Научная статья на тему 'МЕТОДЫ ПОЛЕВОГО СБОРА СТАФИЛИНИД (COLEOPTERA: STAPHYLINIDAE), В УСЛОВИЯХ РЕСПУБЛИКИ МОЛДОВА'

МЕТОДЫ ПОЛЕВОГО СБОРА СТАФИЛИНИД (COLEOPTERA: STAPHYLINIDAE), В УСЛОВИЯХ РЕСПУБЛИКИ МОЛДОВА Текст научной статьи по специальности «Биологические науки»

CC BY
87
18
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.
Журнал
Endless light in science
Область наук
Ключевые слова
Стафилиниды (Coleoptera / Staphylinidae) / Республика Молдова / методы сбора

Аннотация научной статьи по биологическим наукам, автор научной работы — Михайлов Ирина

В работе представлены наиболее часто используемые методы сбора стафилинид (Coleoptera, Staphylinidae) в полевых условиях. Для каждого метода приводятся сведения о принципах работы, указаны материалы, которые были использованы в процессе, работа в поле, экземпляры из коллекции, фотографии с пунктов сбора и исследованных биотопов, типы субстратов заселенных этой группой насекомых и т.д.

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.
iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

Текст научной работы на тему «МЕТОДЫ ПОЛЕВОГО СБОРА СТАФИЛИНИД (COLEOPTERA: STAPHYLINIDAE), В УСЛОВИЯХ РЕСПУБЛИКИ МОЛДОВА»

МЕТОДЫ ПОЛЕВОГО СБОРА СТАФИЛИНИД (COLEOPTERA: STAPHYLINIDAE),

В УСЛОВИЯХ РЕСПУБЛИКИ МОЛДОВА

МИХАЙЛОВ ИРИНА

кандидат биологических наук, доцент, лаборатория энтомологии Институт зоологии, ГУМ, Кишинёв, Республика Молдова

Абстракт. В работе представлены наиболее часто используемые методы сбора стафилинид (Coleoptera, Staphylinidae) в полевых условиях. Для каждого метода приводятся сведения о принципах работы, указаны материалы, которые были использованы в процессе, работа в поле, экземпляры из коллекции, фотографии с пунктов сбора и исследованных биотопов, типы субстратов заселенных этой группой насекомых и т.д.

Ключевые слова. Стафилиниды (Coleoptera, Staphylinidae), Республика Молдова, методы сбора

Введение

Семейство стафилиниды (Coleoptera, Staphylinidae) характеризуется большим разнообразием видов, относящихся к множеству подсемейств. Представители подсемейств отличаются по размерам, по внешним признакам, окраске, по биотопическому распределению и по особенностям развития. Эта группа насекомых относятся к типу Arthropoda, классу Insecta, подклассу Pterygota, отделу Holometabola, надотряду Coleopteroidea, отряду Coleoptera. В Республике Молдова изучаются 13 подсемейств:

1.Omaliinae MacLey, 1825, с удлиненно-выпуклой формой тела, окраска светло-коричневая, желто-коричневая или красновато-желтая. Усики (состоят из 10-11 члеников) щетинковидные, нитевидные, гребенчатые. Усики располложены сбоку, впереди глаз. По сравнению с представителями других подсемейств надкрылья развиты и покрывают брюшко полностью, кроме предпоследнего и последнего сегментов. Морфологические особенности стафилинид этого семейства схожи с жуками мертвоедами (Silphidae) и жуками блестянками (Nitidulidae). Отличительным принаком является широкая головная капсула прогнотического типа с простыми глазками. У некоторых видов, населяющих труднодоступные места есть глаза, у других они отсутствуют. Переднегрудь уплощена, и её ширина превышает длину, имеет поперечно-сегментарный вид. Брюшко короткое и широкое, с узким основанием. Поверхность тела с выраженными линиями, неравномерной пунктировкой и с выраженными углублениями.

2.Proteininae Erichson, 1839, стафилиниды с плоской головной капсулой. У них круглые глаза занимающие всю височную часть. Форма переднегруди прямоугольная с с округлыми краями. По середине проходит глубокая медиана, разделяющая переднегрудь на равные части. Надкрылья покрывают почти всё брюшко, а исключением последних 4-х сегментов.

3.Tachyporinae MacLey, 1825, стафилиниды, форма тела которых напоминает каплю воды (виды родов Tachyporus §i Conosoma). Разнообразная окраска тела: красная, пятнисто-желтая, коричневая, красно-коричневая, выпуклая: напоминает некоторых сильфид (Cilea sp., Habrocerus sp.). Голова маленькая, слегка округлая (Sepedophilus sp.) или плоская (Mycetoporus sp.) обычно скрытая под первыми члениками переднеспинки. На поверхности головы имеются слегка вдавленные точки. У видов из родов Tachyporus, Tachynus и у других из триба Tachyporini шовная линия на переднней части слабо выражена. Глаза черные, круглые, удлиненные или суженные, близко расположены к вискам. Усики нитевидной формы, удлиненные с утолщенным концом.

4.Habrocerinae Mulsant et Rey, 1877, мелкие стафилиниды с удлиненной формой тела. Усики нитевидной форы, монолитные, по длине превосходят головную капсулу и переднегрудь. Базальные членики утолщены, верхушечные плоские, с мутовчатыми

ОФ "Международный научно-исследовательский центр "Endless Light in Science"

щетинками. Выпуклая головная капсула наполовину заходит за переднегрудь. Глаза маленькие черные, удалены от висков. Переднегрудь в заднней части широкая с тупыми, слегка закруглёнными углами. Надкрылья с редким опушением длиннее переднегруди.

5.Aleocharinae Fleming, 1821, тонкотелые стафилиниды сразличной формы. Переднегрудь сужена с закругленными углами. Глаза относительно маленькие (Oxypoda abdominalis) или большие, удлиненные. Виски немного длиннее диаметра глаз, при изучении сверху (Gyrophaena affinis, Aleochara lata). В области глаз и висков частая пунктуация с редким сочетанием. Короткие усики характерны для видов из рода Oligota, состоящие из члеников с выпуклой и опушенной вершиной частью.

6.Oxytelinae Fleming, 1821, представители этого подсемейства имеют уплощенную посередине головную капсулу и переднегрудь выделяющимися складками. Покровная оболочка твёрдая. Короткие надкрылья (Oxytelus sp., Platystethus sp., Coprophilus sp., Anotylus sp.), за исключением вида Deleaster dichrous.

7.Oxyporinae Fleming, 1821, стафилиниды красноваттые, сегменты тела черного цвета. Населяют пластинчатые грибы родов Amanita, Armillaria, Collybia, Lactarius, Marasmius, Russula, Inocybe, Pholiota, Polyporus, Hypholoma, Boletus, Coprinus [Никитский Н. Б, Семенов В. Б., Долгин М. М.,1998; Rehfous M.,1955].

8.Euaesthetinae Thomson, 1859, стафилиниды этой группы характеризуются довольно маленькими размерами (2 мм). Головная капсула большая, плоская, глаза маленькие, круглые, расположенные в задней части головы. Усики булавовидного типа. Переднеспинка небольшая, с удлиненными линиями посередине.

9.Scaphidiinae Latreille, 1807, стафилиниды с небольшим овальным телом, с длинными и стройными ногами. Длинные надкрылья покрывают все брюшко, кроме последнего сегмента.

10.Steninae MacLey, 1825, стафилиниды с большими глазами. У взрослых особей веретеновидное тело, окраска тела состоит из ярких оттенков черного, синего и коричневого цветов. По хорошо выраженной пунктуацие на теле насекомого можно определить вид. У некоторых видов (например, Stenus comma) на надкрыльях имеются округлые пятна мелких или более крупных размеров.

11.Paederinae Fleming, 1821, стафилиниды с выраженным эпикраниальным швом, это специфиеский морфологический признак для опредставителей таких родов как: Paederus, Lithocharis §i Lathrobium. Форма головы разнообразна: трапециевидная (род1 Sunius), овальная (Lathrobium, Lithocharis, Tetartopeus), удлиненная (Ochthephilum, Astenus), округлая (Paederus, Rugilus).

12.Staphylininae Latreille, 1802, одна из самых многочисленных групп, виды с разнообразными морфологическими особенностями. У видов из родов Philonthus, Gabrius и Quedius мандибулы треугольной формы, внутренние части зубчатые и острые. У хищных стафилинид (рода Staphylinus, Tasgius, Gauropterus, Ocypus, Platydracus, Creophilus, Ontholestes, Othius) мандибулы хорошо развиты и утолщены.

13.Pselaphinae Latreille, 1802, стафилиниды меньше 2 мм с длинными усиками (2 - 11 членика), приплюснутые (сильно модифицированные у некоторых видов), надкрылья короткие, лапки трёхчлениковые, с одним коготком. Брюшко состоит из 5-6 сросшихся сегментов. Нижнечелюстные щупики сегментированы

В зависимости от сезонных климатических условий стафилиниды склоны поселятся в труднодоступные для человека местах. Они легко приспосабливаются к любым условиям, многие виды являются консументами с широким спектром питания. Так согласно типу питания стафилиниды делятся на следующие группы: сапрофаги, некрофаги, фитофаги, мицетофаги, копрофаги и зоофаги. Благодаря их трофической специализации они участвуют в круговороте веществ и энергии в природе. В их телах накапливается энергия в виде биомассы, вещества, которые передаются другим организмам, питающимся ими. Стафилиниды занимают первое место в большинстве экосистем, благодаря тому, что являются

ОФ "Международный научно-исследовательский центр "Endless Light in Science"

биоиндикатороми и регуляторами. Они распространены в различных местообитаниях: равнинах, холмах, садах, виноградниках, лесах и т.д. [Тихомирова А. Л., Маракушина Л. П., Пронова Г. Я., 1973; Хачиков Э. А., 2005]. Далее в работе приводится описание методов сбора стафилинид в полевых условиях, с указанием родов, собранных в ходе исследования.

Материалы и методы

Применение на практике методов сбора осуществлялось в ходе полевых работ, в различных природных биотопах и агробиоценозах. В Республике Молдова были собраны виды из 13 подсемейств, мы применили восемь основных методов сбора стафилинид: на открытых участках (ручной сбор), с листовой пластинки, на видоизмененных стеблях (сбор при помощи эксгаустера), на лесных массивах, полях, степных участках, пастбищах (с помощью световых ловушек и почвенных ловушек), из органического субстрата/помёта животных, листовой подстилки, разложившейся древесины, на грибах (метод флотации и встряхивания), на полях засеянных полевыми культурами, в садах и виноградниках (использование энтомологического сачка), из лесной почвы (почвенные раскопки/почвенные обследования). Для накопления особей используются различные виды материалов: пластиковые бутылки, ножницы, секатор, перчатки, сито, бумажные и полиэтиленовые пакеты, стеклянные и пластиковые пробирки, рабочие тетради, фотоаппарат, игла, стеклянные банки, грабли и т.д.

Результаты исследования

При сборе стафилинид педобиотов, копробионтов, сапробионтов, нидиколы, мицетобионтов ксилобионтов, на практике применяются следующие методы: активый сбор на поле, ручной сбор, при помощи эксгаустера, энтомологического сачка, флотацией, встряхиванием, почвенные раскопки, и расстановка ловушек, и пассивные методы сбора стафилинид, использование почвенных ловушек типа «Барбер» и светоловушек. В работе описаны 8 методов, часто применяемых в полевых работах для сбора стафилинид, а также приводится описание их практического применения.

1. Ручной сбор

Принцип работы Это прямой метод, используемый для исследования открытых пространств в естественных и искусственных биотопах. Применяется для сбора средних и крупных размером тела стафилинид. Ручной сбор проводят в солнечные дни, как температура достигает положительных значений 19-200 C, в течение дня, в период с 1000 до 1400, этот период считается наиболее подходящим для поиска, проведения наблюдений и сборов стафилинид. Во второй половине дня и в сумеречные часы стафилиниды указанных родов прячутся и практически не заметны.

Материалы чашки Петри, ножницы, кисточки, одноразовые перчатки, защитные очки, этиловый спирт, марля, пластиковый шпатель, пленка среднего размера, нож, маска при необходимости.

Применение в полевых условиях Стафилиниды собирают непосредственно руками в доступных местах и/или толстыми, слегка шероховатыми щипцами, это облегчает сбор стафилинид; на открытых участках, пастбищах, заливных и сырых лугах, на полях с черноземом; отверстия делаются на древесине старых деревьях, бревнах снесенных ветром, пнях, соскребая кору

стволов и/или более толстых ветвей; встряхивают грибы, мох с деревьев, камни и почву, листовую подстилку; на полях с сельскохозяйственными культурами, они скапливаются на гниющих дынях, со специфическим запахом, вымокших на солнце и резко пахнущих плодах огурцов и томатов и т.д.

Собранный материал

Роды: Oxyporus, Nudobius, Staphylinus, Quedius, Ocypus, Tasgius, Staphylinus, Philonthus, Tasgius, Ontholestes, Paederus, Emus, Velleius, etc.

1.1. анализ брёвен.

1.2.разложившийся материал на берегу Днестра.

2. Сбор при помощи эксгаустера

Принцип работы В основе метода лежит использование ёмкости средних размеров, 100-150 мл, удлиненной формы, для сбора мелких стафилинид. В качестве емкости используется стеклянная прозрачная пробирка, которая позволяется просматривать собранные экземпляры стафилинид. На крышке пробирки имеются отверстия для двух отдельных трубок, одна открыта для входа насекомых, вторая используется для всасывания, внутри она покрыта сеткой, чтобы не попадали стафилинниды мелких размеров. Метод позволяет всасывать и отлавливать подвижных, мелких и очень мелких стафилинид.

Материалы Стеклянные пробирки, пробирки эппендорф, пакеты, перчатки, защитные очки, клейкие этикетки.

Применение в полевых условиях Идеально подходить для отлова стафилиннид во время полта, после поднятия камней, стволов, с листьев деревьев, со стен некоторых зданий и т.д.

Собранный материал Роды: Dinarea, Astenus, Atheta, Liogluta, Oxypoda, Carpelimus, Rugilus, Sunius, Scopaeus, Medon, etc.

1', '4 ÜI

2.1. всасывание из треснутой дыни 2.2.всасывание с листовой пластинки винограда

3.Сбор кошением энтомологическим сачком.

Принцип работы Отлов стафилинид энтомологическим сачком применяется на больших площадях (50, 100, 150 га) по методике: 100 взмахов, когда растения достигли половину высоты; 50 взмахов, когда растения достигли полной высоты; направление взмахов - против солнечных лучей; направление движения поле - по диагонали; Этим методом легко отлавливаются стафилиниды средних и мелких размеров. Метод позволяет отлавливать стафилинид травяного яруса. После кошения содержимое сачка опустошают в емкость с ватой, смоченной в хлороформе, и оставляют на несколько минут. Собранные особи легко собираются и помещаются в банки с этиловым спиртом и этикетируются.

Материалы Полиэтиленовые пакеты, клейкие этикетки, этиловый спирт 70%, стеклянная и/ или пластиковая тара, фильтровальная бумага, энтомологические конверты.

Применение в полевых условиях Кошение энтомологическим можно проводить на полях с озимой пшеницей, яровым ячменём, в садах и на заброшенных виноградниках с высокой степенью засорённости, пастбищах, степных участках, на лугах с обильной растительностью, в лесу, где имеются открытые поляны, на широкой лесополосе, на полянах, в парках и т.д.

Собранный материал Роды: Tachinus, Tachyporus, Aleochara, Dinaraea, Oxypoda, Zyras, Cordalia, Autalia, Falagria, Pella, Lyprocorrhe, Anaulacaspis, Holobus, Oligota, Drusilla, Habrocerus, Coprophilus, Anotylus, Oxytelus, Platystethus, Bledius, Achenium, Lathrobium, Sunius, Paederus, Rugilus, Neobisnius, Philonthus,

Heterothops, Quedius, Creophilus, Gyrohypnus, Leptacinus, Stenistoderus, Xantholinus, etc.

3.1.сбор на лугу.

3.2. сбор в заросшем персиковом саду

3.3. сбор на полях с пшеницей

4.Colectarea prin flotage.

Принцип работы Это классический метод отлова жесткокрылых, населяющих органический и растительный слой. Преймуществом метода являются: a) предотвращение разрушения стафилинид и их быстрое извлечение из помёта животных (крупного рогатого скота/бизонов, лошадей, коз, овец, ослов, кроликов и т.д.), грибов, из кусков сухой и пористой древесины, с водной растительности растущей по берегам водоёмов и с растительных остатков; б) отлов большого количества видов и особей; в) применение в прохладные и теплые дни до 17:0019:00 вечера. Стафилиниды копробионты легко отлавливаются между 1000 - 1600 часами. В утренние часы, когда есть роса стафилинид нельзя найти в помёте животных, они прячутся в поверхностных слоях почвы. В облачные дни количество стафилинид значительно увеличивается.

Материалы пластиковое ведро, сито с крупными ячейками, клейкие этикетки, одноразовые перчатки, вода т.д.

Применение в полевых условиях на пастбищах, лугах, на заброшенных полях сельскохозяйственными культурами, на дорогах, лесоолосах и т.д.

Собранный материал Роды: Acrolocha, Megarthrus, Cilea, Tachinus, Tachyporus, Aleochara, Aloconota, Atheta, Liogluta, Autalia, Gymnusa, Leptusa, Drusilla, Oxypoda, Anotylus, Oxytelus, Platystethus, Carpelimus, Stenus, Astenus, Rugilus, Gabrius, Gabronthus, Philonthus, Astrapaeus, Ontholestes, Gauropterus, Gyrohypnus, Leptacinus, Megalinus, Phacophallus, etc.

4.1. сбор стафилинид из навоза животных методом флотации

5.Сбор путём встряхивания

Принцип работы Этот метод сбора зависит от исследуемого растительного субстрата на конкретном исследуемом участке, структуры среды обитания, неоднородной ярустности кустарниковых пород и травянистых растений, разнообразия биотопов и степени нагрузки определенным растительным материалом. Обычно, практикуется использование специального сита длиной 1,2 м и диаметром 0,5 м конической формы состоящих из двух слоёв, над которыми встряхивают растения и листья. Первый слой состоит из толстой сетки, через которую проходят растительные остатки, мусор, листва и просеиваются. Второй слой представляет собой мешок-накопитель из прочной белой ткани, куда скапливаются наскомые. При встряхивании для поиска и сбора материала, также практикуется использование прозрачной пленки, больших размеров, которая расстилается на поверхности почвы и которую можно легко переносить на другие участки.

Материалы Перчатки, сита, плёнка, этиловый спирт 70%, защитная каска в местах которые засажены древесно-кустарниковыми породами, защитные очки, ножницы, клейкие этикетки, плосккогубцы, грабли и т.д.

Применение в полевых условиях Представляет собой наиболее гибкий метод, который применяется в полевых условиях для изучения субстратов, расположенных кучами или слоями. Благодаря методу, может быть исследован слой подстилки целиком, так и содержимое древенсой стружки, содержимое грибов больших размеров путём встряхивания их шляпок, содержимое кучи годами накопленного мусора, путём встряхивания и измельчения, содержимое сорных растений

собранных по обочинам дорог, по опушкам лесов, по берегам озер, прудов и рек, а также содержимое брёвен и т.д._

Собранный материал

Роды: Astenus, Stenus, Oxytelus, Rugilus, Anotylus, Medon, Sunius, Scopaeus, Alechara, Atheta, Dinraea, Anthobium, Xantholinus, etc.

5.1. Сбор стафилинид в лесу путём встряхивания листовой подстилки.

6. Исследования почвы.

Принцип работы

Суть метода состоит в изучении фауны стафилинид в почве на глубине 10-15 см из разных биотопов [Доспехов Б. А., 1979]. За исключением изучения фауны стафилинид с поверхностного слоя почвы, почвенные раскопки производятся для изучения их горизонтального и вертикального распределения._

Материалы

Лопата, грабли, защитные очки, пластиковая тара, этиловый спирт 70%, и т.д._

Применение в полевых условиях

В лесу, на пастбище, на лугу, на полях сельскохозяйственными культурами, на степных участках, когда анализируется обилие стафилинд на определенной площади. Для установления типа почвы, которую предпочитают стафилиниды, можно чередовать иследования, чтобы проследить каким образом влияют морфологические свойства почвы на процесс перемещения, размножения, развития стафилинд в различных почвеннх слоях, а также их участие в почвенных сукцессиях.

Собранный материал

Роды: Stenus, Paederus, Ocypus, Xantholinus, Quedius, Rugilus, Leptobium, Gyrohypnus, Gabronthus, Megalinus, Cafius, etc.

6.1.раскопки в акациевом лесу.

6.2.раскапывание поверхностного слоя почвы на пшеничном поле после уборки урожая._

7. Colectarea la capcanele de sol tip Barber.

Принцип работы

Метод хорошо описан в научных работах по специальности [Mohan Gh., Ardelean A., 1993; Крыжановский О., 1983; Тихомирова А. Л., 1975] и содержит рекомендации для сбора стафилинид педабионтов, сапробионтов ночных и дневных. Этот метод позволяет оценить и установить количественную и качественную структуру путём расчёта обилия, встречаемости, доминирования видов в изучаемом биоценозе. Метод заключается в закапывании в землю стеклянного сосуда, банки или стакана с диаметром горлышки 10 см. Отверстие горлышка должно быть на уровне поверхности земли. Свободное пространство меду краями горлышка банки и краями ямы засыпают грунтом. Концентрированный раствор NaCl или уксусной кислоты (CH3COOH) служит фиксирующей жидкостью для консервации и предотвращения мацерации отловленных особей.

Материалы

Стеклянные банки с разным объемом, ситечко, ведро, лопата, перчатки, марля, маска, пластиковая тара, N0, уксусная кислота (СНзСООН) и др._

Применение в полевых условиях

Разместить ловушки на изучаемой местности можно по-разному: параллельными линиями, в одну линию, по диагонали или в шахматном порядке. Расстояние между ловушками может быть от 1,5 м до 10 м, а расстояние от дороги до начала линии ловушек 20 метров. Извлечение насекомых из ловушек осуществляется 1 раз в 10 дней. Для сбора стафилинид ловушки устанавливаются с конца марта по конец октября [Воронова Л. Д.,1987; Стародубцова О. А., 2009; Bohac J., 1999; Stan M., 2008; Stan M., 2009a; Stan M., 2009b]._

Собранный материал

Роды: Omalium, Acidota, Anthobium, Oxypoda, Aloconota, Falagria, Liogluta, Aleochara, Anotylus, Rugilus, Leptacinus, Othius, Ontholestes, Philonthus, Platydracus, Ocypus, Tasgius, Abemus, Quedius, Xantholinus, Velleius, etc.

7.1. размещение ловушки Барбера в поле

fi 'ff'. Яг v * Г # * ^^^ £ ; ' - А V •г Г

7.2. извлечение материала из почвенных ловушек

8.Светоловушки.

Принцип работы Данный метод позволяет собрать ночных видов стафилинид с достаточно большой площади. Благодаря тому, что ловушки являются переносными, их можно устанавливать в разных местах и на различной высоте. Самый примитивный вид светоловушки, которая работает на основе электричества был собрана более 100 лет назад. В Европе, изначально в Англии и в Венгрии были созданы сети световых ловушек для сбора различных групп насекомых с целью научных исследований [Р1гуи§т V. Б., 2010]. Сборы на определенный источник света позволяют: а) производить качественную и количественную оценку для формирования статистико-аналитического формата; б) получение результатов качественных исследований (таксономические, фаунистические, зоогеографические); колическтвенных (численность, частота, фенология видов, динамика популяции), в) создание программы для мониторинга некоторых видов стафилинид представляющих интерес; г) выявление целевых биоиндикаторов; д) наблюдение за перемещениями (освоение новых территории и поиск пищи); е) сезонная динамика по группам, а также уточнение количества поколении в год у некоторых видов.

Материалы Светоловушки с ультрафиолетовым излучением, обычные светоловушки, бензин, стеклянная банка, штатив для установки банки, пластиковая тара, этикетки и т.д.

Применение в полевых условиях В полевых условиях можно применять в период вегетации вплоть до ноября месяца, если позволяют климатические условия года (т.е. сохраняется положительная температура). Установленная светоловушка охватывает большую территорию. Благодаря применению светоловушки становится возможным изучение фауны стафилинид лесов, лугов, степей, полей, занятых сельскохозяйственными культурами (подсолнечник, озимая пшеница, рапс, многолетние культуры) и заброшенных территории. Кроме того, преимущество использования светоловушек заключается в том, что их

можно транспортировать и использовать в различных регионах страны, а использование различных видов светоловушек (с белым светом и ультрафиолетовым излучением) позволяет собрать более полный материал и также сравнить полученный результат. Рода: Acrolocha, Omalium, Aleochara, Atheta, Liogluta, Leptusa, Oxypoda, Anotylus, Oxytelus, Platystethus, Bledius, Carpelimus, Planeustomus, Ochthephilum, Lithocharis, Sunius, Paederus, Scopaeus, Philonthus,Gyrohypnus, Leptacinus, Stenistoderus.

8.1. включенная и установленная светоловушка

Выводы

Применение методов сбора характерных для этой группы позволило собрать стафилинид из 13 подсемейств (Omaliinae MacLey, 1825, Proteininae Erichson, 1839, Tachyporinae MacLey, 1825, Habrocerinae Mulsant et Rey, 1877, Aleocharinae Fleming, 1821, Oxytelinae Fleming, 1821, Oxyporinae Fleming, 1821, Euaesthetinae Thomson, 1859, Scaphidiinae Latreille, 1807, Steninae MacLey, 1825, Paederinae Fleming, 1821, Staphylininae Latreille, 1802, Pselaphinae Latreille, 1802) распространенных на территории нашей страны. В отобранных пробах доминировали стафилиниды из следующих родов: Philonthus, Aleochara, Oxytelus, Anotylus, Carpelimus, Xantholinus, Paederus, Rugilus, etc.

БИБЛИОГРАФИЯ

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

1. Mohan Gh., Ardelean A. Ecologie §i protec^ia mediului. Bucureçti: Scaiul, 1993. p. 243249.

2. Bohac J. Staphylinid beetles as bioindicators. In: Agriculture, Ecosystems and Environment. 1999, 74, p. 357-372.

3. Piryugin V. S. The fauna of the rove beetles (Coleoptera, Staphylinidae) in the Southern Meshchera Lowland. In: Entomological Review. Moscow, 2010, vol. 90, nr. 4, p. 433-440.

4. Rehfous M. Contribution a l'etude des insectes des champignons. In: Bulletin de la societe entomologique Suisse. 1955, vol. 28, nr. 1, p. 1-106.

5. Stan M. New data on the rove beetle fauna (Coleoptera: Staphylinidae) from Bucureçti and adjacent areas. In: Travaux du Muséum National d'Histoire Naturelle «Grigore Antipa». 2008, vol. 51, p. 369-386.

6. Stan M. Rove beetles (Coleoptera: Staphylinidae) from Mehedin^i Plateau Geological Park (Mehedin^i counrty, Romania). In: Travaux du Muséum National d'Histoire Naturelle «Grigore Antipa». 2009a, vol. 52, p. 233-247.

7. Stan M. Taxonomical diversity of terrestrial coleopterans (Insecta: Coleoptera) collected from danube islets (Câlâraçi country). In: Oltenia. Studii §i comunicâri. §tiin{ele naturii. Craiova, 2009b, vol. 25, p. 114-118.

8. Воронова Л. Д. Почвенная фауна южной тайги пермской области. В: Почвенная фауна Северной Европы. Москва,1987. с. 59-65.

9. Доспехов Б. А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки результатов исследований). Москва, 1979. 416 с.

10. Крыжановский О. Семейство Carabidae - жужелицы: сбор, хранение и определение. Фауна СССР. В: Жесткокрылые. Москва, 1983, нр. 1 (2), c. 191-198.

11. Никитский Н. Б, Семенов В. Б., Долгин М. М. Жесткокрылые ксилобионты, мицетобионты и пластинчатоусые приокско-террасного биосферного заповедника. Москва, 1998. 52 с.

12. Стародубцова О. А. К вопросу эффективности методов сбора стафилинид (Coleoptera, Staphylinidae). В: Фауна и экология беспозвоночных животных. Рязань, 2009. с.135-136.

13. Тихомирова А. Л. Учет напочвенных беспозвоночных. В: Методы почвенно-зоологических исследований. Москва, 1975. c. 23-33.

14. Тихомирова А. Л., Маракушина Л. П., Пронова Г. Я. Сезонность попадания напочвенных жуков в канавки в двух типах леса в Южном Зауралье. В: Экология почвенных беспозвоночных. Москва: Наука, 1973. с. 174-180

15. Хачиков Э. А. Материалы по фауне жуков стафилинов и мертвоедов (Coleoptera, Staphylinidae, Silphidae) юга Европейской России. В: Труды международной конференции «Горные экосистемы и их компоненты». Нальчик, 2005, том 2, с. 136-142.

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.