПДМС в процессе плазменной обработки в среде аргона. Некоторые из этих радикалов взаимодействуют с радикалами, образованными в плазме, что приводит к появлению на поверхности функциональных групп. Активированная таким образом поверхность может реагировать с кислородом или влагой, содержащимися в воздухе, образуя группы Й02, или 8^СН2ОН на поверхно-

сти ПДМС. После плазменной обработки образцы (полимерные пленки и МФЧ) выдерживались в водном растворе КоШр^г в течение 24 ч при температуре 60 °С для адсорбции на поверхности тонкой пленки.

Метод лежащей капли позволил изучить влияние физико-химических способов обработки на свойства смачивания открытой поверхности ПДМС дистиллированной водой. Измерения краевого угла проводились с помощью экспериментальной установки на базе оптического микроскопа РптаЕхреГ; (ЛОМО, Россия). Для каждого образца было выполнено по 6-8 измерений краевого угла при объеме капли воды 20 мкл.

Оценку величины ^ЭОП подвижности электроосмотического потока (ЭОП) при использовании буферного раствора (50 мМ №2В407, рН = 9.4) в зависимости от способа обработки осуществляли на экспериментальных образцах микрофлюидных чипов с помощью микрофлюидной аналитической системы МФАС-01 (ИАП РАН, Санкт-Петербург). Величину ^ЭОП определяли по методу, описанному

в работе [10], и по формуле:

- 1 •1

^ЭОП - йд?'

где Ь — длина сепарационного канала (Ь = 45.2 мм), и — напряжение электрофореза (и = 1000 В), А? = ¿2 - ¿1 — время изменения величины тока, которое определялось экспериментально.

Результаты расчетов средней величины краевых углов, а также электроосмотической подвижности буферного раствора в каналах МФЧ (по данным 6-7 измерений А? для каждого микрочипа) в зависимости от способа обработки с указанием среднего квадратичного отклонения и оценки коэффициента вариации приведены в табл. 1.

Согласно данным табл. 1, следует сделать вывод о нестабильности свойств поверхности каналов микрочипа после плазменной обработки, о чем свидетельствуют наибольшие значения погрешностей. Наиболее эффективным способом модификации микрочипов с точки зрения получения

Табл. 1. Величины краевых углов (в) образцов пленок ПДМС, ^ЭОП буферного раствора в каналах МФЧ в зависимости от способа обработки

Характеристика Необраб. Обработка плазмой в среде О2 Обработка раствором ПВС Обработка плазмой в среде Аг Обработка раствором КоШр^г

Средн. знач. в ±СКО (град) 107±1 <10 61±2 «20 39±4

Оценка КВв (%) 1 - 3 - 10

Средн. знач. ¡л ±СКО (см2 /(В• с)•104) 3.0 ±0.2 4.1 ±0.6 2.1 ±0.1 - 1.8 ±0.1

Оценка КВ^ (%) 7.5 14.9 5.6 - 4.1

1.0—1

и* V

50

100

150

200

250 Время,

300

Рис. 2. Электрофореграмма разделения смеси олигонуклеотидов. 1 — зависимость для необработанного микрочипа; 2 — для обработанного раствором КоШр^г (пики нумеруются слева направо и соответствуют компонентам 10, 20, 30, 40 и 50 оснований)

с

наименьшего значения краевого угла и наименьшей величины ЭОП оказалась обработка раствором КоШр^г. Уменьшение ЭОП желательно. Суммарная результирующая подвижность компонентов при электрофорезе есть разность электро-форетической и электроосмотической подвижно-стей.

Таким образом, именно обработка раствором КоШр^г была выбрана для модификации микрочипов с целью их тестирования при разделении смеси олигонуклеотидов.

ЭЛЕКТРОФОРЕТИЧЕСКОЕ РАЗДЕЛЕНИЕ

СМЕСИ ОЛИГОНУКЛЕОТИДОВ НА СТЕКЛЯННО-ПОЛИМЕРНОМ ЧИПЕ

Для электрофореза на микрочипах в качестве анализируемой пробы была выбрана смесь олиго-нуклеотидов (полиаденилатов) с длиной цепи 10, 20, 30, 40 и 50 нуклеотидов с флуоресцентной

меткой. Электрофорез проводился на микрофлюидной аналитической системе МФАС-01 с детектором лазер-индуцированной флуоресценции (длина волны возбуждения 473 нм, регистрации — 510-530 нм, напряжение электрофореза 1500 В). В качестве буферного раствора использовался 6 % раствор полидиметилакриламида с добавлением 7 М мочевины. Результаты разделения исследуемой пробы приведены на рис. 2. Зависимости нормированы относительно максимального значения интенсивности флуоресценции.

Согласно полученным зависимостям, можно оценить время, необходимое для проведения элек-трофоретического разделения смеси олигонуклео-тидов. Для необработанного микрочипа (нижняя зависимость) это время составило «275 с, тогда как для обработанного раствором КоШр^г (верхняя зависимость) около 220 с. Таким образом, уменьшение величины электроосмотического потока позволяет сократить время разделения пробы.

МОДЕЛИ ИНФОРМАТИВНЫХ СИГНАЛОВ (ЭЛЕКТРОФОРЕТИЧЕСКИХ ПИКОВ) И МОДЕЛЬ СЛУЧАЙНОЙ СОСТАВЛЯЮЩЕЙ СИГНАЛА

Пики олигонуклеотидов 10, 20, 30, 40 и 50 оснований для обработанных раствором КоШр^г и необработанных поверхностей адекватно аппроксимируются зависимостями вида

У( х) - У0 +-

ехр

w

(1)

где у0 — локальный уровень фонового сигнала; w /2 — корень из дисперсии (стандартное отклонение); хс — центр тяжести пика; х — отсчеты сигнала (интервал отсчетов равен 0.2 с); амплитуда

пика равна А/(); w также измеряется в отсчетах.

Параметры моделей пиков и квадрат выборочного коэффициента корреляции R как характеристика адекватности модели приведены в табл. 2.

Данные табл. 2 позволяют утверждать, что качество аппроксимации очень высокое. Пример аппроксимирующей зависимости для пика 3 (30 оснований) для необработанного МФЧ приведен на рис. 3. Аппроксимация остальных пиков моделями (1) имеет качественно схожий вид. Во всех случаях сигнал приведен к нормированному виду относительно максимума. Отношение величины фона и амплитуды пика (у0 / А) для МФЧ, обработанного раствором КоШр^г, по крайней мере вдвое большее по сравнению с необработанным.

Табл. 2. Параметры математических моделей (1) электрофоретических пиков при различных способах обработки поверхностей материалов

Пик Я2 А w Хс У0 Способ обработки

1 0.9760 5.5801 6.1113 1003.35 0.2042 Необработанный

2 0.9802 5.4413 6.4649 1080.18 0.2298

3 0.9846 6.3828 7.0676 1152.55 0.2157

4 0.9842 7.9662 10.563 1219.51 0.1869

5 0.9687 5.9027 12.120 1285.75 0.1488

1 0.9222 6.8571 11.070 820.07 0.4430 Обработанный рас-

2 0.9114 9.4332 12.745 879.41 0.3399 твором КоШр^г

3 0.9537 11.225 14.951 937.72 0.2625

4 0.9290 7.9503 10.487 991.62 0.3330

5 0.9495 4.6415 10.382 1041.11 0.2972

—I—

200

-о -о

—I—

215

Рис. 3. Аппроксимация пика 3 (для необработанного МФЧ) зависимостью (1) (нумерация отсчетов сигнала уменьшена на 950)

Отсчеты сигнала

Анализ связи между хс — временными положениями центров тяжести (временами выхода) пиков компонент для обработанного и необработанного МФЧ дает высокую корреляцию: оценки выборочного коэффициента корреляции и его медианного аналога равны соответственно 0.99992 и 0.99974. Это свидетельствует об очень сильной линейной связи между временами выхода соответствующих компонент и о линейной связи между соответствующими подвижностями (электрофоре-тической и электроосмотической). Т. к. также наблюдается пропорциональность времен выхода (коэффициент близок к 0.81), то это может означать соответствующее пропорциональное сокращение продолжительности всех стадий анализа от загрузки пробы до электрофоретического разделения.

Начальная фаза сигнала (порядка 180 с для необработанного и 140 с для обработанного МФЧ) заведомо не содержит аналитических пиков, и ее можно использовать для анализа случайной неинформативной составляющей сигнала. В первом случае математическое ожидание и стандартное отклонение равны соответственно 0.0924 и 0.0137; во втором — 0.3811 и 0.0379. Имеющаяся систематическая составляющая (дрейф фонового сигнала) в виде линейного тренда по критерию Фишера незначима.

Для анализа закона случайной составляющей применен критерий согласия Пирсона (хи-квадрат-критерий). В обоих случаях гипотеза о нормальном (гауссовом) характере распределения принимается с высокой вероятностью: около 83 и 72 %. Тем самым можно полагать, что среди факторов, формирующих случайную погрешность, нет доминирования какого-либо одного. Т. е. все составляющие погрешности сопоставимы друг с другом по вкладу.

Следующий вопрос — достаточность отсчетов для идентификации пика компонент. Если использовать в качестве критерия практически достоверной дискриминации фон/пик разность величин, равную или превышающую 4а, то каждый из рассмотренных в табл. 2 пиков содержит не менее 14-ти отсчетов, что представляется достаточным. Пороговый уровень 4а расхождения (фон—начало или конец пика) при нормальном законе распределения соответствует вероятности ошибки определения начала (конца) пика менее 0.25 %.

АНАЛИЗ БАЗОВЫХ ТЕОРЕТИЧЕСКИХ

ПОЛОЖЕНИЙ, СВЯЗАННЫХ С КОНВЕКТИВНО-ДИФФУЗИОННЫМ

ПЕРЕНОСОМ ВЕЩЕСТВА В МИКРОЧИПЕ

Анализ модельной формы конвективного скоростного профиля может основываться на оцени-

вании размывания пиков компонент. Т. к. профиль формируется не гидравлическим, а электрофоре-тическим (электроосмотическим) способом, то модельный профиль полагаем следующего вида: в пристеночных областях скорость меняется по линейному закону от нуля до максимальной величины, на остальной области она максимальная и постоянна. Эта зависимость имеет вид:

V(2) = V* • f (2),

f (2) =

1,

0 < 2 < 1 - 8;

(2)

(1 -2)/8, 1 -8 <2< 1,

где V — максимальная скорость; 2 — относительная ширина канала, отсчитываемая от оси и нормированная на полуширину h .

Задача состоит в оценивании пристеночной длины (8) и сопоставлении ее с длиной Дебая.

Основой расчетов будут служить ранее найденные зависимости центра тяжести пика и средней по сечению дисперсии пика для случая микроканала — совокупности плоских щелей одинакового размера [11]. Необходимо разложение в ряд

Фурье профиля (2): /(2) = В0 + V В соэ^72).

3 =1

Тогда усредненные по сечению координаты центра тяжести и дисперсии пика равны хс = и В t и

а2) =

2 + Ре2V

В12

1( 3

Л

Dt +

+

^Л2

— --Ре2 V 3 2

В

32 Л

1(3

(3)

Здесь центр тяжести и корень из средней дисперсии приведены к длинам, нормированным на полуширину канала h; коэффициент диффузии D и максимальная скорость V преобразованы к безразмерному виду и = V / h и D* = D / к2; Л — приведенная длина пробки, равная для нашей схемы загрузки 1; число Пекле Ре = и / D . Значения скоростей определяются по соответствующим электрофореграммам (рис. 2), а коэффициенты диффузии олигонуклеотидов от 10 до 50 оснований определены по экстраполяции данных работы [12]. Однако, поскольку в [12] наименьшая длина рассматриваемого фрагмента была 100 оснований, то эта экстраполяция может быть неправомерна для самых коротких фрагментов — 10 и 20 оснований. Таким образом, для дальнейшего моделирования профилей (2) использованы только по 3 пика фрагментов 30, 40 и 50 оснований.

Пересчет дисперсий пиков из табл. 2 в безразмерные длины позволяет сопоставить их с форму-

лами (3) и подобрать итерационным методом значение характерной нормированной пристеночной толщины 3 . Результаты приведены в табл. 3.

Величина 3 выбрана по критерию минимального расхождения стандартных отклонений пиков 3-5 между электрофореграммой и моделью (2). Таким образом, для необработанного чипа характерная глубина 3 в абсолютном выражении составляет 0.6 мкм, для обработанного раствором КоШр^г — вдвое большая, т. е. 1.2 мкм. Согласно формальной модели (2), конвективный скоростной профиль меняется только вблизи стенки канала на протяжении порядка 0.6-1.2 мкм, а далее стабилизируется.

Одним из возможных объяснений может быть следующее: при обработке раствором КоШр^г в пристеночной области на границе (твердая стенка—буфер) появляется слой полимера, который может видоизменяться при контакте с буферным раствором. По-видимому, этот слой дополнительно увеличивает толщину пристеночной области.

Следует заметить, что параметры электрофоре-тического пика были взяты, исходя из гауссовой аппроксимации, адекватность которой подтверждена корреляционным анализом.

Однако, предложенная нами модель (2) носит формально-описательный характер. Далее сопоставим с ней физическую модель распределения скоростного профиля в прямоугольном канале, базирующуюся на уравнении Пуассона—Больцмана.

Уравнение Пуассона—Больцмана представим

в форме

d г2

ГШ г)л кьт

где ¡7 — валент-

сечения; sh — функция гиперболического синуса, в ряде случаев допускает линеаризацию в форме приближения Дебая—Хаскела. Гиперболический синус заменяется своим аргументом, и уравнение сводится к линейному дифференциальному уравнению второго порядка с решениями — гиперболическими функциями. Характерным масштабом расстояния является дебаевская длина Л0 =

I £ 8кт

— 1 0 составляющая порядка 10 нм [13].

У 212^2с

Толщина двойного электрического слоя составляет несколько Лв. В частности, в [14] говорится о четырехкратной дебаевской длине, в [15] упоминается о единицах-десятках нм по сравнению с микрометровыми размерами канала.

Тогда применительно к плоской или прямоугольной щели электроосмотическая составляющая конвективного скоростного профиля описывается как

(

и (г) = V *

1 -

Л(аг) Л(а)

Л

4)

ность 7-го иона; е — заряд электрона (1.610- Кл), ^ — постоянная Фарадея (9.65104 Кл/моль); с0 — молярная концентрация ионов компонент (моль/м3); Т — температура (К); къ — постоянная Больцмана (1.38 10-23 Дж/К); ф — потенциал, г — нормированная пространственная координата

где коэффициент пропорциональности а выражается по-разному, но обратно пропорционален де-баевской длине [16, 17].

Сопоставив формальную математическую модель (2), оценки (3) и выражение (4) по принципу эквивалентного размывания пиков; получим, что для необработанного МФЧ соответствующее значение а примерно 99.5, для обработанного — 43. Так как по смыслу величина, обратная а , аналогична пристеночной толщине 3 , то в абсолютных величинах характерными расстояниями будут соответственно 300 и 600 нм. Эти расстояния по крайней мере на порядок отличаются от толщины двойного электрического слоя, но малы по сравнению с полушириной микроканала.

£

Табл. 3. Моделирование конвективного скоростного профиля (2) на основе характеристик пиков олигонуклеотидов 30, 40 и 50 оснований для необработанного и обработанного МФЧ

Способ обработки Пик Время выхода, с Станд. отклонение пика, нормированное h 8

Электрофореграмма Модель

Необработанный 3 4 5 230.5 243.9 257.2 4.7 6.6 7.1 6.2 5.9 5.9 0.020

Обработанный раство- 3 187.5 11.2 8.6 0.040

ром КоШр^г 4 198.0 7.6 9.1

5 208.0 7.1 9.6

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Проведенные исследования позволяют утверждать, что выбранный способ обработки поверхностей стеклянно-полимерного МФЧ раствором КоШр^г позволяет стабилизировать и уменьшить электроосмотический поток, тем самым примерно на 20 % повысить экспрессность анализа смеси олигонуклеотидов (с 275 до 220 с). При этом а) информативный сигнал (совокупность пиков компонент) практически не меняет своих характеристик (высокая вероятность разрешения соседних пиков, малая вариация ширины и амплитуды пика); б) достаточное число измерений (не менее 14), приходящихся на каждый пик позволяет уверенно их распознать на фоне случайного сигнала; в) фоновый сигнал представляет собой малозначимый (по критерию Фишера) систематический линейный тренд и гауссовую случайную составляющую; г) при обработке поверхностей раствором КоШ-р^г средний уровень фонового сигнала увеличивается в 2-2.5 раза (от 0.15-0.23 для необработанного чипа до 0.27-0.44 для обработанного раствором), что может быть связано с изменением физико-химических характеристик поверхности (см. динамику величин краевых углов в табл. 1).

Высокая вероятность (более 70 %) принятия гипотезы о нормальном (гауссовом) характере случайной составляющей сигнала позволяет утверждать, что формируемая погрешность не имеет преобладающего (доминирующего) источника.

Рассматриваемая формальная модель (2) профиля конвективной скорости в микроканале позволяет предположить изменения скорости от нулевой (прилипание к стенкам) до максимальной лишь в малой пристеночной области (порядка сотен нм). Эти толщины примерно на 1-1.5 порядка превосходят оценки толщины двойного электрического слоя. Однако формальная модель (2) хорошо сочетается с теоретически обоснованной зависимостью (4). При подборе эквивалентных параметров моделей одновременно удается согласовать как положение центра тяжести, так и дисперсию пиков. Рассматриваемые режимы переноса характеризуются доминированием конвективной составляющей над диффузионной (числа Пекле в диапазоне 40-180).

Итак, способ обработки поверхностей стеклян-но-полимерного микрофлюидного чипа, включающий применение раствора КоШр^г, позволил стабилизировать электроосмотический поток и уменьшить его величину, что обусловило примерно на 20 % уменьшение времени электрофоре-тического разделения смеси олигонуклеотидов 10, 20, 30, 40 и 50 оснований без существенного ухудшения идентификации пиков компонент, т. е. характеристик информативного сигнала.

Благодарн ости

Работа выполнена в рамках программы Фундаментальных исследований Президиума РАН № 9 "Создание и совершенствование методов химического анализа и исследования структуры веществ и материалов", проект "Микрофлюидные чипы для анализа биомолекул методами электрофореза" и при частичной государственной финансовой поддержке ведущих университетов Российской Федерации (субсидия 074-U01).

Авторы выражают особую признательность канд. физ.-мат. наук А.С. Букатину (АУ-НОЦ нанотехноло-гий РАН) за оперативное изготовление мастер-форм для МФЧ.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Xia Y., Whitesides G.M. Soft lithography // Angew. Chem. Int. Ed. 1998. Vol. 37, No. 5. P. 550-575.

2. Rogers J.A., Nuzzo R.G. Recent progress in soft lithography // Materials Today. 2005. Vol. 8, No. 2. P. 5056.

3. Duffy D.C., McDonald J.C., Schueller O.J.A., White-sides G.M. Rapid prototyping of microfluidic systems in poly(dimethylsiloxane) // Anal. Chem. 1998. Vol. 70. P. 4974-4984.

4. Li Y., Qi W. Microfluidic chip-based technologies: emerging platforms for cancer diagnosis // BMC Biotechnology. 2013. Vol. 13, No. 76. P. 10.

5. Chen X., Zeng H. PMMA microfluidic chips made by hot embossing/bonding for optimizing the flow in electrophoresis separation // Micro and Nanosystems. 2013. Vol. 5, No. 3. P. 231-236.

6. Magargle R., Hoburg J.F., Mukherjee T. An injector component model for complete microfluidic electroki-netic separation system // NSTI-Nanotech. 2004. Vol. 1. P. 77-80.

7. Kim P., Kwon K.W., ParkM.C. et al. Soft lithography for microfluidics: a review // Biochip Journal. 2008. Vol. 2, No. 1. P. 1-11.

8. Wu D., Luo Y., Zhou X. et al. Multilayer poly(vinyl al-cohol)-adsorbed coating on poly(dimethylsiloxane) mi-crofluidic chips for biopolymer separation // Electro-phoresis. 2005. Vol. 26. P. 211-218.

9. Pinto S., Alves P., Matos C.M. et al. Poly(dimethylsiloxane) surface modification by low pressure plasma to improve its characteristics towards biomedical applications // Colloids and Surfaces B: Biointerfaces. 2010. Vol. 81. P. 20-26.

10. Huang X., Gordon M.J., Zare R.N. Current-monitoring method for measuring the electroosmotic flow rate in capillary zone electrophoresis // Analytical Chemistry. 1988. Vol. 60. P. 1837-1838.

11. Буляница А.Л. Математическое моделирование в микрофлюидике: основные положения // Научное приборостроение. 2005. Т. 15, № 2. С. 51-66.

12. Heller C. Influence of electric field strength and capillary dimensions on the separation of DNA // Electrophoresis. 2000. Vol. 21. P. 593-602.

13. Hiemenz P.C., Rajagopalan R. Principles of colloid and surfaces chemistry, 3rd eds. Marcel Dekker, NY., 1997.

14. Hu Y., Werner C., Li D. Electrokinetic transport through rough microchannels // Anal. Chem. 2003. Vol. 75. P. 5747-5758.

15. Xuan X., Sinton D., Li D. Thermal end effects on elec-troosmotic flow in capillary // Int. J. of Heat and Mass transfer. 2004. Vol. 47. P. 3145-3157.

16. Burgreen D., Nakache F.R. Electrokinetic flow in ultrafine capillary slits // J. Phys. Chem. 1964. Vol. 68. P. 1084-1091.

17. Takahashi T., Gill W.N. Hydrodynamic chromatography: three dimensional laminar dispersion in rectangular conduits with transverse flow // Chem. Eng. Commun. 1980. Vol. 5. P. 367-385.

Институт аналитического приборостроения РАН, г. Санкт-Петербург (Буляница А.Л., Посмитная Я.С., Рудницкая Г.Е., Лукашенко Т.А., Цымбалов А.И., Евст-рапов А.А.)

Академический университет — НОЦ нанотехноло-

гий РАН(Евстрапов А.А.)

Университет ИТМО (Посмитная Я. С., Евстрапов А.А.)

СПб государственный политехнический университет (Буляница А.Л.)

Контакты: Посмитная Яна Станиславовна, [email protected]

Материал поступил в редакцию: 12.11.2014

GLASS-POLYMERIC MICROFLUIDIC CHIPS FOR ELECTROPHORETIC SEPARATION OF BIOMOLECULES

A. L. Bulyanitsa14, Y. S. Posmitnaya13, G. E. Rudnitskaya1, T. A. Lukashenko1, A. I. Tsimbalov1, A. A. Evstrapov1' '3

1 Institute for Analytical Instrumentation of RAS, Saint-Petersburg, RF

2Saint-Petersburg Academic University — Nanotechnology Research and Education Center RAS, RF 3ITMO University, Saint-Petersburg, Rf 4Saint-Petersburg State Polytechnical University, RF

The results of creation of the prototype glass-polymeric microfluidic chip for rapid analysis of biomolecules by electrophoresis are discussed. As the main material was used the polydimethylsiloxane Sylgard 184, in which was formed a network of microchannels by soft lithography. Are discussed the results obtained after different methods of physico-chemical treatment of the working surfaces of the channels of the microfluidic chips and the estimated effect of processing methods on the electroosmotic flow. Microfluidic chips was tested at the electro-phoretic separation of a mixture of oligonucleotides 10, 20, 30, 40 and 50 bases. Based on the electrophore-grams analysis a model of information signals (peaks) and noise was proposed. The basic theoretical principles that define the mechanism of convective-diffusive transport of the mixture components were checked.

Keywords: microfluidic chip, polydimethylsiloxane, soft lithography, electrophoresis, nucleic acid, convective-diffusion transfer, signal's model

REFERENCES

1. Xia Y., Whitesides G.M. Soft lithography. Angew. Chem. Int. Ed., 1998, vol. 37, no. 5, pp. 550-575.

2. Rogers J.A., Nuzzo R.G. Recent progress in soft lithography. Materials Today, 2005, vol. 8, no. 2, pp. 50-56.

3. Duffy D.C., McDonald J.C., Schueller O.J.A., Whitesides G.M. Rapid prototyping of microfluidic systems in poly(dimethylsiloxane). Anal. Chem.,1998, vol. 70, pp. 4974-4984.

4. Li Y., Qi W. Microfluidic chip-based technologies: emerging platforms for cancer diagnosis. BMC Biotechnology, 2013, vol. 13, no. 76, p. 10.

5. Chen X., Zeng H. PMMA microfluidic chips made by hot embossing/bonding for optimizing the flow in electrophoresis separation. Micro andNanosystems, 2013, vol. 5, no. 3, pp. 231-236.

6. Magargle R., Hoburg J.F., Mukherjee T. An injector component model for complete microfluidic electrokinetic separation system. NSTI-Nanotech., 2004, vol. 1, pp. 77-80.

7. Kim P., Kwon K.W., Park M.C. et al. Soft lithography for microfluidics: a review. Biochip Journal, 2008, vol. 2, no. 1, pp. 1-11.

8. Wu D., Luo Y., Zhou X. et al. Multilayer poly(vinyl alcohol)-adsorbed coating on poly(dimethylsiloxane) microfluidic chips for biopolymer separation. Electrophoresis, 2005, vol. 26, pp. 211-218.

9. Pinto S., Alves P., Matos C.M. et al. Poly(dimethylsiloxane) surface modification by low pressure plasma to improve its characteristics towards biomedical applications. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces, 2010, vol. 81, pp. 20-26.

10. Huang X., Gordon M.J., Zare R.N. Current-monitoring method for measuring the electroosmotic flow rate in capillary zone electrophoresis. Analytical Chemistry, 1988, vol. 60, pp. 1837-1838.

11. Heller C. Influence of electric field strength and capillary dimensions on the separation of DNA. Electrophore-sis, 2000, vol. 21, pp. 593-602.

12. Hiemenz P.C., Rajagopalan R. Principles of colloid and surfaces chemistry, 3rd eds. Marcel Dekker, NY., 1997.

13. Hu Y., Werner C., Li D. Electrokinetic transport through rough microchannels. Anal. Chem., 2003, vol. 75, pp. 5747-5758.

14. Xuan X., Sinton D., Li D. Thermal end effects on electroosmotic flow in capillary. Int. J. of Heat and Mass transfer, 2004, vol. 47, pp. 3145-3157.

15. Burgreen D., Nakache F.R. Electrokinetic flow in ultrafine capillary slits. J. Phys. Chem., 1964, vol. 68, pp. 1084-1091.

16. Takahashi T., Gill W.N. Hydrodynamic chromatography: three dimensional laminar dispersion in rectangular conduits with transverse flow. Chem. Eng. Commun., 1980, vol. 5, pp. 367-385.

Contacts: Posmitnaya Yana Stanislavovna, [email protected]

Article arrived in edition: 12.11.2014