CC BY
29VETERINARY SCIENCE | ВЕТЕРИНАРНЫЕ НАУКИ
КОКЦИДИОЗ ПТИЦ ИСКОРЕНЯЕТСЯ ДЕЗИНВАЗИЕЙ - КЕНОКОКСОМ
Ташбулатов А.А.
ООО Глобал-Клин (г.Москва). Ветеринарный врач, кандидат ветеринарных наук, ведущий специалист направления
«Птицеводство»
Сафиуллин Р. Т.
ФГБНУВНИИП имени К.И. Скрябина (г.Москва)., доктор ветеринарных наук, профессор, заведующий лабораторией
протозоологии и санитарной паразитологии
COCCIDIOSIS BIRDS ERADICATE DISINFESTATION - KENOCOX Tashbulatov А.А. LLC Global-Gin (Moscow), Veterinary doctor, candidate of veteri-nary sciences, the competitor of a scientific degree of the doctor vet, a leading specialist in poultry devision
Safiullin R.T. FGBNU VNIIP name K.I. Scriabin (Moscow,, Doctor of Veterinary Sci-ence, Professor, Head of the Laboratory of Parasitology protozoology and sanitation
АННОТАЦИЯ
Научно-производственный опыт по определению эффективности дезсредства КЕНОКОКС в рекомендованной дозе показал 97,62%-ную интенсэффективность против ооцист кокцидий птиц, а эффективность фенола составила 64,04%. КЕНОКОКС снижает риски от возникновения кокцидиоза и исключает возможность передачи заражения от взрослого поголовья к молодняку, что в конечном итоге позволит значительно повысить прибыль за счет лучшей конверсии корма и привесов, улучшения иммунного статуса и здоровья птиц и сокращения непредвиденных расходов на лечение птицы.
ABSTRACT
Research and production experience to determine the effectiveness KENOCOX disin-fectants at the recommended dose showed 97.62%-ing intens again& coccidia oocy^s birds and efficiency of phenol was 64.04%. KENOCOX reduces the risk of occurrence of coccidio-sis and eliminates the possibility of transmission of infection from adult live^ock to young growth, which ultimately will significantly increase profits through improved feed conversion and weight gain, improve immune &atus and health of the birds and reduce the co^s of the treatment of poultry.
Ключевые слова: птицеводство, инвазия, контаминация ооцистами, кокцидиоз, цыплята-бройлеры, дезинвазия, уничтожение кокцидий, КЕНОКОКС, фенол, интенсэффективность.
Keywords: poultry, infection, contamination oocy^s, coccidiosis, broilers, disinfection, de^ruction coccidia KENOCOX, phenol, intens
Постановка проблемы
Среди наиболее распространенных и экономически значимых паразитарных за-болеваний в птицеводстве России остаются кокцидиозы, вызываемые простейшими из семейства ЕтегМае, которые называют эймериозом [7].
Известно, что основным источником инвазии является больная эймериозом (кокцидиозом), зачастую в скрытой форме и переболевшая птица. В неблагополучных хозяйствах передача инвазии происходит путем прямого (горизонтального пути) и не-прямого (вертикального) контакта с больной птицей. Максимальный срок споруляции ооцист во внешней среде при оптимальных условиях (+18 до +240С
и необходимая влажность 84-86% и доступ кислорода) составляет 1-4суток.
Жизненные циклы всех видов эймерий кур в основном сходны и отличаются лишь по локализации паразита, размерами меронтов и длительностью препатентного и патентного периодов.
В процессе жизненного цикла они проходят три стадии развития: шизогонию (мерогонию), гаметогенез и спорогонию (рис. 1.,2.). Первые две - внутриклеточные, при этом развитие совершается чаще всего в эпителиальных клетках кишечника птицы (эндогенное развитие), третья - во внешней среде (экзогенное развитие).
I - III - агамное размножение; IV - гаметогония; V - спорогония; 1 - спорозоит, 2-4 - развитие шизонтов первой и последующих генераций, 5 - мерозоиты трех генераций, 6 - развитие микрогамет, 6а - развитие макрогаметы; 7 - микрогаметы, 8 - ооциста, 9 - ооциста неспорулированная, 10-12 - спорогония [9].
Заражение происходит через загрязненные ооцистами эймерий: кормушки, кор-ма, вода, подстилка, ящики, инвентарь. Механическими разносчиками ооцист эймерий являются синантропные птицы, грызуны, членистоногие - жуки, клещи, мухи, тарака-ны, а также обслуживающий персонал - на обуви, одежде и предметах ухода. К факто-рам, способствующим распространению эймериоза, следует отнести нарушения техно-логии выращивания цыплят: скученность птицы в помещениях, повышенная влаж-ность воздуха и подстилки, неполноценное кормление, контакт между цыплятами и птицей старших возрастных групп, антисанитарные условия. Ооцисты эймерий кур во внешней среде, в зависимости от условий, могут сохраняться жизнеспособными и вы-зывать заражение в течение многих месяцев. В зонах с прохладным дождливым летом и холодными зимами ооцисты могут сохранять жизнеспособность больше года
[1-5].
Анализ последних исследований и публикаций
С целью профилактики резких вспышек кокцидиозов предложено много препа-ратов для внутреннего применения - кокцидиостатики. На рынке ветеринарных пре-пара-тов России присутствуют кокцидиостатики, к которым у кокцидий, через некото-рое время возникает устойчивая резистентность. Высокая резистентность кокцидий причиняет ущерб всей отрасли птицеводства России от снижения привесов и эконо-мических потерь неусвоенного птицей корма.
Ученые ВНИВИП (Санкт-Петербург) отмечают, что кок-цидиостатики не пол-ностью подавляют развитие эймерий, со временем при отсутствии их чередования по действующему веществу, а не по их торговому названию (их эффективность достигает не выше 20-40%, соответственно), заболевание приобретает скрытый характер - без видимых проявлений. В результате снижается продуктивность и резистентность пти-цы, и гибель цыплят, до 14,7% и выше, от любого другого вторичного кишечного за-болевания. Увеличиваются затраты корма на 5-10% у ремонтного молодняка, а также увеличение расхода кормов на 7-103 кг/ц привеса у бройлеров. Потеря привесов до-стигает от 80 до 270г. на голову при кокцидиозе бройлеров, при этом снижается выход тушек 1-ой категории от 4,5 до 25% [5].
Так, в России учеными из ВНИВИП в 2001-2003 гг., проведена проверка изоля-тов кокцидий из 60 птицефабрик различных регионов России. В результате установле-но, что к клинакоксу во всех птицехозяйствах выявлена высокая степень резистентно-сти - от 50-60%, что указывает на необходимость изучения степени чувствительности полевых изолятов кокцидий в каждом птицехозяйстве Т.о. защищено не более 40-50% птиц и в дальнейшем у остального поголовья возможно развитие субклинической формы кокцидиоза, наносящий скрытый экономический ущерб в 3 раза больше, чем явная гибель птиц от заболевания. [4].
При выборе вакцин против кокцидиоза, до выработки иммунитета птица долж-на содержаться в условиях, свободных от кокцидий, иначе заболевание успеет развить-ся раньше. Проведение эффективной дезинвазии имеет важное значение при санитар-ном перерыве на птицефабриках как промышленного, так и фермерского типа.
Снижение продуктивных качеств цыплят, вследствие эй-мериоза, продолжает ставить перед исследователями задачи усовершенствования комплексных ветеринар-но-санитар-ных мероприятий по искоренению инвазии, чем и объясняется особое вни-мание, которое уделяют данной проблеме отечественные и зарубежные ученые.
Установлено, что предотвратить экономические потери от эймериоза молодняка кур возможно лишь в том случае, если проводить комплекс лечебно- профилактиче-ских мероприятий против эндо- и экзогенных стадий возбудителя и при умелом ис-пользовании профилактических обработок с применением современных высокоэффек-тивных кокциди-остатиков и вакцин против кокцидиоза [10-14].
Выделение нерешенных ранее частей общей проблемы
Ранее, мероприятия при эймериозах кур состояли из назначения препаратов, действующих на эндогенные стадии кокцидий, а из средств дезинвазии использовали 7%-ный раствор аммиака, 2%-ную эмульсию ортохлорфенола, 4%-ный раствор фенола, 10%-ный раствор однохлористого йода, 4%-ный раствор едкого натра, которые долж-ны иметь температуру не ниже 80°С [15]. Эффективность данных средств дезинвазии оставляет желать лучшего, ввиду сложной технологии приготовления и использования рабочих растворов и высокого коррозирующего действия на оборудование, конструк-ционные материалы и небезопасно для персонала.
Цель исследования
Испытать эффективность дезинфектанта КЕНОКОКС, в условиях птицеводче-ского предприятия России против оо-цист кокцидий птиц, по сравнению с базовым препаратом фенолом.
Изложение основного материала
По данным CID LINES NV (Бельгия), средство Кено ™ Кокс представляет со-бой широкий дезинфицирующий спектр и эффективно против эндопаразитов (напри-мер, Eimeria sрр., Cryptosporidium parvum) и бактерий. Кено ™ Кокс применяется на всех видах поверхностей, не содержит фенол, безопасен для пользователей и живот-ных. В числе преимуществ следует отметить: высокое дезинфицирующее и кокцидио-цидное действие, лучшая активность в отношении спорулированных ооцист, чем фе-нольные продукты, а также бактерицидная и вирулицидная эффективность [3].
Данный препарат не имеет аналогов, что подтверждено патентом РСТ/ ЕР2009/000789. Использование его для подготовки помещения безопасно для птицы и обслуживающего персонала. Он не вызывает коррозию и порчу материалов и обеспе-чивает высокую эффективность против ооцист кокцидий. Данный препарат хорошо зарекомендовал себя в хозяйствах Бельгии, Франции, Германии.
Материалы и методы. Испытание эффективности КЕНО-КОКС проведено в условиях неблагополучного по кокцидиозу птицеводческого хозяйства Московской области в феврале-марте 2012 года. В птичнике, после уборки и очистки помещения, согласно принятой технологии производства, проводили первоначальную оценку кон-таминации объектов внешней среды ооцистами кокцидий. Исходную загрязненность птичника ооцистами кокцидий устанавливали путем исследования 30 соскобов с раз-ных участков пола, 20
соскобов с поверхности стен на уровне до 1 метра и по 10 со-скобов из каждого вида технологического оборудования, флотационным методом.
Для лучшей очистки помещения птичника в хозяйстве использовали щелочное пенное чистящее средство БИОГЕЛЬ, 1,5%-ный рабочий раствор, при норме расхода 0,3-0,4 л на кв. м. и экспозиции 2 часа, применяя пенную насадку к аппарату высокого давления. Аналогичным методом провели влажную пенную дезинфекцию в птичнике дезинфек-тантом ВИРОЦИД в концентрации 0,5%, при норме расхода 0,4 л на кв. м. и экспозиции 40 мин. Затем проводили повторный отбор 20 соскобов с разных участков пола птичника и исследовали для установления остаточного количества ооцист кокци-дий. Эффективность дезинфектанта КЕНО-КОКС против ооцист кокцидий птиц опре-деляли опытным путем с искусственной закладкой ооцист. В птичнике до посадки цыплят выбирали два огороженных участка пола по 1 кв. метру, на которые предварительно наносили 10 тыс. экз. спорулированных ооцист (Етепа tenella) с помощью ручного опрыскивателя равномерно по всей поверхности бетонного пола. По истече-нии 30 минут после нанесения ооцист, первый участок обрабатывали опрыскиванием 4%-ного рабочего раствора КЕНОКОКС из расчета 0,5 л на 1 кв. м. при экспозиции 2 часа. Второй опытный участок обрабатывали 4%-ным раствором фенола при такой же норме и экспозиции (базовый препарат). Через 2 часа после нанесения дезинфектантов из каждого участка по отдельности с помощью кисточки и специально подготовленно-го буферного раствора (WSH) брали смывы и помещали в емкости с завинчивающейся крышкой. В условиях лаборатории ВИ-ГИС взятые из опытных участков смывы подго-тавливали по методике и консервировали с использованием буфера WSH, хранили в холодильнике при +4 °С. Перед искусственным заражением цыплят материал концен-трировали путем центрифугирования, оставляя 10 мл жидкости с оо-цистами, подсчи-тывали их количество в 1 мл. Оценку действия КЕНОКОКС и базового препарата фе-нола на ооци-сты кокцидий в условиях птичника определяли биопробой на 30 цыпля-тах 14-дневного возраста. Цыплят подвергали индивидуальному взвешиванию, нуме-рации, разделяли на три аналогичные группы по 10 в каждой и содержали в птичнике в клетках изолированно.
По условиям опыта ограничений в кормлении цыплят не было, их кормили су-хим гранулированным комбикорм без кокцидиостатиков для бройлеров 1-35-дневного возраста по зоотехническим нормам, который условно назывался: стартовый, ростовый и финишный. Потребление воды было без ограничений. За время производственного испытания кормление и условия содержания цыплят всех групп были одинаковые. Температура воздуха в птичнике, где находились группы, была 25,2° С, влажность воз-духа 60±5%.
Цыплятам первой группы задавали внутрь по 1 мл суспензии ооцист эймерий, предварительно обработанной на опытной площадке №1, 4%-ным раствором дезин-фектанта КЕНОКОКС, орально при помощи микропипетки. Цыплятам второй группы назначали по 1 мл суспензии ооцист эй-мерий, обработанной на опытной площадке №2, раствором фенола 4%-ного внутрь. Цыплятам третьей группы на контрольной площадке №3, задавали внутрь по 1 мл исходной культуры спорулированных ооцист (Етепа teneИa), которая содержала 2000 ооцист/мл.
За время опыта цыплята всех трех групп находились в аналогичных условиях содержания и имели одинаковый рацион. В течение всего периода опыта за цыплята-ми вели ежедневные клинические наблюдения за общим состоянием, приемом корма и воды, видимыми физиологическими изменениями. Еженедельно проводили контроль-ное взвешивание.
Наличие ооцист в помете опытных цыплят определяли путем ежедневного с 6 по 12-е сутки после назначения сбора всего помета каждой группы в отдельности, ко-торые взвешивали, добавляли воду до объема 2000 г, смешивали смесителем в течение 5 минут. Пробы для дальнейших исследований отбирали из каждой группы в количе-стве 25 г., консервировали 4%-ным раствором бихромата калия и доводили до одно-родной массы путем размешивания миксером в емкости с завинчивающейся крышкой и хранили в холодильнике при +40С.
Готовый материал исследовали флотационным методом, а количество ооцист в помете подсчитывали с использованием камеры Мак Мастера.
Эффективность КЕНОКОКС 4%-ного для дезинвазии объектов внешней среды в производственном опыте, а также 4%-ной концентрации базового препарата фенола определяли исходя из процента снижения выделения ооцист эймерий после воздей-ствия на них этими препаратами по сравнению с цыплятами контрольной группы, по-лучивши-ми по 2000 ооцист/мл.
Результаты исследований. Результаты исследований проб и соскобов из объ-ектов внешней среды показали наличие инвазионных элементов. Так, при исследова-нии 30 проб и соскобов с разных участков пола птичника (Етепа spp.) выделены в 16, что составляет 53,3%. С поверхности стен данного птичника на высоте до 1 метра из разных мест были взяты и обследованы 20 проб, ооцисты эймерий при этом были вы-делены в 5 (16,7%).
В связи с тем, что опорные балки в этом птичнике не подвергались чистке, было решено взять и обследовать из разных мест 10 соскобов пыли и других имеющихся осадков. Исследования на наличие ооцист эймерий показали отрицательные результа-ты, и они дают основание предположить, что зимой (пробы брали в феврале), когда в птичнике нет мух, ооцисты эймерий на такой высоте как балки быть не могут.
Из имеющегося в птичнике технологического оборудования: трубы кормораз-датчика, водопровод, газовая труба, вентиляция также брали соскобы осевшей пыли, других осадков по 10 из каждого вида оборудования и обследовали в условиях лабора-тории ВИГИС. Результаты проведенных исследований на наличие ооцист эймерий были отрицательные.
Представлял определенный интерес обсемененность оставшегося в птичнике после сдачи цыплят корма и воды в поилках. Для выяснения данного вопроса было взято и обследовано на наличие ооцист 5 проб корма и 10 проб воды из отмеченного птичника. Результаты проведенных исследований показали отсутствие ооцист эйме-рий в обследованных образцах.
Несмотря на удовлетворительное санитарное состояние кормушек было решено подвергать их обследованию. При исследовании 10 соскобов и смывов из кормушек ооцисты эймерий выделены в одной, что составляет 10%.
Проведенные исследования соскобов и смывов из объектов внешней среды по-казали, что наиболее загрязненными ооцистами эймерий были соскобы с пола птични-ка (53,3%), стен (16,7%) и заметно меньше кормушек (10%>). Технологическое обору-дование данного птичника по результатам выборочных исследований не имело загряз-ненности ооци-стами эймерий.
Для установления остаточного количества ооцист кок-цидий после очистки средством БИОГЕЛЬ, нами проведен повторный отбор 20 соскобов с разных участков пола птичника и их исследовали отмеченным ранее методом. Результаты исследований показали, что при обследовании 10 проб из одной половины птичника ооцисты эйме-рий выделены в четырех случаях, а из другой половины в двух случаях из 10, что в среднем по птичнику составляет 6 из 20 обследованных или 30%.
Результаты проведенных исследований показали значительную загрязненность объектов внешней среды птичника при напольном содержании ооцистами эймерий, что свидетельствует о том, что они служат факторами передачи инвазии от зараженной птицы к восприимчивому молодняку. Одновременно это сигнал для ветслужбы птице-водческого хозяйства, указывающий на необходимость использования комплексных ветеринарно-санитарных мероприятий с использованием современных средств для очистки, такие как БИОГЕЛЬ и эффективной и безопасной дезинвазии средством КЕ-НОКОКС для уничтожения имеющихся ооцист эймерий.
В производственном испытании эффективность КЕНО-КОКС 4%-ного против ооцист кокцидий птиц устанавлива-
Зоотехнические показат
ли опытным путем с искусственной закладкой оо-цист на контрольные площадки по сравнению с базовым препаратом фенолом 4%-ным при экспозиции 2 часа. В силу особенности строения ооцист кокцидий, которые по-крыты плотной 2-3 слойной защитной оболочкой ( Рис.2.) и, в отличие от микроорга-низмов и яиц гельминтов, практически невозможно по внешнему виду и путем окрас-ки определить насколько губительно воздействовал препарат для дезинвазии. С этой целью поставлена биопроба на цыплятах. Общее поголовье цыплят-бройлеров кросс КОББ - 34 тыс. На 10-й день после посадки цыплят проводили выборочный отбор 20 проб помета и их исследовали на наличие ооцист. По результатам исследований все пробы помета были свободны от ооцист эймерий.
На 14-й день после посадки для биопробы по оценке действия КЕНОКОКС и базового препарата фенола на ооцисты кокцидий в условиях птичника были отобраны 30 цыплят, которых подвергали индивидуальному взвешиванию, нумерации, раздели-ли на три группы по 10 в каждой и содержали в клетках изолированно по группам.
Цыплята первой группы, которым задавали суспензию ооцист эймерий, обрабо-танной на опытной площадке 4%-ным раствором КЕНОКОКС имели на 14-й день среднюю массу тела 398,2 г. Живая масса цыплят второй группы, получавшей суспен-зию ооцист, обработанной базовым препаратом фенолом равнялась 365 г. Живая масса цыплят группы зараженного контроля на день начала опыта в среднем составила 369, 2 г.
Данные зоотехнического учета представлены в таблице
1.
Таблица 1
и на 14 сутки выращивания
Показатели Птичник
Опытный (КЕ-НОКОКС) Контрольный
Падеж (с 7 по 14 сутки), гол 130 189
Выбраковка (с 7 по 14 сутки), гол 0 0
Фактическое поголовье на 14 сутки 32243 32258
Сохранность с суточного возраста План 97
Отчет 98,9 98,7
Средний вес одной головы, г План 456
Отчет 398,2 г 369, 2
Расход корма на птичник (с 7 по 14 сутки), кг 11960 12170
Расход воды, л 24620 23650
Произведено привеса (с 7 по 14 сутки), кг 8030 7940
Конверсия корма на привес и рост, кг/кг План 1,34
Отчет 1,43 1,47
Однородность, % 76 75
Наблюдения за общим состоянием опытных цыплят после назначения суспен-зии ооцист эймерий, обработанной 4%-ным раствором КЕНОКОКС и фенола, а также чистой культурой спорулированных ооцист проводили по данным ежедневных кли-нических наблюдений. На основании этих наблюдений в течение 36 часов после назначения у цыплят было угнетенное состояние, они оставались малоактив-
ными, за-бивались в кучу, что, скорее всего, было вызвано стрессом, обусловленным отловом, взвешиванием и заражением путем дачи ооцист эймерий. Следует отметить, что осложнений при назначении суспензии с ооцистами и после него не было отмечено. С конца второго дня после назначения суспензии ооцист, обработанной КЕНОКОКС, фенолом
и чистой культурой спорулированных ооцист цыплята разных групп не отли-чались друг от друга.
Второе индивидуальное взвешивание опытных и контрольных цыплят прово-дили через 12 суток после назначения суспензии ооцист. Данные взвешиваний показа-ли, что цыплята 1-й группы, получавшие суспензию ооцист, обработанной КЕНО-КОКС, имели средний прирост к исходной массе тела 807,8 г, что составляет 302,9% (Р<0,05). Цыплята второй группы, получавшие суспензию ооцист, обработанную фе-нолом, имели средний прирост к исходной массе тела 702 г. или 292,3%. Тогда как цыплята 3-й контрольной группы, получавшие чистую культуру спорулированных оо-цист, имели средний прирост к исходной массе тела 691,6 г, что составляет 287,3% (Р>0,05). Результаты проведенных взвешиваний дают нам основание предположить, что у цыплят 1-й группы, получавших суспензию ооцист, обработанную КЕНОКОКС, было наименьшее отрицательное влияние эймериоза на прирост массы тела по сравне-нию с контрольной группой. Так, прирост массы тела у цыплят первой группы за 12 суток опыта был на 116,2 г или 15,6% больше по сравнению с зараженным контролем (Р<0,05). Безусловно, у цыплят зараженного контроля эймериозная инвазия протекала интенсивно и оказала свое влияние на основной продуктивный показатель молодняка - прирост массы тела. Хотя основным и прямым показателем наличия инвазионного процесса у цыплят были данные наших исследований по определению количества вы-деляющихся с пометом ооцист, и они подтвердили наши предположения. За время производственного испытания КЕНОКОКС, падежа от кокцидиоза в опытных груп-пах цыплят не отмечено.
При исследовании собранных с 6 по 12-е сутки после дачи ооцист помета из разных групп цыплят были выделены ооцисты, но их количество заметно отличалось. Так, при исследовании цыплят 1-й группы, которым назначали суспензию ооцист, об-работанную 4%-ным раствором КЕ-НОКОКС, ооцист эймерий в помете находили во все сроки исследований в количестве от 1 до 5 экз., а среднее количество в одной ка-мере за все исследования составило 3,2 экз. Количество ооцист в 1 г исследуемого по-мета составило 640 экз., что в проценте от зараженного контроля -2,37.
При исследовании проб помета от цыплят 2-й группы, которым давали суспен-зию ооцист, обработанную 4%-ным раствором фенола (базовый препарат) ооцист в камере находили во все сроки исследований (с 1-го по 7-й день) в количестве от 14 до 73 в камере и средний показатель в одной камере за период исследований составил 48,4. Количество ооцист в 1 г исследуемого помета от цыплят второй группы состави-ло 9680 экз. или в проценте от зараженного контроля 35,96.
Цыплята 3-й группы, которым задавали по 2000 спору-лированных ооцист/мл во все сроки исследования с пометом выделяли ооцисты эймерий в количестве от 86 до 342, а средний показатель в 1-й камере за период исследований составил 134,6 экз. Ко-личество ооцист в 1г помета по дан-
ной группе зараженного контроля составило 26920 и этот показатель нами использовался как исходный при расчете снижения количества ооцист или интенсэффективности использованных в производственном испытании.
Интесэффективность дезсредства КЕНОКОКС в 4%-ной концентрации (процент сни-жения ооцист после воздействия на них средством) вычисляли по следующей формуле: _ КОк-КОд
ИЭ КОк х 100, где ИЭ - интенсэффективность препарата,%, КОк - количество ооцист у цыплят контрольной группы, КОд - количество ооцист у цыплят, получавших обработанные дезинфектантом ооцисты.
Используя полученные нами данные, вычисляли интен-сэффективность КЕНО-КОКСА
^ _ 26920-640
26920 хЮ0=97,62% Интенсэффективность фенола в 4%-ной концентрации вычисляли так:
_ 26920-9680
х100=64,04%
Полученные результаты показали, что КЕНОКОКС в испытанной 4%-ной кон-центрации в дозе 0,4 л на 1 кв. м., экспозиция 2 часа в условиях производства, оказался высокоэффективным средством для дезинвазии против ооцист кокцидий птиц, ин-тенсэффективность составила 97,62±1,64%. Тогда как эффективность базового препа-рата фенола 4%-ного равнялась 64,04±5,65%.
«РАБОС Интернешнл» ООО, официальный представитель CID LINES NV в России, после совместно проведенных исследований с ГНУ ВИГИС, рекомендует применять данное средство во время санитарного разрыва при стандартной процедуре подготовки птичника. КЕНОКОКС в своем составе содержит третичные амины, по-верхностно активные вещества, и др. вспомогательные вещества, без содержания фе-нолов и имеет пенную формулу. Использование рекомендованной 4%-ной концентра-ции дезинфек-танта, позволяет получить стойкую пену, которая визуализирует процесс обработки и увеличивает время контакта с вертикальными поверхностями, исключая ошибки персонала (Рис. 4). После обработки КЕНОКОКС не нужно смывать, так как он не токсичен и безопасен для людей и птицы.
Запатентованная формула, используемая при производстве дезинфектанта КЕ-НОКОКС, позволяет уничтожить ооцисты кокцидий во внешней среде, а значит пол-ностью искоренить кокцидии во внешней среде. КЕНОКОКС воздействует на внеш-нюю и наружную оболочку ооцисты кокцидии, нарушая ее целостность, т.е. происхо-дит разрушение спорулированных ооцист и вытеснение внутриклеточных (низкомоле-кулярного) материала с автолизом ферментов ооцист.
Рис.3. Схема строения ооцисты
1 - полярная шапочка, 2 - микропиле, 3 - наружная оболочка, 4 - внутренняя оболочка, 5 - полярная гранула, 6 - шти-довское тельце, 7 - спора, 8 - спорозоит, 9 - ядро спорозоита, 10 - полярное тельце спорозоита, 11 - остаточное тело споры, 12 - остаточное тело ооцисты. [9].
Рис. 4. Обработка опытного птичника КЕНОКОКС.
В результате кокцидии погибают во внешней среде. КЕ-НОКОКС эффективен даже при высокой жесткости воды и наличии остаточного загрязнения, а комплексная санитарная программа, разработанная совместно компаниями CID LINES NV (Бель-гия) и РАБОС Интернешнл (Россия), по подготовке помещений для содержания и вы-ращивания птицы, поможет поднять уровень ветеринарно-санитарной безопасности на максимально высокий уровень. Дезинва-зию необходимо проводить при подготовке птичников, перед применением схем вакцинации против кокцидиоза или назначением кокцидиостатиков. КЕНОКОКС снижает риски от возникновения кокцидиоза и ис-ключает возможность горизонтальной передачи заражения от взрослого поголовья к молодняку, что в конечном итоге позволит значительно сохранить прибыль за счет повышения конверсии корма, улучшения иммунного статуса и здоровья птиц и сокра-щения не предвиденных расходов на лечение птицы, иными словами предупредить ущерб от недополученной продукции.
Выводы и предложения
В производственных условиях птицеводческого хозяйства Московской области испытан КЕНОКОКС против ооцист кокцидий птиц, который при 4% рабочей концентрации и 2 часовой экспозиции, при норме расхода 0,4л/м 2, показал 97,62%-ную интенсэффективность, а эффективность базового препарата фенола составила 64,04%.
Список использованной литературы
1. Акбаев М.Ш. и др. Паразитология и инвазионные болезни животных. - М., 1998. 743с.
2. Вершинин И.И. Кокцидиозы животных и их дифференциальная диагностика. - Екатеринбург, 1996. -264с.
3. Dambre L., International Poultry Production. Earn money by battling subclinical coccidiosis - volume 19, Number 4. 2012. Р. 15-17.
4. Колабский Н.А., Пашкин П.И. Кокцидиозы сельскохозяйственных живот-ных.-Л., 1974.-159с.
5. Кириллов А.И. Кокцидиозы птиц - М.: типография Россельхозакадемии, 2008. - 78 с; 109 с.
6. Крылов М.В. Определитель паразитических простейших. — СП, Зоологиче-ский институт РАН, 1996. -693с.
7. Levine.N.D. Protozoan parasites on dome^ic animals and men /N.D. Levine - Bur-geness. Minneapolis, 1961. - P. 213.
8. Макаров В.В., Сухарев О.И., Коломыцев А.А. Ветеринарная эпидемиология pacпpocтраненных инфекций: состояние и тенденции // Ветеринарная патология. 2009. N°1. С. 15-20.
9. Методические положения по борьбе с эймериозом цыплят при разной техно-логии их выращивания в центральной зоне России. -М., 2012.- 20с.
10. Методические рекомендации по оценке антгель-минтиков в ветеринарии. -М., 1986.-46с.
11. Методические рекомендации по борьбе с эймерио-зами и изоспорозами жи-вотных. - М., 1994., РЛСХН. - 30с.
12. Машковский М.Д. Лекарственные средства. - М., 1993. -685с.
13. Сафиуллин Р.Т., Забашта А.П. Эффективность и экономичность монлара, кокцисана и элонкограна при эй-мериозе цыплят // Труды ВИГИС. — М., 2002. - Т. 38. - С. 30-35.
14. Сафиуллин Р. Т., Нифонтова Т. А. Кокцидиозы пушных зверей // Ветерина-рия. - М., 2009. -N°3. - С. 30-35.
15. Черепанов А.А. Методические рекомендации по испытанию средств дезин-вазии в ветеринарии. - М., 1999. -16с.
3. Агропромышленный комплекс Владимирской области.- Влади-мир, Департамент сельского хозяйства и продовольствия администрации Владимирской области, 2016.
