CC BY
0
ISSN pr. 2412-608Х, ISSN on. 2412-6098 Масличные культуры. Вып. 4 (200). 2024
Агрохимия, агропочвоведение, защита и карантин растений
Научная статья
УДК 633.853.494:632.937
DOI: 10.25230/2412-608Х-2024-4-200-107-113
Первичный скрининг коллекционных грибных штаммов антагонистов к возбудителю фомоза рапса озимого
Любовь Васильевна Маслиенко Любовь Анатольевна Дейнега Евгения Алексеевна Заверюха Анастасия Владиславовна Кузнецова
ФГБНУ ФНЦ ВНИИМК
Россия, 350038, г. Краснодар, ул. им. Филатова, д. 17 [email protected]
Аннотация. В лаборатории биометода агро-технологического отдела ФГБНУ ФНЦ ВНИИМК с целью разработки микробиологического метода снижения вредоносности наиболее опасной болезни рапса озимого - фомоза (Leptosphaeria mac-ulans (Desm.) Ces. et de Not, анаморфная стадия Phoma lingam (Tode) Desm.), в 2024 г. из рабочей коллекции проводили поиск перспективных штаммов-продуцентов микробиопрепаратов. В результате первичного скрининга выделено 26 перспективных грибных штаммов с разными типами антагонистической активности (конкуренция за площадь питания, гиперпаразитизм и антибиоз) против возбудителя фомоза: шесть штаммов из рода Trichoderma, семь - из рода Penicillium, четыре - из рода Chaetomium, три - из рода Aspergillus, два - из класса Basidiomycota, а также по одному из родов Sordaria, Metarhizium, Trichothecium и Talaromyces.
Ключевые слова: фомоз, рапс озимый, первичный скрининг, грибные штаммы антагонисты, микробиологический метод
Для цитирования: Маслиенко Л.В., Дейнега Л.А., Заверюха Е.А., Кузнецова А.В. Первичный скрининг коллекционных грибных штаммов антагонистов к возбудителю фомоза рапса озимого // Масличные культуры. 2024. Вып. 4 (200). С. 107-113.
Primary screening of collection of fungal antagonist strains against Phoma rot pathogen on winter rapeseed
Maslienko L.V., head of the lab., leading researcher, PhD in biology
Deynega L.A., junior researcher, post-graduate student Zaveryukha E.A., junior researcher, post-graduate student Kuznetsova A.V., analyst
V.S. Pustovoit All-Russian Research Institute of Oil Crops
17 Filatova str., Krasnodar, 350038 Russia [email protected]
Abstract. In 2024, in order to develop a microbiological method to reduce the harmfulness of the most dangerous disease of winter rapeseed - Phoma rot (Leptosphaeria maculans (Desm.) Ces. et de Not, ana-morphic stage Phoma lingam (Tode) Desm.), promising strains-producers of microbiopreparations were searched for in the working collection at V.S. Pustovoit All-Russian Research Institute of Oil Crops. As a result of the primary screening, 26 promising fungal strains with different types of antagonistic activity (competition for feeding area, hyperparasitism and antibiosis) against the Phoma rot pathogen were identified: six strains of the genus Trichoderma, seven of the genus Penicillium, four of the genus Chaetomium, three of the genus Aspergillus, two of the class Basidiomycota and one each of the genera Sordaria, Metarhizium, Trichothecium, and Talaromyces.
Key words: Phoma rot, winter rapeseed, primary screening, fungal antagonist strains, microbiological method
Введение. Для снижения вредоносности одной из наиболее распространенных и опасных болезней рапса озимого - фомоза (возбудитель Leptosphaeria maculans (Desm.) Ces. et de Not, анаморфная стадия Phoma lingam (Tode) Desm.) [1], актуальной задачей является разработка микробиологического метода. В условиях центральной зоны Краснодарского края, а в последние годы и в южных областях Нечерноземья, фомоз является одной из наиболее вредоносных болезней озимых культур семейства капустные, в том числе и рапса озимого, поражение которой может привести к снижению урожая до 40,0 %, а при раннем заражении - и к преждевременной гибели растений [2-5]. В качестве основных мер ее контроля рекомендуются: устойчивые сорта, уборка растительных остатков, соблюдение севооборота (срок возврата рапса на прежнее поле не ранее чем через 3-4 года), оптимальные сроки посева, пространственная изоляция,
протравливание семян и применение фунгицидов во время вегетации культуры [6].
Зарегистрированных биопрепаратов от фомоза на рапсе в России нет. В лаборатории биометода агротехнологического отдела ФГБНУ ФНЦ ВНИИМК, одной из немногих в России, многие годы ведутся исследования по разработке микробиологических средств защиты масличных культур от болезней. В основе разработанной в лаборатории концепции целенаправленного создания микробиопрепаратов для защиты масличных и других сельскохозяйственных культур от болезней лежит поиск штаммов антагонистов, безопасных для человека, нефитотоксичных, проявляющих высокую активность в широко варьируемых погодных условиях против комплекса патогенов, обладающих полифункциональным типом действия [7]. Начальным этапом этих исследований является ступенчатый скрининг вновь выделенных или коллекционных штаммов в лабораторных условиях in vitro.
Настоящая работа посвящена первому этапу ступенчатого скрининга - первичному скринингу коллекционных грибных штаммов к агрессивному изоляту возбудителя фомоза рапса озимого Phoma lingam in vitro.
Материалы и методы. Исследования проводили в лаборатории биометода агро-технологического отдела ФГБНУ ФНЦ ВНИИМК в 2024 г. Объектом исследований служили: конидиальная стадия агрессивного изолята возбудителя фомоза рапса озимого Phoma lingam, выделенного в центральной зоне Краснодарского края; коллекционные штаммы грибных антагонистов возбудителей болезней масличных культур - 26 штаммов, представленных родами Trichoderma, Penicillium, Chaetomium, Sordaria, Metarhizium, Trichothecium, Talaromyces, Aspergillus, а также классом Basidiomycota.
Оценку антагонистической активности штаммов in vitro к агрессивному изоляту возбудителя фомоза рапса озимого проводили методом двойных или встречных культур [8]. Метод позволяет определить
антагонистическую активность выделенных или коллекционных штаммов при совместном культивировании с возбудителем болезни (агрессивным изолятом) в одной чашке Петри.
Культуры грибных антагонистов и возбудителя болезни выращивали отдельно в течение пяти-семи суток на агаризирован-ной питательной среде. Стерильным сверлом размером 0,7 см вырезали блоки с мицелием антагониста и патогена и помещали в одну чашку Петри на расстоянии 6,0 см. Контролем служили культуры антагонистов и патогена, посеянные порознь. Антагонистов и патоген выращивали на картофельно-сахарозном агаре (КСА) [9] и на специализированной для грибов среде Рудакова [10]. Учёты взаимодействия патогена с антагонистами проводили на 20 сутки культивирования, отмечали:
- рост патогена и антагониста в % от площади чашки Петри (конкуренция за площадь питания);
- наличие или отсутствие зон задержки роста патогена в результате синтеза антагонистами гидролитических ферментов или веществ антибиотической природы (стерильная зона);
- нарастание антагониста на колонию патогена (гиперпаразитическая зона).
Результаты и обсуждения. Результаты первичной оценки коллекционных грибных штаммов к возбудителю фомоза рапса озимого Phoma lingam методом двойных или встречных культур на питательных средах КСА и Рудакова показали, что все штаммы проявили антагонистическую активность, при этом механизм антагонистического действия грибов представлен тремя типами: конкуренция за площадь питания, гиперпаразитизм и антибиоз.
Из 26 испытанных коллекционных штаммов грибов к возбудителю фомоза на среде КСА пять штаммов из рода Trichoderma (Т-1, Т-2, Т-3, Т-4 и Т-5 Trichoderma Бр.) проявили тройной тип механизма антагонистической активности, заняв 100 % поверхности питательной среды, со стерильной зоной 4,5-5,5 мм и с гиперпаразитической зоной 0,5-3,7 см2 (табл. 1, рис. 1).
Таблица 1
Антагонистическая активность грибных штаммов к возбудителю фомоза рапса озимого Phoma lingam при температуре 25 °С на 20-е сутки культивирования на среде КСА
ФГБ! -ГУ ФНЦ ВНИ ММК, 2024 г.
Площадь зарастания поверхности Размер Размер
Штамм антагонист питательной среды стерильной зоны, гиперпаразитической
антагонистом патогеном
% см2 % см2 мм зоны, см2
Phoma lingam - - 27,6 17,5 ± 1,3 - -
конкуренция за площадь питания + антибиоз + гиперпаразитизм
T-1 Trichoderma sp. 100 63,6 ± 0 5,8 3,7 ± 0,1 4,5 ± 0,5 3,7 ± 0,1
T-2 Trichoderma sp. 100 63,6 ± 0 1,3 0,8 ± 0,2 5,0 ± 0 0,8 ± 0,2
T-3 Trichoderma sp. 100 63,6 ± 0 2,1 1,4 ± 0,2 5,5 ± 0,5 1,4 ± 0,2
T-4 Trichoderma sp. 100 63,6 ± 0 0,8 0,5 ± 0,3 5,0 ± 0 0,5 ± 0,3
T-5 Trichoderma sp. 100 63,6 ± 0 1,2 0,8 ± 0 5,5 ± 0,5 0,8 ± 0
конкуренция за площадь питания + антибиоз
Pv-3 Penicillium verrucosum 53,7 34,2 ± 1,8 18,5 11,8 ± 2,0 10,0 ± 0 0
Pk-1 Penicillium vermiculatum 56,1 35,7 ± 5,3 27,2 17,3 ± 2,0 8,0 ± 1,0 0
Pbc-1 Penicillium brevi-compactum 46,7 29,7 ± 0,7 35,2 22,4 ± 0,5 7,5 ± 0,5 0
Pp-1 Penicillium purpurescens 69,5 44,2 ± 3,9 12,4 7,9 ± 1,2 7,5 ± 2,5 0
Av-1 Aspergillus versicolor 64,8 41,3 ± 5,9 15,6 9,9 ± 1,1 7,5 ± 0,5 0
An-1 Aspergillus niger 66,3 41,2 ± 4,9 12,7 8,1 ± 4,0 7,5 ± 0,5 0
Af-1 Aspergillus flavus 53,9 34,3 ± 1,1 17,7 11,2 ± 1,9 6,5 ± 0,5 0
М-1 Metarhizium sp. 53,4 33,9 ± 1,5 15,2 9,7 ± 1,1 6,5 ± 0,5 0
Xk-1 Chaetomium olivaceum 61,6 39,3 ± 0,5 23,7 15,1 ± 1,5 6,0 ± 0 0
Pr-1 Penicillium rugulosum 25,8 16,5 ± 1,8 16,4 10,4 ± 0,6 5,5 ± 0,5 0
Xk-2 Chaetomium globosum 66,1 42,1 ± 3,2 18,7 11,8 ± 1,9 5,5 ± 0,5 0
Tt-1 Talaramyces trachispermus 25,8 16,4 ± 0,2 40,0 25,5 ± 0,3 5,5 ± 2,5 0
Xk-4 Chaetomium sp. 65,8 41,9 ± 1,3 21,3 13,5 ± 2,2 5,0 ± 0 0
Sm-1 Sordaria macrospora 80,3 51,1 ± 6,3 7,0 4,4 ± 2,4 5,0 ± 0 0
Pf-1 Penicillium funiculosum 58,7 37,4 ± 1,5 11,6 7,5 ± 0,2 4,5 ± 0,5 0
Tr-1 Trichothecium roseum 82,7 53,6 ± 0 10,4 6,6 ± 1,7 4,0 ± 1,0 0
A-1 Basidiomycota 86,9 55,3 ± 2,1 11,1 7,1 ± 1,8 3,5 ± 0,5 0
Xk-3 Chaetomium globosum 63,5 44,4 ± 0,2 16,4 10,4 ± 0,2 2,5 ± 0,5 0
M-24 Penicillium vermiculatum 53,7 34,2 ± 0,1 9,9 6,3 ± 4,7 1,5 ± 0,5 0
конкуренция за площадь питания + гиперпаразитизм
Tk-1 Trichoderma koningii 87,4 55,6 ± 0 25,2 16,0 ± 2,0 0 8,1 ± 3,5
И-3 Basidiomycota 53,5 34,0 ± 2,9 31,1 19,8 ± 2,7 0 3,1 ± 1,2
T-1 Trichoderma sp. T-3 Trichoderma sp. T-4 Trichoderma sp.
Рисунок 1 - Антагонистическая активность грибов рода Trichoderma к возбудителю фомоза рапса озимого Phoma lingam через 20 суток совместного культивирования на среде КСА при температуре 25 °С (ориг.) (ФГБНУ ФНЦ ВНИИМК, 2024 г.): а - колония патогена; б - колония антагониста; в - стерильная зона; г - гиперпаразитизм;
д - конкуренция за площадь питания
Двойной тип механизма антагонистической активности (конкуренция за площадь питания и антибиоз) проявили семь штаммов из рода Penicillium (Pv-3 Penicillium verrucosum, Pk-1 Penicillium vermiculatum, Pbc-1 Penicillium brevi-compactum, Pp-1 Penicillium purpurescens, Pr-1 Penicillium rugulosum, Pf-1 Penicillium funiculosum и M-24 Penicillium vermiculatum), четыре из рода Chaetomium (Xk-1 Chaetomium oliva-ceum, Xk-2 и Xk-3 Chaetomium globosum и Xk-4 Chaetomium sp.), три из рода Aspergillus (Av-1 Aspergillus versicolor, An-1 Aspergillus niger и Af-1 Aspergillus flavus), а также штаммы М-1 Metarhizium sp., Tt-1
Talaramyces trachispermus, Sm-1 Sordaria macrospora, Tr-1 Trichothecium roseum и A-1 Basidiomycota. Вышеуказанные штаммы на 20 сутки заняли от 25,8 до 86,9 % площади поверхности питательной среды при таковой у патогена 7,0-40,0 %, а также образовали стерильную зону задержки роста патогена размером от 1,5 до 10,0 мм. Максимальная стерильная зона установлена у штаммов Pv-3 Penicillium verrucosum, Pk-1 Penicillium vermiculatum, Pbc-1 Penicillium brevi-compactum, Pp-1 Penicillium purpurescens, Av-1 Aspergillus versicolor и An-1 Aspergillus niger - 7,5-10,0 мм (рис. 2).
Pv-3 Penicillium verrucosum
Pk-1 Penicillium vermiculatum
Pbc-1 Penicillium brevi-compactum
Pp-1 Penicillium purpurescens
Av-1 Aspergillus versicolor
An-1 Aspergillus niger
Рисунок 2 - Антибиотическая активность грибных штаммов к возбудителю фомоза рапса озимого Ркота И^ат через 20 суток совместного культивирования на среде КСА при температуре 25 °С (ориг.) (ФГБНУ ФНЦ ВНИИМК, 2024 г.): а - колония патогена; б - колония антагониста; в - стерильная зона
Штаммы И-3 Ва81ёютуео1а и Тк-1 Тпекойегта кот^п на среде КСА проявили двойной тип механизма антагонистической активности (конкуренция за
площадь питания и гиперпаразитизм), заняв 53,5-87,4 % поверхности питательной среды при гиперпаразитической зоне 3,18,1 см2 соответственно.
На специализированной для грибов питательной среде Рудакова у 12 штаммов (Т-1, Т-2, Т-3, Т-4 и Т-5 Тпекойвтта Бр., Хк-1 СЪавХоттт оИ\асвит, Хк-2 и Хк-3 СИав-1оттт globosum, и Хк-4 СИавХоттт Бр., И-3 и А-1 Basidiomycota и Тг-1 ТпеИоХИв-сшт то5вит) выявлен двойной тип антагонистической активности к возбудителю фо-моза рапса озимого РИота И^ат - конку-
ренция за площадь питания и гиперпаразитизм (табл. 2). При этом максимальную конкуренцию за площадь питания проявили штаммы из рода TricИodвrma (Т-1, Т-2, Т-3, Т-4 и Т-5), заняв 100 % поверхности питательной среды, а максимальная гиперпаразитическая зона выявлена у штаммов Хк-2 и Хк-3 СИав^тшт glo-bosum, Тг-1 ТпсИо^всшт го&вит и И-3 Ва-sidiomycota - 8,2-12,1 см2.
Таблица 2
Антагонистическая активность грибных штаммов к возбудителю фомозарапса озимого РНоша И^аш при температуре 25 °С на 20-е сутки культивирования на среде Рудакова
ФГБНУ ФНЦ ВНИИМК, 2024 г.
Площадь зарастания поверхности Размер Размер
Штамм антагонист питательной среды гиперпаразитической зоны, см2
антагонистом патогеном стерильной зоны, мм
% 2 см2 % 2 см2
РИота lingam - - 78,0 49,1 ± 0,6 - -
конкуренция за площадь питания + гиперпаразитизм
T-1 Trichoderma sp. 100 63,6 ± 0 2,7 1,7 ± 0,2 0 1,7 ± 0,2
T-2 Trichoderma sp. 100 63,6 ± 0 2,0 1,2 ± 0,5 0 1,2 ± 0,5
T-3 Trichoderma sp. 100 63,6 ± 0 4,2 2,6 ± 0,2 0 2,6 ± 0,2
T-4 Trichoderma sp. 100 63,6 ± 0 2,9 1,8 ± 0,1 0 1,8 ± 0,1
T-5 Trichoderma sp. 100 63,6 ± 0 6,0 2,1 ± 1,0 0 2,1 ± 1,0
Tr-1 Trichothecium roseum 100 63,6 ± 0 13,4 8,5 ± 1,7 0 8,5 ± 1,7
A-1 Basidiomycota 90,7 57,7 ± 2,9 14,3 9,1 ± 1,1 0 7,1 ± 0,9
Xk-2 Chaetomium globosum 81,4 51,7 ± 1,5 16,5 10,5 ± 2,1 0 8,2 ± 1,7
Xk-1 Chaetomium olivaceum 77,9 49,6 ± 2,2 17,7 11,3 ± 1,2 0 1,9 ± 0,3
Xk-4 Chaetomium sp. 75,3 47,9 ± 0 13,8 8,7 ± 0 0 6,8 ± 0
Xk-3 Chaetomium globosum 71,8 45,6 ± 1,0 16,8 10,6 ± 0,7 0 8,3 ± 0,5
И-3 Basidiomycota 58,9 37,4 ± 0,8 23,5 15,5 ± 0,5 0 12,1 ± 0,4
конкуренция за площадь питания + антибиоз
Av-1 Aspergillus versicolor 56,1 35,7 ± 0,4 33,1 21,0 ± 5,5 5,0 ± 1,0 0
Pr-1 Penicillium rugulosum 36,3 23,0 ± 1,6 46,6 29,6 ± 2,2 3,5 ± 0,5 0
Tk-1 Trichoderma koningii 100 63,6 ± 0 6,0 2,1 ± 0,7 2,5 ± 0,5 0
Pk-1 Penicillium vermiculatum 59,5 37,8 ± 5,4 33,2 21,1 ± 1,9 2,5 ± 0,5 0
Pbc-1 Penicillium brevi-compactum 54,9 34,9 ± 0,4 37,9 24,1 ± 0,6 2,5 ± 0,5 0
Pp-1 Penicillium purpurescens 52,8 33,5 ± 0,4 29,6 18,8 ± 0,7 2,5 ± 0,5 0
Af-1 Aspergillus flavus 58,3 37,1 ± 1,1 21,8 13,8 ± 0,7 2,5 ± 0,5 0
An-1 Aspergillus niger 87,4 55,5 ± 4,9 10,6 6,7 ± 3,6 2,0 ± 1,0 0
M-24 Penicillium vermiculatum 55,7 35,4 ± 0,1 35,0 22,2 ± 1,4 1,0 ± 0 0
Pv-3 Penicillium verrucosum 58,3 37,2 ± 1,7 39,5 25,1 ± 3,2 1,0 ± 0 0
конкуренция за площадь питания
Sm-1 Sordaria macrospora 97,8 62,2 ± 0,1 2,1 1,3 ± 0,1 0 0
Pf-1 Penicillium funiculosum 51,5 32,8 ± 1,0 47,8 30,4 ± 1,4 0 0
М-1 Metarhizium sp. 42,0 26,7 ± 0,3 43,9 27,9 ± 1,6 0 0
Конкуренцию за площадь питания и антибиоз проявили три штамма из рода Aspergillus (Av-1 Aspergillus versicolor, An-1 Aspergillus niger и Af-1 Aspergillus flavus), шесть - из рода Penicillium (Pv-3 Penicillium verrucosum, Pk-1 Penicillium vermiculatum, Pbc-1 Penicillium brevi-compactum, Pp-1 Penicillium purpurescens, Pr-1 Penicillium rugulosum и M-24 Penicillium vermicula-tum), а также штамм Tk-1 Trichoderma kon-ingii. При этом максимальную конкуренцию за площадь питания показал штамм Tk-1 Trichoderma koningii, заняв 100 % площади среды, а максимальный антибиоз -штаммы Pr-1 Penicillium rugulosum и Av-1 Aspergillus versicolor при стерильной зоне 3,5 и 5,0 мм соответственно. Только конкуренция за площадь питания выявлена у штаммов SM-1 Sordaria macrospora, Pf-1 Penicillium funiculosum и М-1 Metarhizium sp., которые заняли от 42,0 до 97,8 % поверхности питательной среды, когда патоген при этом зарос всего на 2,1-47,8 %.
Таким образом, на двух питательных средах: КСА и Рудакова, выделено 26 перспективных грибных штаммов, проявивших антагонистическую активность к возбудителю фомоза рапса озимого с разными типами действия, для проведения вторичного скрининга на фоне искусственного заражения в лабораторных условиях во влажной камере.
Заключение. В результате первичного скрининга грибных штаммов антагонистов из рабочей коллекции лаборатории биометода агротехнологического отдела ФГБНУ ФНЦ ВНИИМК в 2024 г. на средах КСА и Рудакова выделены перспективные штаммы грибов с разными типами антагонистической активности к возбудителю фомоза рапса озимого: конкуренция за площадь питания, гиперпаразитизм и антибиоз. При этом пять штаммов из рода Trichoderma (Т-1, Т-2, Т-3, Т-4 и Т-5 Trichoderma sp.) проявили тройной тип механизма антагонистической активности. Максимальный антибиоз установлен у штаммов Pv-3 Penicillium verrucosum, Pk-1 Penicillium vermiculatum, Pbc-1 Penicillium
brevi-compactum, Pp-1 Penicillium pur-purescens, Av-1 Aspergillus versicolor, An-1 Aspergillus niger и Pr-1 Penicillium rugu-losum, максимальная гиперпаразитическая зона - у штаммов Xk-2 и Xk-3 Chaetomium globosum, Tr-1 Trichothecium roseum и И-3 Basidiomycota, а максимальная конкуренция за площадь питания - у штамма Tk-1 Trichoderma koningii. Только конкуренция за площадь питания выявлена у штаммов Sm-1 Sordaria macrospora, Pf-1 Penicillium funiculosum и М-1 Metarhizium sp. В дальнейшем выделенные штаммы будут оценены во вторичном скрининге на фоне искусственного заражения возбудителем фо-моза рапса озимого в лабораторных условиях во влажной камере и в грунте.
Список литературы
1. Index Fungorum Data Bases: [Электронный ресурс]. - Режим доступа: https://www.indexfungorum.org/names/Names Record.asp?RecordID=230154 (дата обращения: 29.10.2024).
2. Бочкарев Н.И., Пивень В.Т., Тишков Н.М. [и др.]. Защита рапса // Защита и карантин растений. - 2017. - № S1. - С. 3776.
3. Сердюк О.А., Трубина В.С., Горлова Л.А. Влияние внутренней инфекции на всхожесть и масличность семян масличных культур семейства капустные // Масличные культуры. - 2019. - Вып. 3 (179). -С.119-123.
4. Gomzhina M.M., Gasich E.L. Plenodomus species infecting oilseed rape in Russia // Plant Protection News. - 2022. -No. 105 (3). - P. 135-147.
5. Костин Н.К., Кузнецова А.А., Дуд-ченко И.П. [и др.]. Видовой состав микро-мицетов, ассоциированных с растениями рапса озимого некоторых регионов России // Сб. тезисов докладов конф. «Генетические технологии в микробиологии и микробное разнообразие», Пущино, 06-08 декабря 2022 г. - С. 56-59.
6. Гасич Е.Д. Фомоз рапса (обзор литературы) // Вестник защиты растений. -2004. - № 1. - С. 11-24.
7. Маслиенко Л.В. Лаборатория биологических средств защиты растений (вчера, сегодня, завтра) // История научных исследований во ВНИИМКе за 90 лет. - Краснодар, 2002. - С. 191-197.
8. Егоров Н.С. Выделение микробов антагонистов и биологические методы учета их антибиотической активности. - М.: Изд-во Моск. ун-та, 1957. - 78 с.
9. Лысак В.В., Желдакова Р.А., Фомина О.В. Микробиология. Практикум: пособие. - Минск: БГУ, 2015. - 115 с.
10. Рудаков О.Л. Микофильные грибы, их биология и практическое значение. -М.: Наука, 1981. - 160 с.
References
1. Index Fungorum Data bases: [El-ektronnyy resurs]. - Rezhim dostupa: https://www.indexfungorum.org/names/Names Record.asp?RecordID=230154 (data obrash-cheniya: 29.10.2024).
2. Bochkarev N.I., Piven' V.T., Tishkov N.M. [i dr.]. Zashchita rapsa // Zashchita i karantin rasteniy. - 2017. - № S1. - S. 37-76.
3. Serdyuk O.A., Trubina V.S., Gorlova L.A. Vliyanie vnutrenney infektsii na vskhozhest' i maslichnost' semyan maslich-nykh kul'tur semeystva kapustnye // Maslich-nye kul'tury. - 2019. - Vyp. 3 (179). - S. 119123.
4. Gomzhina M.M., Gasich E.L. Plenodomus species infecting oilseed rape in Russia // Plant Protection News. - 2022. -No. 105 (3). - P. 135-147.
5. Kostin N.K., Kuznetsova A.A., Dud-chenko I.P. [i dr.]. Vidovoy sostav mikro-mitsetov, assotsiirovannykh s rasteniyami rapsa ozimogo nekotorykh regionov Rossii // Sb. tezisov dokladov konf. «Geneticheskie tekhnologii v mikrobiologii i mikrobnoe raznoobrazie». Pushchino, 06-08 dekabrya 2022 g. - S. 56-59.
6. Gasich E.D. Fomoz rapsa (obzor litera-tury) // Vestnik zashchity rasteniy. - 2004. -№ 1. - S. 11-24.
7. Maslienko L.V. Laboratoriya biolog-icheskikh sredstv zashchity rasteniy (vchera,
segodnya, zavtra) // Istoriya nauchnykh issle-dovaniy vo VNIIMKe za 90 let. - Krasnodar, 2002. - S. 191-197.
8. Egorov N.S. Vydelenie mikrobov antag-onistov i biologicheskie metody ucheta ikh antibioticheskoy aktivnosti. - M.: Izd-vo Mosk. un-ta, 1957. - 78 s.
9. Lysak V.V., Zheldakova R.A., Fomina O.V. Mikrobiologiya. Praktikum: posobie. -Minsk: BGU, 2015. - 115 s.
10. Rudakov O.L. Mikofil'nye griby, ikh biologiya i prakticheskoe znachenie. - M.: Nauka, 1981. - 160 s.
Сведения об авторах
Л.В. Маслиенко, зав. лаб., гл. науч. сотр., д-р биол. наук Л.А. Дейнега, мл. науч. сотр., аспирант Е.А. Заверюха, мл. науч. сотр., аспирант А.В. Кузнецова, аналитик
Получено/Received 25.10.2024
Получено после рецензии/Manuscript peer-reviewed 30.10.2024
Получено после доработки/Manuscript revised 30.10.2024 Принято/A ccepted
31.10.2024 Manuscript on-line 25.12.2024
