CC BY
180
УДК 619:616.98:578
РЕСПИРАТОРНО-СИНЦИТИАЛЬНАЯ ИНФЕКЦИЯ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА (ОБЗОР ИНОСТРАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ)
А. Д. АЛЕКСЕЕВ,
аспирант,
О. Г. ПЕТРОВА,
доктор ветеринарных наук, профессор, Уральский государственный аграрный университет
(620075, г. Екатеринбург, ул. К. Либкнехта, д. 42; тел.: 8 (343) 371-33-63)
Ключевые слова: респираторно-синцитиальная инфекция, острые респираторные заболевания, крупный рогатый скот, эпизоотология, уровень инфекционности, вирус, персистенция, заболеваемость, филогенетический анализ.
Респираторно-синцитиальная инфекция крупного рогатого скота (далее — РСИ КРС) является основной причиной острых респираторных заболеваний крупного рогатого скота (далее — ОРВИ КРС). В иностранной литературе применяется термин Bovine Respiratory Disease (BRD). Термин ОРЗ КРС является тождественным BRD, в комплекс BRD включаются не только вирусные заболевания, такие как РСИ, инфекционный ринотрахеит (ИРТ), вирусная диарея — болезнь слизистых (ВД-БС), парагрипп-3 КРС, но и вызываемые бактериальными (Pasteurella multocida, Mannheimia haemolytica, Histophilus somni, Mycoplasma bovis), грибковыми (Aspergillus) и паразитарными агентами. Было подсчитано, что в Соединенных Штатах каждый год по причине BRD погибает примерно 32 млн голов крупного рогатого скота. Экономические потери оцениваются более чем в миллиард долларов. BRSV был назван из-за характерного ци-топатического эффекта, а именно формирования в инфицированной синцитиальной ткани, гигантских многоядерных клеток, образующихся в результате слияния нескольких клеток. BRSV имеет склонность к нижнему отделу дыхательных путей, где он может вызвать различную степень пневмонии сам по себе. Вторичные бактериальные инфекции, часто с участием Mannheimia (Pasteurella) haemolytica, вызывают тяжелые осложнения или смерть. Передача осуществляется воздушно-капельным путем или через прямой контакт с зараженными животными. Вирус РСИ КРС заражает клетки мерцательного эпителия, выстилающие дыхательные пути, разрушая мукоцилиарный аппарат, который очищает дыхательные пути от патогенов и твердых частиц. Это создает благоприятную среду для развития секундарной бактериальной инфекции. Вирус РСИ КРС (BRSV) тесно связан с вирусом респираторно-синцитиальной инфекции человека (HRSV), эпидемиология и патогенез между этими двумя вирусными инфекциями имеют некоторые сходства.
A RESPIRATORY-SYNCYTIAL INFECTION OF CATTLE (REVIEW OF FOREIGN LITERATURE)
A. D. ALEKSEEV, graduate student, O. G. PETROVA,
doctor of veterinary sciences, professor, Ural state agricultural university
(42 K. Libknehta Str., 620075, Ekaterinburg; tel: +7 (343) 371-33-63)
Keywords: respiratory syncytial infection, acute respiratory diseases, cattle, epizootology, infectivity level, virus, persistence, morbidity, phylogenetic analysis.
Respiratory syncytial infection of cattle (hereinafter — CRSI) is a main reason of cattle acute respiratory diseases (hereinafter — CARD). In foreign literature a term Bovine Respiratory Disease (BRD) is used. The term CARD is identical to BRD, in BRD complex not only viral diseases are included, such as CRSI, infectious bovine rhinotracheitis (IBR), disease of mucous membranes — viral diarrhoea (VD-DMM), paragripp-3 of cattle but also caused by bacterial (Pasteurella multocida, Mannheimia haemolytica, Histophilus somni, Mycoplasma bovis), fungi (Aspergillus) and parasitic agents. It has been estimated that in the United States each year because of BRD approximately 32 million heads of cattle die. Economic losses are estimated at more than a billion dollar. BRSV was named because of a characteristic cytopathic effect, namely a formation of giant multi-core cells in the infected syncytial tissue which are formed as a result of merging of several cells. BRSV is typical of a lower division of the respiratory tract, where it can cause a various degree of pneumonia in itself. Secondary bacterial infections, often involving Mannheimia (Pasteurella) haemolytica, cause serious complications or even death. Transmission occurs by air or through a direct contact with infected animals. The CRSI virus infects cells of the ciliated epithelium lining a respiratory tract, destroying mucociliary apparatus, which clears a respiratory tract from pathogens and solid particles. This creates a favorable environment for a development of a secondary bacterial infection. The CRSI virus (BRSV) is closely associated with a human virus of respiratory-syncytial infection (HRSV), epidemiology and pathogenesis of these two viral infections have some similarities.
Положительная рецензия представлена В. С. Мымриным, заслуженным работником сельского хозяйства РФ, доктором биологических наук, профессором, генеральным директором ОАО «Уралплемцентр».
Ветеринария
BRSV (респираторно-синцитиальный вирус крупного рогатого скота) был впервые выявлен в Европе в 1970 г. [1]. В США вирус был выделен в Айове и Миссури в 1974 г. [2]. РСИ КРС (респираторно-синци-тиальная инфекция крупного рогатого скота) широко распространена во всем мире, Мексике, Канаде, Германии, Великобритании, Нидерландах, Швеции, Бельгии, Бразилии, Эквадоре, Польше, Иране, России [11].
Независимо от географического положения, уровень инфекционности, как правило, довольно высок, предполагается, что передача вируса обычное явление в стаде. Крупный рогатый скот являются основным резервуаром инфекции, однако, также могут заразиться овцы, бизоны [7].
Передача вируса внутри стада обычно происходит воздушно-капельным путем [9]. С другой стороны, прямая передача между стадами часто является следствием введения новых инфицированных животных, в то время как непрямая передача происходит через людей, посещающих хозяйство. Одним из основных факторов риска для передачи BRSV является скученность животных.
Вспышки BRSV обычно происходят в зимнее время. В регионах с умеренным климатом заболевание обычно диагностируется в осеннее-зимний период, Тем не менее, инфекция может также наблюдаться и летом. Заболеваемость достаточно высока, а в некоторых случаях, это было причиной до 60 % клинических случаев респираторных заболеваний среди молочных коров. В целом, частота BRSV прочно ассоциирована с плотностью популяции крупного рогатого скота в регионе и с возрастом хозяина [8]. BRSV инфекция связана с высокой заболеваемостью до 80 % и со смертностью, которая при некоторых вспышках может достигать 20 %.
Вспышки BRSV могут стать эпизоотиями, поражающими животных во всех возрастных группах. Важно отметить, что естественная инфекция поражает как мясной, так и молочный скот [10].
Механизмы, отвечающие за выживание вируса в данной популяции, полностью не изучены. В качестве механизма, который может играть роль в распространении болезни, было предложено хроническое носитель-ство вируса [4]. BRSV может быть выделен из бессимптомных животных и может персистировать. Одним из возможных вариантов является постоянное наличие инфицированных телят, которые могут начать выделять вирус при определенных условиях. Объяснить возникновение вспышек среди относительно изолированных телят возможно тем, что в стаде персистирует латентная инфекция. Тем не менее, некоторые авторы предполагают, что персистенция субклинической инфекции BRSV в молочных стадах не соответствует действительности. С другой стороны, клинически больные животные, как полагают, являются наиболее вероятными источниками инфекции.
Информация относительно молекулярной эпидемиологии BRSV инфекции мало изучена. Однако быстро меняющаяся область секвенирования ДНК может помочь раскрыть молекулярные механизмы передачи ВЯЗУ Кроме того, поле филогенетики способствовало идентификации различных существующих генотипов BRSV и их генетическую связь, помогая понять молекулярную основу генетической истории ВЯЗУ Филогенетический подход особенно полезен для изучения происхождения и последующей эволюции. Последние достижения в области филогенетики сделали возможным анализ более подробной информации о последовательности, которая также может помочь понять
закономерности BRSV инфекции Филогенетические методы облегчают оценку времени происхождения нового штамма вируса, появления новых видов, выявление вирусной рекомбинации, численности популяции, о распространении и развитии вируса в конкретных условиях. Таким образом, информация, полученная филогенетическими исследованиями, могла бы помочь в разработке и реализации мер, направленных на предотвращение передачи BRSV. Молекулярный эпидемиологический подход предоставил важную информацию об эволюции BRSV, его распространении и передаче Филогенетический анализ помог выявить наличие карт мутаций вдоль иммунодоминантной области, локализованной на белке О [1], и выяснить происхождение штаммов, циркулирующих в определенных географических регионах [11]. Таким образом, изучение молекулярной эпидемиологии вируса, улучшит понимание динамики передачи вируса и поможет реализовать продуманную политику в области охраны здоровья.
Возникновение антигенной изменчивости среди изолятов BRSV было впервые предположено в связи с отсутствием реакции между поликлональной сывороткой и конкретным штаммом вируса, когда сыворотка не смогла распознать другой изолят. Гетерогенность вируса наблюдается в различиях между молекулярными размерами некоторых структурных белков, которые подразумевают, что BRSV состоит из различных подгрупп. Существование разнообразия между изолятов ВЁ^У далее оценивалось по способности к реакции ряда штаммов против моноклональных антител. Среди различных изолятов BRSV существуют различные структуры распознавания, что подразумевает разнообразие антигенов. Ограниченность и эффективность вакцины BRSV, в случае неудачной вакцинации может быть, по крайней мере, частично связано с широким спектром антигенной популяции BRSV. Первоначально были выделены две различные подгруппы ВЯЗУ Эти наблюдения были подтверждены другими исследованиями. Дальнейшие исследования антигенной вариативности BRSV подтвердили наличие двух основных и одной промежуточной подгрупп. В настоящее время выявлены четыре антигенные подгруппы BRSV (А, В, АВ, нетипичная), однако, они могут представлять только варианты одной основной антигенной группы [3].
Исследование молекулярной эпидемиологии BRSV началось в начале 1990-х гг. с идентификации последовательностей нуклеотида гликопротеида (О), смешанного белка нуклеокапсида (N1, матрицы (М), фосфопротеина (Р), малого гидрофобного белка ^И) и белка М2. Первоначальные исследования гомологич-ности белка Р двух изолятов, показал идентичность ну-клеотидов на уровне 97 % Последующие исследования вариации нуклеотидов белка О ограниченного числа изолятов, показали, что уровни идентичности между штаммами BRSV располагались между 84 % и 95 %. Эта степень гетерогенности была суггестивной только для одной единственной генетической группы. Сравнение между антигенной гетерогенностью и молекулярным разнообразием штаммов BRSV показало, что антигенное расхождение, наблюдаемое среди штаммов ВЯЗУ было результатом вариаций между и внутри подгрупп. Характеристика антигенной структуры белка О ВЁ^У предоставила дополнительную информацию о мутациях, отвечающих за различие между группами. Последующие исследования подтвердили существование антигенного расхождения, и антигенной вариабельность среди полевых штаммов ВЯЗУ Частичные последовательности нуклеотида белка О от ряда изоля-
тов, наряду со структурой распознавания моноклональ-ными антителами к белкам G, F, N, и Р ВЕБУ, показали случайные антигенные различия среди изолятов, хотя наблюдалась перекрестная реактивность к вирусным белковым эпитопам, особенно с белком Е Также наблюдались, структурные различия между белками F и Р. Подвергнутый электрофорезу в полиакриламидном геле, белок Р показал разнообразные структуры, различающиеся молекулярными размерами. Однако структурные различия белка Р не были коррелированы с антигенными различиями, наблюдаемыми в белках F и N. Идентичность последовательности нуклеотида в белке G колебалась от 94,1 % до 99,9 %. Гомологичность последовательности аминокислот колебалось от 89,9 % до 99,6 %, подтверждая теорию, о принадлежности ВИБУ к монофилетической группе [5]. Более детальные исследования, в которых были проанализированы образцы реакции против белка G ВЯБУ и генетическое разнообразие, встречающееся в большем сегменте гена белка G от нескольких изолятов, полученных из различных географических регионов, показали, что внутригрупповая наследственная изменчивость среди изолятов ВЯБУ варьировались между 88 % и 100 %. Соответствующий филогенетический анализ выявил наличие двух главных ветвей. Ветвь I была разделена на две группы, 1а и 1Ь, и затем на пять различных линий, каждая из которых представляет географический кластер. Группа, 1а содержит штаммы, принадлежащие антигенной подгруппе А, тогда как группа 1Ь состоит из штаммов европейского происхождения из подгруппы АВ. Ветвь II, напротив, сгруппировала все вирусные штаммы, отнесенные к антигенной подгруппе В. Третий независимый кластер включает набор скандинавских штаммов, которые не были сгруппированы с любой из вышеупомянутых ветвей. Также наблюдается прямая корреляция между положениями вдоль филогенетического дерева некоторых штаммов и их антигенных структур. Таким образом, ВЯБУ принадлежит к единственной антигенной группе с различными генетическими вариантами. Последующие исследования показали, что изоляты датского происхождения образуют три отличающиеся линии в рамках отдельного кластера. Эти изоляты тесно связаны со штаммом 220-69Ве1, штаммом-прототипом промежуточной антигенной группы Вирусные изоляты из Чешской Республики тесно связаны с датскими штаммами, выделенными в середине 1990-х гг., это наиболее вероятно является следствием импорта животных в страну, а не эволюции вируса. Сравнительный анализ между шведскими и датскими изолятами показал, что уменьшение разнообразия последовательности среди шведских штаммов может быть связано с относительной замкнутостью популяции крупного рогатого скота в Швеции, как следствия ограниченного импорта коров в страну. Эти данные подтверждают участие импорта коров в увеличении разнообразия нуклеотидной последовательности линий ВИБУ в этих регионах [6].
В дополнение к ранее описанной последовательности, проведены крупномасштабные исследования, касающиеся глобальной молекулярной эпидемиологии и эволюции ВИБУ включающие 54 европейских и североамериканских изолятов. В исследовании оценено разнообразие нуклеотидов белков N F и G и проанализированы аминокислотные последовательности, а также их филогенетическое родство. Средний процент попарных расхождений был самым низким для генов белков N и F (2 %), по сравнению с геном белка G (8 %). Среди животных одного и того же стада наблюдалась
полная гомология всех белков BRSV. В нескольких стадах было выявлено ограниченное количество различий в последовательностях генов белков N и G. Эти данные свидетельствуют о том, в данный момент времени стадо заражает преимущественно один вирус или группа очень родственных вирусов Филогенетический анализ, основанный на последовательности белка G, классифицировал изоляты на шесть различных групп. Топология филогенеза была сохранена, когда был проведен анализ последовательностей генов белков N и F, однако, по этим белкам, наблюдались лишь пять филогенетических групп (рис. 1). Наблюдается характеристика кластеризации последовательностей BRSV, в зависимости от географического происхождения и даты изоляции, что также подтверждает теорию географической и временной кластеризации. Подгруппа I состоял из старых европейских штаммов, выделенных до 1976 г. Подгруппа III включает вирусы исключительно из США. Подгруппы II, IV, V и VI полностью состоит из «младших» европейских изолятов. Штаммы из Северной Европы, Дании и Швеции были сгруппированы в подгруппу II, штаммы из Нидерландов, Бельгии и Франции включены в подгруппы II, IV, V и VI . Исследование выявило безуспешность вакцинации животных, являющихся носителями инфекции групп V и VI BRSV, коммерческие вакцины не защищают от инфицирования вирусами данных групп. Кроме того, наблюдается непрерывная эволюция белков BRSV N, G, и F, коррелирующая с осуществлением вакцинации в разных странах. Жесткий, положительный отбор был показан на муцино-фильной области белка G и на специфических участках белков N и F. Анализ изолятов BRSV из Франции показал наличие мутации, локализованной вдоль сохраняющейся центральной гидрофобной части эктодомена белка G, что приводит к потере четырех остатков ци-стеина, двух дисульфидных мостиков и, следовательно, спирали, которая является критической для трехмерной структуры белка G. Это позволило предположить непрерывную модификацию высококонсервативной центральной области иммунодоминантного белка G, что свидетельствует о важности рассмотрения эволюции BRSV при рациональной разработке [9]. В целом, работа может рассматриваться как основа современной молекулярной эпидемиологии BRSV, это создало основу для последующих исследований молекулярных эпидемиологических моделей BRSV инфекции в различных географических зонах [7].
Важно отметить, что внутрихозяинная популяция BRSV существует в виде сложной смеси вирусных вариантов, неоднозначно называемых «квазивидами» [2]. Анализ гена белка G BRSV продемонстрировали спектр субпопуляций сосуществующих в клинических изолятах. Клональный анализ выявил нуклеотидную гетерогенность по области кодирования белка G, установлена частота мутации замены нуклеотида в пределах от 6,8 х 104 до 10,1 х 104. Эти данные позволяют предположить, что популяции BRSV развиваются как сложные и динамические мутантные массы, несмотря на очевидную генетическую стабильность вируса. Молекулярный эпидемиологический подход показал циркуляцию идентичных вирусов среди животных в пределах одного стада , особенно в период возникновения вспышек [1]. Тем не менее, вирусные штаммы из рецидивирующих вспышек значительно изменяются (до 11 %), что свидетельствует о циркуляции различных вирусных вариантов BRSV, которые могут упорно заражают телят в стаде. Как следствие внутрихозяинной вирусной эволюции, новые, высоко приспособленные
Ветеринария
Рисунок 1
Филогенетический анализ BRSV геномных областей. Максимально вероятные филогенетические деревья из белков G (А), F (B) и N (€) были получены с использованием репрезентативных штаммов от каждого BRSV генотипа (Valarcher J. F., 2012)
вирусы стают доминирующими и передаются от одного или нескольких животных, вызывая каждую новую вспышку. На основе высокого уровня разнообразия наблюдаемого между вспышками, можно предположить, что вспышки BRSV являются результатом внедрения новых вирусных штаммов в популяцию. Уменьшенное воздействие новых штаммов BRSV ограничивает разнообразие циркулирующей популяции BRSV [2]. Важно отметить, что все вышесказанное исследования сосредоточены на нуклеотидной последовательности гена, кодирующего белок О. Информация, полученная о белке О, была чрезвычайно ценной для понимания, пейзажа и последовательностей пространства, доступного для BRSV, ограниченная информация о последовательности, предусмотренных в этом регионе являются существенной помехой для нашей способности в полной мере охарактеризовать вирусные штаммы. Перспективами исследований, является анализ длинных разделов ВИБУ а, возможно, всей длину вирусного генома, что обеспечит более точное представление о вирусных штаммах, циркулирующих во всем мире [3].
Молекулярная характеристика изолятов ВЯ^У от представительных регионов мира еще довольно неполная.
Изучение молекулярной эпидемиологии BRSV за последние два десятилетия претерпело значительные изменения. Информация, полученная при изучении молекулярных характеристик, филогенетики и эволюции штаммов BRSV, в целом расширила наше понимание молекулярных механизмов, контролирующих передачу вируса и распространение болезни. Требуется обширное исследование, чтобы представить средства, используемые вирусом для персистенции в данной популяции. Установление молекулярной надзора за BRSV в различных географических регионах, позволит улучшить идентификацию вспышки заболевания, в результате реализации профилактических мероприятий, направленных на борьбу с этой болезнью. Появление платформы секвенирования следующего поколения накануне «эры ДНК-секвенирования» может также предоставит уникальную возможность для открытия основных процессов, ответственных за вирусную репликации и выживания в хозяине.
BRSV была признана важной причиной респираторных заболеваний у крупного рогатого скота в течение почти четырех десятилетий. Характерная гетерогенность вирусного генома и его низкая точность в репликации является одной из наиболее важных особен-
ностей, которые вирус использует для обеспечения его выживания и персистенции в хозяине. Нестабильность вирусной частицы, как правило, приводит к неудачным попытка изолировать вирусные штаммы из клинических образцов в лаборатории. Молекулярный подход быстро становятся золотым стандартом для правильной идентификации и характеристики BRSV в клинических случаях. В результате молекулярная эпидемиология BRSV приобрела большое значение и повышает наши знания о распределении BRSV и модели передачи вируса по всему миру. Приход новых и более сложных молекулярных методов, в том числе следующего поколения секвенирования, помогает раскрыть генетический состав циркулирующей вирусной популяции в различных географических регионах, а также механизмов, которые вирус использует для выживания, пер-систенции и передачи.
BRSV часто выделяется при пневмонии телят и молодых животных. Из-за его частого возникновения и тенденции вызывать инфекции в нижние дыхательные пути. Заражение следуют конкретных клинических признаков. Наиболее восприимчивы к РСИ КРС телята в возрасте от 4 недель до 4 месяцев, особенно в холодное время года (осень-зима). Другие авторы указывают возраст 2-5 месяцев, когда заканчивают действовать коллостральные антитела, полученные от матери Вирус разрушает мерцательный эпителий верхних дыхательных путей, что является благоприятным фактором для развития секундарных бактериальных инфекций. Развиваются отек легких и интерстициальная эмфизема. Результаты последних исследований показали, что тяжелые клинические признаки, такие как эмфизема и отек являются частью аллергических реакций на инфекции [2].
Начало заболевания внезапное, и может протекать с различной степенью тяжести. У телят при легкой форме заболевания отмечается сухой кашель, истечения из носа и учащенное дыхание. Температура тела повышается до 41 °С, но нет никаких признаков общего дискомфорта. Выздоровление занимает около недели. При тяжелой форме пневмонии, вызванной BRSV, отмечается угнетение, анорексия, общий дискомфорт, одышка, учащенное дыхание, дыхание ртом и лихорадка от 40 до 42 °С. Аускультация легких выявляет характерный треск, указывающий на эмфизему. Смерть может наступить в течение нескольких дней, несмотря на интенсивное лечение. Выздоровевшие животные
Ветеринария
часто отстают в развитии и имеют плохие ежедневные привесы [5].
Гистологическое исследование показывает синци-тиальные клетки в эпителии бронхиол и паренхимы легких, внутрицитоплазматических телец включения, пролиферации и/или дегенерации эпителия бронхиол, альвеолярной эпителизации, отек и формирование гиалиновых мембран. Лабораторная диагностика может быть затруднена в связи с тем, что вирус лабилен, и его редко удается выделить из ткани павшего животного. Для диагностики используются, ПЦР, РТ-ПЦР, ELISA, ИФА [6].
В настоящее время нет никаких конкретных противовирусных препаратов одобренных для лечения BRSV инфекции у крупного рогатого скота. Лечение BRSV инфекции состоит из трех этапов.
Первым шагом является поддерживающая терапия. Поддерживающая терапия состоит из защиты больного животного от обезвоживания, поддержания надлежащего баланса электролитов и содержания животного в чистом, хорошо вентилируемом помещении.
Второй шаг заключается в подавлении с помощью противомикробных препаратов секундарных инфекций, вызываемых патогенными микроорганизмами (Pasteurella multocida, Mannheimia haemolytica, Histophilus somni, Mycoplasma bovis и др.), которые могут развиваться в уже пораженных дыхательных путях больных животных.
Третьим шагом является использование противовоспалительных препаратов. Из-за иммуносуппрес-сивного действия кортикостероидов эти препараты не рекомендуется для использования в лечении крупного рогатого скота респираторных заболеваний. Нестеро-
идные противовоспалительные средства (НПВС) являются препаратами выбора. В настоящее время аспирин является единственным НПВС, который одобрен в США для использования в пищу животных.
Профилактика является ключом к противодействию BRSV инфекции. Хорошее содержание животных в хорошо проветриваемых помещениях является обязательным для профилактики всех респираторных заболеваний. Вакцинация является еще одним инструментом для предупреждения BRSV инфекций. Доступны как модифицированные живые вакцины, так и инак-тивированные вакцины. Оба типа имеют свои плюсы и минусы. Модифицированные живые вакцины, как правило, стимулируют выработку нейтрализующих антител. Модифицированные живые вакцины и инакти-вированные вакцины стимулируют выработку у телят ненейтрализующих антител и Т-лимфоцитов.
Наличие у молодых телят коллостральных антител может препятствовать иммунному ответу после вакцинации модифицированными живыми вакцинами. По этой причине сроки вакцинации имеют решающее значение. Телята мясных пород должны быть вакцинированы два раза до отъема для того, чтобы они были защищены, когда начнут самостоятельно поедать корма. Вакцинация телят молочных пород должна производиться инактивированными вакцинами или с модифицированными живыми вакцинами после того, как материнские антитела снижаются до неопределяемого уровня, это происходит на шестом месяце жизни [7].
Вместе с тем, вакцинация не может гарантировать 100 % защиту телят от заболевания ВЕЗУ Отмечены случаи заболевания вакцинированных телят в Польше Великобритании, Бельгии, Нидерландах, Дании, США и др.
Литература
1 Пассауд М. Ф., Жаккер К. Л. Респираторно-синцитиальный вирус крупного рогатого скота // Архив вирусологии. 1970. С. 327-342.
2. Росенкист Б. Д. Выделение респираторно-синцитиального вируса от телят с острыми респираторными заболеваниями. США, 1974. С. 280.
3. Смит M. Х. Характеристика респираторно-синцитиального вируса крупного рогатого скота // Архив вирусологии. 1975. С. 237-247.
4. Смит T. Р. Эпизоотология РСИ // Ветеринарная медицина. 1993. № 88. С. 881-885.
5. Фиджера-Чавез Д. Обнаружение антител и факторы риска заражения крупного рогатого скота респираторно-синцити-альным вирусом и вирусом парагриппа-3 в хозяйствах Колима, Мексика // Здоровье животных. 2012. № 44. С. 1417-1421.
6. Схрайбер П. Журнал ветеринарной медицины. 2000. Сер. 47. Вып. 7. С. 535-550.
7. Флорес E. Ф. Иммунофлюоресцентный и иммуногистохимический методы диагностики респираторно-синцитиального вируса крупного рогатого скота // Ветеринария. 2000. Т. 20. №. 4.
8. Ширвани Е. Эпизоотологическое исследование острых респираторных заболеваний крупного рогатого (ИРТ, ВД-БС, ПГ-3) в молочном скотоводстве Центрального региона Ирана (Исфахан губернии) // Здоровье животных. 2012. Т. 44. № 1. С. 191-195.
9. Ольсон A. Влияние коронавируса и респираторно-синцитиального вируса на воспроизводство крупного рогатого скота // Ветеринария. 2010. С. 37.
10. Ольсон А. Факторы риска при респираторно-синцитиальной и коронавирусной инфекции крупного рогатого скота // Ветеринария. 2010. С. 11.
11. Валачер Ж. Ф. Респираторно-синцитиальная инфекция // Ветеринарная диагностика. 2007. С. 153-180.
References
1. Passaud M. F., Jacquier K. L. A respiratory syncytial virus of bovine origin // Archives of Virology. 1970. Р. 327-342.
2. Rosenquist B. D. Isolation of respiratory syncytial virus from calves with acute respiratory diseases. USA, 1974. P. 280.
3. Smith M. H. Characteristics of a bovine respiratory syncytial virus // Archives of Virology. 1975. Р. 237-247.
4. Smith T. R. Epizootology of BRSV infection // Vet. Med. 1993. № 88. Р. 881-885.
5. Figueroa-Chavez D. Detection of antibodies and risk factors of infection with bovine respiratory syncytial virus and parainfluenza virus 3 in dual-purpose farms in Colima, Mexico // Trop. Anim. Health Prod. 2012. № 44. Р. 1417-1421.
6. Schreiber P. Journal of Veterinary Medicine. September 2000. Vol. 47. Issue 7. P. 535-550.
7. Flores E. F. A retrospective search for bovine respiratory syncytial virus (BRSV) antigens in histological specimens by immunofluorescence and immunohistochemistry // Pesq. Vet. Bras. 2000. Vol. 20. № 4.
8. Shirvani Е. Seroepidemiological study of bovine respiratory viruses (BRSV, BoHV-1, PI-3V, BVDV and BAV-3) in dairy cattle in central region of Iran (Esfahan province) // Trop. Anim. Health and Prod. 2012. Vol. 44. № 1. P. 191-195.
9. Ohlson A. The influence of a bovine corona virus and bovine respiratory syncytial virus on the reproduction and herd characteristics of dairy herds // Veterinary. 2010. Р. 37.
10. Ohlson A. Risk factors of bovine coronavirus and bovine respiratory syncytial virus infections of dairy herds // Vet. Rec. 2010. Р. 11.
11. Valarcher J. F. Bovine respiratory syncytial virus infection // Veterinary diagnostics. 2007. P. 153-180.
