CC BY
57
ХИМИЧЕСКИЕ НАУКИ
АНАЛИТИЧЕСКАЯ ХИМИЯ
ИССЛЕДОВАНИЕ ПОВЕДЕНИЯ УГЛЕГРАФИТОВОГО ЭЛЕКТРОДА, МОДИФИЦИРОВАННОГО ПЛЕНКОЙ ВИСМУТА, В ВОЛЬТАМПЕРОМЕТРИЧЕСКОМ
ОПРЕДЕЛЕНИИ ВИТАМИНА В2
Аронбаев Сергей Дмитриевич
д-р хим. наук, член-корреспондент РАЕ, профессор, Самаркандский государственный университет.
Узбекистан, г. Самарканд Е-mail: [email protected]
Нармаева Гавхар Зарифовна
докторант. Самаркандский государственный университет,
Узбекистан, г. Самарканд Е-mail: n-gavhar@mail. т
Аронбаев Дмитрий Маркиэлович
канд. хим. наук, доцент, Самаркандский государственный университет,
Узбекистан, г. Самарканд Е-mail: [email protected]
STUDY OF THE BEHAVIOR OF A COAL ELECTRODE MODIFIED BY A BISMUTH FILM IN VOLTAMPERATIC DETERMINATION OF VITAMIN B2
Sergey Aronbaev
Doctor of Chemical Sciences, corresponding member of Academy of natural history, Professor, Samarkand State University,
Uzbekistan, Samarkand
Gavkhar Narmaeva
doctoral student Samarkand State University, Uzbekistan, Samarkand
Dmitry Aronbaev
Candidate of Chemical Sciences, Associate Professor, Samarkand State University,
Uzbekistan, Samarkand
АННОТАЦИЯ
Проведено исследование характеристик углеграфитового электрода, модифицированного висмутовой пленкой методом ех-Бки с использованием циклической и дифференциально-импульсной вольтамперометрии в фоновом электролите буфера Бриттона-Робинса с рН=2 в отсутствии и присутствии рибофлавина (витамин В2). Продемонстрировано наличие каталитической активности висмутовой пленки при определении витамина В2. Показано, что электрохимический процесс окисления-восстановления рибофлавина контролируется квазиобратимым переносом электронов, зависимым от рН среды, и включает одинаковое количество протонов и электронов.
Оптимизированы условия определения микроколичеств рибофлавина на Бьмодифицрованном электроде: Енакопл.= -1,0В; 1накопл.=9-120 сек.; диапазон сканирования -1,0 ^ -0,1 В; скорость сканирования 0,1 В/сек.
Библиографическое описание: Аронбаев С.Д., Нармаева Г.З., Аронбаев Д.М. Исследование поведения углеграфитового электрода, модифицированного пленкой висмута, в вольтамперометрическом определении витамина В2 // Universum: Химия и биология: электрон. научн. журн. 2019. № 3(57). URL:
http://7universum. com/ru/nature/archive/item/69 74
A UNIVERSUM:
№ 3 (57)_химия и биология_март. 2019 г.
Проведено определение витамина В2 в некоторых фармацевтических препаратах с применением градуиро-вочного графика и метода стандартных добавок. В качестве контрольного метода использовали флуориметриче-ский метод определения рибофлавина. Оба метода оценивали по t-критерию Стьюдента и F-критерию Фишера, показавшее при уровне достоверности 0,95, их высокую достоверность и статистическую идентичность.
ABSTRACT
The characteristics of a carbon graphite electrode modified with a bismuth film by an ex-situ method using cyclic and differential pulse voltammetry in the background electrolyte of Britton-Robins buffer with pH = 2 in the absence and presence of riboflavin (vitamin B2) were studied. The presence of the catalytic activity of the bismuth film in the determination of vitamin B2 has been demonstrated. It is shown that the riboflavin electrochemical oxidation-reduction process is controlled by a quasi-reversible electron transfer, dependent on the pH of the medium, and includes the same number of protons and electrons.
The conditions for the determination of riboflavin micro-quantities on a Bi-modified electrode have been optimized: Eact. = -1.0V; tact. = 9-120 sec.; scan range -1,0 ^ -0,1 V; scanning speed 0.1 V / sec.
The determination of vitamin B2 in some pharmaceutical preparations using the calibration curve and the method of standard additives. The fluorometric method for determining riboflavin was used as a control method. Both methods were evaluated by Student's t-test and Fisher's F-test, which showed at a confidence level of 0.95, their high reliability and statistical identity.
Ключевые слова: висмут-пленочный электрод, рибофлавин, вольтамперометрические методы, флуоресценция, фармацевтические препараты.
Keywords: bismuth film electrode, riboflavin, voltammetric methods, fluorescence, pharmaceuticals.
Введение
Вольтамперометрические (ВА) методы анализа благодаря их высокой чувствительности, экспрессно-сти, простоты использования аппаратуры находят все большее применение в определении большого ряда органических и биологически активных веществ. При этом большинство ВА-методов основано на применении в качестве сенсорного элемента капающего ртутного или ртутно-пленочного электрода, полученного на электропроводящей подложке методом ex- или т^йц [1-3]. Однако, из-за высокой токсичности материалов на основе ртути и возможными экологическими последствиями при утилизации ртутьсодержащих отходов, вопрос о создании экологически чистых электродов стал особенно остро.
Одним из путей решения этой проблемы является создание безртутных, экологически чистых электродов с каталитическим откликом путем модификации их поверхности или объема веществами, изменяющими протекание электрохимического процесса [4, 5].
Примером этого может быть модификация угле-родсодержащих электродов висмутовой пленкой. Идея такой модификации возникла в начале 2000-х годов, когда особенно остро стал вопрос о запрещении Евросоюзом применения металлической ртути и ртуть-содержащих материалов в создании электрохимических датчиков и анализаторов на их основе [6, 7]. Выбор висмута в качестве модификатора обусловлен и тем, что его токсичность и токсичность висмутсодержащих солей незначительна по сравнению с ртутью и ее солями [7].
В ряде работ были показаны аналитически возможности вольтамперометрического определения тяжелых токсичных металлов с использованием уг-леродсодержащих электродов, модифицированных пленкой висмута [8-12]. Однако, оценка возможности применения Вьмодифицированных электродов в
анализе органических соединений в научной литературе встречается очень редко [13-17]. В связи с этим нами проведено исследование поведения висмут-мо-дифицированного электрода в определении витамина В2 в некоторых фармацевтических препаратах.
Материалы и методы
Реактивы
В работе использовали буферные растворы Брит-тона-Робинса, содержащие по 0,04 М уксусную, орто-фосфортную и борную кислоту в дистиллированной воде [18]. Необходимые значения рН буферного раствора регулировали добавлением в буферную смесь определенного объема 0,2 М NaOH.
Рабочие растворы рибофлавина (Reanal, Венгрия) готовили растворением коммерческого препарата в дистиллированной воде двойной перегонки.
Оборудование
В работе использовали компьютеризированный вольт-амперометрический комплекс на базе универсального полярографа ПУ-1 (ЗИП, Гомель, Беларусь) [19]. В качестве электрохимической ячейки служила стеклянная ячейка, объемом 20 мл из ЗИП-комплекта ПУ-1. Использовали трех-электродную систему, состоящую из рабочего измерительного углеродсодер-жащего электрода модифицированного пленкой Bi, изготовленного, как описано в [12], насыщенного хлоридсеребряного электрода сравнения и вспомогательного электрода из платиновой проволоки, диаметром ~ 0.2 мм.
Все значения рН были измерены с помощью универсального иономера И-130М с рН-селективным электродом ЭСЛ-63Г с точностью ± 0,01. Все потенциалы, указанные в тексте, проведены относительно нас. Ag / AgCl при комнатной температуре.
Анализ проб
Твердые образцы (таблетки), содержащие витамин В2 растворяли в 10 мл дистиллированной воды и добавляли аликвоту объемом 100 мкл к 20 мл фоно-
вого электролита с рН = 2, находящегося в электрохимической ячейке. Жидкие образцы (растворы для инъекций) предварительно разбавляли дистиллированной водой двойной перегонки. Регистрировали вольтамперную кривую в оптимизированном для определения витамина В2 режиме работы поляро-графа ПУ-1.
Концентрацию витамина В2 оценивали по калибровочной кривой и по методу добавок. В качестве контрольного метода служил флуориметрический метод с использованием цифрового флуориметра КФМЦ-02 с соответствующими светофильтрами (Хвозб = 450 нм и Хизм = 530 нм) [20, 21] . Все измерения проводились не менее трех раз.
Результаты и обсуждение
Витамин В2 или рибофлавин (РФ - 7,8-диметил-10-рибитилизоаллоксазин - рис. 1) является водорастворимым витамином группы В [22]. Как и в случае других флавинов, изоаллоксазиновая кольцевая группа, присутствующая в химической структуре, отвечает за флуоресцентные и окислительно-восстановительные свойства.
Ранее также было показано, что окислительно-восстановительные процессы с флавином термодинамически обратимы, независимо от количества переданных электронов. Таким образом, все окислительно-восстановительные формы следует учитывать в электрохимическом механизме [23].
Изоаллоксазиновая кольцевая группа
«кА 60
н ч
1,0 -СГА -0,6 -0,4 -0,2 0
Рисунок 2. Циклические вольтамперограммы для В^модифицированного электрода: 1- в фоновом электролите и 2 - в присутствии
0,1 ммоль/л рибофлавина (витамин В2). На вставке - то же для немодифицированного углеграфитового электрода. Условия: фоновый электролит - буфер Бриттона-Робинса рН2; скорость сканирования 100 мв/с.
На циклической вольтамперограмме 0,1 мМ раствора рибофлавина в фоновом электролите Бриттона-Робинса рН 2 на ^-модифицированном электроде
/ НО-О'
\ но (* ;
) 5 /
Чио >/
Рибитильная цепь
Рисунок 1. Строение молекулы рибофлавина
На рис.2. приведена вольтамперограмма на пас-товом углеграфитовом электроде (1), модифицированного висмутом методом ех-Бки, в фоновом электролите Бриттона-Робинса рН=2, скорость сканирования 100 мВ/с. На вольтамперограмме четко проявляется пик окисления висмута при потенциале выше - 0,05 В, при котором происходит растворение осажденного висмута, разрушающее пленку.
По этой причине последующие эксперименты были ограничены потенциалом -0,1 В. После приготовления Вьмодифицированный электрод помещали в электрохимическую ячейку, содержащую 0,1 ммоль/л витамина В2 в фоновом электролите. Сканирование потенциала осуществляли в диапазоне - 0,8 ^ - 0,1 В и обратно.
I, мк
1,2 -1.0 -0,8 -0,6 -0.4 й,г
Е.В
Рисунок 3. Влияние • - потенциала накопления (Е) и ▲ - времени накопления (^ на ток окисления рибофлавина. Условия: фоновый электролит -буфер Бриттона-Робинса рН2; скорость сканирования 100 мв/с.
наблюдается пара четко определенных пиков: катодный пик при -0,31 В, соответствующий восстановленной гидрохиноновой форме, и пик окисления при -0,23 В, соответствующий окисленной хиноновой
форме рибофлавина. Эта интерпретация согласуется с опубликованными данными [3, 24, 25], и включает перенос двух протонов и двух электронов в электрохимическом процессе.
В то же время разделение анодного и катодного пиков, т.е.
ДЕр = Ера - Ерс = 80 мВ, указывает на медленную скорость реакции переноса электрона, хотя соотношение между анодным и катодным токами / составляет ~ 1,0. На вставке рис.2 показаны те же экспериментальные циклические вольтамперограммы, съемка которых осуществлялась на немодифицирован-ном углеграфитовом электроде. Как видно из этой воль-тамперограммы, никаких окислительных, или восстановительных пиков не наблюдается. Следовательно, можно сделать вывод, что пленка висмута проявляет себя как катализатор электрохимической реакции рибофлавина.
Исследование влияния скорости сканирования потенциалов на величину аналитического сигнала показало, что чувствительность Вь модифицированного электрода при медленных скоростях развертки потенциала (10-50 мВ/сек) недостаточная для получения хорошего и воспроизводимого профиля вольтамперограммы.
Для скоростей сканирования более 50 мВ/с разделение между потенциалами анодного и катодного пиков увеличилось, что указывает на то, что поверхность висмут-модифицированного электрода не способствует быстрому переносу электронов, т.е. обратимая электрохимическая реакция для пары хинон / гидрохинон не наблюдается.
Исследование логарифмических зависимостей токов анодного и катодного пиков от скорости сканирования потенциалов показывает, что наклон прямых, выражаемый как tga, близок к 1,0. Это позволяет сделать вывод, что перенос электронов на поверхности Вьмодифицированного электрода в
Параметры
присутствии рибофлавина подчиняется квазиреверсивной адсорбции, а, значит, окислительно-восстановительный процесс контролируется не диффузией, а межфазными явлениями [26].
Это заключение хорошо согласуется с тем фактом, что, как и в случае многих других твердотельных электродов, используемых для электрохимических исследований флавинов, трудно получить хорошо воспроизводимый отклик [27-29]. Это связано с тем, что витамин В2 адсорбируется на поверхности электрода, модифицированного висмутовой пленкой, что отрицательно влияет на регистрируемые вольтамперограммы.
Очевидно, что продолжительность нахождения индикаторного электрода в аналите, обусловливает физическую адсорбцию рибофлавина на его поверхности. Поэтому был проведен эксперимент по оптимизации условий снятия вольтамперограммы в зависимости от начального потенциала и времени накопления.
На рисунке 3 показано влияние потенциала накопления и времени на анодный ток, связанный с окислением рибофлавина.
Было установлено, что воспроизводимые анодные пики регистрировались при потенциале накопления -1,0 В и времени между 90 и 120 секундами.
Эти результаты были взяты для последующих экспериментов.
Оптимизация параметров снятия вольтамперных кривых
Для рутинных количественных определений витамина В2 нами был использован компьютеризированный вольтамперометрический комплекс на базе универсального полярографа ПУ-1 с программным управлением PowerGrаph 2.0 (электронный самописец). Оптимизированные параметры настройки поля-рографа приведены в таблице 1.
Таблица 1.
полярографа ПУ-1
Параметр Значение
Режим Дифференциально -импульсный
Ячейка 3-х электродная
Рабочий электрод Bi-модифицированный углеграфитовый электрод
Вспомогательный электрод Платиновый, проволочный, диаметром 0,2 мм
Сравнительный электрод Ag/AgCl, насыщенный KCl
Диапазон сканирования -1,0 - - 0,1 В
Скорость сканирования 100 мВ/сек
Амплитуда переменного -30 мВ
Диапазон тока 1,0х 10
Задержка с перемешиванием 90 сек
При указанных в таблице 1 параметрах настройки были сняты вольтамперные кривые для построения калибровочной кривой.
На рисунке 4 показаны вольтамперограммы, полученные при последовательном введении в модельный раствор с 0,5 мкмоль/л витамина В2 стандартных добавок по 10 мкл 100 мкмоль/л и соответствующие
им калибровочная кривая и стандартный график для последовательных добавок.
Как видно и тот, и другой график имеют линейный вид и практически идентичны, что подтверждает пригодность применения метода добавок в определении витамина В2 в реальных образцах.
I, мкА I, мкА
0 -1-1-1-1-1-1-1-1 I I Г~П I I I I I I I I I I I I
-О 35 -0,30 -0,25 -0,20 "°-8 "0-6 -0,4 -0,2 0.0 0,2 0,4 0,6 0,8
Концентрация витамина В2, мкмоль/л
Рисунок 4. Вольтамперограммы для Bi-модифицированного электрода в растворе 0,5 мкмоль/л витамина В2 при последовательном введении стандартных добавок. Условия: фоновый электролит буфер Бриттона-РобинсарН=2, Енакопл. = -1,0 В, Ъакопл.=90 с; v =100 мВ/с. Справа: Калибровочная кривая (▲) и график введения добавок (•) для нахождения концентрации витамина В2 (0,5 мкм) в анализируемом растворе
Для подтверждения практического применения разработанного метода, проводили сравнение соответствия полученных экспериментальных результатов с заявленным содержанием витамина В2, приведенном в описании фармпрепарата.
Было исследовано три образца витамина В2: Образец А: Поливитаминный сироп для детей ПИКОВИТ®, ООО «КРКА ФАРМА», содержащий 1 мг В2 в 5 мл.
Образец В: Рибофлавин-мононуклеотида раствор для инъекций 1% 1мл, Фармстандарт-Уфа Вита, Россия.
Образец С: Бентавит Валента фармацевтика ОАО (Россия) в таблетках по
100 мг витамина В2.
Образцы витамина В2 готовили в соответствии с процедурой, описанной в экспериментальном разделе, так, чтобы ожидаемая концентрация в анализируемом растворе была около 0,5 мкмоль/л (~0,2 мг/л). Контрольным методом служил флуоресцентный метод определения В2.
В таблице 2 приведены результаты определения витамина В2 в указанных образцах.
Таблица 2.
Результаты определения витамина В2 в образцах фармацевтической продукции с использованием вольтамперометрического с В1-модифицрованным электродом и флуориметрического методов
Образец Заявлено, мг Определено ВА методом с Ы-модифицированным электродом Определено флуориметрическим методом
хсредн.,мг 8 «г% 1 [4,3] хсредн.,мг 8 «г% 1 [4,3] [19]
А 1 1,01±0,08 0,247 6,0 0,85 101 0,98±0,02 0,145 2,1 1,12 98 2,93
В 10 9,97±0,18 0,384 1,48 0,79 99,7 9,94±0,15 0,348 1,22 0,85 99,4 1,21
С 100 99,40±0,86 0,833 0,7 1,45 99,4 99,96±1,42 1,07 1,14 0,06 100 1,64
*- в квадратных скобках указаны критические значения параметров
Как видно, оба метода показали надежные результаты для аналитических параметров. Значения относительного стандартного отклонения S для среднего значения трех измерений составляли от 0,247 до 0,833 при количественном определении рибофлавина с использованием предлагаемого датчика и от 0,145 до 1,07 с использованием метода флуоресценции, демонстрируя хорошую точность этих методов.
Чтобы оценить достоверность результатов анализа, полученных двумя независимыми методами -вольтамперометрическим с Bi-модифицированным электродом и флуориметрическим, проведена их
оценка по ^критерию Стьюдента и F-критерию Фишера [30]. Было показано, что при уровне достоверности 95% рассчитанные t и F- критерии значительно ниже их табличных критических значений, свидетельствуя тем самым высокую достоверность и статистическую идентичность методов.
Заключение
Проведенные исследования позволили прийти к следующим заключениям:
Модификация углеграфитового электрода пленкой висмута обеспечивает каталитический отклик индикаторной системы в присутствии рибофлавина.
Показано, что электрохимический процесс окисления-восстановления рибофлавина контролируется квазиобратимым переносом электронов, зависимым от рН среды, и включает одинаковое количество протонов и электронов. Оптимизированы условия вольтампе-рометрического определения микроколичеств рибофлавина на Вьмодифицрованном электроде. Проведено определение витамина В2 в некоторых
фармацевтических препаратах с применением метода стандартных добавок.
Полученные результаты были сравнены с результатами флуориметрического метода и оценены по Ь критерию Стьюдента и F-критерию Фишера, показавшие высокую достоверность и статистическую идентичность применяемых методов.
Список литературы:
1. Zhu L., Luo D. Determination of riboflavin using the polarographic reduction wave of its photochemical reaction products // Anal. Lett. - 2008. - Vol. 41. - P. 3138.
2. ГОСТ Р 52690-2006. Продукты пищевые. Вольтамперометрический метод определения массовой концентрации витамина С.
3. Михеева Е. В. Вольтамперометрическое определение витаминов в многокомпонентных сухих витаминизированных смесях. // Автореф....канд. хим. наук. - Томск, 2005. - 23 с.
4. Шайдарова Л. Г. Модифицированные электроды с каталитическими свойствами в органической вольтампе-рометрии // Автореф. дисс... доктора химических наук. - Казань, 2009. - 43 с.
5. Шабалина А.В., Лапин И.Н., Белова К.А., Светличный В.А. Графитовые электроды, модифицированные металлическими наночастицами с использованием метода лазерной абляции: применение в анализе органических соединений // Электрохимия. - 2015. - Том 51, №4. - С. 417-422.
6. Wang J., Lu J., Hocevar S.B., Farias P.A. M. Bismuth-coated carbon electrodes for anodic stripping voltammetry // Anal. Chem. - 2000. - Vol.72. - P. 3218.
7. Economou A. Bismuth-film electrodes: recent developments and potentialities for Electroanalysis // Trends Anal. Chem. - 2005. - Vol. 24. - P. 334.
8. Santos V.B., Fava E.L., Curi N.S.M., Faria R.C., Fatibello-Filho O. A thermostated electrochemical flow cell with a coupled bismuth film electrode for square-wave anodic stripping voltammetric determination of cadmium (II) and lead (II) in natural, wastewater and tap water samples // Talanta. - 2014.-Vol. 126. - P. 82.
9. Svancara I., Prior C., Hocevar S.B., Wang J. A decade with bismuth-based electrodes in electroanalysis // Electroa-nalysis. - 2010. - Vol.22. - P. 1405.
10. Kokkinos C., Economou A. Stripping analysis at bismuth-based electrodes // Curr. Anal. Chem. - 2008. - N 4. -P. 183.
11. Hocevar S.B., Svancara I., Vytras K., Ogorevc B. Novel electrode for electrochemical stripping analysis based on carbon paste modified with bismuth powder // Electrochim. Acta - 2005. - Vol. 51. - P. 706.
12. Аронбаев С.Д., Нармаева Г.З., Аронбаев Д.М. Углеродсодержащие экологически чистые электроды, модифицированные висмутом для вольтамперометрического анализа // Universum: Химия и биология: электрон. научн. журн. 2018. - № 5 (45). URL: http://7universum.com/ ru/nature/archive/item/5181 (дата обращения: 05.05.2018).
13. Catarino R.I.L., Leal M.F. C., Pimenta A.M., Souto M.R.S., Lopes J.R.T. Cathodic voltammetric detection of dilti-azem at a bismuth film electrode: application to human urine and pharmaceuticals // J. Braz. Chem. Soc. - 2014. -Vol. 25. - P. 961.
14. Sopha H., Hocevar S.B., Pihlar B., Ogorevc B. Bismuth film electrode for stripping voltammetric measurement of sildenafil citrate // Electrochim. Acta. - 2012. - Vol. 60. - P. 274.
15. Guzsvany V., Papp Z., Zbiljic J., Vajdle O., Rodic M. Bismuth modified carbonbased electrodes for the determination of selected neonicotinoid insecticides // Molecules. - 2011. - Vol. 16. - P. 4451.
16. Asadpour-Zeynali K., Najafi-Marandi P. Bismuth modified disposable pencil-lead electrode for simultaneous determination of 2-nitrophenol and 4-nitrophenol by net analyte signal standard addition method // Electroanalysis. - 2011. - Vol. 23. - P. 2241.
17. Lezi N., Vyskocil V., Economou A., Barek J. Electroanalysis of Organic Compounds at Bismuth Electrodes: A Short Review // Sensing in Electroanalysis.- 2012. - Vol. 7. - P.71-78
18. Буфер Бриттона-Робинса // http://www.novedu.ru/zbuf.htm. Дата обращения 1.10.2018.
19. Аронбаев С.Д., Насимов А.М., Аронбаев Д.М., Насыров Р.Х. Компьютеризированный аналитический комплекс для инверсионной вольтамперометрии на базе универсального полярографа ПУ-1 // Илмий тадкикот-лар ахборотномаси СамДУ (Вестник СамГУ). - 2009. - №1 (53). - C. 47-50.
20. Флуориметрический метод определения рибофлавина (витамина В2) // https://biohimist.ru/laboratornye-raboty-po-biokhimii/. Дата обращения 1.10.2018.
21. Hehderleiter J.A., Hystop R.M. The analysis of riboflavin in urine using fluorescence // J. Chem. Educ. - 1996. -Vol. 73. - N 6. - P. 563-564.
22. Витамин B2. https://foodandhealth.ru/vitaminy/vitamin-b2/. Дата обращения: 01.10.2018.
23. Yaniashita M., Rosalto S.S., Kubota L.T. Electrochemical comparative study of riboflavin. FMN and FAD immobilized on the silica gel modified with zirconium oxide // J. Braz. Chem. Soc. - 2002. - Vol. 13 - P. 635.
24. Massey V. The chemical and biological versatility of riboflavin // Biochem. Soc.Trans. - 2000. - Vol. 28. - P.283.
25. Ксенжек О.С., Петрова С.А., Пиниэлле И.Д. Окислительно-восстановительное равновесие флавинов в водных растворах // Биоорганическая химия. - 1975. - Т.1, №9. - С. 1316 - 1333.
26. Дамаскин Б.Б., Петрий О.А., Цирлина Г.А. Электрохимия. - М.: Химия, КолосС, 2006. - 672 с.
27. Chatterjee A., Foord J. S. Biological applications of diamond electrodes: electrochemical studies of riboflavin // Diamond Relat. Mater. - 2009. -N18. - P. 899.
28. Bandzuchova L., Selesovska R, Navratil T., Chylkova J., Novotny L. Voltammetric monitoring of electrochemical reduction of riboflavin using silver solid amalgam electrodes // Electrochim. Acta.- 2012.- Vol.75. - P. 316.
29. Qi H., Cao Z., Hou L. Electrogenerated chemiluminesence method for the determination of riboflavin at an ionic liquid modified gold electrode // Spectrochim. Acta. - 2011 A. - Vol. 78. - P. 211.
30. Статистическая обработка результатов химического эксперимента. // ГФ XI. - Вып.1. - С. 199-221. Код доступа http//static-O.rosminzdrav.ru. Дата обращения: 5.02.2019 г.
