CC BY
6
Результаты исследований показали, что продолжительность беременности в опытных группах не менялась по сравнению с таковой в контрольной группе и в среднем была равна 22—23 дням. Интактные самки, забеременевшие от подопытных самцов, по индексу плодовитости и среднему количеству родившихся крысят не отличались от контрольных.
При обследовании полученного потомства не было выявлено внешних уродств, изменений веса тела и кранио-каудальных размеров. В дальнейшем при 2-месячном еженедельном исследовании потомства по показателям, характеризующим его развитие, также не было обнаружено существенных различий в поведении, весе и кранио-каудальных раз-мерах у подопытных по сравнению с контрольными животными.
Непластифицированная ПВАД не изменяла поведения самцов и самок в условиях «открытого поля». С другой стороны, ПВАД, пластифицированная ДБФ, не оказывая влияния на исследовательскую активность самок, полностью подавляла горизонтальный компонент исследовательской активности самцов на 1-м и 2-м месяце их развития (см. таблицу).
Известно, что поведение животного в условиях «открытого поля» определяется новизной обстановки и полностью зависит от деятельности нервного субстрата ориентировочно-исследовательской реакции (К- Г. Гельдыев). Возможно, создание для животных новой экспериментальной ситуации сопровождается у них появлением стрессорных реакций, на фоне которых ориентация потомков мужского пола становится невозможной. Подобного типа нарушения, по-видимому, могут быть объяснены качественными изменениями сперматозоидов и п ередачей через них болезнетворной информации (И. В. Саноцкий) по отцовской линии.
Выводы
1. Непластифицированная ПВАД не оказывает влияния на ориентировочную реакцию потомства отравленных крыс-самцов.
2. Пластифицированная 15% ДБФ ПВАД вызывает нарушение ориентировочной реакции у потомства мужского пола, не оказывая влияния на потомство женского пола.
3. Необходимо более тщательное исследование малых доз ДБФ с обязательным выяснением его влияния на репродуктивную функцию.
ЛИТЕРАТУРА. Гельдыев К. Г. — «Фармакол. и токсикол.», 1974, № 2, с. 138—141. — Дыбан А. П. — В кн.: Гигиена применения, токсикология пестицидов и клиника отравлений. Вып. 6. Киев, 1968, с. 128—139. — Кулагин Д. А., Федоров В. И. — В кн.: Генетика поведения. Л., 1969, с. 35—43. — С а н о ц -кий И. В. — В кн.: Фармакология. Химиотерапевтические средства. Токсикология. М., 1971, с. 107—133. — Шт ен бе р г А. И., Торчинский А. М. — «Вопр. питания», 1969, № 3, с. 6—12.
Поступила ЗОЛУ 1976 г.
УДК 615.9.015.46
И. Ф. Борисенко, В. И. Пьянзина
о возможности ПОВЫШЕНИЯ СОПРОТИВЛЯЕМОСТИ ОРГАНИЗМА ПРИ ВОЗДЕЙСТВИИ ЭТИЛМЕРКУРХЛОРИДА
Киевский медицинский институт
Нами предпринята попытка проверить в условиях эксперимента возможность использования искусственно полученного комплексного антигена (протеин + химическое вещество) для создания специфической резистентности к действию яда. Химическим веществом для получения комплексного антигена служил этилмеркурхлорид (ЭМХ). Исследования проведены на 2 видах животных: белых крысах и морских свинках по 24 особей в серии. Животные были распределены на 3 группы по 16 животных (8 белых крыс и 8 морских свинок). Животные первых 2 групп подвергались предварительной иммунизации, животные 3-й группы служили контролем.
Иммунизацию осуществляли троекратно через день с реиммунизацией через неделю. Животных 1-й группы иммунизировали подкожным введением 0,1 мл раствора ЭМХ (в 1 мл 0,00002 мгЭМХ по ртути); 2-й — подкожным введением 0,1 мл комплексного антигена, содержащего в 1 мл 0,00002 мгЭМХ по ртути. 3-я группа служила контролем.
Через неделю после реиммунизации животным всех групп была введена в желудок среднесмертельная доза ЭМХ (50 мг на 1 кг веса). Показателями токсического действия ЭМХ являются летальность, выживаемость, сроки гибели животных. Специфическими биохимическими показателями служили данные о содержании функциональных групп протеинов сыворотки периферической крови в динамике. Данные, характеризующие выживаемость и сроки гибели животных после введения яда, приведены в таблице.
Как следует из данных таблицы, летальность животных, «иммунизированных» раствором ЭМХ, составляла 12,5%, аналогичные данные получены и во 2-й группе, в 3-й группе погибло 50% белых крыс. Сроки гибели животных 1-й и 2-й групп значительно смещены
вправо (12-й и 10-й дни) в то время, как животные 3-й группы погибали в течение 1-й недели после введения яда.
В 1-й и 2-й группах в отличие от 3-й не наблюдалось клинически выраженной картины интоксикации. Только в первые 2 дня после введения яда животные находились в несколько заторможенном состоянии. Животные 3-й группы в течение 7—8 дней находились в состоянии пониженной двигательной активности, плохо поедали корм, отмечалась значительная потеря веса (в среднем 26 г).
У животных 1-й и 2-й группы отмечены изменения в содержании тиоловых групп, которые характеризовались уменьшением их количества по сравнению с исходным уровнем на 15—22% к 10-му дню наблюдения, с последующим восстановлением. В сыворотке крови животных 3-й группы зарегистрировано уменьшение содержания тиоловых групп на 25% без выраженной тенденции к восстановлению. В содержании карбоксильных, аминных групп сывороточных протеинов четко выраженных изменений не выявлено. Это, по-видимому, объясняется тем, что специфические биохимические механизмы поражений ртутьорганическими соединениями обусловлены их способностью соединяться с тио-ловыми группами тканевых протеинов (Л. И. Медведь, 1961; Н. Ф. Борисенко).
Таким образом, предварительная иммунизация животных физиологическим раствором ЭМХ и комплексным антигеном повышает устойчивость белых крыс к действию токсических доз ЭМХ. Можно полагать, что иммунизация комплексным антигеном мобилизует иммунокомпетентную систему, которая обеспечивает состояние специфически повышенной сопротивляемости организма. При иммунизации физиологическим раствором ЭМХ образование полного антигена происходит в организме путем соединения катиона рути с белками организма (Н. Ф. Борисенко), а затем полный антиген специфически воздействует на систему, ответственную за синтез специфических антител.
Синтезируются ли специфические антитела при иммунизации животных? Для ответа на этот вопрос были проведены специальные эксперименты на морских свинках — животных, хорошо продуцирующих антитела.
Через неделю после реиммунизацин с помощью реакции пассивной гемагглютинации в сыворотке крови определяли наличие и титр антител к протеинортутному комплексу-Было установлено, что иммунизация животных как растворов ЭМХ, так и комплексным антигеном, сопровождалась продукцией антител, специфически реагирующих с комплексным антигеном. Титр антител при иммунизации чистым химическим веществом составлял в среднем 1 : 24,5, а при иммунизации комплексным антигеном — 1 : 44. Очевидно, альбумин является дополнительным сильным антигенным раздражителем.
Приведенные экспериментальные данные позволяют сделать предварительное заключение о том, что комплексный антиген (в равной мере и чистые реагирующие вещества в нетоксических дозах) можно использовать для создания повышенной устойчивости к действию ядов. С нашей точки зрения, это состояние специфично, так как проявляется синтезом специфических антител. Очевидно, этот процесс следу, ет рассматривать как одно из звеньев сложной защитной реакции организма, направленной на сохранение гомеостаза-
л
Ч к
ют 2*2*8
с
с
>>
е-
и 2 х
л
«?
о а.
Р
Г О
М 3 г л
£ X
О.
«>
к 3 с
I-
о
X §
л I-
*3 2 со
к
Ч Я
а е
ЛИТЕРАТУРА. Борисенко Н. Ф. Основ, ные вопросы гигиены труда при работе с некоторыми ртутно-органическими пестицидами. Автореф. дис. канд. Киев, 1967. — Медведь Л. И. Гигиена труда при применении ртутноорганических фунгицидов. Автореф. дис. докт. М., 1961.
Поступила 29/111 1976 г.
я к я — сч со
