CC BY
0OECD+WoS: 4.01+AM (Agronomy) https://doi.org/10.31993/2308-6459-2024-107-2-16611
Краткое сообщение
ОСОБЕННОСТИ СООБЩЕСТВА АРБУСКУЛЯРНЫХ МИКОРИЗНЫХ ГРИБОВ, АССОЦИИРОВАННЫХ С АМБРОЗИЕЙ ПОЛЫННОЛИСТНОЙ
С.В. Сокорнова*, Д.М. Малыгин
Всероссийский научно-исследовательский институт защиты растений, Санкт-Петербург
* ответственный за переписку, e-mail: [email protected]
Ambrosia artemisiifolia — высоковредоносное инвазионное растение североамериканского происхождения, относящееся к трибе Heliantheae подсемейства Asteroideae. К одному из факторов, влияющих на конкурентоспособность инвазионных видов сложноцветных, относят мутуалистические отношения с арбускулярными микоризными грибами. Существует гипотеза, что на эффективность этого симбиоза оказывает влияние филогенетическое положение и время возникновения видов участников. Целью нашей работы был сравнительный анализ видового состава сообщества арбускулярных микоризных грибов, ассоциированных с амброзией полыннолистной, с сообществами близкородственных видов. Показано, что проанализированное сообщество менее разнообразно, чем у близкородственных видов растений трибы Astereae. В частности, оно представлено широко распространёнными видами порядка Glomerales (Glomus spp., Funneliformis mosseae) и, фактически, не содержит представителей Diversisporales. Возможно, в силу особенностей эволюции геномов представителей трибы Heliantheae, симбиоз с арбускулярными микоризными грибами не оказывает существенное влияние на увеличение конкурентоспособности инвазионных видов, как это происходит у видов трибы Astereae.
Ключевые слова: Heliantheae, Astereae, Ambrosia artemisiifolia, Glomus spp., Funneliformis mosseae Поступила в редакцию: 10.07.2024 Принята к печати: 13.09.2024
Инвазии растений серьезно угрожают природным экосистемам. Встречающиеся на территории РФ и ближнего зарубежья инвазионные растения из разных триб подсемейства Asteroideae Lindl. входят в списки наиболее опасных видов (Виноградова и др., 2010; Галкина и др., 2015; Абрамова, Голованов, 2016; Боровик, Абрамова, 2016; Сенатор, Виноградова, 2023; Федина, Малышева, 2023).
Арбускулярные микоризные грибы (АМГ), успешный симбиоз с которыми дает растению-хозяину существенные преимущества, могут оказывать влияние на конкурентоспособность видов в фитоценозах. До сих пор остается неясным, как АМГ влияют на конкурентный баланс между аборигенными и инвазионными видами. Существует предположение о том, что вклад различных видов АМГ в повышение конкурентоспособности для сорных и культурных растений различный. Сравнение частоты и интенсивности микоризованности инвазионных и аборигенных видов сложноцветных показало, что местные виды, как правило сильнее микоризованы, чем инвазионные. Прежде всего разница наблюдается в количестве мицелия, в то время как на численность арбускул и везикул инвазионный статус чаще всего не влияет (Бетехтина, Веселкин, 2015; Betekhtina et al., 2016; Rezacova et al., 2020). Для некоторых видов инвазионных растений меньшая интенсивность микоризованности объясняется гипотезой деградированного мутуализма, базирующейся на предположении о том, что инвазионные виды в меньшей степени зависят от арбускулярной микоризы, чем аборигенные (Vogelsang, Bever, 2009). Hart и др. (2001) для оценки того, что первично: состав фитоценоза или ризосферного грибного
сообщества, предложили гипотезу «водитель/пассажир». Позже для инвазионных растений семейства Asteraceae Bercht. & J.Presl было показано, что фитоценоз определяет состав арбускулярного микоризного сообщества почвы и ризосферы на участках вторичной сукцессии, а обратная ситуация, когда состав сообщества определяет состав фитоценоза, наблюдается при первичной сукцессии (Zobel, Öpik, 2014; Rezácová et al., 2021). В большинстве случаев в природе отношения между инвазионными видами семейства Asteraceae и арбускулярными микоризными грибами классифицируют как мутуализм (Richardson et al., 2000).
О видовом составе сообществ АМГ, ассоциированных с растениями трибы Heliantheae Cass., включающей такие инвазионные виды, как амброзии полыннолистная Ambrosia artemisiifolia L., многолетняя A. psilostachya DC. и трехраздельнаяA. trifida L., циклахена дурнишниколист-ная Cyclachaena xanthiifolia (Nutt.) Fresen. и дурнишник беловатый Xanthium albinum (Widder) Scholz & Sukopp, сведений немного. Показано, что эти сообщества АМГ представлены только широко распространёнными видами порядка Glomerales J.B. Morton & Benny, преимущественно видом Funneliformis mosseae (T.H. Nicolson & Gerd.) C. Walker & A. Schüßler. Впервые благотворное влияние АМГ на распространение A. artemisiifolia было показано Fumanal et al. (2006). Zhang et al. (2018) показал, что инвазия A. artemisiifolia уменьшает разнообразие АМГ в почве ризосферы этого растения, и что повторная инокуляция инвазионных растений выделенными из почвы спорами повышает их конкурентоспособность. Продолжение этой работы в условиях in vitro выявило то, что инвазия
© Сокорнова С.В., Малыгин Д.М. Статья открытого доступа, публикуемая Всероссийским институтом защиты растений (Санкт-Петербург) и распространяемая на условиях Creative Commons Attribution License 4.0 (http://creativecommons.Org/licenses/by/4.0/).
A. artemisiifolia приводит к изменению разнообразия AMT ризосферного сообщества, увеличивая долю F. mosseae у амброзии и уменьшая у нативного злака щетинника зеленого Setaria viridis (L.) P.Beauv. (Kong et al., 2022). Для дурнишника обыкновенного Xanthium strumarium var. canadense (Mill.) Torr. & A.Gray (=X italicum) показано, что мутуалистические отношения с F. mosseae способствуют распространению этого растения (Tang et al., 2020). В наших исследованиях мы остановились на амброзии полыннолистной, аллергенном опасном инвазиан-те, который относится к одной из наиболее молодых клад подсемейства Asteroideae — Heliantheae Alliance (Mandel
Материалы
Сбор растительного материала
Растения A. artemisiifolia (не менее пяти), находящиеся в фазе цветения, собирали в прибрежной зоне в октябре 2024 на территории Адлерского р-на города Сочи. Работа проводилась на корнях 3-4 порядка (не менее 18 фрагментов на вариант).
Пробоподготовка
Депигментацию корней проводили 10 % KOH при комнатной температуре до полного удаления желтого пигмента. Окраску проводили чернилами в 5 % молочной кислоте в течение 8 ч при комнатной температуре, после чего корни отмывали 2.5 % молочной кислотой. Mикроскопи-ческие препараты анализировали с помощью микроскопа БЛM-Л с цифровой камерой M^8.3, программное обеспечение для получения и анализа изображений «MCview» (HOMO, Санкт-Петербург).
Выделение ДНК из корней растений
Выделение ДНК из корней осуществляли со CTAB буфером (Doyle, Doyle, 1987) с добавлением на стадии экстракции менее 1 % активированного угля для удаления специализированных растительных метаболитов, ингиби-рующих ДНК полимеразу. Качество выделенной ДНК контролировали по способности образовывать продукты ПЦР более 500 нп по локусу внутренних транскрибируемый спейсеров с праймерами ITS1-F (CTT GGT CAT TTA GAG GAA GTA A) /lTS4-B (CAG GAG ACT TGT ACA CGG TCC AG) (Евроген, Mосква) согласно (Gardes, Bruns, 1993).
Амплификация грибных ДНК-последовательностей
ДНК-последовательности нарабатывали по локусу малой субъединицы РНК с праймерами AML1 (ATC AAC TTT CGA TGG TAG GAT AGA) /AML2 (GAA CCC AAA CAC TTT GGT TTC C) (Евроген, Mосква). Полимеразную цепную реакцию проводили в объеме 20 мкл с помощью DreamTaq PCR Master Mix (2х) (Thermo Scientific). В состав смеси входили по 5 пикомоль каждого праймера, 1 мкл препарата. Условия проведения ПЦР включали начальную денатурацию при 94 °C в течение 3 мин, затем 45
et al., 2019). Эволюционные события у трибы Heliantheae, в отличие от представителей трибы Astereae, включают событие дупликации целого генома (Laforest et al., 2024). Центр разнообразия видов трибы Heliantheae находится в Северной Америке. Наряду с масличными культурами рода Helianthus она содержит инвазионные виды родов Ambrosia, Xanthium и Cyclachaena.
Целью нашей работы стал сравнительный анализ видового состава сообщества арбускулярных микоризных грибов, ассоциированных с амброзией полыннолистной, с сообществами близкородственных видов.
и методы
циклов по программе 94 °C 30 с, 40 °C 1 мин, 72 °C 1 мин, и заключающую стадию при 72 °C 10 мин (Lee et al., 2008).
Клонирование ДНК-фрагментов
Продукты амплификации ДНК клонировали в векторе PJET 1.2 с помощью CloneJET PCR Cloning Kit (Thermo Scientific), согласно протоколу производителя. Реакционная смесь содержала 5 мкл 2-х кратного реакционного буфера, 1 мкл продукта ПЦР, 0.5 мкл фермента и воду до конечного объема 10 мкл. Реакция проходила 5 мин при 70 °C. Продукты реакции переносили в лед, добавляли по 0.5 мкл векторной ДНК (PJ1.2blunt Cloning Vector, 50 нг/ мл) и лигазы (T4 DNA Ligase). Смесь инкубировали 15 мин при комнатной температуре.
Трансформация клеток Escherichia coli
К компетентным клеткам DH5alpha добавляли лигаз-ную смесь и выдерживали 30 мин на льду. Затем проводили тепловой шок при 42 °C в течение 40 с, после чего к смеси клеток и ДНК добавляли 1 мл питательной среды LB и выращивали с аэрацией в течение 40 мин при 37 °C. Далее клетки осаждали центрифугированием и высевали на агаризованную питательную среду LB с ампициллином (100 мг/л).
С выросшими колониями проводили ПЦР также в объеме 20 мкл с помощью DreamTaq PCR Master Mix (2х) (Thermo Scientific) с добавлением по 5 пикомоль каждого праймера pJET1.2F (CGA CTC ACT ATA GGG AGA GCG GC) /pJET1.2R (AAG AAC ATC GAT TTT CCA TGG CAG) (Евроген, Москва). Условия проведения ПЦР: 95 °C 5 мин, затем 25 циклов по программе 95 °C 15 с, 58 °C 30 c, 72 °C 30 c и 72 °C 5 мин. Продукты амплификации размером 650-700 нп секвенировали по Сэнгеру на базе ресурсного центра «Развитие молекулярных и клеточных технологий» СПбГУ Анализ ДНК последовательностей проводили с помощью программного пакета MEGA7: Molecular Evolutionary Genetics Analysis version 7.0 for bigger datasets (Kumar et al., 2018).
Результаты
По морфологическим признакам и анализу ДНК-последовательностей, кодирующей малую субъединицу РНК (SSU), выявлены преимущественно представители семейства Glomeraceae Риге. & Dalpë, а именно К. то&чеае и Rhizophagus spp. (рис. 1, 2; табл. 1). В целом сообщество АМГ, ассоциированное с амброзией полыннолистной А. artemisiifolia, соответствовало по структуре и видовому составу данным, полученным для сообщества этого
и обсуждение
растения-хозяина, произрастающего в Китае (Kong et al., 2022). Так, в результате клонирования ампликонов по участку, кодирующему малую субъединицу рРНК (SSU), авторы выявили следующие виды АМГ: Septoglomus viscosum C. Walker, D. Redecker, D. Stille & A. Schüßler, Entrophospora lamellosa Blaszk., B.T. Goto, Magurno, Niezgoda & Cabello (=Claroideoglomus lamellosum), Dominikia iranica Blaszk., Chwat & Kovacs (=Rhizophagus iranicus), D. indica Blaszk.,
Chwat & Kovacs (=Glomus indicum), Rhizophagus irregularis C. Walker & Schuessler, F. mosseae, R. intraradices C. Walker & Schuessler и S. constrictum Sieverd., G.A. Silva & Oehl.
Виды порядка Diversisporales C. Walker & A. Schuessler, часто ассоциированные с инвазионными видами близкородственной трибы Astereae (Malygin et al., 2021; Sokornova et al., 2022), в корнях анализируемых растений A. artemisiifolia обнаружены не были. На сельскохозяйственных культурах показано, что древние линии арбуску-лярных микоризных грибов приносят меньше пользы растениям (Säle et al., 2021), то есть эффективность симбиоза может обуславливаться временем происхождения видов. В случае симбиотических отношений амброзии полын-нолистной и АМГ, выявленные виды мало различаются по времени происхождения. Мы полагаем, что различия
в составе сообщества АМГ, ассоциированного с видами трибы Heliantheae, по сравнению с видами близкородственных триб, обусловлены более поздними геномными перестройками у этих растений, подробно обсуждаемыми в статье Laforest et al. (2024).
АМГ, выявленные в ассоциированном с амброзией по-лыннолистной сообществе, относятся к широко распространенным, повсеместно встречающимся на широком круге растений-хозяев видам. Возможно, в силу особенностей эволюции геномов представителей этой трибы, симбиоз с АМГ не оказывает существенное влияние на увеличение конкурентоспособности инвазионных видов, как это происходит у видов трибы Astereae. Для окончательного вывода необходим анализ ризосферной микобио-ты более широкого круга растений-хозяев.
Рисунок 1. Грибные структуры арбускулярных микоризных грибов, наблюдаемые в корнях A. artemisiifolia: A - везикула; B - спора; C - мицелиальные структуры; D - арбускула
Figure 1. Fungal structures of arbuscular mycorrhizal fungi in the roots of A. artemisiifolia: A - vesicle; B - spore; C - mycelial structures; D - arbuscle
Сокорнова С.В., Малыгин Д.М. /Вестник защиты растений, 2024, 107(2), с. 93-98 - КХ154257.1 Rhizophagus done TZ1-41 - КХ154256.1 Rhizophagus done T2-08
93
75
95
99
84
С
MK463595.1 Funneliformis mosseae done 1710261876 Amb2
MK463597.1 Septoglomus constrictum done 1710261895 - MK463593.1 Glomus indicum done 1710261861
77
43
87 __
40 L MK463591.1 Entrophospora lamellosa done 1710261859 MK463596.1 Rhizophagus intraradices done 1711283299 — KX154252.1 Rhizophagus done GB3-11 - KX154251.1 Rhizophagus done B3-031
45
- MK463594.1 Rhizophagus irregularis done 1710261868
KX154254.1 Rhizophagus done GB1-16 i— Ambl
46 - Amb3
KU361708.1 Acaulospora Large Saana 80 1
Sc
Рисунок 2. Филогенетическое древо, построенное методом максимального правдоподобия с бутстрэп поддержкой (400 реплик) по ДНК-последовательностям грибов, ассоциированных с амброзией полыннолистной A. artemisiifolia (Amb) (триба Heliantheae) и золотарником канадским Solidago canadensis (Sc) (триба Astereae), по локусу малой субъединицы
РНК 514 нп (Kumar et al., 2018) Figure 2. Maximum likelihood phylogenetic tree based on small subunit RNA sequence alignment (514 positions). Numbers
above branches represent percentages of bootstrap values (400 replicates). Sequences of AMF associated with common ragweed A. artemisiifolia (Amb) (Heliantheae tribe) and canadian goldenrod Solidago canadensis (Sc) (Astereae tribe) (Kumar
et al., 2018)
Таблица 1. Референсные последовательности, использованные при построении филогенетического древа Table 1. Reference sequences used to construct the phylogenetic tree
Номер GenBank Род/Вид Клон Растение-хозяин Ссылка
GenBank number Genus/species Clone/strain Host plant Reference
MK463597.1 Septoglomus constrictum 1710261895 Ambrosia artemisiifolia Kong et al., 2022
MK463593.1 Glomus indicum 1710261861 Ambrosia artemisiifolia Kong et al., 2022
MK463591.1 Entrophospora lamellosa 1710261859 Ambrosia artemisiifolia Kong et al., 2022
MK463596.1 Rhizophagus intraradices 1711283299 Ambrosia artemisiifolia Kong et al., 2022
MK463594.1 Rhizophagus irregularis 1710261868 Ambrosia artemisiifolia Kong et al., 2022
MK463590.1 Septoglomus viscosum 1710196759 Ambrosia artemisiifolia Kong et al., 2022
KX154257.1 Rhizophagus TZ1-41 Ambrosia artemisiifolia Zhang et al., 2018
KX154256.1 Rhizophagus T2-08 Ambrosia artemisiifolia Zhang et al., 2018
KX154255.1 Rhizophagus T3-13 Ambrosia artemisiifolia Zhang et al., 2018
KX154254.1 Rhizophagus GB1-16 Ambrosia artemisiifolia Zhang et al., 2018
KX154252.1 Rhizophagus GB3-11 Ambrosia artemisiifolia Zhang et al., 2018
KX154251.1 Rhizophagus B3-031 Ambrosia artemisiifolia Zhang et al., 2018
KX154250.1 Rhizophagus B3-019 Ambrosia artemisiifolia Zhang et al., 2018
MK463595.1 Funneliformis mosseae 1710261876 Ambrosia artemisiifolia Kong et al., 2022
KU361708.1 Acaulospora Large Saana 80 Solidago virgaurea Savolainen, Kytoviita, 2017
Библиографический список (References)
Абрамова ЛМ, Голованов ЯМ (2016) Инвазивные растения Республики Башкортостан: «Черный список», библиография. Известия Уфимского научного центра РАН 2:54-61 Бетехтина АА, Веселкин ДВ (2015) По результатам непрямых сопоставлений инвазивные растения формируют
микоризу с меньшей интенсивностью, чем аборигенные. Вестник Оренбургского государственного университета 10(185):7-9. Боровик ЭР, Абрамова ЛМ (2016) Натурализация инва-зивных видов Xanthium albinum и Bidens frondosa в
Предуралье Республики Башкортостан. Вестник ПГУ. Биология 3.
Виноградова ЮК, Майоров СР, Хорун ЛВ (2010) Чёрная
книга флоры Средней России. М.: ГЕОС. 512 с. Галкина МА, Виноградова ЮК, Шанцер ИА (2015) Биоморфологические особенности и микроэволюция инвазионных видов рода Bidens L. Известия РАН. Серия биологическая 4:382-392. Сенатор СА, Виноградова ЮК (2023) Инвазионные растения России: результаты инвентаризации, особенности распространения и вопросы управления. Успехи современной биологии 143(4):393-402. http://doi.org/10.31857/ S0042132423040099 Сокорнова СВ, Малыгин ДМ, Ткач АС, Голубев АС (2023) Влияние гербицидов на сообщества арбускулярных микоризных грибов, ассоциированных с однолетними инвазионными сорными растениями Asteroideae. Вестник защиты растений 106(4):195-200. https://doi. org/10.31993/2308-6459-2023-106-4-16198 Федина ЛА, Малышева СК (2023) Распространение адвентивных видов Galinsoga parviflora и G. quadriradiata Asteraceae) на юге Дальнего Востока. Сибирский вестник сельскохозяйственной науки 53(4):57-63. https://doi. org/10.26898/0370-8799-2023-4-6 Betekhtina AA; Mukhacheva TA; Kovalev SYu.; Gusev AP; Veselkin DV (2016) Abundance and diversity of arbuscular mycorrhizal fungi in invasive Solidago canadensis and indigenous S. virgaurea. Russ JEcol 47:575-579. http://doi. org/10.1134/S1067413616060035 Doyle JJ, Doyle JL. (1987) A rapid DNA isolation procedure for small quantities of fresh leaf tissue. Phytochem Bull 19:11-15.
Fumanal B, Plenchette C, Chauvel B, Bretagnolle F (2006) Which role can arbuscular mycorrhizal fungi play in the facilitation of Ambrosia artemisiifolia L. invasion in France? Mycorrhiza 17(1):25-35. http://doi.org/10.1007/ s00572-006-0078-1 Gardes M, Bruns TD (1993) ITS primers with enhanced specificity for basidiomycetes - application to the identification of mycorrhizae and rusts. Mol Ecol 2(2):113-118. doi:10.1111/j.1365-294x.1993.tb00005.x Hart MM; Reader RJ; Klironomos JN (2001) Life-history strategies of arbuscular mycorrhizal fungi in relation to their successional dynamics. Mycologia 93:1186-1194. http://doi. org/10.2307/3761678 Kong L; Chen X; Yerger EH; Li Q et al (2022) Arbuscular mycorrhizal fungi enhance the growth of the exotic species Ambrosia artemisiifolia. J Plant Ecol 15:581-595, https:// doi.org/10.1093/jpe/rtab087 Kumar S, Stecher G, Li M, Knyaz C, Tamura K (2018) MEGA X: Molecular Evolutionary Genetics Analysis across Computing Platforms. Mol Biol Evol 35(6):1547-1549. https://doi.org/10.1093/molbev/msy096. Laforest M, Martin SL, Bisaillon K, Soufiane B et al (2024) The ancestral karyotype of the Heliantheae Alliance, herbicide
resistance, and human allergens: Insights from the genomes of common and giant ragweed. Plant Genome e20442. http:// doi.org/10.1002/tpg2.20442 Lee J, Lee S, Young JPW (2008). Improved PCR primers for the detection and identification of arbuscular mycorrhizal fungi. FEMS Microbiol Ecol 65(2):339-349. https://doi. org/10.1111/j.1574-6941.2008.00531.x Malygin D, Mandryk-Litvinkovich M, Sokornova S (2021) Does arbuscular mycorrhiza favor invasion of some Asteraceae tribes? Plant Protection News 104:144-152. https://doi.org/10.31993/2308-6459-2021-104-3-14993 Mandel JR, Dikow RB, Siniscalchi CM, Thapa R et al (2019) A fully resolved backbone phylogeny reveals numerous dispersals and explosive diversifications throughout the history of Asteraceae. Proc Nat Acad Sci 201903871. https:// doi.org/10.1073/pnas.1903871116 Rezácová V, Konvalinková T, Rezác M. (2020) Decreased mycorrhizal colonization of Conyza canadensis (L.) Cronquist in invaded range does not affect fungal abundance in native plants. Biologia 75:693-699. https://doi.org/10.2478/ s11756-020-00446-6 Rezácová V, Rezác M, Líblová Z, Michalová T, Heneberg P (2021) Stable colonization of native plants and early invaders by arbuscular mycorrhizal fungi after exposure to recent invaders from the Asteraceae family. Invas Plant Sci Mana 14(3):147-155. https://doi.org/10.1017/inp.2021.17 Richardson DM, Allsopp N, D'Antonio CM, Milton SJ, Rejmánek M (2000) Plant invasions—the role of mutualisms. Biol Rev 75:65-93. https://doi.org/10.1111/j.1469-185X.1999.tb00041.x Säle V, Palenzuela J, Azcón-Aguilar C, Sánchez-Castro I et al (2021) Ancient lineages of arbuscular mycorrhizal fungi provide little plant benefit. Mycorrhiza 31:559-576. https:// doi.org/10.1007/s00572-021-01042-5 Savolainen T, Kytöviita M-M (2017) Competition for resources is ameliorated by niche differentiation between Solidago virgaurea life-history stages in the Arctic. J Plant Ecol 10(6):907-917. https://doi.org/10.1093/jpe/rtw123 Sokornova S, Malygin D, Terentev A, Dolzhenko V (2022) Arbuscular mycorrhiza symbiosis as a factor of Asteraceae species invasion. Agronomy 12(12):3214-3230. https://doi. org/10.3390/agronomy12123214 Tang JS; Zhao ZL; Ma M (2020) Glomus mosseae promotes Xanthium italicum invasion. JSM 49:2425-2432. https://doi. org/10.17576/jsm-2020-4910-08 Vogelsang KM, Bever JD (2009) Mycorrhizal densities decline in association with nonnative plants and contribute to plant invasion. Ecology 90(2):399-407. https://doi. org/10.1890/07-2144.1. Zhang FJ, Li Q, Yerger EH, et al. (2018) AM fungi facilitate the competitive growth of two invasive plant species, Ambrosia artemisiifolia and Bidens pilosa. Mycorrhiza 28:703-715. Zobel M, Öpik M (2014) Plant and arbuscular mycorrhizal fungal (AMF) communities - which drives which? J Veget Scie 25(5):1133-1140. https://doi.org/10.1111/jvs.12191
Translation of Russian References
Abramova LM, Golovanov YaM (2016) [Invasive plants of the Republic of Bashkortostan: «Blacklist», publications and reports]. Proceedings of the Ufa Scientific Center of RAS 2:54-61 (In Russian)
Betekhtina AA, Veselkin DV (2015) [According to the results of indirect comparisons invasive plants form mycorrhiza less intense than aboriginal plants]. Vestnik Orenburgskogo gosudarstvennogo universiteta 10(185):7-9 (In Russian)
Borovik ER, Abramova LM (2015) [Naturalizing process of the invasive species of Xanthium albinum and Bidens frondosa in the Cis-Ural region of the Republic of Bashkortostan]. Bulletin of Perm University 3:187-192 (In Russian) Vinogradova YuK, Mayorov SR, Horun LV (2010) [Black book of flora of Central Russia]. Moscow: GEOS. 512 p. (In Russian)
Galkina MA, Vinogradova YuK, Shantser IA (2015) [Biomorphological features and microevolution of the invasive species Bidens L. in European Russia]. Biology Bulletin 4:382-392 (In Russian) Senator SA, Vinogradova YuK (2023) [Invasive plants of Russia: results of inventory, peculiarities of distribution,
Plant Protection News, 2024, 107(2), p. 93-98 OECD+WoS: 4.01+AM (Agronomy)
and management issues]. Biology Bulletin Reviews 13(6):681-690 (In Russian) http://www.doi.org/10.1134/ S2079086423060130 Sokornova SV, Malygin DM, Tkach AS, Golubev AS (2023) [The effect of herbicides on arbuscular mycorrhizal fungi associated with annual invasive Asteroideae weeds]. Plant Protection News 106(4):195-200 (In Russian) http://www. doi.org/10.31993/2308-6459-2023-106-4-16198 Fedina LA, Malysheva SK (2023) [Distribution of the adventive species Galinsogaparviflora and G. guadriradiata (Asteraceae) in the south of the Far East]. Siberian Herald of Agricultural Science 53(4):57-63 (In Russian) https://doi. org/10.26898/0370-8799-2023-4-6
https://doi.org/10.31993/2308-6459-2024-107-2-16611
Short communication
FEATURES OF THE ARBUSCULAR MYCORRHIZAL FUNGAL COMMUNITY ASSOCIATED WITH ANNUAL RAGWEED S.V. Sokornova*, D M. Malygin
All-Russian Institute of Plant Protection, St. Petersburg, Russia
*corresponding author, e-mail: [email protected]
Ambrosia artemisiifolia is a highly harmful invasive plant of North American origin, belonging to the tribe Heliantheae of the subfamily Asteroideae. One of the factors influencing the competitive ability of invasive Asteraceae species includes mutualistic relationships with arbuscular mycorrhizal (AM) fungi. There is a hypothesis that the effectiveness of this symbiosis is influenced by the phylogenetic position and the origin of species. The aim of our work was to identify the characteristics of the AM-fungi community associated with annual ragweed. It was shown that the community is less diverse than closely related species from the tribe Astereae. The major difference is that the AM-community contains only widespread species of the order Glomerales, such as Glomus spp. and Funneliformis mosseae. It is possible that other factors have a greater influence on the A. artemisiifolia competition.
Keywords: Heliantheae, Astereae, Ambrosia artemisiifolia, Glomus spp., Funneliformis mosseae
Submitted: 10.07.2024
Accepted: 13.09.2024
© Sokornova S.V., Malygin D.M., published by All-Russian Institute of Plant Protection (St. Petersburg). This is an open access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution License 4.0 (http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/).
