CC BY
66
УДК 617.713-089.843 ГРНТИ 76.29.56
кросслинкинг ПОСЛЕ передней послойной КЕРАТОПЛАСТИКИ (ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЕ ИССЛЕДОВАнИЕ)
© А. Б. Петухова, В. В. Нероев, Р. А. Гундорова, О. Г. Оганесян
ФГБУ «Московский НИИ глазных болезней им. Гельмгольца» Минздравсоцразвития России
ВАК 14.01.07
ф Представлены данные экспериментального исследования влияния кросслинкинга (КЛ) на процессы рубцевания раны роговицы после передней послойной кератопластики. Описана гистомор-фологическая картина после воздействия процедуры КЛ, выполненного непосредственно после выполнения передней послойной кератопластики.
ф Ключевые слова: кросслинкинг; роговица; послойная кератопластика; хейз.
В настоящее время наряду с хирургическими технологиями, активно внедряются новые нехирургические методики лечения патологии роговицы, одним из которых является процедура кросслинкинга роговичного коллагена (КЛ). Методика основана на фотополимеразации стромальных волокон и образовании стабилизирующих химических связей, возникающих при комбинированном воздействии фотосенсибилизирующего вещества (рибофлавин, или витамин В2) и светового излучения ультрафиолетового диапазона спектра. Фотополимеризация увеличивает упругость и прочность коллагена, повышая сопротивляемость роговицы кератэктазии. В результате фотополимеризации образуются новые дополнительные внутри- и межфибриллярные связи (поперечные сшивки), что изменяет прочность и устойчивость материала роговицы в целом.
Метод был предложен в 1999 году G. Wollensak и профессором Т. Seiler [21] и его соавторами для лечения кератоконуса. Основной целью применения метода является приостановка прогрессии керато-конуса. Однако, в последнее время показания для применения кросслинкинга заметно расширились. Так, метод успешно используется для приостановки прогрессирования кератэктазии после ЛАСИКа, пеллюцидной маргинальной дистрофии, кератома-ляции различного генеза, а также в лечении буллез-ной кератопатии с болевым синдромом [13]. Ёще в 1960-х годах было показано, что ультрафиолетовое излучение (УФ) в сочетании с рибофлавином инак-тивирует РНК вируса табачной мозаики [18]. В связи с этим, метод КЛ используется в лечении язв роговицы и бактериальных кератитов [14, 10]. Позже, было доказано, что подобный феномен проявляется и на других вирусах, бактериях и паразитах [8].
Влияние кросслинкинга на морфофункцио-нальные изменения клеточного состава и коллаге-
нового каркаса разносторонне [12]. В литературе есть работы, изучающие процессы эпителизации после кросслинкинга роговицы, а также динамику изменений качественного и количественного состава клеток роговицы [19]. Установлено, что в зоне УФ облучения по причине цитотоксического действия и апоптоза, роговица лишается своего клеточного состава по всей толще, вплоть до эндотелия (в зоне облучения). Установлено, что репо-пуляция клеток происходит в течение 4—6 недель после кросслинкинга. Также показано, что под влиянием кросслинкинга происходит увеличение диаметра коллагеновых фибрилл, причём это явление более выражено в передних слоях стромы [22]. Вместе с тем доказано, что после кросслинкинга роговицы, лимбальные и конъюнктиваль-ные клетки, находящиеся вне зоны облучения, не претерпевают никаких изменений [20]
Как и для большинства медицинских процедур, кросслинкингу свойственны осложнения. В литературе есть сообщения о таких осложнениях как: кератомаляция [6], кератопатия [11], повреждение эндотелия [17].
Механизмы восстановления ткани роговицы во многом такие же, как и в любом другом органе — это процесс регенерации. Тем не менее, роговица имеет уникальные анатомические, клеточно-молекулярные и функциональные особенности, которые обусловливают важные механические и функциональные различия. Установлено, что помутнение роговицы после повреждения стромы связано с дезорганизацией фиброзной ткани [9, 7, 5] и с отложением экстрацеллюлярного матрикса, что является причиной формирование хейза роговицы [2]. Однако последние исследования указывают на то, что хейз в большей степени обусловлен рассеянием света от фибробластов и миофибробластов зоны повреждения или восстановления. Хейз — это
Таблица 1
Разновидности хейза
Характеристика Разновидность хейза
По времени возникновения Ранний —первые 14 суток после операции Поздний —сроки свыше 3 месяцев
По характеру и локализации Субэпителиальный экссудативный — формирование рыхлой отечной соединительной ткани (подобие грануляционной) Субэпителиальный пролиферативный. Пролифе-ративный (фибропластический) процесс, направленный на восстановление утраченного объёма стромальной ткани
По протяженности • очаговый • центральный • парацентральный • тотальный
Патогистологическая картина Структурно-пространственные нарушения колла-генового каркаса, межпластинчатый отёк располагающихся под гиперплазированным эпителием Миграция и пролиферация активированных кератоцитов в зависимости от объёма абляции стромальной ткани
Исход Постепенный самопроизвольный регресс Стойкий, требующий медикаментозного лечения
субэпителиальное помутнение роговицы различной локализации и продолжительности по времени, возникающее после эксимерлазерной фотоабляции или выполнения ламеллярной кератопластики [3, 4].
Ещё одним свидетельством в поддержку клеточных механизмов возникновения хейза является его флюктуация, наблюдающаяся у пациентов на протяжении долгого времени, что не может быть объяснено простыми фибролитическими механизмами. Таким образом, кросслинкинг, оказывая влияние как на клеточный, так и на внеклеточный состав стромы, может влиять на интенсивность и профилактику формирования хейза.
Морфогистологическая картина хейза в строме роговицы после хирургических вмешательств дает возможность предположить, что процедура КЛ может влиять на это осложнение, устраняя или предотвращая его.
Целью работы является изучение влияние крос-слинкинга на процессы рубцевания раны роговицы после передней послойной кератопластики.
МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ
Объектом исследования явились 20 кроликов породы шиншилла в возрасте 3 месяцев, весом не более 2 кг, серо-черной окраски.
Правые глаза кроликов были опытными, левые — контрольными. В данной серии экспериментальной работы, на всех 40 глазах 20 животных, в качестве модели была выполнена передняя послойная аутокератопластика диаметром 6,0 мм.
В 10 случаях сразу после наложения швов, на правых глазах кроликов была выполнена процедура кросслинкинга по стандартной методике (группа Ы).
В остальных 10 случаях кросслинкинг на правых глазах был проведен после введения «Дек-стралинка» под кератотрансплантат (группа !М).
Левые глаза животных, являясь контрольными, процедуре кросслинкинга не подвергались (Группы Ios и IIos).
Техника операции и процедуры кросслинкинга.
Экспериментальное исследование проведено с соблюдением международных рекомендаций по проведению медико-биологических исследований с использованием животных [1].
Хирургическое вмешательство осуществлялось стерильным инструментарием в условиях стерильного операционного поля под общей анестезией, которую осуществляли путем внутримышечного введения раствора кетамина гидрохлорида из расчёта 30 мг на 1 кг веса и раствора рометара из расчёта 0,2 мл на 1 кг веса. Дополнительно анестезию слизистой глазного яблока достигали инсталляцией раствора анестетика (0,5 % Алкаина) в ходе операции. После двухкратной инстилляции антибиотика (Офтаквикс) на веки накладывался ве-корасширитель. В оптическом центре вакуумным трепаном 6,0 мм выполнялась циркулярная керато-томическая насечка на глубину около 250 мкм, что соответствует одному полному обороту (360 град) от центральной толщины роговицы кролика (~ 400 ± 20 мкм). Ножом для расслаивания стромы роговицы выкраивали стромальный диск в пределах насечки 6,0 мм. После этого, рану ушивали восемью узловыми швами (нейлон 10—00), с погружением узлов в рану. Хирургический этап завершали субконъюктивальной инъекцией 1,0 мг раствора дексаметазона и 10,0 мг раствора гентамицина. Затем все правые глаза подвергались процедуре КЛ, а левые — нет. По окончанию манипуляций в конъюктивальную полость всех правых и левых глаз закладывали мазь (антибиотика).
Все правые глаза кроликов (группа Iod) подвергались процедуре кросслинкинга по стандартной
методике, но без удаления эпителия, аппаратом UV—X (IROC AG, Швейцария), с использованием стерильного раствора 0,1 % рибофлавина с дек-страном и изотоническим раствором в виде готового препарата «Декстралинк».
Процедуру кросслинкинга роговичного коллагена выполняли при следующих характеристиках: длина волны 370 нм, при интенсивности освещения <5 мВт/см2. Зона облучения составляла 6,0 мм. Экспозиция 25—30 минут. Инстилляции «Декстралинка» проводились каждые 2 минуты.
Аналогичной процедуре были подвергнуты 10 правых глаз остальных кроликов (группа IIod), но в этой группе «Декстралинк» вводили непосредственно под стромальный диск роговицы, который предварительно был фиксирован в операционном ложе.
В послеоперационном периоде осуществлялись двукратные ежедневные инстилляции в оба глаза животных растворов антисептиков и кортикосте-роидов вплоть до удаления швов и ещё 3 дня. Швы удаляли на 30 сутки после их наложения, в условиях стерильного операционного поля, под местной инстилляционной анестезией.
Осмотры осуществляли в первые две недели ежедневно, далее один раз в неделю. Использовали методики бокового и фокального освещения, при необходимости биомикроскопию, в сочетании с фоторегистрацией в динамике.
Спустя 6 месяцев после кератопластики, кролики были выведены из эксперимента под общей анестезией путем воздушной тромбоэмболии.
Энуклеированные глаза животных фиксировались в холодном растворе 2 % раствора глю-таральдегида на фосфатном буфере (pH = 7,2). Вырезанные фрагменты роговицы размерами 1,5 х 1,5 см из зоны очага дофиксировали в течение 2 часов в 1 % растворе осмиевой кислоты (OsO4). Далее образцы обезвоживали в спиртах восходящей концентрации, ацетоне и заключали в смолу (смесь эпон-аралдит — фирма SPIsupplier, USA). Полутонкие срезы (толщиной 1 — 1,5 мкм) готовили на ультратоме Nova (LKB, Швеция) окрашивали полихромным красителем (метиленовый синий + фуксин) и исследовали на «Фотомикроскопе III» (Opton, Германия). Фоторегистрацию и морфоме-трический анализ изображений проводили с помощью программного обеспечения фирмы «Мекос».
РЕЗУЛЬТАТЫ
На препаратах группы Iod (6 мес. после передней послойной кератопластики и КЛ) область сформировавшегося нежного перилимбального стромального рубца на всем протяжении была
покрыта слоем гиперплазированного переднего эпителием (рис. 1—2), отличающимся увеличенным количеством слоев клеток, нередко увеличенных в размерах (рис. 1—2). Причём поверхностные клетки, включая десквамированные, вместо плоской формы имели кубическую форму. Клетки базального слоя наоборот, имели более вытянутую форму с частыми фигурами митоза. Визуализируется оптимальная конгруэнтность между кератотранстплантатом и ложем без хей-за (рис. 1—2). Под эпителием в поверхностной строме (примерно в верхней 1/3 толщины) наблюдали локальную активацию и пролиферацию кератоцитов (с появлением молодых клеток с округлыми или овальными ядрами). В проекции швов отмечается увеличение числа кератоцитов (рис. 1—2). В более глубоких стромальных слоях коллагеновые фибриллы ориентированы под острым углом друг к другу около 30 градусов. Десцеметова оболочка и задний эпителий сохраняли свое нормальное гистологическое строение (рис. 1-2).
В контрольной группе Ios (6 мес. после ранения без КЛ) также происходила заместительная гиперплазия переднего эпителия (рис. 3-4). В проекции прежних швов в строме более выраженный процесс рубцевания, что проявляется увеличением плотности кератоцитов, то есть гипертрофия кератоцитов. Отмечается отёк сторо-мы операционного ложа, прилежащего к керато-трансплантату. Не наблюдается конгруэнтности поверхности кератотрансплантата и операци-оннго ложа, что характеризует нарушение архитектоники стромы роговицы. Как и в группе Iod, десцеметова оболочка и эндотелий оставались неизмененными.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
Полученные данные позволяют говорить о положительном воздействии КЛ на адаптацию кера-тотрансплантата в интрастромальном ложе роговицы:
1. КЛ служит средством профилактики формирования хейза, за счет активации кератогенеза и достижения конгруэнтности трансплантата и ложа.
2. КЛ способствует формированию правильной геометрии каркаса стромы роговицы и, как следствие, возможно, предупреждает развитие послеоперационного астигматизма.
3. Можно предположить, что КЛ способствует сокращению сроков реабилитации после ламе-лярной кератопластики.
Предсталяется что, дальнейшее изучение влияние КЛ на регенеративные процессы роговицы
Рис. 1. Фото препарата группы Iod (6 мес. после ранения с КЛ) область сформировавшегося нежного пери-лимбального стромального рубца представлена гиперплазированным передним эпителием, клетки увеличены в размерах, поверхностные клетки, имеют кубическую форму, клетки базального слоя имеют вытянутую форму. Десцеметова оболочка и задний эпителий сохраняли свое нормальное гистологическое строение. х 250
Рис. 2. Фото препарата группы ^ (6 мес. после ранения с КЛ) коллагеновые фибриллы в стромальных слоях ориентированы под острым углом друг к другу около 30 градусов. х 350
Рис. 3. Фото препарата группы Ios (6 мес. после ранения без КЛ) заместительная гиперплазия переднего эпителия: гипертрофия кератоцитов, нарушение архитектоники стромы роговицы, десцеметова оболочка и эндотелий интактны. х 250
после кератопластики является перспективным и
целесобразным.
список ЛИТЕРАТУРЫ
1. Готова О. О., Богомолов А. Ф. Этика работы с экспериментальными животными // Медицинское право и этика. — 2003. — C. 4.
2. Левкоева Э. Ф. К вопросу о роли избыточной регенерации в заживлении ран глаза // Офтальмол. журн. — 1951. — № 4. — С. 186-190.
3. Федоров А. А., Куренков В. В., Каспаров А. А., Полунин Г. С. Па-томорфологическая характеристика субэпителиального флера
Рис. 4. Фото препарата группы Ios (6 мес. после ранения без КЛ) в проекции прежних швов в строме наблюдается процесс рубцевания. х 350
роговицы после фоторефракционной кератоэктомии // Вестник офтальмологии. — 1999. — № 5. — С. 26-28. Федоров А. А., Куренков В. В., Каспаров А. А., Полунин Г. С. Морфологическое исследование локальных субэпителиальных помутнений рговицы после фоторефракционной кератоэктомии // Рефракционная хирургия и офтальмология. — 2001. — Т. 1 (№ 1). — С. 21-28.
Хорошилова-Маслова И. П. Травматическое поражение глаз // Многотомное руководство по патологической анатомии. Т. 1. — М.: Медгиз, 1963. — С. 575-589. Cardo L. J., Rentas F. J., Ketchum L. et al. Pathogen inactivation of Leishmania donovani infantum in plasma and platelet concentrates using riboflavin and ultraviolet light // Vox Sang. — 2006. — Vol. 90. — P. 85-91.
Cintron C, Schneider H., Kublin C. Corneal scar formation // Exp. Eye. Res. — 1973. — Vol. 17. — P. 251-259.
8. Corbin F. III. Pathogen inactivation of blood components: current status and introduction of an approach using riboflavin as a pho-tosensitizer // Int. J. Hematol. — 2002. — Vol. 76, Suppl 2. —
P. 253-257
9. Fini M. E. Keratocyte and fibroblast phenotypes in the repairing cornea // Prog. Retin. Eye. Res. — 1999. — Vol. 18. — P. 529-551.
10. Galperin G., Berra M., Tau Ju. et al. Treatment of Fungal Keratitis From Fusarium Infection by Corneal Cross-Linking // Cornea. — 2012. — Vol. 31, N 2. — P.176-180.
11. Gokhale N. S., Vemuganti G. K. Diclofenac-induced Acute Corneal Melt After Collagen Crosslinking for Keratoconus // Cornea. January 2010. — Vol. 29, N 1. — P. 117-119.
12. Greenstein S. A., Fry K. L., Hersh P. S. In Vivo Biomechanical Changes After Corneal Collagen Cross-linking for Keratoconus and Corneal Ectasia. 1-Year Analysis of a Randomized, Controlled, Clinical Trial // Cornea. — 2012. — Vol. 31, N 1. — P. 21-25.
13. Kozobolis V, Labiris G, Gkika M. et al. UV-A Collagen Cross-Linking Treatment of Bullous Keratopathy Combined With Corneal Ulcer // Cornea. — 2010. — Vol. 29, N 2. — P. 235-238.
14. Makdoumi K, Mortensen J., Crafoord S. Infectious Keratitis Treated With Corneal Crosslinking // Cornea. — 2010. — Vol. 29, N 12. — P. 1353-1358.
15. Moller-Pedersen T. Keratocyte reflectivity and corneal haze // Exp. Eye Res. — 2004. — Vol. 78. — P. 553-560.
16. Moller-Pedersen T, Li H. F, Petroll W. M. et al. Confocal microscopic characterization of wound repair after photorefractive keratectomy // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. — 1998. — Vol. 39. — P. 487-501.
17. Rodríguez-Ausín P., Gutiérrez-Ortega R., Arance-Gil Á. et al. Keratopathy After Cross-linking for Keratoconus // Cornea.—2011. — Vol. 30, N 9. — P.1051-1053.
18. Tsugita A., Okada Y., Uehara K. Photosensitized inactivation of ribonucleic acids in the presence of riboflavin // Biochim. Biophys. Acta. — 1965. — Vol. 103. — P. 360-363.
19. Wollensak G, lomdina E, Dittert D.-D, Herbst H. Wound Healing in the Rabbit Cornea After Corneal Collagen Cross-Linking With Riboflavin and UVA // Cornea. — 2007. — Vol. 26, N 5. — P. 600-605.
20. Wollensak G, Mazzotta C, Kalinski T, Sel S. Limbal and Conjunctival Epithelium After Corneal Cross-linking Using Riboflavin and UVA // Cornea. — 2011. — Vol. 30, N 12. — P. 1448-1454.
21. Wollensak G., Spoerl E, Seiler T. Riboflavin/ultraviolet-a-induced collagen crosslinking for the treatment of keratoconus // Am. J. Ophthalmol. — 2003. — Vol. 135, N 5. — P. 620-627.
22. Wollensak G, Wilsch M., Spoerl E, Seiler T. Collagen Fiber Diameter in the Rabbit Cornea After Collagen Crosslinking by Ribofla-vin/UVA // Cornea. — 2004. — Vol. 23, N 5. — P. 503-507.
CROSSLINKING AFTER ANTERIOR LAMELLAR KERATOPLASTY (EXPERIMENTAL STUDY)
Petukhova A. B., Neroev V. V., Gundorova R. A., Oganesian O. G.
G Summary. Experimental study data are presented on crosslinking (CL) influence on corneal wound healing processes after anterior lamellar keratoplasty. The histomorphological picture after crosslinking procedure performed immediately after anterior lamellar keratoplasty is described.
G Key words: crosslinking; cornea; lamellar keratoplasty; haze.
Сведения об авторах:_
Петухова Анастасия Борисовна — аспирант. ФГУ МНИИ глазных болезней им. Гельмгольца. 105062, Москва, ул. Садовая-Черногрязская 14/19. E-mail: [email protected].
Нероев Владимир Владимирович — главный офтальмолог Минсоцздрава РФ, директор ФГУ МНИИ ГБ им. Гельмгольца, профессор.
ФГУ МНИИ глазных болезней им. Гельмгольца. 105062, Москва, ул. Садовая-Черногрязская 14/19. E-mail: [email protected].
Гундорова Роза Александровна — руководитель отдела травматологии, реконструктивной, пластической хирургии и глазного протезирования, профессор. ФГУ МНИИ глазных болезней им. Гельмгольца. 105062, Москва, ул. Садовая-Черногрязская 14/19. E-mail: [email protected].
Оганесян Оганес Георгиевич — старший научный сотрудник, к. м. н. ФГУ МНИИ глазных болезней им. Гельмгольца. 105062, Москва, ул. Садовая-Черногрязская 14/19. E-mail: [email protected].
Petukhova Anastasiya Borisovna — aspirant. Moscow Helmholtz Eye Research Institute. 105062, Moscow, Sadovaya-Chernogriazskaya 14/19. E-mail: [email protected].
Neroev Vladimir Vladimirovich — chief ophthalmologist of the Ministry of Health and Social Development of the Russian Federation. Moscow Helmholtz Eye Research Institute. 105062, Moscow, Sadovaya-Chernogriazskaya 14/19. E-mail: [email protected].
Gundorova Rosa Alexandrovna — MD, PhD, head of ophthal-
motraumatology department.
Moscow Helmholtz Eye Research Institute.
105062, Moscow, Sadovaya-Chernogriazskaya 14/19.
E-mail: [email protected].
Oganesyan Oganes Georgievich — MD, PhD. Moscow Helmholtz Eye Research Institute. 105062, Moscow, Sadovaya-Chernogriazskaya 14/19. E-mail: [email protected].
