CC BY
7
на красном фоне воспринималось зеленовато-голубым, на желтом — синеватым, на синем — оран-жеватым и т. д.
Располагая результатами исследования одновременного цветового контраста, приведенными в таблице, можно заранее представить направление и величину изменения видимого цветного поля, расположенного на определенном фоне. Следует иметь в виду, что данные таблицы относятся к объектам с соотношением площадей поля и фона 1/а—1/10; при меньших соотношениях изменения будут значительнее при сохранении их направленности.
Установленные исследованиями закономерности по одновременному цветовому контрасту позволяют использовать их в нормативных документах, касающихся цветового оформления объектов народного хозяйства, с целью создания необходимых контрастов при обработке деталей на фонах, в текстильной промышленности, где на тканях одновременно бывает несколько цветных полей и т. д. В этих случаях санитарно-гигиеническая оценка воспринимаемого цвета должна проводиться с учетом всех характеристик цвета, что будет соответствовать реальным условиям его видимости.
Выводы. 1. Разработанная методика исследований одновременного цветового контраста поз-
воляет заранее предусмотреть количественные сдвиги цветовых характеристик результирующего цвета и определить необходимое сочетание цветов для улучшения или ухудшения видимости отдельных элементов на окрашиваемой поверхности.
2. Изменение цветового фона экспонируемого поля всегда происходит в направлении увеличения разницы длины волны от фона в сторону поля. Близкие цветовые тона при сопоставлении воспринимаются менее насыщенными, чем отдельно взятые.
3. Наиболее сильное одновременное цветовое контрастное действие оказывают цвета красной и зеленой частей спектра.
4. Проявление действия одновременного цветового контраста снижается при одновременно действующем яркостном контрасте или ахроматическом обрамлении поля.
Литература. Джадд Д., Вышецки Г. Цвет в науке и технике. М., 1978, с. 412—417. Ивенс Р. М. Введение в теорию цвета. М., 1964, с. 243— 256.
Кравков С. В. Глаз и его работа. М.— Л., 1950, с. 258— 269, 348—357.
Поступила 27.01.81
УДК в 15.в.07в.9:[в16-073.97+ 6 1в. 15-074
Д. И. Сапегин., В. В. Михайлов
МЕТОДИКА ОДНОВРЕМЕННОЙ ЗАПИСИ ЭЛЕКТРОФИЗИОЛОГИЧЕСКИХ ПАРАМЕТРОВ И БИОХИМИЧЕСКИХ
ПОКАЗАТЕЛЕЙ КРОВИ
Крымский медицинский институт, Симферополь
В большинстве токсикологических экспериментов состояние животных исследуется до и после ингаляционной затравки. Между тем для получения полного представления о характере, времени наступления и интенсивности действия токсичного агента необходимо динамическое изучение функций организма животного в процессе затравки.
Нами разработана комплексная методика инга-ляциЬнной затравки кролика с одновременными взятием крови для анализа, регистрацией электроэнцефалограммы (ЭЭГ), реогр'амм (РЭГ) легких и мозга, ЭКГ, электрогастроэнтерограммы (ЭГЭГ) и фотографированием зрачка.
Для фиксации животного используется станок, представляющий собой прямоугольную площадку 40x40 см, на которой вертикально укреплены 4 стержня-стойки 1 (см. рисунок). На стойках 2 подвижных горизонтальных параллельных стержня, поддерживающих гамачок из мягкой ткани с отверстиями для конечностей и мочеполовых органов животного. Туловище кролика провисает в гамачке, а голова, шея и передняя часть груди
укладываются в желобообразный металлический держатель 2, вшитый в переднюю часть гамачка. Держатель, соответствующий форме головы и передней части груди кролика, имеет по бокам полуокружные вырезки для глаз. .С помощью мягких повязок голова фиксируется к желобооб-разному держателю, а конечности — к вертикальным стойкам.
Фиксатор с кроликом помещается в затравочную камеру № 1 (3), в качестве которой нами используется термостат ТС-80 (в наших экспериментах одновременно определяется действие высокой температуры и аэрозолей пестицидов). Металлические стенки'камеры служат экраном, предотвращающим наводки при записи электрофизиологических показателей. Съемная передняя стенка камеры изготовлена из плексигласа. В нее вмонтирована плексигласовая камера № 2 (4) размером 15 X Х8Х11 см. В камеру № 2 помещается голова кролика. С помощью винта 5 желобообразный металлический держатель, в котором находится голова животного, фиксируется к дну камеры № 2, в ниж-
Схема одновременной регистрации ряда электрофизиологических параметров и показаний биохимического исследования крови у лабораторных животных в процессе затравки.
13 — камера № 1; 14 — камера }& 2: 15 — камера Я» 3; 16 — индикатор; 17 — реограф; 18 — электрогастрограф; 19 — коммутатор; 20 — электроэнцефалограф: II — электрокардиограф. Остальные объяснения в тексте.
Подача Создуха
Вытяжка
нюю часть которой вклеен^ трубка для проведения функциональных проб во время затравки (подачи С02 или паров аммиака). В боковой стенке камеры № 2 имеется узкое овальное отверстие. Через него наружу выводится ухо кролика, из краевой вены которого в процессе затравки можно брать кровь Для исследования. С противоположной стороны камеры закреплен аппарат для фотографирования зрачка.
Перед началом затравки камера № 2 герметически состыковывается с камерой № 3 (6), где ( с помощью капельного дозиметра и дискового распылителя создается требуемая концентрация исследуемого вещества. ЭЭГ регистрируется с помощью электроэнцефалографа ЭЭГП4-02 и дисковых электродов диаметром 15 мм. В углубление на рабочей стороне электродов вставляются поролоновые прокладки, смоченные электродной пастой. Электроды 7 накладываются на депилирован-ную кожу головы в области темени по обе стороны от сагиттальной линии на расстоянии 2 см друг от друга.
РЭГ мозга и легких регистрируются реогра-фом РГ4—01. Для снятия РЭГ мозга применяются электроды 8, аналогичные используемым для записи ЭЭГ. Электроды располагаются фронтально: первый — в затылочной области, второй .•— на 70 мм от первого в области лба. Для фиксации электро-и реоэнцефалографических электродов применяется изготовленный нами шлем из ниппельных трубок. Для снятия РЭГ легких используются мягкие посеребренные пластинки размером 6х Х4 см. Между электродами и депилированной кожей помещаются тонкие поролоновые прокладки, смоченные электродной пастой. Электроды 9 накладываются на грудную «летку симметрично на 4 см
по обе стороны от грудины. Гамачок, плотно облегающий грудную клетку, обеспечивает их надежную фиксацию. ЭКГ регистрируются введенными подкожно игольчатыми электродами 10 из нержавеющей стали диаметром 0,6 мм и электрокардиографом ЭКСТ-02. Для записи ЭГЭГ применяются аналогичные электроды И, вкалываемые подкожно в заднюю и переднюю правые конечности, и электрогастрограф ЭГС-4.
В передней стенке камеры № .1 смонтирована панель /2„ к которой с внутренней стороны припаяны проводники от электродов, накладываемых на животных. На наружной стороне панели имеются гнезда для штекеров проводников соответствующих приборов.
ЭГЭГ- регистрируется отдельно на электрогаст-рографе, все остальные показатели — на шести-канальном электрокардиографе ЭК6Т-02. В связи с тем что электрогастрограф в некоторых случаях дает наводку во время записи ЭЭГ, ЭКГ и РЭГ, проводники электрогастроэнтерографических электродов отсоединяются от электрогастрографа. Кроме записи, мы проводили непрерывное визуальное наблюдение за изменением всех параметров на восьмиканалыюм индикаторе ИМ-789, введенном в комплекс приборов.
Предложенная нами комплексная методика позволяет непрерывно наблюдать за электрофизиологическими показателями, отражающими наиболее важные функции организма кролика, производить их регулярную запись, брать кровь для анализов и фотографировать зрачок до, в процессе и после ингаляционной затравки. Данная методика широко используется нами при исследовании комбинированного действия пестицидов и высокой температуры.
Поступила 10.09.80
