Р.Д. Токсанбаев1, Р.А. Паренова1,П.Ж. Елемес2,А.Н.Нурбакыт3
АО «Начный центр противоинфекционных препаратов» г. Алматы Республиканская детская клиническая больница «Аксай» КазНМУ имени С.Д. Асфендиярова 3Казахский Национальный медицинский университет им.С.Д.Асфендиярова
ПУТИ ОПТИМИЗАЦИИ КОНТРОЛЯ КАЧЕСТВА КЛИНИКО-ДИАГНОСТИЧЕСКИХ ЛАБОРАТОРИЙ
Резюме: В этой статье описаны пути предотвращения различных допустимых ошибок и повышения качества при лабораторных исследованиях. По мнению автора этап на котором происходят лабораторные ошибки это - преаналитический этап. Самый эффективный путь устранения лабораторных ошибок, в том числе и на преаналитическом этапе, - это разработка мероприятий по обеспечению качества лабораторного анализа и пересмотр существующих стандартов как на уровне ЛПУ, так и на уровне организации лабораторно-диагностического процесса в целом.
Ключевые слова: Качество клинико-лабораторных исследований, медицинская организация, контрольные материалы, лабораторная медицина, этапы лабораторий.
R.D. Toxanbayev1, R.A. Parenova1, P.Zh. Elemes2, A.N.Nurbakyt3
JSC "Scientific Centre for Anti-Infectious Drugs" Almaty «Aksai» Republican Children's Ciinicai Hospital of S.D. Asfendiyarov Kazakh National Medicai University, Almaty 3Asfendiyarov Kazakh National Medical University
WAYS TO OPTIMIZE THE QUALITY CONTROL FOR CLINICAL DIAGNOSTIC LABORATORIES
Resume: This article describes ways to prevent various reasonable errors and ways to improve quality of laboratory tests. According to the author, the stage at which laboratory errors occur is a preanalytical stage. The most effective way of eliminating laboratory errors including at the preanalytical stage is the development of activities in support the quality assurance programme for laboratory analysis and revision of existing standards at both the treatment and prevention centers and laboratories.
Key words: The quality of clinical and laboratory tests, medical organization, control samples, laboratory medicine, stages of laboratories.
УДК: 579.62.
Д. А. Турегелдиева, В. М. Семенюк, А. К. Мухамбетова, И. Б. Утепова, А. М. Исмакова, К. Б. Сармантаева, Л. П. Гениевская
Казахский научный центр карантинных и зоонозных инфекций им. М. Айкимбаева
МОНИТОРИНГ ЗДОРОВЬЯ ЛАБОРАТОРНЫХ ЖИВОТНЫХ
Современные лаборатории используют высококачественных стандартизованных животных изогенной природы SPF-категории (Specific Pathogen Free). Такие биологические модели содержатся в барьерной системе в условиях микроизоляторной технологии и требуют периодического подтверждения микробиологического и генетического статуса. Контроль качества здоровья лабораторных животных включает в себя мониторинг инфекционных агентов, носительство которых исключается, и чем выше категория качества животного, тем больше перечень недопустимых агентов.
Ключевые слова: лабораторные животные SPF-категории, мониторинг здоровья, чистые помещения, мыши линии CD-1 и линии C57BL/6N, крысы линии Wistar, кролики линии New Zeeland White.
Известно, что качество лабораторных животных во многом определяет результат эксперимента и является гарантом производства качественных препаратов. Стандартные биологические модели требуются для научных исследований в разных областях медицины, биотехнологии, фармакологии и ветеринарии, а также для практических целей, таких как доклинические исследования, изучение безопасности лекарственных и химических веществ, получение биоматериала и т.д. Современные лаборатории используют высококачественных стандартизованных животных изогенной природы, то есть генетические определенных. Такие генетические модели относятся к SPF-категории (Specific Pathogen Free) и содержатся в барьерной системе в условиях микроизоляторной технологии и в сопровождении комплекса инженерно-технических, ветеринарных и санитарно-гигиенических мероприятий [1]. В настоящее время лабораторные животные дифференцируются на 3 генетически качественные модели: а) аутбредные (генетически неопределенные), б)
изогенные/инбредные (генетически определенные) и в) генетически частично определенные (мутанты, трансгены). По качеству различают 3 класса лабораторных животных (всего 5 категорий, таблица 1) [2]:
- конвенциональные, содержатся в открытых системах и улучшенные конвенциональные, которые содержатся в барьерной системе неполного типа (категория 1 и 2). Очень важно понимать, что исходными животными этой категории могут быть только животные более высокого класса качества - SPF категории;
- SPF лабораторные животные содержатся в барьерной системе и имеют подтверждённый микробиологический статус и генетический контроль (категория 3 и 4);
- Гнотобиоты, безмикробные или аксенные животные, содержатся в индивидуальных изоляторах, снабженных HEPA фильтрами (категории 5a и 5b) и используются только для высокотехнологичных биомедицинских исследований. SPF животные и гнотобиоты требуют периодического подтверждения микробиологического и генетического статуса.
Таблица 1 - Классификация лабораторных животных по категориям и их использование в биомедицинских исследованиях
Категор ия Характеристика Метод получения Барьер Использование
1 Конвенциональные (CV) Случайный Открытая система В целях обучения (острые опыты)
2 Улучшенные конвенциональные (MD или Minimal Diseases) От животных более высокой категории качества Неполная барьерная система Рутинные исследования в кратковременных экспериментах
3 SPF (свободные от патогенной флоры) От животных, содержащихся в изоляторах и ассоциированных с определенными микроорганизмами Барьерная система Изготовление стандартных препаратов, испытание на токсичность препаратов Хронические эксперименты длительностью 6 мес.
4 SPF max (максимально свободные от условно- патогенной флоры) От гнотобиотных или безмикробных животных, ассоциированных с определенными микроорганизмами Барьерная система высокой степени надежности Получение культур клеток при производстве вакцин, поддержание штаммов бактерий и вирусов перевиваемых опухолей, испытание новых фармакологических средств, проведение фундаментальных исследований иммунитета, воспаления и т.д.
5a Безмикробные (аксенные GF) Гистерэктомия, свободные от любой или известной формы жизни микроорганизмов Изолятор
5b Гнотобиотные (категории GFX) Используются для описания животных и систем, все формы жизни в которых известны Изолятор со специальным контролем
Использование в исследованиях животных-гнотобиотов практически невозможно ввиду их чрезвычайной дороговизны в связи с содержанием в сложных изоляторах. Однако гнотобиотные технологии представляют наилучший способ развития базовой линии 5РР-животных, поэтому гнотобиоты содержатся в питомниках международных поставщиков лабораторных животных. 5РР-животные, с одной стороны, являются носителями целого ряда неизвестных видов микроорганизмов, но, с другой, -свободны от патогенных микроорганизмов. 5РР-животные с подтвержденным микробиологическим статусом являются экономичной альтернативой гнотобиотам и поэтому нашли широкое применение в мировой лабораторной практике. В экономически развитых странах для контроля качества лабораторных животных разработаны стандарты категорий
Таблица 2 - Рекомендуемый список инфекционных агентов для соответствие с РЕЬА5А
животных по состоянию здоровья. Они включают в себя перечень возбудителей, носительство которых исключается и чем выше категория качества животного, тем больше перечень недопустимых агентов. Практически мониторинг здоровья лабораторных животных представляет собой периодическое исследование материала от лабораторных животных в поисках определённых инфекционных заболеваний в ПЦР и ИФА тестах. В последние годы отмечается тенденция к унификации критериев качества животных и создания единых стандартов, например, широко используются разработки европейских исследователей под эгидой FELASA (Federation of Laboratory Animal Science Associations), которая рекомендует для каждого вида лабораторных животных определенный список контролируемых инфекционных агентов (таблица 2) [3, 4].
мониторинга здоровья у лабораторных мышей (Mus musculus) в
Every 3 months Annually
Viruses
Mous hepatitis virus +
Mous rotavirus +
Murine norovirus +
Parvoviruses:
Minute virus of mice +
Mous parvovirus +
Theiler's murine encephalomyelitis virus +
Lymphocytic choriomeningitis virus +
Mous adenovirus type 1 (FL) +
Mous adenovirus type 2 (K87) +
Mousepox (ectromtlia) virus +
Phneumonia virus of mice +
Reovirus type 3 +
Sendai virus +
Bacteria
Helicobacter spp +
If positive, speciation for H.bilis and
H. typhlonius is recommtnded
Pasteurella pneumotropica +
Streptococci ß-haemolytic (not group D) +
Streptococcus pneumoniae +
Citrobacter rodentium +
Clostridium piliforme +
Corinebacterium kutscheri +
Mycoplasma pulmonis +
Salmonella spp. +
Streptobacillus moniliformis +
Parasites
Endo - and ectoparasites (reported to the genus level) +
Additional agents*
Viruses:
Hantaviruses
Herpesviruses (mouse cytomegalovirus, mouse thymic virus)
Lactate dehydrogenase elevating virus
Poliomaviruses (mous poliomavirus, K virus)
Bacteria and fungi:
Cilia-associated respiratory bacillus
Klebsiella oxytoca, Klebsiella pneumaniae
Other Pasteurellaceae*
Pneumacystis murina
Pseudomonas aeruginosa
Staphylococcus aureus
Others as necessary
На сайте FELASA www.felasa.eu можно найти списки мониторируемых инфекций для крыс, кроликов, хомяков, собак и др. животных. Также здесь публикуются последние научные данные по уходу и содержанию лабораторных животных, европейские рекомендации и директивы по всем аспектам использования лабораторных животных, в том числе принципы гуманного и рационального использования - правила трех R (Replacement, Reduction, Refiniment) [4]. Казахский научный центр карантинных и зоонозных инфекций им. М. Айкимбаева (КНЦКЗИ) является единственным в Республике учреждением, имеющим питомник, где размножаются и содержатся аутбредные и инбредные лабораторные животные SPF категории (мыши, крысы, кролики) и конвенциональные лабораторные животные (крысы, морские свинки).
В 2013-2014 годах питомник лабораторных животных КНЦКЗИ реконструирован и модернизирован в соответствие с требованиями ISO 14644 (Чистые помещения и связанные с ними контролируемые среды) для образования барьерной зоны и защиты
микробиологического статуса SPF животных. В здании установлена дублированная система вентиляции, фильтрации и кондиционирования воздуха с автоматическим регулированием температуры, давления и влажности воздуха.
В настоящее время питомник ^Ц^И разводит и реализует несколько линий лабораторных животных: мыши линия CD-1 и линия C57BL/6N, крысы линия Wistar, кролики линия New Zeeland White, а также конвенциональные морские свинки и крысы. Лабораторные животные содержатся в индивидуально-вентилируемых комплексах (ИВ^) в условиях «микроизоляторной технологии» (фото 1, 2) и разводятся по принципам поддержания генетической линии. Маточное поголовье SPF лабораторных животных было получено от международного поставщика Charles River Lab, www.criver.com. Ведущие научные и образовательные организации PK в Алматы, Астане и городе Семее регулярно приобретают SPF животных в питомнике ^Ц^И для выполнения экспериментальных исследований.
Фото 2 - Содержание кроликов в питомнике ВДЦ^И в открытых системах
212
Вестник КазНМУ №3-2017
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1 Н. Н. Каркищенко. Основы биомоделирования. - М.: Межакадемическое изд-во., 2005. - 607 с.
2 Н.Н. Каркищенко, С. В. Грачев. Руководство по лабораторным животным и альтернативным моделям в биомедицинских технологиях. - М.: Профиль 2С, 2010. - 358 с.
3 Working Party Report: FELASA recommendations for the health monitoring of mouse, rat, hamster, guinea pig and rabbit colonies in breeding and experimental units, Laboratory Animals, 2014, Vol. 48(3), p. 178-192.
4 FELASA recommendations for the health monitoring of experimental units of calves, sheep, and goats. Report of the Federation of European Laboratory Animal Association (FELASA). Working Group on animal health: Rehbinder C. et. Al. Laboratory animals, 2000, 34 № 4, P. 329-350.
Д. А. Турегелдиева, В. М. Семенюк, А. К. Мухамбетова, И. Б. Утепова, А. М. Исмакова, К. Б. Сармантаева, Л. П. Гениевская
М. Айцымбаев атындагы К,азац карантиндикжэне зооноздыц инфекциялар гълыми орталыгы
ЗЕРТХАНАЛЬЩ ЖАНУАРЛАРДЫН, ДЕНСАУЛЬИЫНЫН, МОНИТОРИНГ1
ТYЙiн: Заманауи зертханалар жогары сапалы стандартталган табигаты изогендш SPF - санатты (Specific Pathogen Free) жануарларды пайдаланады. Мундай биологияльщ модельдер микроизоляторлы; технологиясы жагдайында кедерплш жуйесшде усталады жэне генетикалы; мэртебей мен микробиологиялы; мерз1мдшт растауды талап етед! Зертханалы; жануарлардыц денсаулыгыныц сапасын ба;ылау мыналарды камтиды: жу;палы агенттердщ мониторинг!, тасмалдаушылы;та олар алынып тасталынатыны жэне жануарлардыц жогары санаты сапасына кеп агенттердщ т1збепне жол бершмейтшдШп. ТYЙiндi свздер: SPF - санатты зертханалы; жануарлар, денсаулы; мониторинг!, таза уй-жайлар, C57BL/6N желкшдеп жэне CD-1 желкшдеп тыш;андар, Wistar желкшдеп егеу;уйры;тар, NewZeelandWhite жел1сшдеп ;ояндар.
D. A. Turegeldiyeva, V. M. Semenyuk, A. K. Muchambetova, I. B. Utepova, A. M. Ismakova, K. B. Sarmantayeva, L. P. Geniyevskaya
Kazakh Science Center for Quarantine and Zoonotic Diseases
MONITORING OF HEALTH OF LABORATORY ANIMALS
Resume: Modern laboratories use high-quality standardized isogenic animals of the SPF-category (Specific Pathogen Free). Such biological models are contained in the barrier system under micro-isolation technology and require periodic confirmation of microbiological and genetic status. Control of the health quality of laboratory animals includes the monitoring of infectious agents, the carriage of which is excluded, and the higher the category of animal quality, the greater the list of unacceptable agents.
Keywords: SPF laboratory animals, health monitoring, clean rooms, mice line CD-1 and line C57BL/6N, rats line Wistar, rabbits line New Zeeland White.