g
УДК 615.2S5.7:547.461.2|.0IS. 1:612.6.052.014.24:575.224.23
E. В. Ковальчук, С. Д. Чихунова, А. И. Саргуне, Л. Р. Шамсутдинова ИЗУЧЕНИЕ ЦИТОГЕНЕТИЧЕСКОЙ АКТИВНОСТИ ОКСАЛАТОВ
Рижский медицинский институт
Химическая защита сельскохозяйственных животных от кровососущих насекомых приобретает большое значение, так как в результате се применения снижается заболеваемость скота, повышается его продуктивность. Одним из высокоэффективных репеллентов является новое химическое соединение оксамат (Ы,Ы-диэтил-С6С8-алкилоксамат). Полупродуктом в производстве оксамата являются оксала-ты — смесь равных количеств алифатических диэфиров щавелевой кислоты — дигексилового (дигексилоксалат), днгептнлового (дигептнлоксалат) и дноктилового (диокти-локсалат), которые относятся к классу сложных эфиров и представляют собой маслянистую жидкость. Оксалаты могут находиться в рабочей зоне производственных помещений и представлять определенную опасность неблагоприятного воздействия на организм человека.
Оксалаты по параметрам острой токсичности относятся к умеренно опасным веществам (3-й класс опасности) и обладают высокими кумулятивными свойствами (коэффициент кумуляции 0,62). Однако их мутагенная активность не изучена.
Целью настоящей работы являлось изучение цнтогене-тической активности оксалатов на клетках костного мозга беспородных мышей-самцов и лимфоцитах периферической крови человека.
Препараты хромосом клеток костного мозга мышей и лимфоцитов крови человека готовили по общепринятым методикам [3, 4, 5]. Для цитогенетического анализа клеток использовали метафазный метод регистрации хромосомных аберраций [I].
Для выявления возможного мутагенного действия оксалатов па клетки костного мозга лабораторных мышей использовали общепринятую методику генетического скрининга химических соединений [2]. Возможное мутагенное действие исследовали при однократном внутрибрюшинном введении препарата мышам в дозе 430 мг/кг ('/г ЬО50). Хромосомные препараты готовили через 6, 24 и 43 ч после введения. В каждом варианте эксперимента использо-
Частота аберраций хромосом в клетках костного мозга мышей при действии оксалатов (М±гп)
Доза, мг/кг Экспозиция, ч Число проанализированных метафаз Частота метафаз с аберрациями, %
430 6 300 0,3±0,3
430 24 300 0,0±0,0
430 48 300 0,0±0,0
Контроль — 300 O.OrfcO.O
вали по 5 мышей и анализировали по 60 метафаз от каждой (всего 20 животных и 1200 метафаз).
Цитогенетическое действие оксалатов изучали также в краткосрочной культуре лимфоцитов периферической кро-ьи человека. Вещество вносили через 48 ч роста культуры в максимальной концентрации 430 мг/мл, равной высшей дозе, используемой при тестировании вещества на живот-пых ('/г LD5o). Хромосомные препараты готовили через 24 ч после внесения вещества. Кровь брали от двух здоровых доноров, исследовали по 150 метафаз от каждого донора [4].
Результаты изучения цитогенетических изменений в ¡З*"* клетках костного мозга мышей приведены в таблице, из которой видно, что частота клеток с аберрациями при действии оксалатов достоверно не изменяется по сравнению с таковой у контрольных животных (Р>0,05).
Дальнейшие исследования цитогенетической активности препарата на лимфоцитах периферической крови человека показали, что оксалаты в изученной концентрации не вызывают достоверного изменения частоты хромосомных аберрации в лимфоцитах крови человека по сравнению с контролем.
Таким образом, цитогенетическим анализом на клетках костного мозга мышей и лимфоцитах периферической крови человека мутагенного действия исследованных доз и концентрации оксалатов не выявлено.
Выводы. 1. Оксалаты в дозе 430 мг/кг при внутрибрюшинном введении через 6, 24 и 48 ч не изменяют частоту структурных хромосомных аберраций в клетках костного мозга лабораторных мышей-самцов.
2. Оксалаты в дозе 430 мг/мл при экспозиции 24 ч не вызывают изменения частоты хромосомных аберраций в лимфоцитах периферической крови человека.
3. Полученные данные могут быть использованы для обоснования гигиенических стандартов содержания оксалатов в производстве репеллента оксамата.
Литература
1. Бочков Н. П., Демин /О. С., Лучкин Н. В. // Генетика. — 1972. — № 5. — С. 133—141.
2. Малашенко А. М., Суркова Н. И., Семенов X. X. Определение мутагенности химических соединений (генетический скрининг) на лабораторных мышах: Метод, указания. — М., 1977.
3. Метод учета хромосомных аберраций как биологический индикатор влияния факторов внешней среды на человека: Метод, рекомендации. — М., 1974.
4. Методические рекомендации по проверке мутагенных свойств у новых лекарственных препаратов. — М., 1981.
5. Ford С., Wollam D. // Exp. Cell Res. — 1963. — Vol. 32.— P. 320—326.
Поступила 19.05.86
УДК 615.916*175-091.8
Л. К. Айвазян
МОРФОЛОГИЧЕСКИЕ ИССЛЕДОВАНИЯ ВТОКСИКОЛОГО-ГИГИЕНИЧЕСКОЙ ОЦЕНКЕ НИТРАТОВ
Филиал ВНИИ гигиены и токсикологии пестицидов, полимеров и пластических масс,
Ереван
В литературе имеются сведения о том, что минеральные Задачей настоящей работы явилось изучение с помощью удобрения, в частности азотсодержащие, при определенных морфологических методов влияния нитратов (натриевой условиях могут оказывать вредное воздействие на организм селитры) на организм белых беспородных крыс после од-человека и животных [3, 7]. нократного воздействия на уровне среднесмертельной дозы