Почвенная микофлора агроценозов яровых рапса и рыжика Текст научной статьи по специальности «Сельскохозяйственные науки»

ISSN pr. 2412–608Х, ISSN on. 2412-6098

вегетации до 8,0 × 103–1,1 × 104 КОЕ/г, способ-

Масличные культуры.

ствуя повышению эффективного плодородия поч-

Вып. 1 (197). 2024

вы, что позволяет рекомендовать их к включению

_______________________________________________________________

_______________________________________________________________

в севооборот других сельскохозяйственных куль-

Научная статья

тур, не имеющих с культурами семейства капуст-

ные общих возбудителей болезней.

УДК

631.427.22:632.934:633.853.494

Ключевые слова: почвенные микромицеты,

DOI: 10.25230/2412-608Х-2024-1-197-119-124

агроценоз, рапс, рыжик, эффективное плодородие

почвы.

Почвенная микофлора

Для цитирования: Сердюк О.А. Почвенная ми-

агроценозов яровых

кофлора агроценозов яровых рапса и рыжика // Мас-

личные культуры. 2024. Вып. 1 (197). С. 119–124.

рапса и рыжика

UDC 631.427.22:632.934:633.853.494

Оксана Анатольевна Сердюк

Soil micoflore in spring rapeseed and false flax

ФГБНУ ФНЦ ВНИИМК

agrocenoses

Россия, 350038, г. Краснодар, ул. им. Филатова, д. 17

Serdyuk О.А., senior researcher, PhD in agriculture

[email protected]

V.S. Pustovoit All-Russian Research Institute of Oil

Crops

Аннотация. Основной целью сельскохозяй-

17 Filatova str., Krasnodar, 350038, Russia

ственного производства является разработка тех-

[email protected]

нологий, способствующих сохранению урожая.

Важным фактором, позволяющим достичь эту

Abstract. The main aim of agricultural production

цель, служит высокое эффективное плодородие

is development of technologies saving yield. The

почвы, зависящее и от микромицетов, содержа-

basic factor in this area is a high effective soil fertili-

щихся в ней. Целью исследования являлось изу-

ty, which depends on soil micromycets. The purpose

чение влияния яровых рапса и рыжика на

of the research was to study impact of spring rapeseed

качественный и количественный состав почвен-

and false flax on qualitative and quantitative composi-

ных микромицетов в агроценозах культур в Крас-

tion of soil micromycetes in crops agrocenoses in the

нодарском крае. Исследования проводили в 2020–

Krasnodar region. The research was conducted at the

2022 гг. в ФГБНУ ФНЦ ВНИИМК. Объектами

V.S. Pustovoit All-Russian Research Institute of Oil

исследования служили микромицеты, содержащи-

Crops in 2020–2022. The objects of the research were

еся в почве агроценозов яровых рапса и рыжика.

soil micromycetes in agrocenoses of spring rapeseed

Изучали слой почвы от 0 до 10 см, т. к. в нем

and false flax. There was studied soil layer from 0 to

находится основное количество боковых корней

10 cm as it contains the most side roots of these

этих культур. Для посева на питательную среду

crops. The soil suspension of second dilution (1 : 100)

Чапека использовали почвенную суспензию вто-

was sowed on a Chapek’s nutrient media. The differ-

рого разведения (1 : 100). В почвенных пробах

ent amounts of fungi Trichoderma spp., Fusarium

выявлены грибы Trichoderma spp., Fusarium spp.,

spp., Penicillium spp., Aspergillus spp., and Mucor Penicillium spp., Aspergillus spp. и Mucor spp. с

spp. were allocated in soil samples. In this complex,

разным содержанием. В данном комплексе коли-

number of Trichoderma spp. and Fusarium spp. fungi

чественным преимуществом отличались грибы

were higher, at the beginning of the crop vegetation

Trichoderma spp. и Fusarium spp., их содержание в

their amounts were in average 5.0–5.6 × 103 and 3.9–

начале вегетации культур составило в среднем

4.4 × 103 CFU/g, respectively. In a phase of yellow

5,0–5,6 × 103 и 3,9–4,4 × 103 КОЕ/г соответствен-

pod, the number of fungi-suppressors Trichoderma

но. В фазе желтого стручка количество грибов-

spp. in soil increased: under rapeseed to 8.0 × 103

супрессоров Trichoderma spp. в почве агроценозов

CFU/g, under false flax – to 1.1 × 104 CFU/g. The

увеличилось: под рапсом до 8,0 × 103 КОЕ/г, ры-

amount of Fusarium spp. fungi in soil at the end of a

жиком – 1,1 × 104 КОЕ/г. Содержание грибов

growing season also raised insignificantly (to 5.5 and

Fusarium spp. в почве в конце вегетации культур

6.2 × 103 CFU/g, respectively). Thus, the quantity of

также незначительно увеличилось (до 5,5 и 6,2 ×

fungi-suppressors Trichoderma spp. in soil under

103 КОЕ/г соответственно). Таким образом, со-

studied oil cole crops increased during a growing sea-

держание грибов-супрессоров Trichoderma spp. в

son to 8.0 × 103–1.1 × 104 CFU/g that increased the

почве под изученными масличными культурами

effective soil fertility. It allows recommending them

семейства Капустные увеличивалось в течение

to include into crop rotation with other agricultural

119

crops, which do not have universal diseases with cole

Сапротрофные грибы выделяют веще-

crops.

ства,

способствующие

разложению

растительных остатков, и токсины-анти-

Key words: soil micromycetes, agrocenosis, rape-

биотики, которые подавляют развитие

seed, false flax, effective soil fertility.

фитопатогенной микобиоты, т.

е. облада-

Введение

ют супрессивностью. К грибам с такими

. В настоящее время основ-

ной целью сельскохозяйственного произ-

свойствами относятся виды Trichoderma spp.,

водства является разработка технологий,

используемые в сельском хозяйстве для

способствующих сохранению урожая и

оздоровления почвы [7].

вместе с тем снижению потенциального

Соотношение и видовой состав мик-

ущерба окружающей среде [1]. Важным

ромицетов в почвах, относящихся к раз-

фактором, позволяющим достичь эту

ным типам, различается. Так, в дерново-

цель, служит высокое эффективное пло-

подзолистой почве г. Пермь установлено

дородие почвы. Одним из основных пока-

наличие

грибов:

Penicillium

spp.,

зателей плодородия почвы является ее

Trichoderma spp., Mortierella spp., Mucor

биологическая активность, которая пред-

spp. и Rhyzopus spp. с преобладанием

ставляет собой совокупность биологиче-

Mucor spp., содержание которых превы-

ских

и

биохимических

процессов,

сило остальные виды микромицетов в 3–

протекающих в почве. Биологическая ак-

15 раз [8].

тивность почвы зависит от множества

В серых лесных почвах выявлено 14 ви-

факторов: погодных условий, технологии

дов микроскопических грибов, принад-

земледелия, а также видов возделывае-

лежащих к девяти родам: Mucor spp. ,

мых культур [2]. Кроме этого, почва яв-

Chaetomium spp. , Alternaria spp. , Aspergi-

ляется естественной средой обитания

llus spp. , Penicillium spp. , Trichoderma spp. , многих микроорганизмов: бактерий, ак-

Fusarium spp. , Rhizopus spp. , Verticil-

тиномицетов, грибов, как сапротрофных,

lium spp. [9].

так и фитопатогенных [3

При изучении разных видов чернозе-

; 4]. С деятельно-

стью почвенных микроорганизмов, в со-

мов в Калининском и Динском районах

став которых входят микромицеты

Краснодарского края определено преобла-

(микроскопические грибы), связаны раз-

дание видов родов Penicillium spp. и

ложение растительных остатков, превра-

Aspergillus spp., что характерно для почв

щение

труднодоступных

форм

южной зоны [10]. В почвах, занятых посе-

питательных веществ в усвояемые для

вами злаков, в этих районах доминировали

растений формы, фиксация свободного

представители родов Mucor, Penicillium

азота воздуха, т. е. формирование пере-

spp., Fusarium spp. Среди Penicillium spp.

гноя

преобладал

[3].

Penicillium chrysogenum, ко-

В процессе жизнедеятельности поч-

торый входит в состав типичных видов

венные

микромицеты

вырабатывают

каштановых почв и сероземов, однако его

большое количество физиологически

широкое распространение в черноземах

активных веществ. Фитопатогенные мик-

объяснимо способностью грибов этого

ромицеты обладают набором фитотокси-

рода обитать в почвах разных типов [11].

нов, отрицательно влияющих на растения.

Кроме этого, на содержание микро-

Так, например, некоторые грибы рода

мицетов в почве оказывает влияние и

возделываемая

сельскохозяйственная

Fusarium Link., выделяя токсины, вызы-

вают корневые гнили и увядание расте-

культура. Фитосанитарный мониторинг,

ний [5

проведенный в 2006–2018 гг. в семи ре-

]. Грибы Aspergillus spp. и Mu-

гионах Российской Федерации, показал,

cor spp., попадая на семена сельскохозяй-

ственных культур, приводят к их плесне-

что в патокомплексе почвенных микро-

вению при хранении [6].

мицетов,

ассоциирующихся с корневыми

120

и прикорневыми гнилями земляники,

количество боковых корней этих культур

встречаются грибы Rhizoctonia solani,

[16].

Ceratobasidium destructans, Fusarium spp.,

Отборы проб почвы проводили на рас-

Pythium spp. Реже отмечены Colleto-

стоянии 1,0 см от корней растений в

trichum spp., Zythia fragariae ( Gnomonia

фазы: 2–4 настоящих листа и желтый

fragariae), Pestalo- tia spp., Phomopsis ob-

стручок. Пробы почвы брали в пяти точ-

scurans, Alternaria tenuissima, Botrytis ci-

ках в посеве каждой культуры на площа-

nerea [12].

ди 0,1 га стерильными инструментами.

В почве агроценоза пшеницы озимой в

Далее пробы объединяли в средний обра-

центральной зоне Краснодарского края в

зец и из него отбирали навеску 1 г, ис-

2004–2006 гг. отмечались грибы родов

пользуемую для приготовления первого

Fusarium spp., Chephalosporium spp. и

разведения. Доводили путем добавления

Penicillium spp. со значительным преоб-

небольшого количества стерильной водо-

ладанием видов Fusarium spp., плотность

проводной воды до пастообразного со-

популяции которых превышала 50 % [13].

стояния и растирали в течение 5 мин.

В 2018–2019 гг. в северной части

Первое разведение навески почвы делали

Краснодарского края и некоторых райо-

в стерильной посуде, добавляя стериль-

нах Ростовской области из почвенных

ную водопроводную воду в соотношении

проб выделены микромицеты родов As-

1 : 10 к весу почвы. Далее в течение 10 мин

pergillus sрр., Penicillium sрр., Mu- cor

вертикально встряхивали почвенную сус-

sрр., Botrytis sрр., Cladosporium sрр., Verti-

пензию первого разведения в пробирках с

cillium sрр., Trichotecium sрр. и др. [14].

резиновыми пробками. После этого сте-

В агроценозах озимых рапса и горчицы

рильной пипеткой отбирали 1 мл и пере-

сарептской в центральной зоне Красно-

носили в пробирку с 9 мл стерильной

дарского края выявлены грибы родов

водопроводной воды. При этом получали

Trichoderma spp., Fusarium spp., Aspergil-

второе разведение, содержащее 0,01 г/мл

lus niger Tiegh и Mucor mucedo L. в раз-

почвы (1 : 100). Приготовленное разведе-

ных

соотношениях,

зависящих

от

ние использовали для посева на поверх-

культуры, с преобладанием грибов-супрес-

ность питательной среды Чапека в

соров Trichoderma spp. [15].

количестве 0,2 мл на одну чашку Петри.

В отношении содержания микромице-

Культивирование проводили при темпе-

тов в почве агроценозов яровых рапса и

ратуре 25 °С. Количество колоний мик-

рыжика в Краснодарском крае информа-

ромицетов в каждой чашке подсчитывали

ция в доступных литературных источни-

на 7-е сутки культивирования и далее де-

ках отсутствует, в связи с этим целью

лали перерасчет на 1 г почвы [17].

нашего исследования являлось изучение

Микромицеты идентифицировали с ис-

влияния яровых рапса и рыжика на каче-

пользованием микроскопа Motic ВА300 с

ственный и количественный состав поч-

увеличением 400х по определителям В.И.

венных микромицетов в агроценозах

Билай, М.А. Литвинова, А.А. Милько, Н.М.

культур в центральной зоне Краснодар-

Пидопличко [18; 16; 19; 20; 21; 22].

ского края.

Результаты и обсуждение. В ходе ис-

Материалы и методы. Исследования

следований установлено, что в почве

проводили в 2020–2022 гг. в ФГБНУ

агроценозов яровых рапса и рыжика

ФНЦ ВНИИМК (г. Краснодар, Россия) на

содержались микромицеты из двух

черноземе выщелоченном. Объектами ис-

отделов: Ascomycota и Zygomycota.

следования служили микромицеты, со-

Наиболее многочисленным являлся отдел

держащиеся в почве агроценозов яровых

Ascomycota, к которому относилось 95 %

рапса и рыжика. Изучали слой почвы от 0

выделенных видов грибов. В состав отдела

до 10 см, т. к. в нем находится основное

121

Zygomycota входило значительно меньшее

го, грибы Penicillium spp. отсутствовали в

количество видов микромицетов – 5 %.

почве агроценоза рапса.

В результате исследований в почвен-

Таким образом, структура комплекса

ных пробах выявлены грибы Trichoder-

почвенных микромицетов агроценозов

ma spp., Fusarium spp., Penicillium spp.,

яровых рапса и рыжика представлена

Aspergillus spp. и Mucor spp. с разным со-

грибами Trichoderma spp., Fusarium spp.,

держанием. В данном комплексе микро-

Penicillium spp., Aspergillus spp. и Mucor

мицетов количественным преимуществом

spp. в разных соотношениях. Содержание

отличались грибы Trichoderma spp. и

грибов-супрессоров Trichoderma spp. в

Fusarium spp., их содержание в начале

почве под изученными масличными куль-

вегетации культур составило в среднем

турами семейства капустные увеличива-

5,0–5,6 × 103 и 3,9–4,4 ×103 КОЕ/г соот-

лось в течение вегетации до 8,0 × 103–1,1

ветственно (таблица).

× 104 КОЕ/г, способствуя повышению

эффективного плодородия почвы, что

Таблица

позволяет рекомендовать их к включению

Содержание микромицетов в почве агроце-

в севооборот других сельскохозяйствен-

нозов яровых рапса и рыжика, центральная

ных культур, не имеющих с культурами

зона Краснодарского края, 2020–2022 гг.

семейства Капустные общих возбудите-

лей болезней

Фаза

Содержание микромицетов в почве

.

развития

агроценоза культуры, КОЕ/г

расте-

Trichoder-

Fusarium

Aspergil-

Mucor

Penicil-

Список

ния

литературы

ma spp.

spp.

lus spp.

spp.

lium spp.

Рапс

1. Yin К., Qiu J.-L. Genome editing for plant 2–4 на-

стоящих 5,6 × 103

3,9 × 103

4,0 × 102

0

0

disease resistance: applications and perspectives:

листа

+ 1,0 × 103 + 5,0 × 102 + 2,0 × 102

[Электронный ресурс] // Philosop. Trans. of

Желтый

8,0 × 103

6,2 × 103

3,0 × 102

the Royal Society B. Biol. Sci. – 2019. – V. 374. –

стручок

0

0

+ 1,0 × 103 + 4,0 × 102

+ 1,0 × 102

1767.

– Режим доступа: https://doi.org/

Рыжик

10.1098/rstb.2018.0322/

(дата

обращения:

2–4 на-

стоящих 5,0 × 103

4,4 × 103

2,0 × 102

2,0 × 102 5,0 × 102

25.01.2024).

листа

+ 1,0 × 103 + 5,0 × 102 + 1,0 × 102 + 1,0 × 102 + 1,0 × 102

2. Возняковская Ю.М. Микробиологиче-

Желтый

1,1 × 104

5,5 × 103

9,0 × 102

5,0 × 102

ские основы экологической системы земледе-

стручок

0

+ 4,0 × 103 + 3,0 × 102 + 1,0 × 102

+ 1,0 × 102

лия // Агрохимия. – 1995. – № 5. – С. 115–124.

3. Мишустин Е.Н., Емцев В.Т. Микробио-

К концу вегетации (в фазе желтого

логия. 3-е изд., перераб. и доп. – М.: Агро-

стручка) содержание грибов-супрессоров

промиздат, 1987. – 368 с.

в почве агроценозов в среднем увеличи-

4. Chakraborty P., Krishnani K.K. Emerging лось: под рапсом до 8,0 ×

bioanalytical sensors for rapid and close-to-real-

103 КОЕ/г, ры-

time detection of priority abiotic and biotic

жиком – до 1,1 × 104 КОЕ/г. Количество

stressors in aquaculture and culture-based fisher-

патогенных грибов Fusarium spp. в поч-

ies: [Электронный ресурс] // Scie. of The Total

венных пробах в конце вегетации в агро-

Envir. – 2022. – V. 838. – 156128: – Режим до-

ступа

ценозах

рыжика

и

рапса

также

:

https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.

2022.156128 (дата обращения: 25.01.2024).

незначительно увеличилось (до 5,5 и 6,2 ×

5. Abdel-Aziz M.S., Ghareeb M.A., Hamed

103 КОЕ/г соответственно).

A.A., Rashad E.M. Ethyl acetate extract of Strep-

Плесневые грибы Aspergillus spp.,

tomyces spp. isolated from Egyptian soil for

management of Fusarium oxysporum: The caus-

Penicillium spp. и Mucor spp. являются

ing agent of wilt disease of tomato: [Электрон-

обычными компонентами комплексов поч-

ный ресурс] // Biocatal. and Agr. Biotech. –

венных микромицетов, встречались они в

2021. – V. 37. – 102185. – Режим доступа:

почвенных пробах агроценозов рапса и

https://doi.org/10.1016/j.cropro.2022.106047 (да-

та обращения: 25.01.2024).

рыжика в среднем в ограниченном количе-

6. Вредные организмы в посевах рапса и

стве – от 2,0 до 9,0 × 102 КОЕ/г. Более то-

меры борьбы с ними / В.М. Лукомец, Н.М.

122

Тишков, С.А. Семеренко, О.А. Сердюк. –

17. Методы микробиологического кон-

Краснодар: Просвещение-Юг, 2020. – 215 с.

троля почвы. Методические рекомендации.

7. Sandle T. Trichoderma // Encyclopedia of

ФНЦ им. Ф.Ф. Эрисмана, Федеральный центр

Food Microbiology (Second Edition): [Электрон-

госсанэпиднадзора Минздрава России, Центр

ный ресурс]. – 2014. – pp. 644-646. – Режим до-

ГСЭН в Краснодарском крае, 2004. – 12 с.

ступа: https://doi.org/10.1016/B978-0-12-384730-

18. Билай В.И. Фузарии. – Киев: Наукова

0.00337-2 (дата обращения: 25.01.2024).

думка, 1977. – 339 с.

8. Семериков В.В., Четина О.А., Баланди-

19. Милько А.А. Определитель мукораль-

на С.Ю., Шварц К.Г. О биоразнообразии

ных грибов. – Киев: Наукова думка, 1974. –

плесневых грибов техногенно-измененных

303 с.

почв на территории Пермского края // Гео-

20. Пидопличко Н.М. Грибы-паразиты

графический вестник. – 2013. – № 4 (27). – С.

культурных растений. Определитель. Т. 1.

79–81.

Грибы совершенные. – Киев: Наукова думка,

9. Берсенева О.А., Саловарова В.П., При-

1977. – 296 с.

ставка А.А. Почвенные микромицеты основ-

21. Пидопличко Н.М. Грибы-паразиты

ных природных зон // Известия Иркутского

культурных растений. Определитель. Т. 2.

государственного университета. Серия «Био-

Грибы несовершенные. – Киев: Наукова дум-

логия. Экология». – 2008. – Т. 1. – № 1. – С.

ка, 1977. – 300 с.

3–9.

22. Пидопличко Н.М. Грибы-паразиты

10. Енкина О.В., Коробской Н.Ф. Микро-

культурных растений. Определитель. Т. 3.

биологические аспекты сохранения плодоро-

Пикнидиальные грибы. – Киев: Наукова дум-

дия черноземов Кубани. – Краснодар, 1999. –

ка, 1977. – 299 с.

150 с.

11. Назарько М.Д. Изменение состава поч-

References

венных микромицетов при интенсивном ан-

тропогенном воздействии в северных районах

1. Yin K., Qiu J.-L. Genome editing for plant

Кубани // Известия вузов. Пищевая техноло-

disease resistance: applications and perspectives:

гия. – № 4. – 2007. – С. 110–111.

[Elektronnyy resurs] // Philosop. Trans. of the

12. Головин С.Е., Глинушкин А.П., Зеркалов

Royal Society B. Biol. Sci. – 2019. – V. 374. –

И.А., Белошапкина О.О. [и др.]. Патоком-

1767.

– Rezhim dostupa: https://doi.org/

плекс почвенных микромицетов, ассоцииру-

10.1098/rstb.2018.0322/ (data obrashcheniya:

ющихся с корневыми и прикорневыми

25.01.2024).

гнилями земляники, в некоторых регионах

2. Voznyakovskaya Yu.M. Mikrobiolo-

России // Достижения науки и техники АПК. –

gicheskie osnovy ekologicheskoy sistemy zem-

2019. – Т. 33. – № 7. – С. 62–70.

ledeliya // Agrokhimiya. – 1995. – № 5. – S.

13. Горьковенко B.C., Коростелева Л.А.,

115–124.

Монастырский О.А., Ярошенко В.А. Восста-

3. Mishustin E.N., Emtsev V.T. Mikrobi-

новить супрессивность почв? // Защита и ка-

ologiya. 3-e izd., pererab. i dop. – M.: Ag-

рантин растений. – 2006. – № 8. – С. 18–19.

ropromizdat, 1987. – 368 s.

14. Жемчужина Н.С., Киселева М.И.,

Александрова А.В., Коломиец Т.М.

4. Chakraborty P., Krishnani K.K. Emerging

Микро-

мицеты на озимой пшенице в Краснодарском

bioanalytical sensors for rapid and close-to-real-

крае и Ростовской

time detection of priority abiotic and biotic

области // Защита и каран-

тин растений. –

stressors in aquaculture and culture-based fisher-

2020. – № 6. – С. 22–26.

15. Сердюк О.А., Трубина В.С., Горлова

ies: [Elektronnyy resurs] // Scie. of The Total

Л.А. Почвенные микромицеты в агроценозах

Envir. – 2022. – V. 838. – 156128: – Rezhim

озимых масличных культур семейства ка-

dostupa:

https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.

пустные в условиях Краснодарского края //

2022.156128 (data obrashcheniya: 25.01.2024).

Вавиловские чтения: сб. стат. Междунар.

5. Abdel-Aziz M.S., Ghareeb M.A., Hamed

науч.-практ. конф., посвященной 135-й го-

A.A., Rashad E.M. Ethyl acetate extract of

довщине со дня рождения акад. Н.И. Вавило-

Streptomyces spp. isolated from Egyptian soil

ва. – Саратов: Амирит, 2022. – С. 284–289.

for management of Fusarium oxysporum: The

16. Литвинов М.А. Методы выделения

causing agent of wilt disease of tomato: [El-

микроскопических грибов из почвы. Опреде-

ektronnyy resurs] // Biocatal. and Agr. Biotech. –

литель микроскопических почвенных грибов. –

2021. – V. 37. – 102185. – Rezhim dostupa:

Л.: Изд-во «Наука», 1967. – 311 с.

123

https://doi.org/10.1016/j.cropro.2022.106047

chine so dnya rozhdeniya akad. N.I. Vavilova. –

(data obrashcheniya: 25.01.2024).

Saratov: Amirit, 2022. – S. 284–289.

6. Vrednye organizmy v posevakh rapsa i

16. Litvinov M.A. Metody vydeleniya

mery bor'by s nimi / V.M. Lukomets, N.M.

mikroskopicheskikh gribov iz pochvy. Opredeli-

Tishkov, S.A. Semerenko, O.A. Serdyuk. –

tel' mikroskopicheskikh pochvennykh gribov. –

Krasnodar: Prosveshchenie-Yug, 2020. – 215 s.

L.: Izd-vo «Nauka», 1967. – 311 s.

7. Sandle T. Trichoderma // Encyclopedia of

17. Metody mikrobiologicheskogo kontrolya

Food Microbiology (Second Edition): [El-

pochvy. Metodicheskie rekomendatsii. FNTs im.

ektronnyy resurs]. – 2014. – pp. 644-646. –

F.F. Erismana, Federal'nyy tsentr gossanepid-

Rezhim dostupa: https://doi.org/10.1016/B978-0-

nadzora Minzdrava Rossii, Tsentr GSEN v

12-384730-0.00337-2

(data

obrashcheniya:

Krasnodarskom krae, 2004. – 12 s.

25.01.2024).

18. Bilay V.I. Fuzarii. – Kiev: Naukova

8. Semerikov V.V., Chetina O.A., Balandina

dumka, 1977. – 339 s.

S.Yu.,

Shvarts

K.G.

O

bioraznoobrazii

19. Mil'ko A.A. Opredelitel' mukoral'nykh

plesnevykh gribov tekhnogenno-izmenennykh

gribov. – Kiev: Naukova dumka, 1974. – 303 s.

pochv na territorii Permskogo kraya // Geo-

20.

Pidoplichko

N.M.

Griby-parazity

graficheskiy vestnik. – 2013. – № 4 (27). – S.

kul'turnykh rasteniy. Opredelitel'. T. 1. Griby

79–81.

sovershennye. – Kiev: Naukova dumka, 1977. –

9. Berseneva O.A., Salovarova V.P., Pristav-

296 s.

ka A.A. Pochvennye mikromitsety osnovnykh

21.

Pidoplichko

N.M.

Griby-parazity

prirodnykh zon // Izvestiya Irkutskogo gosudar-

kul'turnykh rasteniy. Opredelitel'. T. 2. Griby

stvennogo universiteta. Seriya «Biologiya.

nesovershennye. – Kiev: Naukova dumka, 1977. –

Ekologiya». – 2008. – T. 1. – № 1. – S. 3–9.

300 s.

10. Enkina O.V., Korobskoy N.F. Mikrobio-

22.

Pidoplichko

N.M.

Griby-parazity

logicheskie aspekty sokhraneniya plodorodiya

kul'turnykh rasteniy. Opredelitel'. T. 3. Piknidi-

chernozemov Kubani. – Krasnodar, 1999. –

al'nye griby. – Kiev: Naukova dumka, 1977. –

150 s.

299 s.

11. Nazar'ko M.D. Izmenenie sostava poch-

vennykh mikromitsetov pri intensivnom antro-

pogennom vozdeystvii v severnykh rayonakh

Сведения об авторе

Kubani

//

Izvestiya

vuzov.

Pishchevaya

tekhnologiya. – № 4. – 2007. – S. 110–111.

12. Golovin S.E., Glinushkin A.P., Zerkalov

I.A., Beloshapkina O.O. [i dr.]. Patokompleks

О.А. Сердюк, ст. науч. сотр., канд. с.-х. наук

pochvennykh

mikromitsetov,

assotsiiruyush-

chikhsya s kornevymi i prikornevymi gnilyami

zemlyaniki, v nekotorykh regionakh Rossii //

Dostizheniya nauki i tekhniki APK. – 2019. – T.

33. – № 7. – S. 62–70.

13. Gor'kovenko B.C., Korosteleva L.A.,

Monastyrskiy O.A., Yaroshenko V.A. Vossta-

Получено/Received

novit' supressivnost' pochv? // Zashchita i karan-

29.01.2024

Получено после рецензии/Manuscript peer-reviewed

tin rasteniy. – 2006. – № 8. – S. 18–19.

05.02.2024

14. Zhemchuzhina N.S., Kiseleva M.I., Ale-

Получено после доработки/Manuscript revised

ksandrova A.V., Kolomiets T.M. Mikromitsety

07.02.2024

na ozimoy pshenitse v Krasnodarskom krae i

Принято/Accepted

Rostovskoy oblasti // Zashchita i karantin ras-

13.03.2024

teniy. – 2020. – № 6. – S. 22–26.

Manuscript on-line

15. Serdyuk O.A., Trubina V.S., Gorlova

30.05.2024

L.A. Pochvennye mikromitsety v agrotsenozakh

ozimykh maslichnykh kul'tur semeystva kapust-

nye v usloviyakh Krasnodarskogo kraya // Vavi-

lovskie chteniya: sb. stat. Mezhdunar. nauch.-

prakt. konf., posvyashchennoy 135-y godovsh-

124