CC BY
1
Научная статья УДК 636.7
10.47737/2307-2873_2024_48_91
КЛИНИЧЕСКИЕ ПРИЗНАКИ ПАСТЕРЕЛЛЕЗА МЯГКИХ ТКАНЕЙ У СОБАКИ, ВЫЗВАННОГО PASTEURELLA САМ8 (КЛИНИЧЕСКИЙ СЛУЧАЙ)
©2024. Анастасия Сергеевна Метлева1, Анна Вячеславовна Семечкова2
12Кузбасский государственный аграрный университет им. В.Н. Полецкого 12\с^кг',таП. гц
Аннотация. Результатом работы является установление клинических признаков, гематологических данных и диагностической оценки при традиционном микробиологическом методе исследования кожной формы пастереллеза, вызванной Pasteurella сатъ. Несмотря на то, что Р. canis является необычным этиологическим агентом кожной инфекции, изучение Р. сат5, как возбудителя кожной инфекции имеет значение в микробиологической диагностике в инфекционной патологии. В ветеринарную клинику Кузбасского ГАУ «Академическая ветеринарная помощь» обратились с жалобой на множественные кожные абсцессы у собаки. Других жалоб у владельца не было. Пальпацией абсцессов установлено, что они не вызывают болезненности. При вскрытии абсцессов установлен белый творожистый экссудат. С целью диагностики причины кожных новообразований содержимое абсцесса было направлено в НИЛ «Биохимических, молекулярно-генетических исследований и селекции сельскохозяйственных животных» Кузбасского ГАУ для гематологического и микробиологического исследования. При микроскопии содержимого абсцессов обнаружены грамположительные кокки, расположенные единичными клетками хаотично. Гематологический анализ показал превышение лейкоцитов на 6,5*1012/л клеток. На плотных питательных средах Сабуро и желточно-молочно-солевой агаре Pasteurella canis растет в виде слизистых колоний, крупных, с неровными краями, при снятии с поверхности агара колония тянется за бактериологической петлей. При микроскопии культуры, выращенной на плотной питательной среде, установлены крупные грамотрицательные, капсулообразующие микроорганизмы, расположенные в мазке одиночно, попарно или небольшими скоплениями. Комплексное лечение с применением антибиотика энрофлоксацина, иммуномодулирующих и витаминных препаратов дает стабильный положительный лечебный эффект при локальных кожных инфекциях, вызванных Pasteurella canis.
Ключевые слова: абсцессы, собака, инфекция кожи, пастереллез, PasteureПa canis, микробиология, гематология
Введение. Несмотря на то, что Pasteurella canis является редко регистрируемой инфекцией у собак, она является новым патогеном, который становится все более актуальным в этиологии патологий животных и человека [7].
Микроорганизмы рода Pasteurella являются возбудителями инфекционных болезней у животных и человека. В 1985 году род Pasteurella подвергся таксономической реклассификации на основе ДНК-гибридизации, в результате чего появилось несколько подвидов Р. тиЬо^а и пять новых видов, Р canis, Р stomatis, Р dagmatis, Р апай8, Р 1а^аа. Виды Pasteurella представляют собой
небольшие грамотрицательные
коккобактерии. Микроорганизмы
неподвижные, не кислотостойкие, эндоспоры не образуют, аэробные, микроаэрофильные или факультативно-анаэробные,
хемогетеротрофы с окислительным и ферментативным типами метаболизма, оксидазоположительные, каталазные пробы положительные. Оптимальная температура роста представителей составляет 35°С-37°С, производят кислоту из Б-глюкозы, Б-галактозы, Б-фруктозы, Б-маннозы и
сахарозы, не разлагают адонитол, мезо-инозитол, Ь-рамнозу и Ь-сорбозу. Являются частью нормальной флоры здоровых
домашних животных, обитающей в ротовой полости, носоглотке или кишечнике домашних животных, чаще всего собак и кошек [1, 2, 14]. P. canis, являясь нормальным обитателем ротовой полости собак и кошек, связана с раневыми инфекциями человека после укусов собак. Установлены случаи культивирования патогенных штаммов как для животных, так и для людей [4, 11, 12].
Эпизоотологические данные. Заражение пастереллой может происходить тремя путями:
1. После укусов животных, обычно от собак или кошек. Инфекция после укусов животных является наиболее часто регистрируемой клинической ситуацией. В дополнение к укусам, заражение Pasteurella также было зарегистрировано после царапин собак и кошек и от зализывания открытых ран этими животными. Существует упоминание о случае бактериемии P. canis, предположительно возникшем в результате облизывания собакой открытой раны ноги пациента с циррозом.
2. Контакт с другими животными;
3. Инфекция при отсутствии известных контактов с животными. Задокументированы случаи заражения без ясного источника, которые, как полагают, являются результатом облизывания раны животными или вдыхания микроорганизмов с пылевыми частицами.
Культивирование. P.canis является аэробным и факультативно-анаэробным грамотрицательным, капсулообразующим микроорганизмом с биполярным
окрашиванием. Он хорошо растет на кровяном агаре, образуя гладкие мукоидные колонии; на триптическом соевом агаре (TSA) с 5% овечьей крови (Becton Dickinson, Нью-Джерси, США) в аэробных условиях с 5% CO2, при 36±1 С образует бело-сероватые колонии, идентифицированные как Pasteurella spp [12] на пластинах кровяного агара в виде небольших гладких колоний по сравнению с колониями P. multocida [8].
Клинические признаки. Инфекции, вызванные микроорганизмом рода Pasteurella, имеют 3 клинические формы:
1. Местная инфекция мягких тканей (абсцесс, целлюлит и лимфангит после укусов и/или царапин животных.
2. Инфекция дыхательных путей. Возникает в результате попадания
возбудителя в респираторный тракт воздушно-пылевым путем передачи возбудителя.
3. Системная инфекция.
Наиболее распространенными формами пастереллеза, вызванного Р. canis, являются местные раневые инфекции.
Зарегистрированы случаи различных типов глазных инфекций, таких как: конъюнктивит, кератит, периокулярный абсцесс,
периокулярный целлюлит и
эндофтальмит. Кроме того, возбудитель вызывает инфекцию мягких тканей и раневую инфекцию, при этом проявления варьируются от инфекций кожи или мягких тканей до менингита или септицемии. Существует предположение, что септицемия и другие серьезные инфекции связаны только с подвидом Р. тиЬо^а. Но существует клинический случай бактериемии у человека, вызванной Р. canis. В отличие от целлюлита, остеомиелит является редким осложнением после укусов собак и кошек. Зарегистрирован случай полиартрита у жеребенка, вызванного Р. canis. Установлены случаи культивирования P. canis от трупов новорожденных щенков с признаками септицемии [4, 6]. У человека наблюдалась клиническая картина с атипичной пневмонией, вызванная
атипичными подвидами PasteureПa, на фоне приема иммуномодулирующих препаратов [9].
Патогенез. Пастереллезные инфекции возникают в течение нескольких часов после внедрения возбудителя (после царапины или укуса домашнего животного).
Прогрессирование заболевания происходит быстро, в первые несколько дней. Виды PasteureПa часто выступают в качестве условно-патогенного возбудителя у пациентов с ослабленной иммунной системы организма. Инокуляция Р. canis также может происходить в составе смешанной инфекции с другими организмами [5]. Инфекция поражает дыхательные пути. Ухудшение симптомов, связанных с затруднением дыхания, проявлялось через 3-4 дня после первоначального появления клинических признаков. При аускультации легких регистрируются диффузные хрипы, плевральные боли, продуктивный кашель и плевральный выпот, которые видны при рентгенологическом исследовании [3].
У Pasteurella spp. описано несколько факторов вирулентности:
1. Полисахаридная капсула.
2. Токсины. Например, нуклеаза,
которая приводит к старению клеток, апоптозу и геномной нестабильности, что способствует инициации и прогрессированию опухоли [13].
Лечение. Большинство травм от укусов животных можно лечить пероральными противомикробными препаратами в амбулаторных условиях. Тяжелые инфекции могут потребовать госпитализации и парентерального введения противомикробных препаратов, а также хирургического вмешательства. При более тяжелых инфекциях может потребоваться парентеральное введение антибиотиков. Для локальной формы пастереллеза рекомендуется правильная антибиотикотерапия. Пенициллин или ампициллин являются препаратами выбора при пастереллезных инфекциях. Несколько десятилетий клинического опыта лечения пастереллеза и многочисленные исследования in vitro показывают, что пенициллин является лучшим противомикробным средством для лечения практически всех форм инфекции. Альтернативные лекарства включают амоксициллин-клавулановую кислоту,
тетрациклин, цефалоспорин и левомицетин. Пероральные цефалоспорины, цефуроксим и цефиксим вместе с парентеральными препаратами, включая цефтриаксон и цефоперазон, демонстрируют отличную активность in vitro и, вероятно, являются хорошими заменителями пенициллина. Среди нелактамных антибиотиков к средствам, обладающим активностью in vitro, относятся тетрациклины, фторхинолоны, левомицетин и триметоприм-сульфаметоксазол. С другой стороны, виды Pasteurella устойчивы к диклоксациллину, цефалексину, цефадору, цефадроксилу, эритромицину и элиндамицину
[5].
При исследовании чувствительности микроорганизмов рода Pasteurella методами in vitro установлено, что фторхинолоновые и Р-лактамные антибиотики являются наиболее эффективными методами лечения подвидов Pasteurella и что цефалоспорины, тетрациклин и левомицетин второго и третьего поколений являются подходящими альтернативами в случаях аллергии на пенициллин [1].
Устойчивость к противомикробным препаратам среди изолятов рода Pasteurella регистрируется редко. Чаще всего устойчивость регистрируется к
тетрациклинам, эритромицину и пенициллину. Пенициллин-резистентные штаммы были
выделены только при инфекции дыхательных путей. Внутривенное введение ампициллин-сульбактама, тикарциллин-клавуланата,
пиперациллинтазобактама, цефокситина и карбапенемов (имипенем-циластатин,
меропенем, эртапенем) являются вариантами лечения инфицированных ран от укусов животных. При аллергии на пенициллин можно применять миноциклин, доксициклин, фторхинолоны, триметоприм-
сульфаметоксазол или азитромицин [10].
Целью данного исследования является детализация клинической картины и микробиологических и гематологических данных, связанных с новым возбудителем инфекции кожи у собаки, включающая в себя: установление клинических признаков; изменение гематологических данных; микробиологическую оценку биологического материала от собаки (окраска по Граму, рост на питательных средах); подбор антибактериальных препаратов для эффективного лечения; проведение терапии и учет ее результатов.
Методика. Больное животное поступило в ветеринарную клинику Кузбасского ГАУ «Академическая ветеринарная помощь». Определение клинических признаков осуществлялось методом осмотра. Вскрытие содержимого абсцессов производилось стерильным скальпелем после обработки кожи дезинфицирующими средствами. Содержимое абсцессов отбиралось стерильным тупфером в пробирку со стерильным физраствором.
Кровь для гематологического исследования брали из подкожной вены предплечья с соблюдением всех правил асептики и антисептики в вакуумную пробирку с ЭДТА.
Гематологические и
микробиологическое исследования
проводились в НИЛ «Биохимических, молекулярно-генетических исследований и селекции сельскохозяйственных животных» Кузбасского ГАУ. Исследования на гематологию выполнили на автоматическом анализаторе АВАХК.
Из биоматерала делали мазок, окрашивали по методу Грама, микроскопировали под иммерсионной системой.
В микробиологической лаборатории суспензию биологического материала в физрастворе высевали на плотные
питательные среды: 5 % кровяной агар (инкубация при 37°С 24 часа), желточно-молочно-солевой агар (инкубация при 37°С 24-48 часов), агар Сабуро (инкубация при 30°С 5 суток) и 5 % глюкозный мясо-пептонный бульон (инкубация при 37°С 24 часа). После инкубации, получали чистую культуру, которую идентифицировали до вида на дифференциально-диагностических средах Гисса. После инкубации из выросших колоний делали мазки, окрашивали по Граму, микроскопировали.
Определение чувствительности
выделенных культур микроорганизмов определяли диско-диффузионным методом в соответствии с МУК 4.2.1890-04 «Методы контроля. Биологические и
микробиологические факторы. Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам».
Результаты. В ветеринарную клинику обратилась владелица собаки (порода: немецкая овчарка; пол: сука; возраст 3,5 года) с жалобами на уплотнения под кожей.
При клиническом осмотре животного было выявлено:
1. В дорсальной области шеи было обнаружено уплотнение, округлой формы, плотной консистенции, размером 3,5^4,5 см, при пальпации животное не испытывало боль, на ощупь местная температура не повышена;
2. В области лопатки было обнаружено аналогичное уплотнение размером 2,5^3 см;
3. В области поясницы, также было обнаружено уплотнение округлой формы, размером 2x2,5 см, при надавливании выделялась творожистая масса белого цвета, без запаха. При пальпации животное не испытывало дискомфорта;
4. Шерстный покров собаки был тусклым, взъерошенным, в области бедра обнаружен участок аллопеции. По словам хозяйки это место собака постоянно выкусывает. Кожа на участке аллопатии чистая, без наличия корост и покраснений;
5. Температура животного в пределах нормы (38.2°С).
Со слов хозяйки собака чувствует себя хорошо, аппетит сохранен, активная. Содержится животное в вольере и имеет свободный выгул по территории участка. Кормление сухим кормом фирмы «ACARI CAN» два раза в день, вода в постоянном доступе.
После клинического осмотра у собаки произвели отбор пробы крови для гематологического исследования. Так же взяли смыв с кожи с места аллопеции и пробы выделяемого содержимого из уплотнений на коже для микробиологического исследования. Все пробы были направлены в НИЛ «Биохимических, молекулярно-генетических исследований и селекции
сельскохозяйственных животных»
Кузбасского ГАУ. После чего было принято решение удалить обнаруженные уплотнения оперативным путем.
Результаты гематологического
исследования крови представлены в таблице 1.
Таблица 1
Результаты гематологических
Определяемый показатель, ед. изм.
,е Средний объем эритроцита, fl
№ п/п Инд. № или кличка Эритроциты, х 10 9 \л Лейкоциты, х 10 12 \л Гемоглобин, % Среднее содержание гемоглобина в эритроците, (пикограмм) Средняя концентрация гемоглобина в эритроцит г/дл Тромбоциты, х 10 9 \л Гематокрит, %
RBC WBC HGB MCH MCHC MCV PLT HCT
Норма по прибору: 5,508,50 6-17 12-18 19,5024,50 31,0-39,0 60-77 165500 37,0055,00
Собака 7,34 23,67 16,8 22,9 33,8 74 384 53,38
В гематологическом анализе крови было выявлено повышенное содержание лейкоцитов 23,67 (норма 6-17), что свидетельствует о бактериальной инфекции в организме. Остальные показатели крови находились в пределах физиологической нормы.
Рис 1. Микроскопия мазка из биоматериала от абсцесса мягких тканей собаки Fig. 1. Microscopy of a smear of biomaterial from a dog's soft tissue abscess
При проведении микроскопии из биологического материала установлено наличие грамположительных коккобацилл, расположенных в мазке хаотично в виде одиночных клеток (Рис. 1).
На плотных питательных средах установлен рост слизистых колоний, крупных, с неровными краями. При снятии с поверхности агара колония тянется за бактериологической петлей. Сроки культивирования на желточно-молочно-солевом агаре - 24 часа, на среде Сабуро - рост заметен на 4 сутки (Рис. 2).
При микроскопии препарата из культуры с плотной питательной средой установлены крупные грамотрицательные, капсулообразующие, неподвижные
микроорганизмы, расположенные в мазке одиночно, попарно, небольшими скоплениями (Рис. 3).
Рис 2. (слева) Рост Pasteurella canis на плотной питательной среде Сабуро Fig. 2. Fig. 2. (left) Pasteurella canis growth on Sabouraud's solid nutrient medium Рис 3. (справа). Микроскопия мазка, сделанного из культуры Pasteurella canis, выращенной на плотной питательной среде Сабуро Fig. 3. (right) Microscopy of a smear made from a Pasteurella canis culture grown on Sabouraud's solid
nutrient medium
Для определения родовой и видовой проведены следующие дифференциально-принадлежности микроорганизмов были диагностические тесты: бета-гемолиз,
каталаза, оксидаза, гидролиз желатина, продукция образование газа и кислоты из арабинозы, дульцита, глюкозы, инозита, лактозы, мальтозы, маннита, салицина, сорбита, сахарозы, мочевины, индол.
В результате установлена следующая биохимическая активность выделенных
культур микроорганизмов: мочевина (-), мальтоза (-), маннит (-), бета-гемолиз (-), каталаза (+), продукция (-), оксидаза (+), производство газа из арабинозы (-), дульцита (-), инозита (-), лактозы (-), сорбита (-), сахарозы (+), глюкозы (+), гидролиз желатина (-), индол (-) (табл. 2).
Таблица 2
Дифференциально-диагностические тесты для определения вида Pasteurella canis.
№ п/п Дифференциально-диагностические характеристики Результат теста
1 Окраска по Граму грамотрицательные
2 Подвижность -
3 Бета-гемолиз -
4 Каталаза +
5 Оксидаза +
6 Гидролиз желатина -
7 Продуцирование H2S -
образование газа из:
8 арабинозы -
9 дульцита -
10 глюкозы +
11 инозита -
12 лактозы -
13 мальтозы -
14 маннита -
15 сорбита -
17 сахарозы -
18 мочевины -
19 индол -
отрицательный результат; + положительный результат
В результате проведенных
морфологических, тинкториальных
исследований и биохимических тестов установлена принадлежность выделенной культуры к семейству Pasteurellaceae, роду Pasteurella, виду Pasteurella canis.
При определении чувствительности к антибактериальным препаратам установлена чувствительность к ампициллину,
левофлоксацину, ципрофлоксацину,
цефтриаксону, цефотаксиму,
амокчициллину/клавулановой кислоте,
бензилпенициллину,
ампициллину/сульбактам, эритромицину, левофлоксацину, линезолиду. В
промежуточном диапазоне между
устойчивостью и чувствительностью зафиксированы следующие антибиотики: цефуроксим, фурадонин, гентамицин. Устойчивость отмечалась только к стрептомицину.
Согласно полученным результатам из микробиологической лаборатории животному было проведено лечение и назначены следующие препараты:
1. Антибиотикотерапия препаратом Энрофлон 5 % в дозе 0,1 мл/кг - на данную собаку по 2,5 мл подкожно один раз день в течение 5 дней;
2. Иммуномодулирующий препарат Иммунофан 0,005 % для восстановления приобретенных нарушений клеточного и гуморального иммунитета и для повышения антибактериальной резистентности - в дозе 1мл подкожно один раз в день, повторить через 3 дня;
3. Витаминотерапия препаратом Витам в дозе 5 мл подкожно один раз в день в течение 5 дней и препаратом Хелавит по 4,5 мл с кормом один раз в день в течение 14 дней.
При повторном приеме через 10 дней после операции у собаки сняли швы. Микроциркуляция кожи не нарушена, серозных и гнойных выделений не наблюдалось. При осмотре новых патологических очагов не обнаружено, шерстный покров стал гладким и блестящим. Со слов владельца животное чувствует себя удовлетворительно, поведение активное, аппетит хороший.
Выводы:
1. Инфекция, вызванная Pasteurella canis, у собаки протекает в локальной форме, в виде метастазирующих безболезненных абсцессов на коже и в мягких тканях.
2. Содержимое абсцессов представляет собой белый творожистый экссудат.
3. При указанной форме инфекционной болезни отсутствуют общие неспецифические признаки инфекционного заболевания: повышение температуры, вялость, отсутствие аппетита.
4. При гематологическом анализе крови установлено повышение количества лейкоцитов на 6,5*1012/л клеток.
5. В мазках-отпечатках из патологического материала Pasteurella canis имеет вид грамположительных кокков, расположенных единичными клетками
хаотично. При микроскопии препарата из культуры с плотной питательной средой установлены крупные грамотрицательные, капсулообразующие микроорганизмы,
расположенные в мазке одиночно, попарно или небольшими скоплениями.
6. На плотных питательных средах Pasteurella canis растет в виде слизистых колоний, крупных, с неровными краями. При снятии с поверхности агара колония тянется за бактериологической петлей. Сроки культивирования на желточно-молочно-солевом агаре - 24 часа, на среде Сабуро - рост заметен на 4 сутки.
7. Комплексное лечение с применением антибиотика энрофлоксацина, иммуномодулирующих и витаминных препаратов дает стабильный положительный лечебный эффект.
Список источников
1. Albert, T.J., Stevens, D.L. The first case of Pasteurella canis bacteremia: a cirrhotic patient with an open leg wound // Infection. 38. 483-485 (2010). https://doi.org/10.1007/s15010-010-0040-1
2. Christensen H., Bisgaard M. Pasteurella //Molecular Medical Microbiology. Academic Press, 2024. С. 1637-1656.
3. Da Silva M. I. V. et al. Pasteurella canis infection in a non-human primate black-tailed marmoset (Mico melanurus) A case report //Journal of Medical Primatology. 2020. Т. 49. №. 2. С. 107-109.
4. De la Puente Redondo, V.A.; Gutierrez Martin, C.B.; Garcia del Blanco, N.; Antolin Ayala, M.I.; Alonso Alonso, P.; Rodriguez Ferri, E.F. (2000). "Systemic Infection by Pasteurella canis Biotype 1 in Newborn Puppies" // Journal of Comparative Pathology. 123 (2-3): 195-197.
5. Hara, H; Ochiai, T.; Morishima, T.; Arashima, Y.; Kumasaka, K.; Kawano, K. (2002). "Pasteurella canis osteomyelitis and cutaneous abscess after a domestic dog bite" // Journal of the American Academy of Dermatology. 46 (5 Supplement): S151-S152. doi:10.1067/mjd.2002.106350. PMID 12004298.
6. Kavti H. et al. Pyo-Pneumothorax Caused by Pasteurella canis-First Case Report in a Child //Journal of Pediatric Pulmonology. 2022. Т. 1. №. 1. С. 36-38.
7. Kern Z.T. Pasteurella canis infective endocarditis in a dog. Vet Microbiol. 2019 Feb; 229:14-19. doi: 10.1016/j.vetmic.2018.12.001. Epub 2018 Dec 4. PMID: 30642590.
8. Maeda T. et al. Draft genome sequence of blood-origin Pasteurella canis strain PA42, isolated from a dog in Japan //Microbiology Resource Announcements. 2022. Т. 11. №. 7. С. e00260-22.
9. Plichta C., Dawes S. M., Hamade S. Pasteurella canis pneumonia in patient on denosumab with severe chronic obstructive pulmonary disease //chest. 2023. Т. 164. №. 4. С. A1030-A1031.
10. Rashid NK, Zam Z, Mdnoor SS, Siti-Raihan I, Azhany Y. Pasteurella canis Isolation following Penetrating Eye Injury: A Case Report. Case Rep Ophthalmol Med. 2012; 2012:362369. doi: 10.1155/2012/362369. Epub 2012 Apr 23. PMID: 22606491; PMCID: PMC3350076.
11. Ujvári B. et al. Occurrence of Pasteurellaceae and Neisseriaceae bacteria in the pharyngeal and respiratory tract of dogs and cats-Short communication //Acta Veterinaria Hungarica. 2020. Т. 68. №. 3. С. 231-235.
12. Vecilla D. F. et al. Wound infection caused by Pasteurella canis and Neisseria animaloris after a dog bite //Revista Española de Quimioterapia. 2023. Т. 36. №. 6. С. 635.
13. Yoshida H. et al. Virulence-associated genome sequences of Pasteurella canis and unique toxin gene prevalence of P. canis and Pasteurella multocida isolated from humans and companion animals //Annals of Laboratory Medicine. 2023. Т. 43. №. 3. С. 263.
14. Zhu Z. et al. Pasteurella canis infection caused by a dog bite leads to osteomyelitis and genomic analysis of the isolate //Journal of Clinical Laboratory Analysis. 2020. Т. 34. №. 7.
CLINICAL SIGNS OF PASTEURELLOSIS OF SOFT TISSUES IN A DOG CAUSED BY PASTEURELLA CANIS (CLINICAL CASE)
©2024. Anastasia S. Metleva1, Anna V. Semechkova2
12Kuzbass State Agrarian University named after V.N. Poletsky 1 zveryski@mail. ru
Abstract. The result of the work is the establishment of clinical signs, hematological data and diagnostic assessment using the traditional microbiological method of studying the cutaneous form of pasteurellosis caused by Pasteurella canis. Despite the fact that P. canis is an unusual etiological agent of skin infection, the study of P.canis as a causative agent of skin infection is important in microbiological diagnosis in infectious pathology. The veterinary clinic of the Kuzbass State Agrarian University "Academic Veterinary Care" was contacted with a complaint about multiple skin abscesses in a dog. The owner had no other complaints. Palpation of abscesses has established that they do not cause pain. When opening the abscesses, white caseous exudate was found. In order to diagnose the cause of skin neoplasms, the contents of the abscess were sent to the Institute of Biochemical, Molecular Genetic Research and Breeding of Farm Animals of the Kuzbass State Agrarian University for hematological and microbiological research. Microscopy of the contents of the abscesses revealed grampositive cocci located randomly by single cells. Hematological analysis showed an excess of leukocytes by 6.5*1012/l cells. On Sabouraud's solid nutrient medium and yolk-milk-salt agar, Pasteurella canis grows in the form of mucous colonies, large, with uneven edges, when removed from the surface of the agar, the colony stretches behind a bacteriological loop. Microscopy of a culture grown on a dense nutrient medium revealed large gram-negative, capsule-forming microorganisms located singly, in pairs or in small clusters in the smear. Complex treatment with the use of the antibiotic enrofloxacin, immunomodulatory and vitamin preparations gives a stable positive therapeutic effect in local skin infections caused by Pasteurella canis.
Keywords: abscesses, dog, skin infections, pasteurellosis, Pasteurella canis, microbiology, hematology
Refere^es
1. Albert, T.J., Stevens, D.L. The first case of Pasteurella canis bacteremia: a cirrhotic patient with an open leg wound. Infection 38, 483-485 (2010). https://doi.org/10.1007/s15010-010-0040-1
2. Christensen H., Bisgaard M. Pasteurella //Molecular Medical Microbiology. Academic Press, 2024. S. 1637-1656.
3. Da Silva M. I. V. et al. Pasteurella canis infection in a non-human primate black-tailed marmoset (Micomelanurus) A case report //Journal of Medical Primatology. 2020. T. 49. №. 2. S. 107-109.
4. De la Puente Redondo, V.A.; Gutierrez Martin, C.B.; Garcia del Blanco, N.; Antolin Ayala, M.I.; Alonso Alonso, P.; Rodriguez Ferri, E.F. (2000). "Systemic Infection by Pasteurella canis Biotype 1 in Newborn Puppies". Journal of Comparative Pathology. 123 (2-3): 195-197.
5. Hara, H; Ochiai, T.; Morishima, T.; Arashima, Y.; Kumasaka, K.; Kawano, K. (2002). "Pasteurella canis osteomyelitis and cutaneous abscess after a domestic dog bite". Journal of the American Academy of Dermatology. 46 (5 Supplement): S151-S152. doi:10.1067/mjd.2002.106350. PMID 12004298.
6. Kavti H. et al. Pyo-Pneumothorax Caused by Pasteurella canis-First Case Report in a Child //Journal of Pediatric Pulmonology. 2022. T. 1. №. 1. S. 36-38.
7. Kern Z.T. Pasteurella canis infective endocarditis in a dog. Vet Microbiol. 2019 Feb; 229:14-19. doi: 10.1016/j.vetmic.2018.12.001. Epub 2018 Dec 4. PMID: 30642590.
8. Maeda T. et al. Draft genome sequence of blood-origin Pasteurella canis strain PA42, isolated from a dog in Japan //Microbiology Resource Announcements. 2022. T. 11. №. 7. S. e00260-22.
9. Plichta C., Dawes S. M., Hamade S. Pasteurella canis pneumonia in patient on denosumab with severe chronic obstructive pulmonary disease //chest. 2023. T. 164. №. 4. S. A1030-A1031.
10. Rashid NK, Zam Z, Mdnoor SS, Siti-Raihan I, Azhany Y. Pasteurella canis Isolation following Penetrating Eye Injury: A Case Report. Case Rep Ophthalmol Med. 2012;2012:362369. doi: 10.1155/2012/362369. Epub 2012 Apr 23. PMID: 22606491; PMCID: PMC3350076.
11. Ujvári B. et al. Occurrence of Pasteurellaceae and Neisseriaceae bacteria in the pharyngeal and respiratory tract of dogs and cats-Short communication //Acta VeterinariaHungarica. 2020. T. 68. №. 3. S. 231-235.
12. Vecilla D. F. et al. Wound infection caused by Pasteurella canis and Neisseria animaloris after a dog bite //Revista Española de Quimioterapia. 2023. T. 36. №. 6. S. 635.
13. Yoshida H. et al. Virulence-associated genome sequences of Pasteurella canis and unique toxin gene prevalence of P. canis and Pasteurella multocida isolated from humans and companion animals //Annals of Laboratory Medicine. 2023. T. 43. №. 3. S. 263.
14. Zhu Z. et al. Pasteurella canis infection caused by a dog bite leads to osteomyelitis and genomic analysis of the isolate //Journal of Clinical Laboratory Analysis. 2020. T. 34. №. 7.
Сведения об авторах
А.С.Метлева'-канд. ветер. наук, доцент; А.В. Семечкова2 - старший преподаватель.
1,2ФГБОУ ВО «Кузбасский государственный агарный университет им. В.Н. Полецкого», г. Кемерово, Россия
Information about the authors A.S. Metleva1 - Cand. Vet. Sci., Associate Professor; A.V. Semechkova2 - Senior Lecturer.
1,2Kuzbass State Agricultural University named after V.N. Poletsky, Kemerovo, Russia
Конфликт интересов: авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов. Conflict of interest: the authors declare that they have no conflicts of interest.
Статья поступила в редакцию 13.05.2024; одобрена после рецензирования 01.07.2024; принята к публикации 10.11.2024. The article was submitted 13.05.2024; approved after reviewing 01.07.2024; acceptedfor publication 10.11.2024.
