CC BY
75
gen and host-response markers correlated with periodontal disease. J. Periodontol. 2009; 80 (3): 436-46.
6. SulkalaM., Wahlgren J., LarmasM. et al. The effects of MMP inhibitors on human salivary MMP activity and caries progression in rats. J. Dent. Res. 2001; 80 (6): 1545-9.
7. Chaussain-Miller C., Fioretti F., Goldberg M. The role of matrix
metalloproteinases (MMPs) in human caries. J. Dent. Res. 2006; 85 (1): 22-32.
8. Alameddine H.S., Matrix metalloproteinases in skeletal muscles: friends or foes? Neurobiol. Dis. 2012; 48 (3): 508-18.
Поступила 22.08.13
в помощь ПРАКТИЧЕСКОМУ ВРАЧУ
© КОЛЛЕКТИВ АВТОРОВ, 2013 УДК 615.28.03:616.31].07
С.Д. Арутюнов1, З.В. Хасигова2, Р.И. Камилов3, В.Н. Царев1, Е.В. Ипполитов1
СРАВНИТЕЛЬНАЯ ОЦЕНКА ВЛИЯНИЯ НОВЫХ ХИМИЧЕСКИХ ДЕЗИНФИЦИРУЮЩИХ СРЕДСТВ НА ФИЗИЧЕСКИЕ И МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ХАРАКТЕРИСТИКИ СТОМАТОЛОГИЧЕСКИХ ОТТИСКОВ
1Кафедра клинической стоматологии № 2, кафедра микробиологии, вирусологии, иммунологии ГОУ ВПО Московский государственный медико-стоматологический университет им. А.И. Евдокимова Минздрава России, 127206, Москва; 2ГБУЗ ДГП 148 ДЗМ, 109369, Москва; 3ГМУ «Стоматологическая поликлиника» № 5 УЗ САО, 121099, Москва
В статье проводится оценка влияния новых химических дезинфицирующих средств, способствующих повышению эффективности химической дезинфекции стоматологических оттисков путем научно обоснованного применения дезинфицирующих средств группы Zeta, включающих сложные спирты, четвертичные аммониевые соединения и не-катионные поверхностно-активные вещества. Сравнивается их влияние на физические и микробиологические характеристики стоматологических оттисков.
Ключевые слова: стоматологические оттиски, химические дезинфицирующие средства, физические и микробиологические характеристики оттисков
'S.D. Arutyunov, 2Z.V. Khsigova, 3R.I. Kamilov, 'V.N. Tsarev, E.V. Ippolitov
COMPARATIVE EVALUATION OF THE IMPACT OF NEW CHEMICAL DISINFECTANTS TO PHYSICAL AND MICROBIOLOGICAL CHARACTERISTICS DENTAL IMPRESSIONS
Department of clinical dentistry №2, Department of Microbiology, Virology, immunization-technologies A.I. Evdokimov Moscow state medical dental University Ministry of health of Russia, 127206, Moscow; City children's polyclinic 148, 109369, Moscow; State medical Stomatological polyclinic №5, 121099, Moscow
The article assesses the impact of new chemical disinfectants to enhance the effectiveness of chemical disinfection of dental impressions by scientifically-based disinfectants group Zeta, including sophisticated alcohols, Quaternary ammonium compounds and not cationic surfactants. Compared their impact on the physical and microbiological characteristics dental impressions.
Keywords: dental impressions, chemical disinfectants, physical and microbiological characteristics impressions
Из-за значительной распространенности инфекционных заболеваний во всем мире, изменчивости микроорганизмов, обнаружения новых ранее неизвестных штаммов проблема внутриболь-ничной инфекции (ВБИ) и организация санитарно-противоэпидемиологических мероприятий в лечебно-профилактических учреждениях (ЛПУ) в настоящее время приобретают все большую актуальность [1-4].
Масштабы ВБИ весьма впечатляющие и представляют серьезную проблему для здравоохранения во всем мире - в развитых странах до 10%, в России до 20% пациентов ЛПУ подвержены инфицированию ВБИ, что определяет социально-экономическую значимость проблемы. Данное обстоятельство делает актуальным любой продукт в области разработки новых дезинфицирующих средств [5-7].
Повышенный риск передачи инфекции в ЛПУ сто-
матологического профиля связан прежде всего с тем, что наибольшая концентрация вирусов, в частности ВИЧ-инфекции или вируса гепатита В, обнаруживается в крови и секретах организма, в частности в слюне, с которой врачи-стоматологи всех профилей имеют постоянный контакт. Содержание микроорганизмов в слюне колеблется от 105 до 1010 в 1 мл, причем до половины этого количества может быть представлено патогенной флорой [3, 4, 6, 8].
За последние годы ассортимент дезинфицирующих средств (ДС) для обработки стоматологических инструментов значительно расширился за счет препаратов на основе альдегидов, катионных поверхностно-активных веществ - четвертичных аммониевых соединений (ЧАС), солей аминов и других. Однако средства на основе альдегидов, обладая широким спектром действия, токсичны при ингаляцион-
ном воздействии и требуют особых условий использования и хранения [9, 10].
При выборе ДС существенное значение имеет преобладающая микрофлора, являющаяся объектом дезинфекции. Так, представители стрептококковой и большинство бесспоровой анаэробной флоры более чувствительны к низким концентрациям дезинфек-тантов, чем актиномицеты, порфиромонас, туберкулезная палочка и спорообразующие анаэробы. Более высоких концентраций дезинфектантов требуют также дрожжевые (кандида) и плесневые грибы [2,
5, 6, 11].
В связи с этим в настоящее время актуален поиск новых эффективных средств химической дезинфекции оттисков, которые, с одной стороны, обеспечивали бы высокую надежность деконтаминации, а с другой - не воздействовали отрицательно на геометрические параметры и физико-химические характеристики оттисков. Подобные свойства выявлены у ДС, относящихся к группе ЧАС и некатионных поверхностно-активных веществ (ПАВ).
Цель нашего исследования - повышение эффективности химической дезинфекции стоматологических оттисков путем научно обоснованного применения ДС группы Zeta (фирма Zermak, Италия), включающих сложные спирты, ЧАС и ПАВ.
Материал и методы
Изучали дезинфицирующую активность безальдегидных ДС Zeta3 и Zeta7 (фирма Zermak, Италия) на основе ЧАС/ ПАВ в отношении представителей микрофлоры рта и физические параметры оттисков зубов.
Для получения сравнительной информации о свойствах дезинфектантов мы проводили параллельную постановку эксперимента с другими препаратами близкого состава - аналогами из группы ЧАС/ПАВ:
1) «Катамин АБ» (бензалкония хлорид, ОАО «Синтез», Россия),
2) «ПВК» - Катамин АБ с перекисью водорода (ОАО «Синтез», Россия),
3) «Септобик» - Катамин АБ с перборатом (фирма «Абик», Израиль),
4) «Аламинол» - Катамин АБ с глиоксалем (ГНЦ «НИО-ПИК», Россия).
Мы оценивали геометрические параметры оттисков разными методами и бактериологическими исследованиями в эксперименте in vitro для определения активности ДС в отношении патогенных микроорганизмов и резидентной флоры полости рта.
Геометрические параметры оттискных материалов разных классов изучали с помощью микроскопа - компаратора горизонтального ИЗА-2 (Россия) с пределами измерений 0-200 мм и точностью измерений 0,001 мм параметрических характеристик образцов. Исследования деформации оттиск-ных материалов проводили путем сравнения временных зависимостей изменений размеров образцов в воде и в исследуемом дезинфектанте.
Для проведения исследования in vitro готовили образцы из оттискных материалов:
Силиконовых:
- «Speedex Putty» (базовый слой) и «Speedex light body» (корригирующий слой) фирмы Coltene, Швейцария;
- «Optosil Putty» (базовый слой) и «Xantopren L-blue» (корригирующий слой) фирма Heraeus-Kulzer, Германия;
- «Bisico S1» (базовый слой), Bisico S4 (корригирующий слой в тубах), «Bisico S4» (корригирующий слой в картриджах), Bisico S4i (картридж), фирма Bisico, Германия,
альгинатных:
- «Bisico Chrominat» (фирма Bisico, Германия);
- «Alligat» (фирма Heraeus-Kulzer, Германия);
- "Phase Thixotropic" (фирма Zhermack, Италия).
В каждой серии было по 10 образцов, размером 30 ■ 3 мм.
Исследование точности воспроизведения геометрических размеров оттисков осуществляли в соответствии с ISO 4823 «Эластомерные оттискные материалы».
Для проведения испытания использовали испытательный блок из нержавеющей стали, представленный на рис. 1.
Сущность определения линейной усадки оттискных материалов состоит в измерении расстояния между двумя точками или параллельными линиями, нанесенными на верхнюю поверхность испытательного блока.
Измерение длин линий на компараторе производили путем сравнения измеряемой длины объекта (образца) со штриховой линейной шкалой прибора при помощи двух микроскопов, расстояние между которыми постоянно и оптические оси параллельны (рис. 2).
Линейные размерные изменения подсчитывали по формуле: АЬн = 100 (L ■ L2)/Lj%, где:
Д£н - изменение размера образца оттискного материала в %; L - расстояние на металлическом испытательном блоке; L2 - расстояние на образце оттискного материала.
После определения начальных размеров образцов оттиск-ных материалов, полученных сразу после снятия оттиска с поверхности испытательного блока, их погружают в воду (контрольная серия образцов) или в дезинфицирующий раствор «Окадез М» (испытуемая серия образцов).
Изменение размеров образцов определяли после их выдержки в воде (ДЬвода) и растворе дезинфектанта «Окадез М» (ДLок) в течение 15 мин, согласно приведенной выше методике.
Кроме того, были проведены исследования на гипсовых моделях. Измерения выполняли с помощью цифрового стоматологического штангенциркуля &2 (Ershine Dental, США).
Все микробиологические исследования осуществляли в соответствии с существующим международным стандартом.
Для эксперимента с аэробными и факультативно-анаэробными микробами использовали 5% кровяной агар или среду Сабуро (для грибов), а с облигатно-анаэробными - 5% кровяной гемин-агар. В последнем случае культивирование осуществляли в анаэробных условиях (80% азота, 10% водорода, 10% углекислого газа) в анаэростате Himedia (Индия).
В качестве тест-штаммов использованы клинические изоляты микроорганизмов, выделенных из полости рта у лиц практически здоровых, обратившихся по поводу ортопедического лечения. Перечень штаммов, использованных в эксперименте, включал стандартный набор представителей факультативно-анаэробных (группа 1) и анэробных видов бактерий (группа 2):
- группа 1: Actinomyces naeslundii, Streptococcus sanguis, Streptococcus mutans,
- группа 2: Aggregatibacter actinomycetemcomitans, Fuso-bacterium nucleatum, Peptostreptococcus anaerobius, Prevotella intermedia.
В качестве тест-штаммов использованы клинические изо-ляты микроорганизмов, выделенных из полости рта у пациентов, обратившихся по поводу воспалительных заболеваний челюстно-лицевой области. Контрольные посевы выполняли на плотных питательных средах: 5% кровяном гемин-агаре (для всех микроаэрофильных факультативно-анаэробных и облигатно-анаэробных видов) на основе Columbia Bloud Agar (Oxoid).
Для оценки фунгицидной активности препарата использовали штаммы дрожжевых грибов: Candida albicans, С. Krusei, C. glabrata и мицелиальных грибов Aspergillus niger (группа 3).
Для выделения и культивирования грибов Candida использовали хромогенные среды (Himedia, Индия). Учет результатов проводили визуально после 2 сут культивирования при температуре 37oC.
Учет результатов выполняли визуально с использованием исследовательского бинокулярного стереомикроскопа (Nikon, Япония).
Контрольные посевы осуществляли на плотной питательной среде 5% кровяном агаре (с гемином и менадионом) на основе Columbia Blood Agar (Oxoid) для всех исследуемых облигатно-анаэробных и микроаэрофильных видов.
Учет результатов проводили визуально с использованием бинокулярного микроскопа МЛ-2Б (завод-производитель Ло-мо, СССР) для изучения колоний.
Продолжительность эксперимента (культивирования) составляла 24 ч для представителей быстрорастущих бактерий (стафилококк, энтеробактерии, бациллы); 48 ч для грибов; 5-7 сут для анаэробных бактерий (для актиномицетов 7 сут).
Температура культивирования как в аэробных, так и в анаэробных условиях составляла 37oC.
Такое разнообразие микроорганизмов объясняется тем, что они имеют различную устойчивость к факторам внешней среды и дезинфицирующим веществам, т. е. обладают различной степенью чувствительности к воздействию химических ДС.
Определение оптимальной концентрации ДС проводили с помощью кассетного микрометода определения чувствительности микроорганизмов [4]. Для эксперимента с аэробными и факультативно-анаэробными микробами использовали 5% кровяной агар или среду Сабуро (для грибов), а с облигатно-анаэробными - 5% кровяной гемин-агар. В последнем случае культивирование осуществляли в анаэробных условиях (80% азота, 10% водорода, 10% углекислого газа) в анаэростате Himedia.
Сравнение статистической достоверности разницы проводили с использованием критерия Стьюдента. При сравне-
нии расчетного значения критерия Стьюдента с табличным для вероятности p < 0,05 делали вывод о достоверности полученной разницы в размерных изменениях образцов от-тискных материалов при воздействии на них дезинфицирующего раствора (t > t - разница в размерных изменениях статистически достоверна). Расчеты проводили по программе Statgraphics.
Результаты экспериментальных исследований
Изменения размеров оттискных материалов, произошедшие под действием изучаемого дезинфектанта раствора Окадез М, сведены в табл. 1 и 2. В табл. 1 представлены данные изменения размеров силиконовых оттискных материалов низкой вязкости для корригирующих слоев, претерпевающих изменение в водной среде (Speedex Light Body и Bisico S4), p < 0,05. Таким образом, влияние дезинфектанта Окадез М на размерную точность оттискных материалов низкой вязкости было обусловлено только воздействием воды. На базовый слой силиконового материала водная среда не оказывала существенного влияния. На размерную точность силиконовых материалов при их дезинфекции водными растворами также влиял характер отвердевания материала (аддитивный или конденсационный) и способ замешивания вручную (из туб или картриджа).
Данные, представленные в табл. 2, свидетельствуют о том, что на размерную точность альгинатных оттискных материалов водная среда оказывала существенное влияние, что приводило к увеличению размеров оттисков под действием водных растворов ДС. После снятия оттиска и погружения его в водную среду происходило набухание альгинатного материала, при отливке гипсовой модели по оттиску наблюдалось
Таблица 1. Чувствительность факультативно-анаэробных и аэробных видов бактерий к дезинфектантам Zeta3 и Zeta7 и аналогам (степень разведения / %)
Микроорганизм
Дезинфектант
Zeta3 Zeta7 ПВК Окадез Септабик Катамин АБ
1:10 000 1:10 000 1:1000 1:1000 1:10 000 1:1000
0,0001 0,0001 0,001 0,001 0,0001 0,0001
1:10 000 1:10 000 1:1000 1:1000 1:10 000 1:1000
0,0001 0,0001 0,001 0,001 0,0001 0,0001
1:1000 1:1000 1:100 1:100 1:1000 1:1000
0,001 0,001 0,01 0,01 0,001 0,001
Actinomyces naeslundii Streptococcus mutans Streptococcus sanguis
Таблица 2. Чувствительность облигатно-анаэробных видов бактерий к дезинфектантам Zeta3 и Zeta7 и аналогам (степень разведения/ %
Микроорганизм
Дезинфектант
Zeta3 Zeta7 ПВК Окадез Септабик Катамин АБ
1:1000 1:1000 1:100 1:100 1:1000 1:100
0,001 0,001 0,01 0,01 0,001 0,01
1:10 000 1:10 000 1:1000 1:1000 1:10 000 1:1000
0,0001 0,0001 0,001 0,001 0,0001 0,0001
1:1000 1:1000 1:1000 1:1000 1:1000 1:1000
0,001 0,001 0,001 0,001 0,001 0,001
1:1000 1:1000 1:100 1:100 1:100 1:100
0,001 0,001 0,01 0,01 0,01 0,01
Aggregatibacter actinomycetemcomitans
Fusobacterium nucleatum
Peptostreptococcus anaerobius
Prevotella intermedia
Таблица 3. чувствительность грибковой микрофлоры к дезинфектантам Zeta3 и Zeta7 и аналогам (степень разведения/ %)
Микроорганизм Дезинфектант
Zeta3 Zeta7 ПВК Окадез Септабик Катамин АБ
Candida albicans Candida Krusei Candida glabrata Aspergillus niger
1:1000 0,001 1:1000 0,001 1:100 0,01 1:1000 0,001
1:1000 0,001 1:1000 0,001 1:100 0,01 1:1000 0,001
1:100 0,001 1:10 0,01 1:10 0,01 1:100 0,001
1:100 0,001 1:100 0,01 1:10 0,01 1:100 0,01
1:1000 0,001 1:1000 0,001 1:100 0,001 1:1000 0,0001
1:1000 0,001 1:1000 0,001 1:100 0,01 1:100 0,01
расширение гипса (4-го класса), что может частично компенсировать набухание альгинатного материала.
Результаты, полученные с применением гипсовых моделей и штангенциркуля, в целом соответствовали данным, полученным при использовании компаратора, но эти сведения отличались более высокой погрешностью измерения.
При микробиологических исследованиях на первом этапе работы мы провели анализ сравнительных результатов активности изучаемых дезинфектантов по отношению к референтным (музейным) штаммам и клиническим изолятам - представителям разных групп микробной флоры полости рта. Установлено, что все исследуемые дезинфектанты обладали высокой активностью в отношении тест-штаммов бактерий и грибов разных видов. МБК в основном колебалась в диапазоне от 10 до 100 мг/л. Лишь некоторые штаммы спорообразующих бацилл были более резистентны и сохраняли жизнеспособность при концентрации более 100 мг/л. Вместе с тем следует отметить, что МБК разных дезинфицирующих средств из группы ЧАС существенно различались.
В табл. 1-3 приведены сравнительные результаты активности препарата Окадез М и его аналогов из группы ЧАС по отношению к штаммам - клиническим изолятам - представителям разных групп микробной флоры полости рта.
Из табл. 1 видны сравнительные результаты активности препаратов Zeta3 и Zeta7 и сравниваемых аналогов из группы ЧАС по отношению к клиническим изолятам - представителям разных групп микробной флоры полости рта.
В отношении граммположительных штаммов бактерий микроаэрофильной группы (кариесогенные стрептококки и актиномицеты) получены следующие результаты (см. табл. 1).
Наиболее высокая активность (при разведении 1:10 000) выявлена у препаратов Zeta3 и Zeta7, которая соответствовала активности ДС Септобик при исследовании штаммов Actinomyces naeslundii и Streptococcus mutans. Штамм Streptococcus sanguis оказался более устойчивым к действию ДС: разведение Zeta3, Zeta7, Септабика и Катамина АБ составляло 1:1000, а ПВК и Окадеза требовалось в 10 раз больше - 1:100.
Следовательно, для достижения бактерицидной активности в отношении данной группы микроорганизмов достаточно создавать 0,0001-0,001% растворы Zeta3 и Zeta7, Септабика, Катамина АБ и более концентрированный - 0,01% - ПВК и Окадеза.
Результаты сравнительного изучения влияния Zeta3 и Zeta7 и аналогов из группы ЧАС на облигатно-анаэроную флору полости рта представлены в табл. 2.
В отношении облигатно-анаэробной граммполо-жительных флоры данные о чувствительности различались незначительно.
Более высокая активность ДС установлена в отношении штаммов Fusobacterium nucleatum и Peptostreptococcus anaerobius - она проявлялась в концентрации 0,001-0,0001% (более высокая активность отмечена у препаратов Zeta3 и Zeta7, Сеп-табик и Катамин АБ). Штаммы Aggregatibacter actinomycetemcomitans и Prevotella intermedia оказались в 10 раз более устойчивыми в отношении препаратов Zeta3 и Zeta7 и в 100 раз - для большей части аналогов.
Фунгицидные свойства дезинфектантов Zeta3 и Zeta7 изучали с применением тест-штаммов
С. albicans, C. Krusei, C. glabrata и Aspergillus niger (см. табл. 3).
Установлены существенные различия чувствительности штаммов разных видов и препаратов.
Дезинфектанты Zeta3 и Zeta7 продемонстрировали высокую активность в отношении штаммов Candida albicans, Candida Krusei, Aspergillus niger, что в целом не отличалось от активности Септобика и Катамина АБ. Штамм Candida glabrata показал более высокий уровень устойчивости - для гибели требовалось использование 0,01% растворов Zeta3 и Zeta7, Септабика и Катамина АБ. Полученные данные позволяют сделать заключение, что фунгицидная активность исследуемых дезинфектантов Zeta3 и Zeta7 создается в растворах с 0,001-0,0001% концентрацией препарата как в отношении дрожжеподобных, так и плесневых грибов и в ряде случаев существенно превосходит активность традиционных ДС из группы ЧАС, которые были использованы в качестве аналогов для сравнения.
Заключение
Результаты изучения антибактериальной и фунги-цидной (противогрибковой) активности исследуемых препаратов Zeta3 и Zeta7 по сравнению с аналогами ПВК и ЧАС (Окадез, Септабик, Катамин АБ) позволяют сделать заключение, что антибактериальная и фун-гицидная активность исследуемых дезинфектантов Zeta3 и Zeta7 создается в растворах с 0,001 - 0,0001% концентрацией препарата как в отношении бактерий, включая анаэробные виды дрожжевых и плесневых грибов. Наиболее устойчивыми ко всем ДС оказались представители грибов кандида C. glabrata. В большин-
стве случаев установлено, что активность Zeta3 и Zeta7 существенно превосходит активность традиционных ДС из группы ЧАС или не отличается от активности двух сравниваемых препаратов - Септабика и Катами-на АБ, которые использовали в качестве аналогов для сравнения. Полученные данные позволяют заключить, что препараты Zeta3 и Zeta7 имеют высокий запас надежности с учетом нейтрализующего действии на ДС биологических жидкостей и материалов. Это делает возможным их клиническое применение для дезинфекции и стерилизации материалов и оборудования в ЛПУ стоматологического профиля.
ЛИТЕРАТУРА
1. Давыдова М.М., Плахтий Л.Я., Царев В.Н. Методы микробиологического исследования, применяемые в стоматологии. В кн.: Царев В.Н., ред. Микробиология, вирусология и иммунология полости рта. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2013: 223-66.
2. Руководство по инфекционному контролю в стационаре. Международное общество по инфекционным болезням (ISID): Перевод с англ. под ред. Р. Венцеля, Т. Бревера, Ж.-П. Бутцлера. Смоленск: МАКМАХ; 2003.
3. Fenno J.C., Coulter W.A., LopatinD.E. Профилактика инфекций в стоматологии. В кн.: Ламант Р.Дж., Берне Р. А., Лебланк Д.Дж., ред.. Микробиология и иммунология для стоматологов. М.: Практическая медицина; 2010: 475-500.
4. Gunnar D. Microbiological diagnostics in oral diseases. Acta Odon-tol. Scand. 2006; 64 (3): 164-8.
5. Сбойчаков В.Б. Уничтожение микробов в окружающей среде. В кн.: Зверев В.В., Бойченко М.Н., ред. Медицинская микробиология, вирусология и иммунология. М.: ГЭОТАР-Медиа; 145-52.
6. Царев ВН., Графова Т.И. Основы дезинфекции и стерилизации в медицине. В кн.: Царев В.Н., ред. Микробиология, вирусология и иммунология М.: Практическая медицина; 2009: 122-44.
7. Цепов Л.М., Николаев А.И. Проблемы здоровья, нормы, качества жизни и патологии в стоматологии (обзор литературы). Паро-донтология. 2001; 3 (21): 25-9.
8. Ушаков Р.В., Царев В.Н. Неспецифические инфекции в хирургической стоматологии. Иркутск; 1997.
9. Pavarina A.C., Machado A.L., Giampaolo E.T. Effects of chemical
disinfectants on the transverse strength of denture base acrylic resins. J. Oral Rehabil. 2003; 30 (11): 1085-9.
10. Ribeiro D.G., Pavarina A.C., Machado A.L. Flexural strength and hardness of reline and denture base acrylic resins after different exposure times of microwave disinfection. Quintessence Int. 2008; 39 (10): 833-40.
11. Jagger R. Lack of evidence about the effectiveness of the different denture cleaning methods. Evid Based Dent. 2009; 10 (4): 109.
REFERENCES
1. Davydova M.M., Plakhtiy L.Yu., Tsarev V.N. Microbiological methods of research, to be used in dentistry. In: Tsarev V.N., ed. Microbiology, Virology and immunization-technology of the oral cavity. M: GEOTAR-Media; 2013: 223-66 (in Russian).
2. Guide to infection control in the hospital. The international society for infectious diseases (ISID). Lane. from English. Ed. by R. Wenzel, T. Brever, J.-P. Buttser. Smolensk: IACMAC; 2003.
3. Fenno J.C., Coulter W.A., LopatinD.E. Prevention of infection in dentistry. In: Lamant R.J., Berne R.A., LeBlanc D.G., eds. Microbiology and immunology for dentists. M.: Practical medicine; 2010: 475-500.
4. GunnarD. Microbiological diagnostics in oral diseases. Acta Odon-tol. Scand. 2006; 64 (3): 164-8.
5. Sboychakov V.B. Destruction of microbes in the environment. In: Zverev V.V., Boychenko M.N., eds. Medical Microbiology, Virology and immunology. M.: GEOTAR-Media; 145-52 (in Russian).
6. Tsarev V.N., Grafova T.I. Basis of disinfection and sterilization in medicine. In: Tsarev V.N., ed. Microbiology, Virology and immunology. M.: Practical medicine; 2009: 122-44 (in Russian).
7. TsepovL.M., NikolaevA.I. health Problems, standards, quality of life and патоло technology in dentistry (literature review). Periodontics. 2001; 3 (21): 25-9 (in Russian).
8. UshakovR.V, Tsarev V.N. Nonspecific infections in surgical dentistry. Irkutsk; 1997.
9. Pavarina A.C., Machado A.L., Giampaolo E.T. Effects of chemical disinfectants on the transverse strength of denture base acrylic resins. J. Oral Rehabil. 2003; 30 (11): 1085-9.
10. Ribeiro D.G., Pavarina A.C., Machado A.L. Flexural strength and hardness of reline and denture base acrylic resins after different exposure times of microwave disinfection. Quintessence Int. 2008; 39 (10): 833-40.
11. Jagger R. Lack of evidence about the effectiveness of the different denture cleaning methods. Evid Based Dent. 2009; 10 (4): 109.
Поступила 25.06.13
© М.А. АМХАДОВА, А.М. КЛЮЕВ, 2013 УДК 614.2:616Ю31:681.31
М.А. Амхадова, А.М. Клюев
ИНТЕРНЕТ-САЙТ - ОДИН ИЗ КЛЮЧЕВЫХ ФАКТОРОВ УСПЕХА В РАЗВИТИИ МЕДИЦИНСКОЙ СТОМАТОЛОГИЧЕСКОЙ ОРГАНИЗАЦИИ
ГБУЗ МО «МОНИКИ им. М.Ф.Владимирского», 129110, Москва
На данный момент конкуренция в стоматологии очень велика. Российский рынок стоматологических услуг, с одной стороны, в основном стабилизировался как в количественном, так и качественном отношении, достигнув стадии насыщения и определенных пределов роста. С другой стороны, он характеризуется жесткой конкуренцией как среди сетевых клиник, так и одиночных частных кабинетов.
Ключевые слова: конкуренция в стоматологии, маркетинг, интернет-сайт в стоматологии M.A.Amkhadova, A.M.Kluev
INTERNET-SITE IS ONE OF THE KEYSUCCESS FACTORS IN THE DEVELOPMENT OF MEDICAL STOMATOLOGICAL ORGANIZATION
M.F. Vladimirskogo Moscow regional research clinical Institute, 129110, Moscow
At the moment, the competition is very high in dentistry. The Russian market for dental services, on the one hand, largely stabilized in both quantitative and qualitative terms, reaching a saturation stage and defined the limits of growth. On the other hand, it is characterized by intense competition among network clinics and single private practice rooms. Keywords: competition in dentistry, marketing, Internet-site of dentistry
Амхадова Малкан Абдрашидовна (Amkhadova Malkan Abdrashitovna), [email protected]
К ст. Волкова и соавт.
Рис. 3. Забор и анаэробизация микробиологического материала для дальнейшей проверки эффективности препарата.
а - забор микробиологического материала стерильным бумажным штифтом из пародонтального кармана c последующим помещением материала в питательную среду Brain-heart infusion broth, плотное закрытие, б - анаэробизация в компактном переносном анаэростате АЭ-01. Образцы микробиологического материала готовы к транспортировке в лабораторию.
Рис. 4. Введение геля Фагодент в пародон-тальный карман.
Рис. 5. Пациентка Т., 41 год. Хронический генерализованный пародонтит легкой степени тяже- ^ сти до проведения комплексного лечения, УИГР = 3,0.
Рис. 6. Пациентка Т., 41 год. Хронический генерализованный пародонтит легкой степени тяжести после проведенного комплексного лечения, УИГР = 1,2.
Рис. 7. Результаты spot-тестирования.
На чашке Петри с бактериальным газоном регистрируются зона лизиса (указана стрелкой).
К ст. Арутюнова и соавт.
Рис. 1. Образцы оттискных материалов с трафаретами для измерения их геометрических параметров и испытательный блок из нержавеющей стали.
Рис. 2. Микроскоп-компаратор горизонтальный ИЗА-2 (Россия).
