CC BY
23
У. Р. Мирзакулова, Г. А. Агибаева
С.Ж. Асфендияров атындагы К,азац ¥лттыцмедицинаyHueepcumemi хирургиялыц стоматология кафедрасы.
АЛЬВОЖИЛ ЖАЦПАСЫН ЦОЛДАНЫП Т1С ¥ЯШЫГЫ АЛЬВЕОЛИТГНЩ ЕМДЕУ НЭТИЖЕЛЕР1.
ТYЙiн: "Альвожил" жак;пасы мен Пинелис жа^пасыныц KeMeriMeH Tic уяшыгы альвеолитiнiц емше салыстырмалы бага бершдь Альвожилдiц ауруды басатын жэне ;абынуга ;арсы scepi бай;алады, бул оны Tic уяшыгыныц альвeолитiн емдеуге усынуга мYмкiндiк бepeдi.
ТYЙiндi сездер: Tic уяшыгы альвeолитi, Tic уяшыгы альвeолитiн емдеу, Альвожил жа;пасы.
U.R. Mirzakulova, G.A. Agibaeva
Asfendiyarov Kazakh National medical university department of surgical dentistry
THE RESULTS OF THE TREATMENT OF ALVEOLITIS OF THE TOOTH HOLE USING ALVOGYL PASTE.
Resume: A comparative evaluation of the treatment of the alveolitis of the teeth of the tooth with the help of paste "Alvogyl" and Pinelis paste. A more pronounced analgesic and anti-inflammatory effect of Alvozil was noted, which allows recommending it for the treatment of alveolitis of the teeth.
Keywords: tooth alveolitis, treatment of tooth alveolitis, Alvogyl paste
УДК 616.314.18-002.4-089.843:612.014.2
У.Р. Мирзакулова, В.П. Русанов, Е.А. Борiхан
Казахский Национальный медицинский университет имени С.Д. Асфендиярова Кафедра хирургической стоматологии
КЛИНИКО-РЕНТГЕНОЛОГИЧЕСКОЕ ОБОСНОВАНИЕ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ НОВОГО КОМПОЗИТНОГО МАТЕРИАЛА В ХИРУРГИЧЕСКОМ ЛЕЧЕНИИ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОГО ПАРОДОНТИТА
Изучена клинико-рентгенологическая картина течения репаративного остеогенеза на полученной модели экспериментального пародонтита у кроликов с пластикой послеоперационной костной полости композитным трансплантатом на основе костного коллагена, нанагидроксилапатита.
Ключевые слова: Экспериментальный пародонтит, костный коллаген, гидроксилапатит, стволовые клетки, репаративнаяренерация
Введение. Хирургическое лечение костных дефектов, возникающих в результате воспалительно-деструктивных процессов в тканях пародонта, является одним из основных методов лечения данной патологии [1]. При этих заболеваниях процессы репаративного остеогенеза протекают в большинстве случаев в условиях непрерывно текущего хронического воспалительного процесса на фоне резко нарушенной микроциркуляции, что приводит к значительному снижению остеорепаративной функции костной ткани [1,2]. В качестве оптимизаторов репаративной регенерации используются различные остеопластические материалы, обладающие выраженными остеоиндуктивными свойствами, слабой антигенностью, пластичностью и устойчивостью к инфекции[3,4]. В современной регенеративной медицине продолжается поиск и разработка новых материалов для заполнения костных дефектов, которые бы отвечали всем требованиям. В Республике Казахстан сотрудниками Института проблем горения и кафедры стоматологии КазМУНО был синтезирован нанокристаллический гидроксиапатит из яичной скорлупы. Авторами показано, что размер частиц наногидроксипапатита составляет 150 нм, является однофазным и термически стабильным с высокой пористостью, содержание ГАП составляет более 97%.Этот
искусственно синтезированный материал полностью
аналогичен натуральному гидроксиапатиту[5,6].
Целью работы явилось изучение эффективности
использования нового композитного материала на основе
отечественного наногидроксиапатита при пластике краевых
дефектов альвеолярного отростка кролика.
Задачи:
1.Создать экспериментальный локальныйпародонтит у кроликов.
2.Разработать новый трансплантационный материал на основе отечественного нанокристаллического гидроксилапатита и костного коллагена.
3.Изучить в динамике клинико-рентгенологическую картину заживления краевого дефекта альвеолярного отростка при его пластике разработанным трансплантатом. Материалы и методы исследования:
Начальный этап нашего исследования заключался в получении экспериментального пародонтита. Для этой цели кроликам под внутривенным наркозом 2% раствором Рометара и инфильтрационной анестезией 2% раствора лидокаина вокруг шеек центральных резцов нижней челюсти фиксировались лигатуры из танталовой проволоки диаметром 0,2 мм (рисунок 1).
ЮеиЫ1к ХажМММ №1-2019
Рисунок 1 - Наложены проволочные лигатуры на шейки центральных резцов нижней челюсти кролика
Кролики были разделены на две группы по 9 животных (контрольная и подопытная). Спустя две недели после наложения проволочных лигатур на шейки центральных резцов у всех кроликов отмечалась картина локального пародонтита, выражающаяся наличием над- и поддесневого зубного налета. Слизистая оболочка десны в области нижних резцов была отечной и гиперемированной. При
пальпации в области маргинального края наблюдалась выраженная кровоточивость десны и незначительное выделение гноя из пародонтальных карманов. Средняя глубина карманов в области резцов составляла 3-4 мм. Подвижность центральных резцов в зоне полученного экспериментального пародонтита I степени (рисунок 2).
Рисунок 2 - Картина развившегося локального пародонтита кролика
Под внутривенным наркозом 2% раствором Рометара и инфильтрационной анестезией 2% раствора лидокаина удалялись проволочные лигатуры. С помощью пародонтологического набора инструментов LM 6840 XSi проводился тщательный кюретаж пародонтальных карманов с вестибулярной и язычной поверхностей алвеолярных отростков нижней челюсти, а затем осуществлялся разрез по десневым сосочкам центральных
резцов в области воспроизведенного пародонтита. С вестибулярной и язычной поверхностей альвеолярного отростка отслаивались слизисто-надкостничные лоскуты на максимальную глубину пародонтальных карманов С помощью окончатой фрезы диаметром 2мм формировался костный дефект в межкорневой перегородке центральных резцов нижней челюсти кролика (рисунок 3).
Рисунок 3 - Сформированный костный дефект с вестибулярной поверхности альвеолярного отростка кролика
После промывания раны антисептиками костный дефект в контрольной группе животных заполнялся биокомпозитом на основе отечественного кристаллического гидроксилапатита ТОО «ЮКОК» и отечественного костного
коллагена ТОО «Н.П.П. «Антиген», приготовленного при смешивании их в равных весовых пропорциях на крови, полученной из ушной вены кролика (рисунок 4,5) и
закрывался колагеновой мембраной, полученной в ТОО
«Н.П.П. «Антиген» (рисунок 6,7).
Рисунок 4 - На предметном стекле гидроксилапатит, костный коллаген и кровь кролика
Рисунок 5 - Приготовленный биокомпозит для пластики дефекта в контрольной группе животных
Рисунок 6 - Костный дефект заполнен композитом и закрыт коллагеновой мембраной ТОО «Антиген»
Рисунок 7 - Коллагеновая
Слизисто-надкостничные лоскуты с обеих поверхностей альвеолярного отростка укладывались на место и ушивались швами из викрила. В подопытной группе кроликов все основные этапы операции соответствовали таковым в контрольной группе животных, за исключением
1а ТОО «Н.П.П. «Антиген»
использования композитного материала, отличающегося от биокомпозита, применяемого в контрольной группе тем, что в него вместо кристаллического гидроксилапатита ТОО «ЮКОК вводился наногидроксиапатит (рисунок 8).
Vestnik KazNMU №1-2019
Рисунок 8 - Наногидраксилапатит и кровь кролика перед приготовлением композитного трансплантата
в подопытной группе животных
Клинические наблюдения послеоперационного периода в обеих группах животных показали, что спустя сутки после оперативного вмешательства в области травмы определялся умеренный отек мягких тканей, который постепенно увеличивался и достигал максимальных размеров к третьим суткам. Затем послеоперационный отек мягких тканей постепенно уменьшался и полностью исчезал в обеих экспериментальных группах к 9 суткам. Послеоперационные раны в обеих группах животных зажили первичным натяжением на 10 сутки. Под внутривенным введением 2% раствора Рометара в количестве 6 мл выведены из опыта 9 кроликов контрольной и 9 кроликов подопытной групп (по 3 животных на каждый срок наблюдения). С помощью скальпеля и бормашины вычленены фрагменты нижней челюсти кролика в ее фронтальном отделе. Все 18 фрагментов помещены в 10%забуференный раствор формалина. С помощью цифрового рентгенаппарата -MyRay RXDC еХТе^ производства Италий в стоматолической клинике ИеМ, ТОО »Бану» проведены рентгеновские снимки и записаны на диске. Результаты исследования. Клинические наблюдения послеоперационного периода в обеих группах животных показали, что спустя сутки после оперативного
вмешательства в области травмы определялся умеренный отек мягких тканей, который постепенно увеличивался и достигал максимальных размеров к третьим суткам. Затем послеоперационный отек мягких тканей постепенно уменьшался и полностью исчезал в обеих экспериментальных
группах к 9 суткам. Послеоперационные раны в обеих группах животных зажили первичным натяжением на 10 сутки.
Рентгенологические исследования, проведенные нами в различные сроки после операции, позволили в динамике проследить регенерационные процессы в области образованного дефекта в зоне экспериментально воспроизведенного пародонтита.
Через 15 суток после операции в контрольной группе животных определяются еще сравнительно четкие контуры посттравматического дефекта округлой формы диаметром 2 мм (рисунок 8). Спустя 15 суток после операции в подопытной группе кроликов определялись нечеткие контуры дефекта за счет остеопороза материнской кости в виде сравнительно узкой полоски, а в дефекте кости определялись хорошо выраженные тени неправильной формы, что характерно для новообразованного регенерата (рисунок 9).
Я m
А
Рисунок 8 - Рентгенограмма макропрепарата фрагмента нижней челюсти кролика. Контрольная группа. 15 суток после операции
Рисунок 9 - Рентгенограмма макропрепарата фрагмента нижней челюсти кролика. Подопытная группа. 15 суток после операции
В контрольной группе животных спустя 30 суток после операции костный дефект прослеживается еще
сравнительно четко на всем протяжении и только в периферической зоне послеоперационной костной полости
определяется тень новообразованного костного регенерата с низкой плотностью и структурированностью (рисунок 10). У подопытных же животных к 30 суткам
послеоперационный костный дефект значительно уменьшился в размере. Контуры костной полости
становились нечеткими за счет полосы новообразованного регенерата, прорастающего со стороны материнской кости. Плотность тени постепенно снижалась в направлении от периферии к центру (рисунок 11).
Рисунок 10 - Рентгенограмма макропрепарата нижней челюсти кролика. Контрольная группа 30 суток после операции
Рисунок 11 - Рентгенограмма фрагмента нижней челюсти кролика. Подопытная группа 30 суток после операции
Через 3 месяца в контрольной группе кроликов дефект сократился в размере за счет интенсивной тени новообразованной костной ткани в периферических ее отделах. В остальной части бывшей костной полости тень регенерата еще сравнительно низкой плотности (рисунок
12) К 90 суткам у подопытных животных определить место бывшего дефекта не представлялось возможным. На протяжении предсуществующего дефекта определялась зрелая костная ткань (рисунок 13).
Рисунок 12 - Рентгенограмма макропрепарата нижней челюсти кролика. Контрольная группа 90 суток после операции
Vestnik KazNMU №1-2019
Рисунок 13- Рентгенограмма макропрепарата фрагмента нижней челюсти кролика. Подопытная группа. 90 суток после операции
Заключение. Таким образом, клинические наблюдения послеоперационного периода в обеих группах животных не выявили каких либо значимых различий. Результаты рентгенологического исследования показали, что более интенсивная репаративная регенерация в
послеоперационной костной полости наблюдалась в подопытной группе животных, где костный дефект заполнялся композитным материалом на основе отечественного наногидроксилапатита и костного коллагена. В этом случае зрелая костная ткань была сформирована к 90 суткам от начала эксперимента. В контрольной же группе кроликов, спустя 90 суток после
создания костной полости и пластики ее биокомпозитом на основе костного коллагена и гидроксилапатита фирмы ЮКОК, регенераторный процесс к этому сроку еще далек от завершенности.
Выводы. Таким образом, на основании результатов экспериментального исследования можно сделать заключение, что использованный нами метод оптимизации заживления краевого костного дефекта при экспериментальном локальном пародонтите у кроликов с применением наногидроксиапатита оказывал выраженный лечебный эффект, что доказано проведенными рентгенологическими исследованиями.
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1 Мусиенко А.И., Мусиенко С. И., Кушнир Д.В., Мусиенко А.А. Комплексный подход к планированию лечения заболеваний пародонта фактором роста // Стоматология Казахстана. - 2014. - №3-4. - С. 67-68.
2 Сорокина, М. А. Разработка и оценка эффективности показаний к хирургическим методам лечения заболеваний пародонта: Дис... канд.мед.наук - Воронеж, 2012. - 170 с.
3 Модина Т.Н., Вольвач Ю.Ю., Кащеев Б.В., Петрук А.В., Бабусенко Л.В. Комплексное лечение пациентов с генерализованным пародонтитом // Клиническая стоматология. - 2015. - №2. - С.14-17.
4 Бисултанов Х.У. Сравнительная эффективность применения отечественных костнопластических материалов при лечении пародонтита: Автореф. дисс. . канд. мед. наук - Саратов, 2013. - 24 с.
5 Темирбаев М.А., Елемесова Ж.К., Бодыков Д.У., Дабынов Б.М., Алиев Е.Т., Мансуров З.А. Получение нанокристаллическогогидрококсиаппатита из природных ресурсов для регенерации костной ткани // VIII международный симпозиум «Физика и химия углеродных материалов/наноинженерия». - Алматы: 2015. - С.171-172.
6 Досматова К.Р., Темирбаев М.А., Мансуров З.А., Даулбаев Ч.Б. Сравнительный анализ нанокристаллического гидроксиапатита и его аналогов различного производства // Вестник АГИУВ. - 2018. - №3. - С. 51-55.
У.Р. Мирзакулова, В.П. Русанов, Е.А. Бор1хан
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬДЫ ПАРОДОНТИТТ1 ХИРУРГИЯЛЬЩ ЕМДЕУДЕ ЖАЦА КОМПОЗИТТ1 МАТЕРИАЛДАРДЫ ПАЙДАЛА ОТЫРЫП КЛИНИКА-РЕНТГЕНОЛОГИЯЛЬЩ К6Р1Н1С1Н ДЭЛЕЛДЕУ
ТYЙiн: Кояндарда экспериментальды ша;ырылган пародонтмтчц репаративтж остеогенезш багалау ма;сатында операциядан кешнп куысты нанокристалдыгидроксилапатит жэне суйек коллагеш непзшдеп композитпен трансплантациялау кезшде клиникалы;-рентгенологиялы; кершган зерттеу.
ТYЙiндi сездер: Эксперименттж пародонтит, суйек коллагеш, нанокристалды гидроксилапатит, баганалы жасушалар, репаративтжрегенерация.
U.R. Mirzakulova, V.P. Rusanov, Y.A. Borikhan
CLINICAL AND RADIOLOGICAL RATIONALE FOR THE USE OF A NEW COMPOSITE MATERIAL IN THE SURGICAL TREATMENT OF EXPERIMENTAL PERIODONTITIS
Resume: The clinical and X-ray picture of the reparative osteogenesis was studied on the obtained model of experimental periodontitis in rabbits after postoperative bone cavity grafting with a composite graft based on bone collagen, nano-hydroxylapatite. Keywords: Experimental periodontitis, bone collagen, hydroxylapatite, stem cells, reparative regeneration
