CC BY
106
DOI: 10.24411/0235-2451-2018-10713
УДК 636.5.033
ИСПОЛЬЗОВАНИЕ ФИТОБИОТИКОВ ПРИ ВЫРАЩИВАНИИ БРОЙЛЕРОВ
С. Г. КОЗЫРЕВ, доктор биологических наук, профессор (e-mail: [email protected])
Б. Г. ГУСОВА, кандидат медицинских наук, доцент
А. А. УРТАЕВА, кандидат биологических наук, доцент
И. С. СЕИДОВ, студент
А. А. ДЖАГАЕВ, студент
Горский государственный аграрный университет, ул. Кирова, 37, Владикавказ, Республика Северная Осетия-Алания, 362040, Российская Федерация
Резюме. Исследовали влияние фитобиотических свойств лекарственных растений на гематологические и иммунобиологические свойства, а также динамику набора живой массы бройлеров кросса Кобб-500. Цыплят разделили на опытную и контрольную группы по 10 голов в каждой, наблюдения проводили в 2017 г. с 1-х по 50-е сут. жизни цыплят. Птицы получали полнорационные гранулированные корма Старт, Рост и Финиш (производитель «ВЕБТ», Россия). Особи опытной группы получали также настои ромашки аптечной, астрагала, стевии, отвар топинамбура, полыни горькой, экстракт элеутерококка, настой черемши; контрольной - глюкозу, кепроцерил, аскорбиновую кислоту, ганаминовит, энрофлон, тиамулин, аминовитал и рексвитал. У цыплят опытной группы количество эритроцитов увеличилось с (2,82±0,07)*10'2/л в 1-е сутки до (3,94±0,43)*1012/л к 30-м суткам, в контроле - с (2,81±0,05)*1012/л до (3,62±0,25)*10'2/л соответственно. Лизоцимная активность у птиц опытной группы повысилась с 1,5 % в 15 сут. до 2,2 % к30 сут., в контроле - с 1,2до 1,8 % соответственно. Индекс бактерицидности нейтрофилов при 120-и минутной экспозиции с тест-культурой у особей опытной группы увеличился с 87,6до 89,3 %, в контроле - снизился с 83,0 до 79,3 %. Абсолютный прирост живой массы в опытной группе составил (1991,20±4,84) г, что больше, чем в контроле, на 10,50 г, расход корма в опытной группе на 1 кг прироста составил 1,42 кг, что на 0,22 кг меньше, чем у аналогов контрольной группы. Полученные результаты свидетельствует о позитивном влиянии фитопрофилактических средств на рост и развитие цыплят.
Ключевые слова: фитобиотики, фитопрофилактика, птицеводство, бройлерное птицеводство, астрагал, ромашка аптечная, стевия.
Для цитирования: Использование фитобиотиков при выращивании бройлеров/С. Г. Козырев, Б. Г. Гусова, А. А. Уртаева и др. // Достижения науки и техники АПК. 2018. Т. 32. № 7. С. 56-58. DOI: 10.24411/0235-2451-2018-10713.
В птицеводстве на протяжении многих лет широко использовали кормовые антибиотики. Это привело к появлению устойчивых штаммов микроорганизмов [1]. Особенно тревожен тот факт, что при системном использовании кормовых антибиотиков развивается резистентность микрофлоры у людей. В этой связи в 1997 г. Международная Организация по здравоохранению (WHO) ввела запрет на применение в кормах антибиотиков, которые используют в медицинской практике [2, 3].
По сведениям ряда авторов регулярное применение различных препаратов оказывает значительную химическую и биологическую нагрузку на организм молодняка птицы, что сдерживает полную реализацию его генетического потенциала [3, 4, 5].
Нарушение технологии кормления и содержания, неудовлетворительная экологическая ситуация, болезни различной этиологии, а также воздействие других стрессоров угнетают иммунную систему, снижают эффективность плановых профилактических мероприятий и приводят к развитию патологии. В связи с этим растет заболеваемость сельскохозяйственной птицы, что наносит большой экономический ущерб.
Для повышения качества продукции необходима более эффективная реализация генетического потенциала современных типов сельскохозяйственной птицы, совершенствование технологий ее содержания, рационов и систем кормления, ветеринарно-профилактических методов [6, 7, 8].
Цель исследования - разработка комплекса фитопрофилактических мероприятий для повышения сохранности цыплят и снижения технологических рисков в птицеводстве.
Условия, материалы и методы. Экспериментальную часть работы выполняли на базе ООО «МИП ЭКОДОМ» Горского ГАУ в 2017 г. на бройлерах кросса Кобб-500. По принципу аналогов сформировали контрольную и опытную группы птиц по 10 голов в каждой. Гематологические и иммунобиологические показатели у цыплят определяли до 30-и суточного возраста, динамику набора живой массы - до 50-и суточного. Особи обеих групп получали основной рацион (комбикорм Старт, Рост и Финиш, производитель «ВЕБТ», Россия), также они получали различные ветеринарно-профилактические средства (табл. 1).
Содержание гемоглобина определяли на гемометре Сали (ГС-3), подсчет количества эритроцитов осуществляли в камере Горяева, лейкограмму - методом Пап-пенгейма с использованием цифрового микроскопа «Levenhuk D870T»; лизоцимную активность сыворотки крови - фотоэлектроколориметрическим методом Таблица 1. Схема профилактических мероприятий у цыплят-бройлеров в раннем возрасте (дозировка препаратов на 1 л воды)
Возраст, сутки* Контрольная группа Опытная группа
утро вечер утро вечер
0 глюкоза, 5 г/л аминовитал, настой стевии,
0,2...0,3 мл/л 0,5 г/л
1...2 кепроцерил, аминовитал, настой ромашки,
1,0 г/л 0,2...0,3 мл/л 0,2 г/л
3...5 аскорбиновая отвар топинамбура, настой стевии,
кислота, 1,5 г/л 10,0 г/л 1,0 г/л
6.8 ганаминовит, рексвитал, настой ромашки настой черем-
0,2 г/л (утро) 1,0 г/л (вечер) аптечной, 0,4 г/л ши, 3,0 г/л
9.11 седемин, настой астрагала, йодинол,
0,5 мл/л 5,0 г/л 0,5 мл/л
17.19 энрофлон, седемин, отвар полыни экстракт
1,0 г/л 0,5 мл/л (разово) горькой, 0,3 г/л элеутерококка,
0,15 мл/л
27.29 тиамулин, 1,0 седемин, настой астрагала, настой черем-
г/л 0,5 мл/л (разово) 5,0 г/л ши, 5,0 г/л
*В возрасте 12...16, 20...26, 27...50 суток профилактические средства не давали, чтобы не вызвать гипервитаминозы.
с использованием суточной культуры Micrococcus lysodeikticus [9]; фагоцитарную активность нейтрофи-лов периферической крови (ФАН) - по методу Бермана и Славской, основанному на фазности фагоцитарной реакции [10]. Для объективной и всесторонней оценки ФАН изучали фагоцитарный индекс (ФИ), фагоцитарное число (ФЧ), коэффициент фагоцитарного числа (КФЧ), индекс бактерицидности нейтрофилов (ИБН). Величины этих показателей устанавливали при инкубации фагоцитов с тест-культурой в течение 30-и и 120-и мин. [10].
Прирост живой массы определяли путем контрольных взвешиваний. Абсолютный, относительный и среднесуточный приросты рассчитывали на основании фактической динамики живой массы.
Определяли средние арифметические полученных значений и их ошибки (M±m). Для сравнения показателей использовали критерий Стьюдента. Отличия считали достоверными при р < 0,05.
Результаты и обсуждение. Содержание эритроцитов и гемоглобина у цыплят обеих групп с возрастом увеличивалось (табл. 2).
Таблица 2. Динамика гематологических показателей цыплят (n = 7)
Возраст, сутки Контрольная группа Опытная группа
эритроциты, х1012/л Hb, г/л эритроциты, х1012/л Hb, г/л
1 2,81 ±0,05 101,31 ±0,45 2,82±0,07 101,32±0,45 10 3,24±0,08 98,54±0,37 3,45±0,15 99,03±0,71 20 3,40±0,12 96,62±0,37 3,71±0,24 97,55±0,25 30 3,62±0,25 96,51 ±0,44 3,94±0,43* 100,53±0,74
*р < 0,05.
Эта тенденция свидетельствует о нормальном с физиологической точки зрения развитии организма. Однако между группами имелись некоторые различия. Так, содержание эритроцитов у цыплят опытной группы к возрасту 1 месяц составляло (3,94±0,43) х 1012/л, что на 0,34х1012/л выше (р < 0,05), чем в контроле -(3,6±0,25) х 1012/л . По отношению к исходной величине, количество эритроцитов у цыплят опытной группы увеличилось на 40,0 %, в контроле - на 28,0 %. Содержание гемоглобина в обеих группах снижалось до 20-и суточного возраста. Указанные изменения свидетельствуют о положительном влиянии комплекса фитопрофилактических средств на эритропоэз и концентрацию гемоглобина.
Возрастная динамика числа лейкоцитов зависит от вида, породы, характера и уровня продуктивности, способа кормления и содержания, среды обитания. Важная роль в формировании морфологических и функциональных механизмов лейкопоэза принадлежит правильной организации ветеринарно-профилактических мероприятий. У цыплят обеих групп общее количество лейкоцитов с возрастом увеличивалось, что соот-
ветствует физиологической норме. В то же время у бройлеров опытной группы к двухнедельному возрасту их количество было существенно выше (р < 0,05), чем в контроле. Наибольшие различия отмечены в содержании псевдоэозинофилов. К 15-и суточному возрасту установлено его повышение у цыплят опытной группы до (9,2±0,74) %, что выше, чем в контроле, в 3,3 раза. С возрастом это различие практически исчезло. Таким образом, выявленные изменения позволяют полагать, что применявшиеся фитопрофилактические средства способствовали лейкопоэзу (табл. 3).
У обеих групп лизоцимная активность сыворотки крови (ЛА) с возрастом повышалась. Однако этот процесс у цыплят опытной группы был выражен в большей степени. Так, к 30-и суткам различие между группами составило 0,4 % (табл. 4).
Аналогичная картина выявлена и по показателям фагоцитарной активности нейтрофилов. Так, при 120-и минутной инкубации фагоцитарный индекс у цыплят опытной группы поднялся до 90,14 %, а в контроле -до 83,33 %. Фагоцитарное число у цыплят опытной и контрольной групп находилось на одном уровне. Наибольшие различия между группами выявлены по индексу бактерицидности нейтрофилов (ИБН): при 30-и минутной инкубации у цыплят опытной группы величина этого показателя составила 81,25 %, что больше, чем в контроле, на 7,25 %. При 120-и минутной инкубации ИБН у цыплят опытной группы достиг 89,32 %, превзойдя контроль на 9,96 %.
Коэффициент фагоцитарного числа у цыплят опытной группы увеличился с 15-и до 30-и суточного возраста на 0,10 ед., в контроле - снизился на 0,01 ед., а различие между группами достигло 0,12 ед.
Таким образом, изменения лизоцимной и фагоцитарной активности свидетельствуют о стимулирующем влиянии применявшейся схемы фитопрофилактики на показатели неспецифической резистентности.
Таблица 3. Динамика лейкограммы цыплят-бройлеров (М±m, п=5)
Возраст, сут. Группа Лейкоциты, х109/л Псевдоэ-озинофи-лы, % Эозино- филы, % Моноциты, % Базо- филы, % Лимфоциты, %
15 контрольная 35,39±0,54 2,8±0,67 6,3±1,32 4,5±1,21 - 79,4±1,7 опытная 47,4±0,65 * 9,2±0,74 6,1±1,55 4,0±1,3 - 80,7±1,7 30 контрольная 40,4±0,71 22,9±2,04 10,9±1,75 4,4±1,5 1,5±0,54 60,30±1,54 опытная 41,5±0,67 23,8±1,95 8,4±1,61 4,0±1,8 1,0±0,67 62,80±1,41
*р < 0,05.
Интенсивность роста молодняка птицы зависит от продуктивной направленности породы, условий кормления и содержания. В свою очередь нормальное развитие организма возможно лишь при сохранении здоровья, особенно на ранних этапах. В этой связи исследовали влияние разработанной комплексной схемы фитопрофилактических мероприятий на динамику набора живой массы у цыплят. Наиболее интенсивно он шел у цыплят опытной группы. Так, в 35-и суточном возрасте абсолютный прирост их живой массы составил 1991,20 г, что больше, чем в контроле, на 10,50 г. Характер среднесуточных приростов был аналогич-
ным. Относительные приросты живой массы у цыплят Таблица 4. Динамика показателей неспецифической резистентности у цыплят породы кохинхин в раннем возрасте(п = 5)
Возраст, сут. ЛА, % ФИ, % ФЧ, % ИБН, % КФЧ
К О 30 мин. 120 мин. 30 мин. 120 мин. 30 мин. 120 мин.
К | О К | О К | О К | О К 1 О К 1 О К \ О
15 1,21 1,52 70,01 74,28 76,00 85,17 2,09 2,26 2,19 2,43 68,18 79,62 83,01 87,67 0,95 0,96 30 1,84 2,24 77,77 83,33 83,33 90,14 2,14 2,28 2,26 2,14 74,00 81,25 79,36 89,32 0,94 1,06
Таблица 5. Характер набора живой массы цыплят (n=10)
Возраст, сут. Динамика живой массы, г Абсолютный прирост живой массы, г Среднесуточный прирост живой массы, г Относительный прирост живой массы, %
контроль опыт контроль опыт контроль опыт кон- опыт троль
0 37,50±0,54 - -7 180,5±7,38 186,80 ± 4,31 143,02 ± 2,50 149,34 ± 1,42 20,40 ± 0,05 21,32 ± 0,53 3,85 3,90 14 450,45±8,69 475,39 ± 11,24 412,45 ±8,31 437,59 ± 4,90 23,19 ± 0,62 31,11 ± 1,01 11,01 11,64 21 860,52±5,44 876,64±17,31 823,70 ± 4,10 839,10 ± 3,41 39,20 ± 1,01 39,95 ± 1,84 21,94 22,37 35 2018,64±25,44 2028,74±20,25 1981,10 ± 5,92 1991,20± 4,84 56,62 ± 1,06 56,89 ± 2.11 50,82 56,89 50 3185,35±7,40 3350,25±28,41 3147,8 ± 17,45 3312,70 ± 16,53 62,95 ± 2,10 66,25 ± 3,06 83,94 88,33
опытной группы также были выше - к 35-и суткам превосходство над контрольной группой составило 11,9 % (табл. 5).
Затраты корма в целом и в расчете на единицу продукции служат важным показателем, характеризующим эффективность проводимых мероприятий. Всего на поголовье в каждой группе было потрачено по 5000 г корма. Прирост живой массы на все поголовье в контроле составил (3147,80 ± 17,40) г, в опытной группе -(3312,70 ± 16,50) г. У цыплят опытной группы расход корма на 1 кг прироста был равен 1,42 кг, что на 0,22 кг меньше, чем у аналогов контрольной группы.
Выводы. Изученная схема фитопрофилактических мероприятий для цыплят-бройлеров кросса Кобб-500 способствовала увеличению количества эритроцитов к возрасту 1 месяц до 40 %, что на 0,34*1012/л выше (р < 0,05), чем в контроле. К двухнедельному возрасту содержание лейкоцитов в циркулирующей крови у них
было выше, по сравнению с контрольными аналогами, в основном за счет увеличения количества эозино-филов.Показатели фагоцитарной активности нейтро-филов свидетельствуют о стимулирующем влиянии применяемой схемы фитопрофилактических средств на формирование показателей неспецифической резистентности, что проявилось в повышении ИБН на 9,96 %, КФЧ - на 0,12 ед.
Проведение фитопрофилактических мероприятий в первый месяц жизни оказало положительное влияние на показатели живой массы цыплят. К возрасту 35 дней у птицы опытной группы она составила 1991,20 г, что больше, чем в контроле, на 10,50 г. У цыплят опытной группы расход корма на 1 кг прироста был равен 1,42 кг, что на 0,22 кг меньше, чем у аналогов в контроле. Полученные результаты свидетельствует о позитивном влиянии проведенных фитопрофилактических мероприятий на рост и развитие цыплят.
Литература.
1. Борисенкова А. Н., Древило А. Н., Новикова О. Б. «Бифилиз-N» - перспектива выращивания цыплят-бройлеров без вакцин, анаболиков и антибиотиков в промышленном птицеводстве // XVII Международная конференция «Инновационные разработки и их освоение в промышленном птицеводстве». Сегриев Посад: ВНИТИП, 2012. С. 517-519.
2. Мулдер Р. Развитие мирового птицеводства и роль ВНАП // Материалы XVII Международной конференции «Инновационные разработки и их освоение в промышленном птицеводстве» (Москва). Сергиев Посад: ВНИТИП, 2012. С. 17.
3. Спиридонов И. П., Мальцев А. Б., Давыдов В. М. Кормление сельскохозяйственной птицы от А до Я. Омск: Областная типография, 2002. 704 с.
4. Использование в птицеводстве функциональных кормовых добавок из растительного сырья/А. Г. Кощаев, И. А. Петенко, И. В. Хмара и др. // Ветеринария Кубани. 2013. № 5. С. 20-23.
5. Фисинин В. И. Современное состояние птицеводства //Животноводство. 2004. № 6. С. 8.
6. Приказ от 15декабря 2010 г. № 433 «Об утверждении целевой программы ведомства «Развитие птицеводства в Российской Федерации на 2010-2012годы» и Концепции развития отрасли птицеводства Российской Федерации на период 2013-2020 года» [Электронный ресурс]. URL: http://www.mcx.ru/documents/document/show/14948.199.htm (дата обращения: 20.02.2017).
7. Пономарев В. А., Пронин В. В., Клетикова Л. В. Клинические и биохимические показатели крови птиц. Иваново: ПресСто, 2014. 288 с.
8. Фисинин В. И., Черепанов С. В. Мировое животноводство: вызовы будущего//XVII Международная конференция «Инновационные разработки и их освоение в промышленном птицеводстве». Сегриев Посад: ВНИТИП, 2012. С. 3-7.
9. Определение лизоцимной активности сыворотки крови //Все о животноводстве: теория и практика [Электронный ресурс]. URL: http://worldgonesour.ru/krov/336-opredelenie-lizocimnoy-aktivnosti-syvorotki-krovi.html(дата обращения: 28.07.2017).
10. Определение естественной резистентности и обмена веществ у сельскохозяйственных животных / В. Е. Чумаченко, А. М. Высоцкий, Н. Г. Сердюк и др. Киев: Урожай, 1990. 134 с.
USE OF PHYTOBIOTICS FOR BROILER GROWING
S. G. Kozyrev, B. G. Guseva, A. A. Yurt, I. S. Seidov, A. A. Dzhagaev
Горский State Agrarian University, ul. Kirova, 37, Vladikavkaz, Respublika Severnaya Osetiya-Alaniya, 306040, Russian Federation Abstract. It was investigated the influence of phytobiotic properties of medicinal plants on hematologic and immunobiological properties, as well as the dynamics of live weight of Cobb-500 broilers. Chickens were divided into experimental and control groups of 10 heads each; the observations were carried out in 2017 from the 1st to the 50th day of life of birds. Birds received complete granulated feeds "Start", "Growth" and "Finish" (BEST, Russia). The experimental group also received infusions of chamomile pharmacy, astragalus, stevia, Jerusalem artichoke, common wormwood, eleutherococcus extract, ramson infusion; the control group received glucose, keproceryl, ascorbic acid, Ganaminovit, Enroflon, Tiamulin, Aminovital and Rex Vital. In the test group chickens, the number of erythrocytes increased from (2.82 ± 0.07) x10E12 pcs/L in the first day to (3.94 ± 0.43) x 10E12 pcs/L by the 30th day, in the control it grew from (2.81 ± 0.05) x 10E12 pcs/L, to (3.62 ± 0.25) x 10E12 pcs/L, respectively. Lysozyme activity in the chickens from the experimental group increased from 1.5% on the 15th day up to 2.2% on the 30th day, in the control it raised from 1.2% to 1.8%, respectively. The bactericidal index of neutrophils at a 120-minute exposure with a test culture increased from 87.6 to 89.3% in the experimental group and decreased from 83.0 to 79.3% in the control group. The absolute increase in live weight in the experimental group was (1991.20 ± 4.84) g, which is higher by 10.50 g compared to the control; the feed consumption in the experimental group per 1 kg of gain was 1.42 kg, which is 0.22 kg less than in analogues from the control group. The obtained results testify to the positive effect of phytoprophylactic measures on the growth and development of chickens.
Keywords: phytobiotic; phytoprophylactic; poultry farming; broiler poultry farming; astragalus; chamomile pharmacy; stevia. Author Details: S. G. Kozyrev, D. Sc. (Biol.), prof. (e-mail: [email protected]); B. G. Guseva, Cand. Sc. (Med.), assoc. prof.; A. A. Yurt, Cand. Sc. (Biol.), assoc. prof.; I. S. Seidov, student; A. A. Dzhagaev, student.
For citation: Kozyrev S. G., Guseva B. G., Yurt A. A., Seidov I. S., Dzhagaev A. A. Use of Phytobiotics for Broiler Growing. Dostizheniya naukii tekhnikiAPK. 2018. Vol. 32. No. 7. Pp. 56-58 (in Russ.). DOI: 10.24411/0235-2451-2018-10713.
