CC BY
43- ^вя
микробная контаминация
компонентов крови и ее клинические
последствия.
современные методы профилактики микробной контаминации в гбу ро «спк»
И. В. Ищенкова, и. о. главного врача ГБУ РО «СПК»;
Е. Г. Суспицына, зав. отделением контроля качества бактериологической лаборатории; Э. Я. Бинеева, зав. центром организации трансфузиологической помощи; ГБУ РО «Станция переливания крови», г. Ростов-на-Дону
Подавляющее большинство развитых стран достигло значительных успехов при вирусной и бактериальной инактивации препаратов крови и тем самым исключило возможность передачи вирусных и бактериальных заболеваний при трансфузиях препаратов крови. Вместе с тем сохраняется риск трансфузионной передачи возбудителей бактериальных и вирусных заболеваний при использовании компонентов крови. При этом как вирусная, так и бактериальная инактивация клеточных компонентов остается одной из важнейших, до конца не решенных проблем трансфузиологии.
Обеспечение безопасности трансфузий крови и ее компонентов, равно как и препаратов крови, базируется, прежде всего, на качестве тестирования доноров. Микроорганизмы могут загрязнять заготовленную кровь различными путями как в процессе заготовки крови, переработки ее на компоненты, так и при клиническом использовании.
Основными причинами бактериальной контаминации компонентов крови при ее заготовке являются [2]:
• недостаточная обработка кожи локтевого сгиба донора перед взятием крови;
• недостаточная обработка рук медицинского персонала;
• загрязненная воздушная среда производственного бокса;
• нераспознанность у донора транзиторной
или хронической (бессимптомной) бактериемии. Основными причинами бактериальной контаминации компонентов в период переработки крови могут быть нарушение герметичности упаковки контейнера и неправильная методика разделения объема трансфузионной среды на несколько доз.
Основными причинами бактериального загрязнения компонентов крови при клиническом использовании являются:
• несоблюдение правил транспортировки и хранения компонентов;
• недостаточная обработка кожи рук реципиента перед трансфузией;
• неправильное размораживание компонентов в контаминированной воде.
Имеются многократные исследования, регистрировавшие связь между переливанием компонентов крови с приобретенной в больнице инфекцией. У пациентов, находящихся в критическом состоянии и получающих компонентное переливание, значительно повышен риск летальности.
Сегодня цельную кровь не переливают, а максимально быстро фракционируют на компоненты, либо эти компоненты получают непосредственно от донора методом афереза. Компоненты крови хранятся при разных режимах (табл. 1).
Таблица 1
Условия хранения донорской крови и ее компонентов
Компонент Температура хранения Максимальное время хранения
Эритроциты и цельная кровь (если используется для трансфузии как цельная кровь) от +2°С до +6°С В зависимости от используемой системы антикоагулянт -взвешивающий раствор
Свежезамороженная плазма и криопреципитат ниже -25°С 36 месяцев
Тромбоциты от +20°С до +24°С 5 дней при условии непрерывного помешивания
Гранулоциты от +20°С до +24°С 24 часа
Все компоненты крови с разной степенью риска могут нести бактерии в организм реципиента, с низкой степенью микробной контаминации — эритроциты и свежезамороженная плазма. Тромбоциты, хранящиеся при температуре от 20° до 24°С, — отличная среда для роста бактерий [1].
В скрининге вирусных и бактериальных инфекций в службе крови есть принципиальное отличие: концентрация маркера (антител, антигенов, геномов) вирусных инфекций стабильна, а бактерии в контейнере размножаются. Поэтому детекция бактерий в концентратах тромбоцитов предполагает отбор проб сразу после заготовки. За это время даже единичные живые бактерии размножаются в контейнере до концентрации, определяемой лабораторными рутинными методами.
Отбор проб предполагает стерильное соединение с контейнером. Поэтому после получения отрицательного результата концентрат тромбоцитов выдается в лечебные учреждения.
В профилактике микробной контаминации выпускаемых компонентов крови на СПК РО сохраняют свою значимость классические методы: • освидетельствование доноров проводится в соответствии с требованиями Приказа МЗ РФ от 14.09.2001 №364 «Об утверждении порядка медицинского обследования донора крови и ее компонентов» (в ред. приказов
АМБУЛАТОРНАЯ ПОМОЩЬ
- —¡|И>Л1|
Минздравсоцразвития РФ от 16.04.2008 №175н, от 06.06.2008 №261н), как следствие — отвод потенциальных доноров с признаками инфекции [4];
• обработка мест венепункции доноров антисептиками из сегмента премиум-класса;
• для предотвращения контактного инфицирования крови при ее заготовке медицинский персонал соблюдает все требования асептики и антисептики [2];
• бактериологический контроль эффективности обработки рук медицинского персонала
с кратностью 2 раза в неделю [3];
• контроль условий заготовки крови, включающий: мониторинг условий показателей воздушной среды [1] и смывов со стерильных и нестерильных поверхностей;
• ежедневный бактериологический контроль выпускаемых компонентов на стерильность [3];
• использование систем для заготовки крови, оснащенных устройством для отбора первой порции крови в качестве образца для бактериологических исследований (полимерный контейнер емкостью 50 мл, встроенный в систему для сбора крови). При применении этого устройства на 40—90% снижается риск бактериальной контаминации содержимого гемоконтейнера (кусочек кожи, попавший в просвет иглы, поступает не в гемоконтейнер, а в кровь, отобранную для лабораторных исследований);
• строжайшее соблюдение температурных режимов хранения компонентов крови с непрерывным мониторингом температуры в камерах
для хранения компонентов [1];
• тщательная макроскопическая оценка компонентов перед выдачей в лечебные учреждения [1].
И наконец, современные методы, достигающие полной инфекционной безопасности, используемые в службе крови Ростовской области с 2008 года — методы инактивации бактерий и вирусов в концентратах тромбоцитов и свежезамороженной плазмы [1]:
• облучение ультрафиолетом концентрата, обработанного псораленом, на аппарате «Интерсепт» (Церус). В основе метода лежит образование перекрестных связей с ДНК и РНК синтетического псоралена — амотосалена при фотохимической обработке;
• технология редукции патогенов в тромбоцитах и плазме, обработанных рибофлавином
и ультрафиолетом — система «Мирасол»;
• инактивация патогенов ультрафиолетовым облучением без химических фотосенсибилизаторов — система «Терафлекс» (МакоФарма).
Показана эффективность этих методов в отношении инактивации Bacillus cereus, Staphylococcus epidermidis, Klebsiella pneumonia, Echerichia coli, Pseudomonas, а также паразитов.
В заключение хочется написать, что в компонентах крови, заготовленных на СПК РО, рост бактерий не выявлен, а использование вышеописанных современных методов инактивации изменило подход к контролю и обеспечению стерильности компонентов крови. С одной стороны, это сберегает силы, средства и существенные объемы крови и ее компонентов, направляющихся на бактериологическое исследование, с другой стороны — внедрение современных технологий донации крови, а также детекции и элиминации патогенов позволяет повысить эффективность и безопасность трансфу-зионной терапии на благо здоровья жителей Ростовской области.
ЛИТЕРАТУРА
1. Постановление Правительства РФ от 26.01.2010 №29 «Об утверждении технического регламента о требованиях безопасности крови, ее продуктов, кровезамещающих растворов и технических средств, используемых в трансфузионно-инфузионной терапии».
2. Инструкция по заготовке и консервированию донорской крови (в ред. письма МЗ РФ от 08.09.1999 №2510/9770-99-32).
3. Инструкция по контролю стерильности консервированной крови, ее компонентов, препаратов, консервированного костного мозга, кровезаменителей и консервирующих растворов (Утв. Минздравом РФ 29.05.1995).
4. Приказ МЗ РФ от 14.09.2001 №364 «Об утверждении порядка медицинского обследования донора крови и ее компонентов» (в ред. Приказов Минздравсоцразвития РФ от 16.04.2008 №175н, от 06.06.2008 №261н).
критерии эффективности работы дневных стационаров
Е. А. Кутузова, зам. заведующего по медицинской части; Е. В. Антипова, заведующая госпитальным отделением;
Консультативно-диагностическая поликлиника ФГКУ «1602 ВКГ» МО РФ, г. Ростов-на-Дону
Современное состояние здравоохранения в Российской Федерации ориентировано на оптимизацию помощи, извлечение максимума медицинского, социального и экономического эффектов из существующих реальных ресурсов лечебных учреждений (Осад-чих А. И., 1998; Коробов М. В., Дубинина И. А., 1999).
По данным В. И. Стародубова и А. А. Калининской с соавторами (2001), около 30% больных госпитализируются
необоснованно и могут получать медицинскую помощь с использованием стационарозамещающих технологий (СЗТ) на догоспитальном этапе. С другой стороны, известно, что от 20 до 50% больных, находящихся на стационарном лечении, могут получать медицинскую помощь в поликлинических условиях (Серенко А. Ф., 1976; Волосевич А. Н., 1992; Сквирская Г. П., 2000; Гуляев В. А., 2001; Карташов В. Т., 2001 и др.). В связи с постоянным
www.akvarel2002.ru
