УДК 597.533.1
О ЗАРАЖЕННОСТИ ТИХООКЕАНСКОЙ СЕЛЬДИ CLUPEA PALLASII (CLUPEIFORMES, CLUPEIDAE) ЛИЧИНКАМИ ANISAKIS SIMPLEX (NEMATODA: ASCARIDATA)
И.Г. Рыбникова, В.И. Мартышко, Дальрыбвтуз, Владивосток
Проанализировано 11 выборок тихоокеанской сельди на зараженность личинками Anisakis simplex в заливах Сахалинский, Ныйский, Пильтун, Советская Гавань, оз. Тунайча и на юго-западном побережье Сахалина. Несмотря на некоторые различия в размерном составе рыб, можно отметить, что для каждого из исследованных районов в нерестовый период, когда популяции сельди не смешиваются, характерен свой уровень зараженности личинками анизакисов.
Среди нематод, паразитирующих в морских рыбах, личинки рода Anisakis по своей встречаемости, распространению в Мировом океане и практической значимости занимают ведущее место [1, 2, 3, 4, 5]. В северо-западной части Тихого океана в разные годы были проведены паразитологические исследования рыб, в результате которых в литературе появилось много разрозненных фаунистических и систематических работ, включающих материалы по нематодам рыб исследуемого региона. По данным Г.Ф. Соловьевой [1], наиболее массовыми видами, зарегистрированными во всех дальневосточных морях, являются личинки нематод, относящиеся к Anisakis simplex. Они были обнаружены у 42 видов рыб, в том числе и у тихоокеанской сельди с зараженностью 56,6 %.
Личинки рода Anisakis паразитируют у большинства видов морских рыб, и степень инвазии ими может быть очень высокой. По данным В.Г. Кулачковой [2], из 1145 сельди Clupea harengus pallasii n. maris-alba Белого моря были заражены ими 48,8 %, при этом 13,1 %
локализовались в полости тела и мускулатуре. Степень инвазии может увеличиваться в зависимости от длины рыбы. Например, Г.М. Пушникова [6] отмечала такую корреляцию у сельди в заливе Анива, при этом снижение зараженности анизакисами совпадало с заметным уменьшением размеров. С другой стороны, Дж. Дэйви [7] часто находил сельдь С. harengus младших возрастных групп более инвазированной, чем старших, и предположил, что это может зависеть или от высокой численности первого промежуточного хозяина, или от спектра питания рыбы. При этом отмечались как краткосрочные, так и долгосрочные колебания зараженности. На основании сравнения его данных с другими Л. Рэймер и Д. Джессен [8] заключили, что в Северном море, начиная с прошлого века, наблюдается тенденция к увеличению степени инвазии рыб этими нематодами.
158
Б. Бэннинг и X. Беккер [9] показали, что существуют многолетние колебания зараженности рыб, например сельди СЮреа harengus в Северном море, и связывали это с миграциями рыб. Имеются также заметные различия в зараженности рыб разных популяций. Например, Я. Грабда [8] выделяла 4 популяции сельди в Померанском заливе и сопредельных водах Балтийского моря, используя уровни зараженности личинками Anisakis simplex в комплексе с отолитами и индексом зрелости гонад. Количественные показатели зараженности личинками A. simplex использовались и при дифференциации популяций горбуши в водах Сахалина [4].
Cведения о зараженности тихоокеанской сельди личинками анизакисов представляют большой практический интерес. Достаточно крупные и легко распознаваемые личинки анизакисов, являясь массовым видом паразитов, могут использоваться как паразиты-индикаторы популяций тихоокеанской сельди, эксплуатируемых промыслом.
Материалом для настоящей работы послужили выборки нерестовой сельди, собранные в 1991-2000 гг. при выполнении биологических анализов сельди из уловов в заливах Сахалинском, Пильтун, Ныйском, Советская Гавань и оз. Тунайча (рисунок). Нематод выбирали из полости тела и считали их количество в каждой особи. Личинки анизакисов из исследованных нами сельдей были отнесены к виду Anisakis simplex (Dujardin, 1845; Nematoda: Ascaridata) [9].
Сравнительный анализ зараженности сельди личинками анизакисов по районам исследования выявил места с наиболее высокими и наиболее низкими показателями зараженности (таблица). Высокая степень инвазии личинками анизакисов отмечена у нерестовой сельди оз. Тунайча, в зал. Советская Гавань и у северо-восточного побережья Сахалина. Низкие показатели зараженности имеют исследованные сельди у юго-западного побережья Сахалина и в Сахалинском заливе.
В то же время зараженность сельди личинками анизакисов из года в год колеблется, что наблюдается в заливах северо-восточного Сахалина. Зараженность сельди личинками A. simplex в 1992 г. была ниже, чем в 1998 г., соответственно 50 и 84 % рыб, индекс обилия 3,24 и 8,14 экз. По данным Г.М. Пушниковой [6], в 1977-1979 гг. экстенсивность инвазии нерестовой сельди анизакисами в оз. Тунайча составляла 30,3 %, индекс обилия 0,89, а у сельди юго-западного Сахалина 12,5 % при индексе обилия 0,3 экз., т.е. в последние десятилетия наблюдается тенденция увеличения зараженности сельди.
Распределение личинок по акватории определяется пространственным распределением промежуточных и окончательных хозяев. В северной части Тихого океана, как и в других частях ареала, дефинитивными хозяевами A. simplex являются морские млекопитающие.
Промежуточными хозяевами анизакисов в Тихом океане являются ракообразные: эуфаузииды и некоторые другие высшие ракообразные [1]. По-видимому, высокая степень инвазии личинками анизакисов сельди восточного побережья Сахалина и в центральной части Татарского пролива связана с большой плотностью в этих зонах морских млекопитающих (дефинитивных хозяев анизакисов) и ракообразных (промежуточных хозяев), что и обусловливает достаточно высокую зараженность сельди этими гельминтами.
Тем не менее, несмотря на некоторые различия в размерном составе рыб, можно отметить, что для каждого из исследованных районов в нерестовый период, когда популяции сельди не смешиваются, характерен свой уровень зараженности личинками анизакисов.
16
Зараженность сельди в различных районах присахалинских вод
Район Дата Период жизни сельди Длина рыб, см Число рыб Экстенсивность инвазии, % Интенсивность инвазии Индекс обилия
колебания средняя
1. Сахалинский залив 22.06.91 нерестовый 19,0-30,8 23,56 100 68,0 1 -17 3,05
2. Ныйский залив 11.06.92 нерестовый 21,5-31,0 27,61 100 73,0 1 - 56 5,66
3. Залив Пильтун 11.06.92 нерестовый 19,0-31,2 26,11 100 83,0 1 -20 6,40
4. Ныйский залив 13.06.92 нерестовый 15,5-26,5 21,83 100 50,0 2-25 3 24
5. Оз. Тунайча 17.06.92 нерестовый 17,5-29,0 20,29 100 95,0 1 -155 16,64
6. Юго-запад Сахалина 47°33' N - 141°44' Е 5.06.92 нерестовый 26,0-32,0 29,28 100 23,0 1 -12 1,02
7. Сахалинский залив, п. Рыбновск 23.06.92 нерестовый 16,0-29,5 21,7 100 59,0 1 -23 3,09
8. Сахалинский залив, п. Рыбновск 26.06.92 нерестовый 16,0-24,2 19,54 100 51,0 1 -12 1,63
9. Залив Советская Гавань, п. Рыбкино 18.5.00 нерестовый 22,0-37,0 34,08 100 95,0 1 -25 11,55
10. Ныйский залив 7.6.98 нерестовый 22,5-30,0 26,68 100 84,0 1 -35 8,14
11. Оз. Тунайча 4.06.92 нерестовый 15,0-22,5 20,45 100 65,0 1 -12 2,81
Библиографический список
1. Соловьева Г.Ф. Нематоды промысловых рыб северо-западной части Тихого океана // Изв. ТИНРО. 1994. Т. 117. С. 65-73.
2. Кулачкова В.Г. Зараженность сельди Белого моря личинками Anisakis sp. (Nematoda: Ascaridata) // Паразитол. сб. Зоол. ин-та АН СССР. 1980. Т. 29. С. 126-142.
3. Grabda, J. The dynamics of the nematode larvae, Anisakis simplex(rud.) invasion in the south-western Baltic herring, (Clupea harengus L.) // Acta Ichthyol. Pisces. 1974. Vol. 4. P. 3-21.
4. Вялова Г.П. Паразитозы кеты (O. Keta) горбуши (O. Gorbuscha). Южно-Сахалинск: СахНиРО, 2003. 192 с.
5. Буторина Т.Е. Ихтиопатология: Определитель
распространенных паразитов рыб дальневосточных морей: Уч. пос. Владивосток: Дальрыбвтуз, 2006. 127 с.
6. Пушникова Г.М. Зараженность сельди личинками нематод в водах Сахалина // Биол. моря. 1981. № 5. С. 71-73.
7. Dаvеу J.T. The incidence of Anisakis sp. Larvae (Nematoda: Ascaridata) in the commercially exploited stocks of herring (Clupea harengus L., 1758) in British and adjacent waters // J. Fish. Biol., 1972. Vol. 4. P. 535554.
8. Reimer L.W., Jessen J.. Parasitenbefall der Nordseeheringe // Angew. Parasit., 1972. Vol. 13. P. 65-71.
7. Banning P., Bесkег H.B. Long-term survey data (1965-1972) on the occurrence of Anisakis larvae (Nematoda: Ascaridata) in herring Clupea harengus, L., from the North Sea // J. Fish. Biol., 1978. Vol. 12. P. 25-33.