CC BY
138
ПРОБЛЕМНАЯ СТАТЬЯ
© КОЛЛЕКТИВ АВТОРОВ, 2013
УДК 616.98:578.828.6]-092:612.017.1.064]-022.363-07
Андреа Интроини1,2, Кристоф Ванпуй1, Андреа Лиско1, Жан-Шарль Гривель1, Леонид Марголис1
ИНТЕРЛЕйКИН-7 СПОСОБСТВУЕТ ПЕРЕНОСУ ВИЧ-1 НА ЦЕРВИКОВАГИНАЛЬНОЙ ТКАНЬ iN ViVO
Национальный институт детского здоровья и развития человека им. Юнис Кеннеди-Шривер, Национальные институты здоровья, Бетесда, шт. Мэриленд, США; 2Факультет биомедицинских наук и технологий, Миланский университет, Милан, Италия
В большинстве случаев ВИЧ-1-инфекция передается женщинам во время вагинального полового акта, когда содержащая вирус семенная жидкость попадает на слизистую оболочку шейки матки и влагалища. Семенная жидкость не только переносит ВИЧ-1, но и содержит большое количество биологических факторов, в частности цитокинов, которые могут влиять на передачу ВИЧ-1. Одним из наиболее распространенных цитокинов в семенной жидкости здоровых мужчин является интерлейкин-7 (ИЛ-7), концентрация которого значительно увеличена в семенной жидкости ВИЧ-1-инфицированных лиц. В данной работе мы исследовали потенциальную роль ИЛ-7 в передаче ВИЧ-1 вагинальным путем в системе ex vivo цервиковагинальной ткани человека. Мы смоделировали ситуацию in vivo путем нанесения на цервиковагинальную ткань ВИЧ-1 в сочетании с ИЛ-7, концентрации сравнимой с его концентрацией, в семенной жидкости ВИЧ-1-инфицированных лиц. Мы обнаружили, что ИЛ-7 в значительной степени усилил репликацию вируса в цервиковагинальной ткани, инфицированной ex vivo. Кроме того, мы наблюдали усиление репликации ВИЧ-1 в эксплантатах лимфоидной ткани. Анализ Т-клеток, изолированных из инфицированных тканей, показал, что ИЛ-7 сокращает истощение популяции Т-клеток CD4+, предотвращая апоптоз, как свидетельствовало снижение количества клеток с экспрессией апоптотического маркера APO2.7 и усиление экспрессии антиапоптотического белка - B-клеточной лимфомы-2 (Bcl-2). Помимо этого, ИЛ-7 увеличивал фракцию делящихся CD4+ Т-клеток, о чем свидетельствовало окрашивание ядерного фактора Ki-67. Высокий уровень содержания ИЛ-7 в семенной жидкости in vivo может влиять на выживание исходного пула ВИЧ-1-инфицированных клеток в слизистой оболочке шейки матки и влагалища на начальных стадиях инфицирования и способствовать локальному размножению и распространению ВИЧ-инфекции.
Ключевые слова: ВИЧ, лимфоциты, интерлейкины, ткани, заражение
A. Introini12, С. Vanpouille1, A. Lisco1, J.-C. Grivel1, L. Margolis1
INTERLEUKIN-7 HIV TRANSMISSION TO CERVICO-VAGINAL TISSUE EX VIVO
'Eunice Kennedy-Shriver National Institute of Child Health and Human Development, National Institutes of Health, Bethesda, Maryland, United
States of America, 31 Center Drive Building 31, Room 2A32 Bethesda, MD 20892-2425; 2University of Milan, Via Festa del Perdono, 12 - 20122,
Milan, Italy
The majority of HIV-1 infections in women transmit through vaginal intercourse, in which virus-containing semen is deposited on the cervico-vaginal mucosa. Semen is more than a mere carrier of HIV-1, since it contains many biological factors, in particular cytokines, that may affect HIV-1 transmission. The concentration of interleukin (IL)-7, one of the most prominent cytokines in semen of healthy individuals, is further increased in semen of HIV-1-infected men. Here, we investigated the potential role of IL-7 in HIV-1 vaginal transmission in an ex vivo system of human cervico-vaginal tissue. We simulated an in vivo situation by depositing HIV-1 on cervico-vaginal tissue in combination with IL-7 at concentrations comparable with those measured in semen of HIV-1-infected individuals. We found that IL-7 significantly enhanced virus replication in ex vivo infected cervico-vaginal tissue. Similarly, we observed an enhancement of HIV-1 replication in lymphoid tissue explants. Analysis ofT cells isolated from infected tissues showed that IL-7 reduced CD4+ T cell depletion preventing apoptosis, as shown by the decrease in the number of cells expressing the apoptotic marker APO2.7 and the increase in the expression of the anti-apoptotic protein B-cell lymphoma (Bcl)-2. Also, IL-7 increased the fraction of cycling CD4+ T cells, as evidenced by staining for the nuclear factor Ki-67. High levels of seminal IL-7 in vivo may be relevant to the survival of the founder pool of HIV-1-infected cells in the cervico-vaginal mucosa at the initial stage of infection, promoting local expansion and dissemination of HIV infection.
Key words: HIV, lymphocytes, interleukins, tissues, infection
Введение
В большинстве случаев ВИЧ-1 передается от мужчины к женщине через семенную жидкость при вагинальном половом акте [1]. Сперма при этом служит не только носителем ВИЧ-1, но и содержит большое ко-
Для корреспонденции: Марголис Леонид Борисович, e-mail: [email protected]
личество биологических факторов, которые могут способствовать или препятствовать передаче ВИЧ-1 [2, 3]. Так, например, в семенной жидкости содержатся как различные амилоидогенные пептиды, которые усиливают ВИЧ-инфекцию и, вероятно, способствуют передаче ВИЧ [4, 5], так и катионные полипептиды, угнетающие ВИЧ-инфекцию [6]. Кроме того, семенная жидкость богата разнообразными цитокинами [7], которые могут влиять на процесс передачи ВИЧ-1 [8-11].
Ранее мы и другие исследователи обнаружили, что в семенной плазме концентрация ИЛ-7, одного из наиболее распространенных цитокинов в сперме здоровых мужчин [7], может превышать его содержание в кровяной плазме более чем в сто раз. Более того, в ходе инфицирования ВИЧ-1 концентрация иЛ-7 в семенной плазме повышается по сравнению с его концентрацией у неинфицирован-ных лиц [12, 13].
иЛ-7 играет главную роль в развитии и гомеоста-зе Т-клеток [14], и в настоящее время производится клиническое испытание возможности применять его для лечения тяжелой лимфопении при лимфоабла-тивной химио- и радиотерапии, а также при наличии ВИЧ-1-инфекции [15]. В частности, введение ИЛ-7 ВИЧ-1-инфицированным лицам, проходящим анти-ретровирусное лечение, увеличило у них количество Т-клеток в их организмах [16, 17], хотя у некоторых пациентов наблюдался кратковременный всплеск репликации ВИЧ-1. В этих и других статьях [18, 19] внимание было сконцентрировано на воздействии ИЛ-7 на ВИЧ-1-инфицированных лиц, в то время как о влиянии ИЛ-7 на передачу ВИЧ-1 во время полового акта известно очень мало, несмотря на поразительно высокий уровень ИЛ-7 их в семенной плазме инфицированных мужчин.
В данной работе мы исследовали влияние ИЛ-7 на инфицирование ВИЧ-1 цервиковагинальной и лим-фоидной тканей человека ex vivo. Мы обнаружили, что ИЛ-7 способствует передаче и распространению ВИЧ-1, предотвращая апоптоз и стимулируя пролиферацию CD4+ Т-клеток.
Результаты
Ниже мы описываем влияние рекомбинантного цитокина человека ИЛ-7 на лимфоидную (гланды) и цервиковагинальную ткани человеческого организма, инфицированные ВИЧ-1 ex vivo. В частности, мы проанализировали в этих тканях а) репликацию ВИЧ-1 по выделению ВИЧ-1 в культуральную среду и по количеству ВИЧ-1-инфицированных Т-клеток CD4+, б) гибель Т-клеток CD4+путем оценки процесса по истощению популяции клеток и экспрессии в этих клетках апоптотического маркера AP02.7 и ан-тиапоптотического белка Bcl-2 и в) пролиферацию CD4+ Т-клеток по измерению экспрессии ядерного белка Ki-67. Цервиковагинальные и лимфоидные ткани, инфицированные ВИЧ-1 ex vivo, культивировались при концентрации ИЛ-7 в 5 или 25 нг/мл, что сравнимо с концентрацией ИЛ-7 в семенной жидкости ВИЧ-1-инфицированных лиц [13].
Автореферат
В большинстве случаев передача ВИЧ-1 от мужчины к женщине происходит при вагинальном половом акте, в ходе которого вирус переносится в составе семенной жидкости. Для понимания базовых механизмов инфицирования ВИЧ-1 крайне важно выявить главные факторы инфекции ВИЧ-1 в половую систему женщин. Это необходимо для разработки новых стратегий профилактики и сдерживания
ВИЧ-инфекции. Сперма ВИЧ-1-инфицированных лиц обладает высоким содержанием цитокина ИЛ-7, который играет важную роль в жизненном цикле CD4+ Т-клеток, являющихся главной мишенью ВИЧ-1. В данном исследовании для изучения влияния ИЛ-7 на передачу и распространение ВИЧ-1 мы использовали систему цервиковагинальных и лимфоидных тканей человека ex vivo. Результаты исследования демонстрируют, что при концентрации, сравнимой с содержанием в семенной жидкости ВИЧ-1-инфицированных лиц, ИЛ-7 усиливает репликацию ВИЧ-1, предотвращая гибель CD4T-клеток и стимулируя их пролиферацию. Это позволяет инфицированным клеткам дольше продуцировать вирус и увеличивает количество клеток, которые ВИЧ может заразить. Возможно концентрация ИЛ-7 в сперме ВИЧ-1-инфицированных мужчин является главным определяющим фактором эффективной передачи ВИЧ-1 неинфицированной женщине через вагинальный половой акт.
1. ИЛ-7 усиливает репликацию лабораторных штаммов и первичных изолятов ВИЧ-1 в лимфоидных и цервиковагинальных тканях
ИЛ-7 усилил репликацию изолятов ВИЧ-1 в инфицированных лимфоидных тканях ex vivo по сравнению с инфицированными контрольными тканями, не обработанных ИЛ-7. Степень усиления зависела от дозы ИЛ-7. Рис. 1, а и 1, в демонстрируют увеличение репликации двух прототипных штаммов ВИЧ-1, ВИЧ-1Ва1 и ВИЧ-11А104, использующих соответственно CCR5 (вариант R5) и CXCR4 (вариант x4), то есть в тканях, обработанных ИЛ-7 в дозах по 5 и 25 нг/мл. Графики с 1С по 1F демонстрируют аналогичное увеличение в опытах с первичными изолятами ВИЧ-196USSN20 (клад А, использует CCR5 и CXCR4), ВИЧ-1 (клад С, использует CCR5),
ВИЧ-1дбШМв31 (клад С, использует CCR5 и CXCR4) и ВИЧ-1МЕ1 (клад B, использует CCR5). Абсолютный совокупный показатель продукции ВИЧ-1 в контрольных образцах различался по тканям от разных доноров и в среднем составил 12,7 ± 3,1 нг/мл для ВИЧ-11А104 и 7,3 ± 0,9 нг/мл для ВИЧ-1Ва1. Для первичных изолятов продукция ВИЧ-1 составила в среднем 25,0 ± 4,6 нг/мл, 3,9 ± 0,4 нг/мл, 0,4 ± 0,1 нг/мл и 3,1 ± 0,5 нг/мл соответственно для ВИЧ-19 ВИЧ-1 ВИЧ-1 и ВИЧ-1
g7USNG30' 96USNG31 МЕГ
В среднем ИЛ-7 в концентрации 5 нг/мл увеличивал продукцию ВИЧ-11А104, в 2,8 ± 0,3 раза (n = 3, p < 0,01). Продукция ВИЧ-1Ва1 также выросла (в 1,7 ± 0,3 раза), однако не достигла уровня статистической значимости (n = 3, p = 0,094) (см. рис. 1, ж). ИЛ-7 в концентрации 5 нг/мл усиливал репликацию первичных изолятов в 1,7 ± 0,1, 1,4 ± 0,1 и 1,4 ± 0,1
раза соответственно для ВИЧ-196USSN20, ВИЧ-197USNG30, и ВИЧ-1МЕ1 (n = 7, p < 0,05). Увеличилась также и
продукция ВИЧ-19бижо31 (в 1,6 ± 0,4 раза), однако в этом случае не был достигнут уровень статистической значимости (n = 7, p = 0,153) (рис. 1, ж). Статистически значимое увеличение репликации было отмечено для всех тестированных штаммов в тканях, обработанных ИЛ-7 в концентрациях 25 нг/мл: для
150
3 с_
"""о > и — о X
СМ О.
100
100
40 п
ИГ О с 30-
сл п5 и О)
со СП --- 1— О) 20-
-Л1Н ю-
¡с,
X см о.
МЕ1 о с
1
> ' О) сб
X О)
СМ
О.
Дни
11п1геа1ес1 --■-- И-7 5 пд/тЬ
Дни 11.-7 25 пд/тЬ
14 _ 12
и 10-
Со
1- ев
>ё
х — р
о
Н1У-1ВаЬ Эбиввмго 97и5ЫС30 97ивМС31
]] 11.-7 5 пд/тЬ
II.-7 25 пд/т1_
МЕ1
Рис. 1. ИЛ-7 увеличивает продукцию ВИЧ-1 в эксплантатах лимфоидной ткани.
На эксплантаты донорской лимфоидной ткани помещали суспензии, т. е. БИЧ-1 и БИЧ-1ВаЬ соответственно, или первичных изолятов ВИЧ-196и:5Ж20 (клад Д, Я5/Х4), БИЧ-1 (клад С, Я5), БИЧ-1 (клад С, Я5/Х4) и БИЧ-1МЕ1 (клад В, Я5). Эксплантаты культивировали в течение 9 или 12 дней
в присутствии рекомбинантного цитокина человека ИЛ-7 в концентрации 5 или 25 нг/мл или без цитокина. За репликацией ВИЧ-1 следили путем измерения количества р24вав ВИЧ-1, накапливавшегося в культуральных средах за трехдневный период. На графиках представлена динамика выделения р24вав ВИЧ-1 в культуральные среды эксплантатов тканей, инокулированных БИЧ-1 (а), БИЧ-1В>Ь (б) и первичными изолятами (с в по г). Типичный результат. Каждая точка соответствует общему количеству вируса, выделенного в среду 27 эксплантатами за трехдневный период. На графике О представлены средние показатели роста общего количества р24вав ВИЧ-1, выделенного в культуральные среды эксплантатами тканей, инфицированными различными вариантами ВИЧ-1 и обработанными ИЛ-7 в концентрации 5 нг/мл (п = 3-7) или 25 нг/мл (п = 7-13), в сравнении с эксплантатами инфицированными, но не подвергавшимися воздействию ИЛ-7 (средние значения ± стандартная ошибка среднего значения).
ВИЧ-11Д104 - в 10,8 ± 1,8 раза (п = 13, р < 0,001) и для ВИЧ- 1Ва1 - в 4,4 ± 0,9 раза (п = 9, р < 0,001) (рис. 1, ж), а для первичных изолятов увеличение составило 4,4 ± 0,6, 2,2 ± 0,3, 4,3 ± 0,5 и 2,7 ± 0,5 раза соответственно для БИЧ-196USSN20, ШЧ^^ ШЧ-
19би5Ш31 и ВИЧ-1МЕ1 (п = 7 Р < 0,005) (рис. 1 ж).
Кроме того, аналогичное усиление репликации
ВИЧ-1 под действием ИЛ-7 наблюдалось при стократном разведении инокулята вируса. Б ходе этих экспериментов общая продукция ВИЧ-11Д104 и ВИЧ-1Ва1 в лимфоидных тканях, не подвергнутых воздействию, составила в среднем 4,1 ± 2,2 нг/мл и 2,7 ± 1,3 нг/мл соответственно. Б лимфоидных тканях, обработанных ИЛ-7 в концентрации 25 нг/мл, реплика-
HIV-1
HIV-1 p24
a>
®
я О
'oo &
О
О
10-,
8-
6-
4-
2-
HIV-1,
HIV-1 p
Рис. 2. ИЛ-7 увеличивает число ВИЧ-1-инфицированных CD4+ Т-клеток в эксплантатах лимфоидной ткани. На рис. а представлены результаты инфекции на 9-й день для CD4+ Т-клеток, которые были изолированы из эксплантатов ВИЧ-1, подвергнутых или не подвергнутых ИЛ-7 (25 нг/мл). (Типичный результат). Количество ВИЧ-1-инфицированных CD4+ (CD8-p24 +) Т-клеток представлено в виде долей в процентах от числа клеток cD§+ CD8-. Верхняя вставка: ВИЧ-11А104, средняя вставка: ВИЧ-1ВаЬ, нижняя вставка: неинфицированный контрольный образец. На рис. 1, б представлено среднее увеличение числа ВИЧ-1-инфицированных CD4+ Т-клеток, которые были изолированы из эксплантатов тканей, инфицированных ВИЧ-11А104 (п = 8) или ВИЧ-1Ва1 (п = 6) и подвергнутых воздействию ИЛ-7 (25 нг/мл), по сравнению со срезами инфицированных донорских тканей, не подвергнутых воздействию ИЛ-7 (средние значения ± стандартная ошибка среднего значения).
ция ВИЧ-1 увеличилась в 10,6 ± 3,4 раза в случае с BH4-1LAI04 (n = 6, p < 0,001) и в 4,2 ± 2,0 раза в случае с ВИЧ-1Ва1 (n = 6, p < 0,05). Аналогичный рост наблюдался, когда суспензия ВИЧ-1 была смешана с семенной жидкостью, десятикратно разведенной для снижения ее токсичности in vitro [20-22], а затем нанесена на эксплантаты лимфоидной ткани. ИЛ-7 в концентрации 25 нг/мл усилил репликацию ВИЧ-1LAI04 и ВИЧ-1Ва1 в 7,4 ± 1,4 и 5,4 ± 1,2 раза соответственно (n = 3, p < 0,05).
С усилением репликации ВИЧ-1 согласуется увеличение под действием ИЛ-7 числа ВИЧ-1-инфицированных CD4+ Т-клеток, что подтвердилось проточной цитометрией тканевых Т-клеток, окрашенных внутриклеточно на наличие p24 ВИЧ-1 (рис. 2, а, 2, б). В соответствии с проведенным ранее исследованием [23], для анализа CD4+ Т-клеток мы подсчитывали количество CD8- Т-клеток, чтобы учесть Т-клетки, у которых уровень CD4 под действием ВИЧ-1 упал. На 9-й день после инфицирования дозы ИЛ-7 по 25 нг/мл увеличили число ВИЧ-1-инфицированных CD4+ Т-клеток (CD8- p24 a +) в лимфоидных тканях, инфицированных ВИЧ-1^^ и ВИЧ-1Ва1, в среднем в 4,1 ± 0,4 и 7,7 ± 1,8 раза соответственно (n = 8 и 6, p < 0,001) (см. рис. 2, б).
Кроме того, ИЛ-7 усилил репликацию ВИЧ-1Ва1 в цервиковагинальных тканях человеческого организма, которые заражаются R5 ВИЧ-1, а не X4 ВИЧ-1 [24]. Такое усиление впервые было отмечено на 9-й день после инфицирования стало еще более очевидным на 12-й день (рис. 3а). ИЛ-7 в концентрации 25 нг/мл увеличили продукцию ВИЧ-1Ва1 в среднем в 5,5 ± 1,4 раза (n = 5, p < 0,01). ИЛ-7 увеличивал продукцию ВИЧ-1Ва1 в 2,1 ± 0,5 раза, однако такой прирост не достигал уровня статистической значимости (n=5, p=0,129) (рис. 3, б). Усиление репликации ВИЧ-1 под действием ИЛ-7 происходило даже в ткани, в которой показатель репликации ВИЧ-1Ва1 без ИЛ-7 составлял не более 75 пг/мл.
Как и в случае с лимфоидными тканями, ИЛ-7 увеличивал число ВИЧ-1-инфицированных CD4+ Т-клеток в цервиковагинальных тканях, инфицированных R5 ВЙЧ-1Ва1, что подтвердилось проточной цитометрией Т-клеток ткани, окрашенных внутри-клеточно на наличие p24 а ВИЧ-1 (см. рис. 3, в). На 9-й день после инфицирования ИЛ-7 в концентрации 25 нг/мл увеличивал число ВИЧ-1-инфицированных CD4+ Т-клеток (CD8- p24 а +) в среднем в 3,0 ± 0,9 раза (n = 5, p < 0,05).
В описанных выше экспериментах ИЛ-7 присутствовал в течение всего периода культивирования. Мы попытались выяснить, достаточно ли подвергнуть ткань кратковременному воздействию ИЛ-7, чтобы усилить репликацию ВИЧ-1. В лимфоидных тканях, подвергнутых воздействию ИЛ-7 в концентрации по 25 нг/мл в течение одной ночи до инфицирования ВИЧ-11А:04 и после этого культивированных без ИЛ-7, репликация ВИЧ-1 в среднем усиливалась в 3,1 ± 0,6 раза (n = 4, p < 0,05) (рис. 4). В лимфоидных тканях, подвергнутых предварительному воздействию ИЛ-1 в течение одной ночи и после этого
_ 2500-, £ 2000-J Э 1500-^ 1000-"ä 500 н
8-1
SS 64 ^ я S (u
il ^
24
Untreated --■-- IL-7 5 ng/mL —■— IL-7 25 ng/mL
] IL-7 5 ng/mL Щ IL-7 25 ng/mL
0 102 103 104 105
0 102 103 104 105
HIV-1 p24
Рис. 3. ИЛ-7 увеличивает продукцию и число БИЧ-Ьинфицированных CD4+ Т-клеток в эксплантатах цервиковагинальной ткани.
На срезы донорской цервиковагинальной ткани были помещены суспензии БИЧ-1В1Ь, и ткани культивировали в течение 12 дней в отсутствие или в присутствии ИЛ-7 в концентрациях по 5 или 25 нг/мл. На рис. 1, а представлена динамика выделения p24gag БИЧ-1 в культуральные среды эксплан-тов ткани с зараженных БИЧ-1ВЛ/ Каждая точка обозначает общее выделение вируса из эксплантатов 24 тканей за трехдневный период. Типичный результат. На графике б изображен средний прирост общего количества p24gag БИЧ-1, выделенного в культуральную среду эксплантатами ткани, инфицированными БИЧ-1ВаЬ и обработанными ИЛ-7 в концентрации 5 или 25 нг/мл, по сравнению со срезами инфицированной донорской ткани без ИЛ-7 (средние значения ± стандартная ошибка среднего значения, n = 5). На графике в представлены результаты соответствующими 9-му дню после инфицирования, CD4+ Т-клетки были изолированы из эксплантатов БИЧ-1-инфицированной ткани, обработанными или не обработанными, ИЛ-7 в концентрации 25 нг/мл. Количество БИЧ-1-инфицированных Т-клеток CD4+ (CD8- p24 +) выражено в процентах от числа клеток CD3+ CD8".
культивированных в присутствии ИЛ-7 в течение 3 дней после инфицирования, репликация ВИЧ-11Д104 усилилась в 6,3 ± 1,4 раза (п = 4, р < 0,01) (рис. 4). Аналогичные эксперименты с БИЧ-1Ва1 продемонстрировали усиление репликации вируса в 1,6 ± 0,2 раза (п = 5, р < 0,05) при предварительном воздействии на ткани ИЛ-7 и последующем их культивировании без него и усиление в 2,8 ± 0,8 раза (п = 5, р < 0,05) при предварительном воздействии на ткани ИЛ-7 и последующем их культивировании в его присутствии в течение 3-х дней после инфицирования (рис. 4).
ИЛ-7 предотвращает гибель и стимулирует пролиферацию CD4+ Т-клеток в ВИЧ-1-инфи-цированных тканях
Мы проанализировали воздействие ИЛ-7 на размер фракции тканевых CD4+ Т-клеток путем подсчета этих клеток методом проточной цитометрии в ВИЧ-1-инфицированных лимфоидных тканях, подвергнутых воздействию ИЛ-7, и в инфицированных донорских тканях, не подвергнутых такому воздействию [25, 26]. БИЧ-1 сокращал популяцию CD4+ Т-клеток: в среднем через 9 дней после инфицирования ВИЧ-11Д104 уменьшал популяцию Т-клеток CD4+ на 48,0 ± 5,6% по сравнению с неинфициро-ванными контрольными тканями тех же доноров. Б донорских тканях, подвергнутых воздействию ИЛ-7 в концентрации 25 нг/мл, потери CD4+ Т-клеток были в 3 раза меньше - ВИЧ-11Д104 сократил их популяцию на 16,7 ± 7,4% (п = 7,р < 0,0001). Таким образом, в ВИЧ-1-инфицированных лимфоидных тканях, подвергнутых воздействию ИЛ-7, фракция CD4+ Т-клеток оказалась больше, чем в тканях, культивированных без ИЛ-7. Далее мы попытались выяснить, была ли эта разница следстви-
□ Pre treatment
й Treatment until day 3 post infectijn
HIV-1 infection Measure of HIV-1 production
I III
Day -1 о 3 6 9 12
Pre treatment IL-7
Г///////////////////А Treatment until day 3 post infectijn
Рис. 4. Для усиления продукции ВИЧ-1 достаточно кратковременного воздействия ИЛ-7.
Эксплантаты лимфоидной ткани обрабатывали ИЛ-7 в течение ночи перед инфицированием ВИЧ-1 или в течение 3-х дней после инфицирования, а затем культивировались без ИЛ-7. На графиках представлен средний прирост общего количества p24 ВИЧ-1, выделенного в культуральные среды эксплантатов ткани, инфицированных ВИЧ-11Д104 (n=4) или ВИЧ-1Ва1 (n=5) и обработанных ИЛ-7 в концентрации по 25 нг/мл, в сравнении со срезами инфицированной донорской ткани, но не обработанных ИЛ-7 (средние значения ± стандартная погрешность среднего значения).
■а 16
<u о
12
+
N см" О
Q. <
CM
о.
I
00 О О
£ 0
HIV-1,
a) о
*t 124
+ "fr см
CM-^
О to
5= Q
< О
8-
£ 0-
HIV-1
IL-7
- + 6 дней
- + 9 дней
IL-7
- + 6 дней
- + 9 дней
Рис. 5. ИЛ-7 сокращает апоптоз ВИЧ-1-инфицированных CD4+ Т-клеток.
На рисунках представлены средние размеры фракций ВИЧ-1-инфицированных CD4+ Т-клеток ^08" р24 +) экспрессирующих апоптотический маркер АР02.7. Клетки были изолированы из эксплантатов донорской лимфоидной ткани, инфицированных ВИЧ-11А104 (п=8) (рис. 5, а) или ВИЧ-1ВаЬ (п=5) (рис. 5, б) и обработанных или не обработанных ИЛ-7 в концентрации по 25 нг/мл (средние значения ± стандартная погрешность среднего значения). Количество ВИЧ-1-инфицированных CD4+ Т-клеток экспрессирующих АР02.7+ выражено долей в процентах от
общего числа CD8" р24 + Т-клеток.
г gаg
ем воздействия ИЛ-7 на гибель Т-клеток CD4+ или же на их пролиферацию.
Чтобы оценить влияние ИЛ-7 на апоптоз CD4+ Т-клеток мы сравнили экспрессию апоптотического маркера АР02.7 и антиапоптотического белка Вс1-2 в тканях инфицированных ВИЧ-11А104 или ВИЧ-1Ва1, подвергнутых или не подвергнутых воздействию ИЛ-7. В лимфоидных тканях, обработанных ИЛ-7 (25 нг/мл) на 6-й или 9-й день после заражения ВИЧ в среднем наблюдалось уменьшение фракций инфицированных CD4+ Т-клеток (CD8- р24 а +) экспрессирующих АР02.7, с 10,9 ± 1,0% до 5,%6± 0,6% и с 7,7 ± 1,1% до 5,0 ± 0,7% (от числа Т-клеток CD8- р24 а +) соответственно (п = 8, р < 0,001) (рис.
5, а). Кроме того, уменьшение фракций ВИЧ-1-инфицированных CD4+ Т-клеток экспрессирующих АР02.7 было отмечено в тканях, инфицированных ВИЧ-1Ва1, с 13,0 ± 1,3% до 8,8 ± 1,3% и с 5,7 ± 1,0% до 4,1 ± 1,1% от числа Т-клеток CD8- р24 а + на 6-й и 9-й дни после инфицирования соответственно (п = 6, р < 0,05) (рис. 5, б).
Со снижением экспрессии апоптотического маркера АР02.7 согласуется с повышением под действием ИЛ-7 экспрессии антиапоптотического белка Вс1-2 в ВИЧ-1-инфицированных CD4+Т-клетках. Поскольку все зрелые Т-клетки экспрессируют Вс1-2 [27], мы сравнили уровни экспрессии этого белка, измерив среднюю интенсивность флуоресценции (СИФ) (рис. 6, а). В инфицированных ВИЧ-104 лимфоид-ных тканях ИЛ-7 в концентрации 25 нг/мл повышал экспрессию Вс1-2 в ВИЧ-1-инфицированных CD4+ Т-клетках в среднем в 2,3 ± 0,1 и 2,4 ± 0,1 раза соответственно на 6-й и 9-й дни после инфицирования (п = 8,р < 0,0001) (см. рис. 6, б). В лимфоидных тканях, инфицированных ВИЧ-1Ва1, ИЛ-7 повышал экспрессию Вс1-2 в ВИЧ-1-инфицированных CD4+ Т-клетках в 2,2 ± 0,2 и 2,6 ± 0,2 раза соответственно на 6-й и 9-й дни после инфицирования (п = 6,р < 0,001) (см. рис.
6, б). Аналогичный эффект наблюдался в цервикова-
гинальных тканях, инфицированных ВИЧ-1Ва-. На 9-й день после инфицирования ИЛ-7 в концентрации 25 нг/ мл повышал экспрессию Вс1-2 в ВИЧ-1-инфицированных CD4+ Т-клетках в среднем в 1,5 ± 0,1 раза по сравнению с донорскими инфицированными тканями, не подвергавшимися воздействию ИЛ-7 (n = 4, p < 0,05) (см. рис. 6, в, г).
Как в лимфоидных, так и в цер-виковагинальных тканях анти-апоптотическое воздействие ИЛ-7 распространялось не только на ВИЧ-инфицированные, но и на неинфи-цированные CD4+ Т-клетки. В ВИЧ-1 -инфицированных лимфоидных тканях, подвергнутых воздействию ИЛ-7 (25 нг/мл), экспрессия Вс1-2 в неинфицированных Т-клетках CD4+ (CD8 p24 -) повышалась в среднем в 2,5 ± 0g22g и 2,7 ± 0,1 раза соответственно на 6-й и 9-й дни после инфицирования в случае с ВИЧ-1^^ (n = 8, p < 0,0001), а в случае с ВИЧ-1Ва1 - в 2,6 ± 0,1 и 3,0 ± 0,1 раза соответственно на 6-й и 9-й дни после инфицирования (n = 6,p < 0,0001). На 9-й день после инфицирования ИЛ-7 в концентрации 25 нг/мл повышал экспрессию Вс1-2 в CD4+ Т-клетках цервиковагинальных тканей, инфицированных ВИЧ-1Ва-, в среднем в 2,0 ± 0,3 раза (n = 4, p < 0,05) (см. рис. 6, в, г). Повышение экспрессии Вс1-2 сопровождалось снижением экспрессии APO2.7. В среднем в ВИЧ-1-инфицированных лимфоидных тканях, обработанных 25 нг/мл ИЛ-7, фракция неинфицированных CD4+ Т-клеток экспрессирующих APO2.7 уменьшилась с 10,8 ± 0,9% до 6,6 ± 0,6% и с 11,0 ± 1,2% до 8,3 ± 0,8% от числа CD8- p24 - Т-клеток соответственно на 6-й и 9-й
gag
дни после инфицирования в случае с ВИЧ-1^^ (n = 8, p < 0,01), и с 8,0 ± 0,8% до 5,5 ± 0,7% и с 4,(5 ± 0,8% до 3,6 ± 0,8%, а в случае с ВИЧ-1Ва- - соответственно на 6-й и 9-й дни после инфицирования (n = 6,p < 0,05).
Чтобы выяснить, не было ли увеличение числа CD4+ Т-клеток в тканях, обработанных ИЛ-7, также связано с пролиферацией клеток, мы подсчитали делящиеся клетки с помощью проточной цито-метрии с использованием ядерного белка Ki-67 в качестве маркера пролиферации. На 9-й день после инфицирования 25 нг/мл ИЛ-7 увеличивал в ВИЧ-1-инфицированных лимфоидных тканях фракцию ВИЧ-1-инфицированных CD4+ Т-клеток экспрессирующих Ki-67 в среднем в 2,3 ± 0,6 раза, в случае с ВИЧ-1^ (с 1,9 ± 0,3% до 4,0 ± 1,0% от числа CD8-p24 + Т-клеток (n = 6,p < 0,05), а в случае с ВИЧ-1Ва-- в 1g5 ± 0,2 раза (с 5,2 ± 0,8% до 7,8 ± 1,2% от числа CD8-p24 s Т-клеток CD8- p24gag+ (n = 6, p < 0,05) (рис. 7, а, б|^роме того, на 9-й день после инфицирования ИЛ-7 увеличил в этих тканях фракцию не-инфицированных CD4+ Т-клеток экспрессирующих Ki-67 в среднем в 7,1 ± 1,2 раза, (с 0,7 ± 0,1% до 5,2 ±
HIV-1,
HIV-1p
100 -
м
ш
о 80-
H
+
О) и 60-
•f*
СМ
О. 40-
'со
О
О 20
Bel-2
□ HIV-1-infected Ш HIV-1-uninfected
Рис. 6. ИЛ-7 активирует экспрессию Bcl-2.
На рис. 6, а представлены уровни экспрессии антиапоптотического белка Bcl-2 (на 9-й день после инфицирования) в ВИЧ-1-инфицированных CD4+ Т-клетках (CD8- p24gag+), которые были изолированы из эксплантатов лимфоидной ткани, инфицированных ВИЧ-11Д104 или ВИЧ-1Ва1 и обработанных ИЛ-7 в концентрации 25 нг/мл (черная линия), в сравнении с эксплантами инфицированной ткани без ИЛ-7 (красная линия). Типичный результат. Количество Bcl-2 выражено в условных единицах средней интенсивности флюоресценции (СИФ). На рис. 6, б представлено среднее увеличение экспрессии Bcl-2 в ВИЧ-1-инфицированных Т-клетках CD4+, которые были изолированы из эксплантатов лимфоидной ткани, инфицированных ВИЧ-11Д104 (n = 8) или ВИЧ-1в>ь (n = 6) и обработанных ИЛ-7 в концентрации по 25 нг/мл, в сравнении с эксплантатами, инфицированными, но не обработанными ИЛ-7 (средние значения ± стандартная ошибка среднего значения). На рис. 6, в представлены уровни экспрессии Bcl-2 в ВИЧ-1-инфицированных (на 9-й день после инфицирования) и неинфицированных CD4+ Т-клетках (CD8- p24gag ), которые были изолированы из эксплантатов цервиковагинальной ткани, инфицированных ВИЧ-1 и обработанных ИЛ-7 (черная линия), в сравнении со срезами ткани не обработанных без ИЛ-7 (красная линия). Типичный результат. На рис. 6, г представлено среднее увеличение экспрессии Bcl-2 в ВИЧ-1-инфицированных и неинфицированных Т-клетках CD4+, которые были изолированы из эксплантатов цервиковагинальной ткани, инфицированных ВИЧ-1 и обработанных ИЛ-7 в концентрации 25 нг/мл, в сравнении со срезами инфицированной донорской ткани не обработанными ИЛ-7 (средние значения ± стандартная погрешность среднего значения, n = 5).
1,5% от числа Т-клеток CD8- р24 -) в случае с ВИЧ-1 ьа1 04 (п = 6, р < 0,0001), а в случае с ВИЧ-1^ - в 6,7 ± 1,2 раза (с 0,8 ± 0,1% до 5,9 ± 1,6% от числа Т-клеток CD8- р24баб- (п = 6,р < 0,001)).
Обсуждение
Передача ВИЧ-1 от мужчины к женщине во время вагинального полового акта представляет собой сложный процесс, исход которого зависит от способности ВИЧ-1 инфицировать клетки-мишени в слизистой оболочке нижних половых путей женщины. Иммунная среда слизистой оболочки женских половых органов играет крайне важную роль на ранних стадиях передачи ВИЧ-1 [28], а сперма активно на эту среду воздействует [2, 3]. В частности, семенная жидкость содержит множество цитокинов, и мы в числе других исследователей обнаружили, что инфицирование ВИЧ приводит к большим изменениям
в системе цитокинов семенной жидкости [12, 13]. Хотя сперма ВИЧ-1-инфицированных лиц характеризуется большим содержанием ИЛ-7 [12,13], о роли этого цитокина в передаче ВИЧ половым путем известно немного.
ИЛ-7 является представителем семейства цито-кинов с гамма-цепью, в которое входят ИЛ-2, ИЛ-4, ИЛ-5 и ИЛ-21 [29]. ИЛ-7 играет ключевую роль в модуляции развития Т-клеток, а также гомеоста-за наивных Т-лейкоцитов периферической крови и Т-клеток памяти [14, 30, 31]. Считается, что основным источником ИЛ-7 в семенной жидкости служит предстательная железа, в которой ИЛ-7 играет важную роль по обеспечению функционирования Т-клеток [32]. В настоящем исследовании мы моделировали ситуацию in vivo помещая ВИЧ-1 в сочетании с ИЛ-7, на цервиковагинальную ткань. Концентрация ИЛ-7 была сравнима с его концентраци-
HIV-1
С/)
= О)
ш Г"
о ^ + см I» О. to , .— со * О О
ч—
о
£
ою2 ю3 ю4 ю5
ою2 ю3 ю4 ю5
ою2 ю3 ю4 ю5
10-, 86 4 2 О
IL-7 -
- +
Ki-67
Рис. 7. ИЛ-7 увеличивает пролиферацию БИЧ-1-инфицированных CD4+ Т-клеток.
На рис. 7, а представлены диаграммы для БИЧ-1-инфицированных CD4+ Т-клеток (CD8- p24gag+), (на 9-й день после инфицирования), которые были изолированы из эксплантатов доноров лимфоидной ткани, инфицированных БИЧ-11Д104 или БИЧ-1ВаЬ и обработанных или не обработанных ИЛ-7 в концентрации 25 нг/мл. Количество БИЧ-1-инфицированных CD4+ Ki-67+ Т-клеток выражено в процентах от общего числа CD8" p24gag+ Т-клеток. На рис. 7, б представлены величина средних фракций БИЧ-1-инфицированных CD4+ Т-клеток, экспрессирующих Ki-67, которые изолированы из эксплантатов донорской лимфоидной ткани, инфицированных БИЧ-1 или БИЧ-1ВаЬ и подвергнутых или не подвергнутых воздействию ИЛ-7 в дозах по 25 нг/мл (средние значения ± стандартная ошибка среднего значения, n = 6).
ей, в семенной жидкости ВИЧ-1-инфицированных лиц [13]. Было доказано, что линии эпителиальных клеток, из шейки матки, выделяют ИЛ-7, в то время как линии эпителиальных клеток влагалища и первичных вагинальных эпителиальных клеток ИЛ-7 не продуцируют [33]. В течение 12 дней культивирования мы не выявили ИЛ-7 в культуральных средах эксплантатов цервиковагинальной ткани, что позволило нам исследовать роль этого цитокина в передаче ВИЧ-1 in vivo.
В своем исследовании мы также использовали лимфоидную (миндалины) ткань ex vivo для изучения распространения вируса и вызванного ВИЧ-1 истощения популяции CD4+ Т-клеток. Было показано, что ретикулярные стромальные клетки, выделенные из миндалин человека, продуцируют ИЛ-7, отлагающийся на поверхности и влияющий на наивные Т-лимфоциты. Однако отсутствуют данные о количестве ИЛ-7, выделяемом изолированными стромальными клетками in vitro. Использованные нами в экспериментах эксплантанты тонзиллярной ткани не секретировали заметного количества цитокина в культуральную среду, поэтому можно предположить, что продуцируемый ИЛ-7 либо остается на поверхности стромальных клеток, либо немедленно поглощается соседними Т-клетками.
Мы обнаружили, что ИЛ-7 значительно усиливал репликацию ВИЧ-1Ва1 (вариант R5) в цервико-вагинальных эксплантатах от всех исследованных доноров, включая один образец ткани, в котором без ИЛ-7 в соответствии с нашими критериями (см.
раздел «Материалы и методы») не было вообще обнаружено вирусной репликации. Также мы наблюдали под действием ИЛ-7 усиление репликации ВИЧ-1 в лимфоидной ткани, инфицированной как R5 так и Х4 вариантами ВИЧ-1, (лимфоидная ткань, в отличие от цервиковагинальной ex vivo, поддерживает репликацию обоих фенотипов ВИЧ-1). Такое усиление обнаруживается на 6-й день после инфицирования и, по-видимому, не зависит от абсолютного уровня репликации вируса. Действительно усиление репликации вируса наблюдалось в тканях, инфицированных стократно разведенной вирусной суспензией. Усиление репликации ВИЧ-1 наблюдалось не только на лабораторных штаммах этого вируса, но также на первичных изолятах. Более того, усиление репликации было отмечено у изолятов ВИЧ-1 всех трех протестированных клад. В число этих изолятов входили ССГ5-тропные (R5) и СХСГ4/ССГ5-тропные (X4/R5) варианты ВИЧ-1. Считается, что вирусы первого тропизма преимущественно передаются и преобладают на ранних стадиях развития инфекции, в то время как вирусы последнего тропизма характерны для более поздних стадий заболевания ВИЧ-1 [35, 36]. Таким образом, представляется, что ИЛ-7 является фактором усиления репликации различных вариантов ВИЧ-1 на разных уровнях и в различных тканях человеческого организма.
В целом результаты нашего исследования согласуются с предыдущими сообщениями об усилении под действием ИЛ-7 репликации ВИЧ-1 в стимулированных in vitro первичных зрелых тимоцитах [27]
и мононуклеарных клетках, изолированных из периферической крови хронически инфицированных пациентов [37]. Кроме того, в предыдущих исследованиях было установлено, что ИЛ-7 делает покоящиеся Т-клетки пермиссивными для ВИЧ-1 [38], а также может реактивировать латентный ВИЧ-1 в покоящихся CD4+ Т-клетках в изолированных из крови инфицированных лиц [39, 40].
Хотя степень активности ВИЧ-1 в наших экспериментах была пропорциональна длительности воздействия ИЛ-7, мы обнаружили, что для активизации ВИЧ-1-инфекции присутствие ИЛ-7 в течение всего периода культивирования необязательно. Действительно, когда ткани подвергались воздействию ИЛ-7 только перед инфицированием ВИЧ-1, последующая репликация ВИЧ-1 также усиливалась.
Так же ИЛ-7 усиливал репликацию ВИЧ-1, когда наносился на эксплантаты в составе семенной жидкости человека. Известно, что эякулированная, коагулированная, разжиженная, замороженная и размороженная, семенная жидкость, является токсичной in vitro [20-22]. Поэтому для наших экспериментов мы использовали лимфоидную ткань, в которой репликация ВИЧ-1 носит более выраженный характер, чем в цервиковагинальной ткани. Хотя эксперименты по переносу ВИЧ-1 на эксплантаты цервиковагинальной ткани с помощью только что эякулированной семенной жидкости ВИЧ-1-инфицированных мужчин дали бы более важные результаты, их проведение сопряжено с логистическими и этическими трудностями. Тем не менее, экстраполяция наших данных на процесс передачи ВИЧ-1 от мужчины к женщине in vivo позволяет предположить, что высокая концентрация ИЛ-7 в семенной жидкости может повысить восприимчивость слизистой оболочки нижних половых путей женщины к ВИЧ-1.
каковы механизмы воздействия ИЛ-7 на инфекцию ВИЧ-1?
Наши данные свидетельствуют о том, что ИЛ-7 предотвращает истощение популяции тканевых CD4+ Т-клеток, подавляя их апоптоз. Данные об участии ИЛ-7 в продлении жизни Т-клеток CD4+ [14] согласуются с нашими наблюдениями об устойчивом повышении экспрессии антиапоптотического белка Bcl-2 в инфицированных и неинфицированных CD4+ Т-клетках. Другим доказательством подавления ИЛ-7 апоптоза было сокращение количества CD4+ Т-клеток экспрессирующих апоптотический маркер AP02.7. Таким образом, ИЛ-7 не только продлевает жизнь клеток, продуцирующих вирус, тем самым способствуя продолжительному выделению ВИЧ-1, но и предотвращает гибель неинфицированных CD4+ Т-клеток, обеспечивая ВИЧ-1 еще большим числом потенциальных целей.
ослабление апоптоза под действием ИЛ-7, наблюдавшееся в тканях in vivo, в целом согласуется с подавлением спонтанного апоптоза в выделенных из крови ВИЧ-1-инфицированных лиц Т-клетках, обработанных in vitro ИЛ-7 [41], а также с недавно полученными данными о результатах введения ИЛ-7
макакам резус, находившимся в острой фазе инфекции вирусом иммунодефицита обезьян (ВИО) в отсутствие антиретровирусной терапии [42]. В более позднем исследовании применение ИЛ-7 привело к меньшему истощению популяции циркулирующих CD4+ Т-клеток и устойчивому повышению экспрессии Bcl-2 в период репликации ВИЧ.
однако увеличение числа продуцирующих ВИЧ-1 клеток в тканях, подвергнутых воздействию ИЛ-7, происходит не только из-за подавления апоп-тоза, но и благодаря тому, что ИЛ-7 стимулировал пролиферацию CD4+ Т-клеток, как инфицированных, так и не инфицированных, о чем свидетельствуют наши данные по экспрессии Ki-67. Процесс активизации пролиферации клеток под действием ИЛ-7 был описан для культур изолированных клеток [17, 41, 43-45] и в настоящее время служит основой для клинических испытаний, целью которых является увеличение числа Т-клеток у ВИЧ-1-инфицированных лиц [16, 17].
Нам представляется, что для объяснения наблюдавшейся активизации ВИЧ-1-инфекции под действием ИЛ-7 достаточно двух описанных нами механизмов, а именно предотвращению апоптоза и стимулированию пролиферации CD4+ Т-клеток, в результате чего увеличивается число продуцирующих вирус клеток и увеличивается продолжительность их жизни, а следовательно и вирусной продукции. Влиянию ИЛ-7 на инфицирование тканей ВИЧ-1 могут способствовать и другие механизмы. В их число могут входить реакция CD4+ Т-клеток на ко-стимулирующие молекулы [37], прямое стимулирование транскрипции длинных концевых повторов ВИЧ-1 [40], повышение экспрессии ко-рецептора CXCR4 на CD4+ Т-клетках [45-47] и повышение заражаемости ВИЧ-1 у покоящихся Т-клеток [38].
Хотя система цервиковагинальной и лимфоидной тканей ex vivo адекватно моделирует основные аспекты заражения ВИЧ-1 in vivo, включая размер пула ВИЧ-1-инфицированных Т-клеток CD4+, истощение популяции Т-клеток CD4+ под действием ВИЧ-1 и пр., она имеет свои ограничения. В частности, в тканях ex vivo не происходит циркуляции и пополнения иммунных клеток, которое может играть важную роль в становлении ВИЧ-1-инфекции. Цервиковаги-нальные эксплантаты не окружены эпителиальным слоем, и как ИЛ-7, так и ВИЧ имеют непосредственный доступ к внутренним клеткам слизистой. (Впрочем предполагается, что in vivo ВИЧ-1 также имеет доступ к этим клеткам через повреждения эпителиального слоя слизистой оболочки женских половых органов). И, наконец, в нашей модели мы использовали суспензии ВИЧ-1, в то время, как результаты некоторых исследований показывают, ВИЧ-1 может передаваться in vivo зараженными клетками [48].
Несмотря на то что мы показали, что ИЛ-7 способствует переносу ВИЧ-1 на цервиковагиналь-ную ткань и его распространению в лимфоидной ткани наши результаты не вступают в явное противоречие с благоприятным воздействием ИЛ-7 на
ВИЧ-1-инфицированных лиц [19]. Действительно, согласно результатам исследования Леви и др., подкожное введение ИЛ-7 приводит, в зависимости от дозы, к увеличению числа CD4+ Т-клеток у ВИЧ-1-инфицированных пациентов, проходящих антиретровирусное лечение, хотя временная низкая вирусемия ВИЧ наблюдалась у 6 из 26 пациентов [16]. Несмотря на этот положительный эффект, повышенное содержания ИЛ-7 больных, у которых вирус выделяется в сперму, может увеличить вероятность передачи ими ВИЧ-1 своим сексуальным партнерам.
В заключение следует отметить, что хотя данные о влиянии ИЛ-7 на репликацию ВИЧ в изолированных клетках, а также воздействии ИЛ-7 на лиц, уже инфицированных ВИЧ-1, были получены ранее, в нашем исследовании впервые изучена роль ИЛ-7 в передаче ВИЧ-1 от мужчины к женщине. Результаты этого исследования демонстрируют, что воздействие ИЛ-7 на цервиковагинальные и лимфоидные ткани in vivo в концентрации, сравнимой с его концентрацией в семенной жидкости ВИЧ-1-инфицированных лиц, способствует передаче ВИЧ-1. Активизация продукции ВИЧ-1 под действием ИЛ-7 связана с пролиферацией и подавлением апоптоза инфицированных Т-клеток CD4+ и появлении новых клеток-мишеней ВИЧ-1. Результаты этого воздействия могут иметь большое значение для передачи ВИЧ-1, поскольку в шейке матки, в отличие от лимфоидной ткани, содержится сравнительно малое количество CD4+ Т-клеток [24], главных мишеней ВИЧ-1 [28]. Поэтому увеличение числа и продление срока жизни ВИЧ-1-инфицированных и неинфицированных клеток приводит к расширению исходного пула инфицированных клеток, что повышает риск заражения ВИЧ-1.
ИЛ-7, судя по всему, принадлежит к группе растворимых факторов [4, 5], способствующих передаче ВИЧ-1. Концентрация таких факторов в семенной жидкости ВИЧ-1-инфицированных мужчин может определять эффективность передачи ВИЧ-1 неинфи-цированным партнерам во время вагинального полового акта.
Материалы и методы
Культура ткани ex vivo
Тонзиллярные ткани от стандартной тонзи-лэктомии были получены в Детской больнице г. Вашингтон. Цервиковагинальные ткани были получены при стандартной гистерэктомии через систему Национального обмена в помощь исследованиям заболеваний (NDRI, Филадельфия, штат Пенсильвания). Все ткани представляли собой анонимные патологические образцы, полученные в соответствии с процедурой, утвержденной Институциональным наблюдательным советом.
Тонзиллярные ткани рассекались на срезы размером приблизительно 8 мм3 и помещались на геле из коллагеновой губки в культуральную среду на поверхности раздела жидкости и воздуха в планшете на 6 лунок (по 9 срезов на лунку, содержа-
щую 3 мл раствора RPMI1640 с добавлением 20% эмбриональной бычьей сыворотки (поставщик -компания Gemini Bioproducts, Вест Сакраменто, штат Калифорния). Для каждой экспериментальной точки использовалось от 18 до 27 срезов в зависимости от характера эксперимента. Срезы ткани инфицировались нанесением на поверхность каждого среза 6,3 мкл вирусного материала, либо не разведенного, либо разведенного 1:100 в растворе RPMI1640 [49]. В некоторых экспериментах инфицирование производилось нанесением вирусного материала, соединенного 20% семенной жидкостью (источник - американский филиал Европейского банка спермы, Сиэтл, штат Вашингтон) в соотношении 1:1.
Слизистый эпителий и подлежащая строма эк-тоцервикса и эндоцервикса отделяли от мышечной ткани и рассекали на срезы размером приблизительно 8 мм3. Для каждой экспериментной точки 24 цервикальных среза помещались в две конические пробирки емкостью 1,5 мл (по 12 срезов в пробирку), каждая из которых содержала 0,5 мл вирусного материала ВИЧ-1 После 2-х часов инкубации при температуре 37°С кусочки ткани осторожно промывали три раза с помощью 4 мл физиологического раствора на фосфатном буфере и помещали на гель из коллагеновой губки в планшете на 12 лунок (по 8 срезов на лунку, содержащую 1 мл раствора RPMI1640 с добавлением 20% эмбриональной бычьей сыворотки).
Срезы тонзиллярной и цервиковагинальной тканей культивировали в течение 6, 9 и 12 дней (в зависимости от целей эксперимента) в присутствии рекомбинантного цитокина человека ИЛ-7 (поставщик - компания Peprotech, Рокки Хилл, штат Нью-Джерси) в концентрации 5 или 25 нг/мл или без него; среду меняли каждые 3 дня. Вирусы
Препараты вирусов ВИЧ-1Ва- и ВИЧ-1^^ были получены из Вирусологической лаборатории контроля качества Университета Раш (Чикаго, штат Иллинойс). Вирусный материал был получен из среды зараженных ВИЧ-1Ва-, либо ВИЧ-1^^ культур мононуклеарных клеток периферической крови. Вирусы были изначально получены по Программе предоставления реагентов СПИД, учрежденной Национальными Институтами Здоровья. Концентрации p24 а ВИЧ-1 составляли 49 ± 3 нг/мл и 53 ± 3 нг/мл для суспензий ВИЧ-1Ва- и ВИЧ-1^^ соответственно.
Вирусные материалы клинических штаммов ВИЧ-1 были получены по Программе предоставления реагентов СПИД Национальных институтов здравоохранения; для программы их предоставили доктора Д. Элленбергер, П. Салливэн и Р.Б. Лэл
(^-^SN^ ВИЧ"~197USNG30 и ^-il ) [50L а
также доктор Фальгуни Гупта (ВИЧ-1МЕ1) [51]. Концентрации p24 а ВИЧ-1 составляли 182 ± 12 нг/мл, 275 ± 23 нг/мл, 97 ± 6 нг/мл и 914 ± 49 нг/мл для ВИЧ-1 ВИЧ-1 ВИЧ-1 и ВИЧ-
96USSN20' 97USNG30' 96USNG31
1 соответственно.
Проточная цитометрия
Срезы тонзиллярной и цервиковагинальной тканей обрабатывались в течение 30 и 45 минут либе-разой с малой концентрацией диспазы (поставщик
- компания Roche, Индианаполис, штат Индиана) в конечной концентрации 8 мкг/мл в 1 мл раствора RPMI1640, содержащем дезоксирибонуклеазу I (поставщик - Roche) в конечной концентрации 100 мкг/мл. Суспензии отдельных клеток промывались в окрашивающем буфере, включающем в себя фосфатный физиологический раствор с добавлением 2% нормальной мышиной сыворотки, поставщик - Gemini Bioproducts). Для получения характеристик лимфоцитов суспензии клеток окрашивались моноклональными антителами против CD3 Qdot 655, анти^4 Qdot 605 и против CD8 Pacific Blue (поставщик - компания Invitrogen, Карлсбад, штат Калифорния) в различных комбинациях. После поверхностного окрашивания клеточные мембраны пермеадилизировали с помощью раствора Fix & Perm (поставщик - Invitrogen), и клетки окрашивались моноклональными антителами: против следующих антигенов: p24 ВИЧ-1
^ , ^^ ^ , gag
меченых флуоресцинизотиоцианатом (поставщик
- компания Beckman Coulter, фуллертон, штат Калифорния), Bcl-2 меченых фикоэритрином (поставщик - компания BD Biosciences, Сан-Хосе, штат Калифорния) и AP02.7, меченых фикоэритрином Cy5 (поставщик - Beckman Coulter). Вслед за изменением проницаемости мембраны с помощью набора FOXP3 Fix/Perm Buffer (поставщик
- компания Biolegend, Сан-Диего, штат Калифорния) клетки окрашивались моноклональным антителом против Ki-67 меченными фикоэритрином (поставщик - BD Biosciences).
Данные регистрировались на проточном цито-метре LSR II (поставщик - BD Biosciences) с линиями излучения лазера величиной 335, 405, 488, 532 и 638 нм, использующим программное обеспечение DIVA 6.1.2 (поставщик - BD Biosciences), и анализировали программой FlowJo, версия 9.4.10 (поставщик - компания Tree Star, Эшленд, штат Орегон). Мы выявили и исключили из анализа мертвые клетки с использованием набора оборудования Blue Dead Cell Stain (поставщик - Invitrogen), и определили область лимфоцитов в соответствии с их светорассеивающими характеристиками. Количественные показатели истощения популяции клеток были получены с использованием счетных бусинок аппаратуры AccuCheck (поставщик
- Invitrogen) в соответствии с указаниями производителя.
Динамический иммунофлюоресцентный цито-метрический анализ для определения количества
p24 ВИЧ-1
^ gag
Мы произвели оценку продуктивности ВИЧ-1-инфекции путем измерения количества антигена p24 ВИЧ-1 в среде культур тонзиллярной и церви-ковагинальной тканей, используя метод динамического иммунофлюоресцентного цитометрического
гранульного анализа. Анализ производился в соответствии с описанием, приведенным в одной из предыдущих работ [52].
Статистический анализ
Для проведения статистического анализа мы использовали программное обеспечение GraphPad Prism (версия 4.0с). Чтобы учесть вариабельность показателей между донорами, мы рассчитали соотношения между следующими донорскими параметрами (отдельно при воздействии ИЛ-7 и без него): значения концентрации p24 ВИЧ-1 в культураль-ных средах, число и процентная доля CD8- p24 + Т-клеток, процентные доли AP02.7+ Т-клеток, Kg-67+ Т-клеток и значения СИФ для Bcl-2. Для показателей истощения популяции Т-клеток CD4+ мы рассчитали разницу между процентными долями клеток CD3+ CD8- под воздействием ИЛ-7 и без его воздействия. Значения соотношений и разницы были сначала подвергнуты логарифмическому преобразованию для получения нормального распределения, проверенного по критерию нормальности Шапиро-Вилка, а для теста на ненулевое среднее значение использовались одновыборочные /-критерии. Все критерии были двусторонними, значение p < 0,05 соответствовало статистической значимости.
Номера доступа
В базе данных UniProtKB (адрес вебсайта: http:// www.uniprot.org/) белки, о которых шла речь в данной статье, имеют следующие номера доступа: BCL2 HUMAN (P10415), IL-7HUMAN (P13232), KI67 HUMAN (P46013) иp24 ВИЧ-1 (Q7ZBG8).
Благодарность
Благодаря Программе предоставления исследовательских и референтных реагентов СПИД отдела по борьбе с СПИД Национального института аллергии и инфекционных заболеваний национальных институтов здоровья были получены следующие исходные вещества: ВИЧ-120, ВИЧ-197Ш^0 и ВИЧ-196USNG31 от докторов Д. Элленбергера, П. Салливэна и Р.Б. Лэла [50] и ВИЧ-1МЕ1 от доктора Фальгуни Гупта [51]. Выражаем признательность докторам Р. Ромеро и С.С. Хассан за великодушно предоставленную помощь в экспериментах с цервиковагиналь-ной тканью.
Настоящая работа является частью исследования, проводимого А. Интроини в аспирантуре Миланского университета в сотрудничестве с Национальными институтами здравоохранения по направлению «Молекулярная медицина» на соискание степени доктора наук.
Участие авторов в работе
Разработка и планирование экспериментов: Ан-дреа Интроини, Кристоф Ванпуй, Андреа Лиско, Жан-Шарль Гривель, Леонид Марголис.
Проведение экспериментов: Андреа Интроини, Кристоф Ванпуй.
Анализ данных: Андреа Интроини, Кристоф Ван-пуй, Жан-Шарль Гривель, Леонид Марголис.
Написание статьи: Андреа Интроини, Кристоф Ванпуй, Андреа Лиско, Жан-Шарль Гривель, Леонид Марголис.
Финансирование. Данное исследование проводилось при поддержке Внутренней исследовательской программы национальных институтов здоровья. Спонсоры не участвовали в планировании исследования, сборе и анализе данных, принятии решения относительно публикации и подготовке рукописи.
Конкурирующие интересы. Авторы заявили об отсутствии каких бы то ни было конкурирующих интересов.
ЛИТЕРАТУРА
1. World Health Organization (2010) Global Report: UNAIDS Report on the global AIDS epidemic. Available: http://www.unaids. org/globalreport/global_report.htm.
2. Doncel G.F., Joseph T., Thurman A.R. Role of semen in HIV-1 transmission: inhibitor or facilitator? Am. J. Reprod. Immunol. 2011; 65: 292-301.
3. Sabatte J., LenicovF.R., CabriniM., Rodriguez C.R., Ostrowski M. et а!. The role of semen in sexual transmission of HIV: beyond а carrier for virus particles. Microbes Infec. 2011; 13: 977-82.
4. Munch J., Rucker E., Standker L., Adermann K., Goffinet C. et
al. Semenderived amyloid fibrils drastically enhance HIV infection. Cell. 2007; 131: 1059-71.
5. Roan N.R., Muller J.A., Liu H., Chu S., ArnoldF. et al. Peptides released by physiological cleavage of semen coagulum proteins form amyloids that enhance HIV infection. Cell Host Microbe. 2011; 10: 541-50.
6. Martellini J.A., Cole A.L., Venkataraman N., Quinn G.A., Svo-boda P. et al. Cationic polypeptides contribute to the anti-HIV-1 activity of human seminal plasma. FASEB J. 2009; 23: 3609-18.
7. Politch J.A., Tucker L., Bowman F.P., Anderson D.J. Concentrations and significance of cytokines and other immunologic factors in semen of healthy fertile men. Hum. Reprod. 2007; 22: 2928-35.
8. Berlier W., CremelM., Hamzeh H., Levy R., LuchtF et al. Seminal plasma promotes the attraction of Langerhans cells via the secretion of CCL20 by vaginal epithelial cells: involvement in the sexual transmission of HIV. Hum. Reprod. 2006; 21: 1135-42.
9. Kafka J.K., Sheth P.M., NazliA., Osborne B.J., Kovacs C. et al. Endometrial epithelial cell response to semen from HIV-infected men during different stages of infection is distinct and can drive HIV-1-long terminal repeat. AIDS. 2012; 26: 27-36.
10. Li Q., Estes J.D., SchlievertP.M., Duan L., BrosnahanA.J. et al. Glycerol monolaurate prevents mucosal SIV. transmission. Nature. 2009; 458: 1034-8.
11. Ochiel D.O., Ochsenbauer C., Kappes J.C., Ghosh M., Fahey J.V. et al. Uterine epithelial cell regulation of DC-SIGN expression inhibits transmitted/founder HIV-1 trans infection by immature dendritic cells. PloS One. 2010; 5: e14306.
12. Anderson J.A., Ping L.H., Dibben O., Jabara C.B., Arney L. et al. HIV-1 populations in semen arise through multiple mechanisms. PLoS Pathog. 2010; 6: e1001053.
13. Lisco A., Munawwar A., Introini A., Vanpouille C., Saba E. et al. Semen of HIV-1-infected individuals: local shedding of her-pesviruses and reprogrammed cytokine network. J. Infect. Dis. 2012; 205: 97-105.
14. Jiang Q., Li W.Q., Aiello F.B., Mazzucchelli R., Asefa B. et al.
Cell biology of IL-7, a key lymphotrophin. Cytokine Growth Factor Rev. 2005; 16: 513-33.
15. Mackall C.L., Fry T.J., Gress R.E. Harnessing the biology of IL-7 for therapeutic application. Nature Rev. Immunol. 2011; 11: 330-42.
16. Levy Y., Sereti I., Tambussi G., Routy J.P., Lelievre J.D. et al.
Effects of recombinant human interleukin 7 on T-cell recovery and thymic output in HIV-infected patients receiving antiretroviral therapy: Results of a phase I/IIa randomized, placebo-controlled, multicenter study. Clin. Infect. Dis. 2012; 55: 291-300.
17. Sereti I., Dunham R.M., Spritzler J., Aga E., Proschan M.A. et al. IL-7 administration drives T cell-cycle entry and expansion in HIV-1 infection. Blood. 2009; 113: 6304-14.
18. Gougeon M.L., Chiodi F Impact of gamma-chain cytokines on T cell homeostasis in HIV-1 infection: therapeutic implications. J. Intern. Med. 2010; 267: 502-14.
19. Sieg S.F. Interleukin-7 Biology in HIV Disease and the Path to Immune Reconstitution. Curr. HIV Res. 2012; 10: 341-7.
20. Vernazza PL., Eron J.J., Fiscus S.A. Sensitive method for the detection of infectious HIV in semen of seropositive individuals. J. Virol. Meth. 1996; 56: 33-40.
21. Allen R.D., Roberts T.K. Role of spermine in the cytotoxic effects of seminal plasma. Am. J. Reprod. Immunol. Microbiol. 1987; 13: 4-8.
22. Okamoto M., Byrn R., Eyre R.C., Mullen T., Church P. et al.
Seminal plasma induces programmed cell death in cultured peripheral blood mononuclear cells. AIDS Res. Hum. Retrovirus. 2002; 18: 797-803.
23. Karlsson I., Grivel J.C., Chen S.S., Karlsson A., Albert J. et al. Differential pathogenesis of primary CCR5-using human immunodeficiency virus type 1 isolates in ex vivo human lymphoid tissue. J. Virol. 2005; 79: 11151-60.
24. SabaE., Grivel J.C., Vanpouille C., BrichacekB., Fitzgerald W. et al. HIV-1 sexual transmission: early events of HIV-1 infection of human cervico-vaginal tissue in an optimized ex vivo model. Mucosal Immunol. 2010; 3: 280-90.
25. Grivel J.C., Biancotto A., Ito Y., Lima R.G., Margolis L.B. Bystander CD4+ T lymphocytes survive in HIV-infected human lymphoid tissue. AIDS Res. Hum. Retrovirus. 2003; 19: 211-6.
26. Grivel J.C., Malkevitch N., Margolis L. Human immunodeficiency virus type 1 induces apoptosis in CD4(+) but not in CD8(+) T cells in ex vivo-infected human lymphoid tissue. J. Virol. 2000; 74: 8077-84.
27. GuillemardE., NugeyreM.T., CheneL., SchmittN., Jacquemot C. et al. Interleukin-7 and infection itself by human immunodeficiency virus 1 favor virus persistence in mature CD4(+)CD8(2) CD3(+) thymocytes through sustained induction of Bcl-2. Blood. 2001; 98: 2166-74.
28. HaaseA.T. Targeting early infection to prevent HIV-1 mucosal transmission. Nature. 2010; 464: 217-23.
29. KhaledAR., DurumS.K. Lymphocide: cytokines and the control of lymphoid homeostasis. Nature Rev. Immunol. 2002; 2: 817-30.
30. Kim K., Lee C.K., Sayers T.J., Muegge K., Durum S.K. The trophic action of IL-7 on pro-T cells: inhibition of apoptosis of pro-T1, -T2, and -T3 cells correlates with Bcl-2 and Bax levels and is independent of Fas and p53 pathways. J. Immunol. 1998; 160: 5735-41.
31. Sprent J., Surh C.D. Normal T cell homeostasis: the conversion of naive cells into memory-phenotype cells. Nature Immunol. 2011; 12: 478-84.
32. Di Carlo E., D'Antuono T., Pompa P., Giuliani R., Rosini S.
et al. The lack of epithelial interleukin-7 and BAFF/BLyS gene expression in prostate cancer as a possible mechanism of tumor escape from immunosurveillance. Clin. Cancer Res. 2009; 15: 2979-87.
33. Fichorova R.N., Anderson D.J. Differential expression of im-munobiological mediators by immortalized human cervical and vaginal epithelial cells. Biol. Reprod. 1999; 60: 508-14.
34. Zeng M., Southern P.J., Reilly C.S., Beilman G.J., Chipman J.G. et al. Lymphoid tissue damage in HIV-1 infection depletes naive T cells and limits T cell reconstitution after antiretroviral therapy. PLoS Pathog. 2012; 8: e1002437.
35. Keele B.F., Giorgi E.E., Salazar-Gonzalez J.F., Decker J.M., Pham K.T. et al. Identification and characterization of transmitted and early founder virus envelopes in primary HIV-1 infection. Proc. Natl Acad. Sci. U S A. 2008; 105: 7552-7.
36. RegoesR.R., Bonhoeffer S. The HIV coreceptor switch: a population dynamical perspective. Trends Microbiol. 2005; 13: 269-77.
37. Smithgall M.D., Wong J.G., Critchett K.E., Haffar O.K. IL-7 up-regulates HIV-1 replication in naturally infected peripheral blood mononuclear cells. J. Immunol. 1996; 156: 2324-30.
38. Unutmaz D., KewalRamani V.N., Marmon S., Littman D.R. Cytokine signals are sufficient for HIV-1 infection of resting human T lymphocytes. J. Exp. Med. 1999; 189: 1735-46.
39. Bosque A., Famiglietti M., Weyrich AS., Goulston C., Planelles V. Homeostatic proliferation fails to efficiently reactivate HIV-1 latently infected central memory CD4+ T cells. PLoS Pathog. 2011; 7: e1002288.
40. Wang FX., Xu Y., Sullivan J., Souder E., Argyris E.G. et al. IL-7 is a potent and proviral strain-specific inducer of latent HIV-1 cellular reservoirs of infected individuals on virally suppressive HAART. J. Clin. Invest. 2005; 115: 128-37.
41. Vassena L., Proschan M., FauciAS., Lusso P. Interleukin 7 reduces the levels of spontaneous apoptosis in CD4+ and CD8+ T cells from HIV-1-infected individuals. Proc. Natl Acad. Sci. U S A. 2007; 104: 2355-60.
42. VassenaL., MiaoH., Cimbro R., MalnatiM.S., Cassina G. et al. Treatment with IL-7 prevents the decline of circulating CD4+ T cells during the acute phase of SIV infection in rhesus macaques. PLoS Pathog. 2012; 8: e1002636.
43. Armitage R.J., Namen A.E., Sassenfeld H.M., Grabstein K.H. Regulation of human T cell proliferation by IL-7. J. Immunol. 1990; 144: 938-41.
44. Nugeyre M.T., Monceaux V., Beq S., Cumont M.C., Ho Tsong Fang R. et al. IL-7 stimulates T cell renewal without increasing viral replication in simian immunodeficiency virus-infected macaques. J. Immunol. 2003; 171: 4447-53.
45. Steffens C.M., Managlia E.Z., Landay A., Al-Harthi L. Inter-leukin-7-treated naive T cells can be productively infected by T-cell-adapted and primary isolates of human immunodeficiency virus 1. Blood. 2002; 99: 3310-18.
46. Llano A., Barretina J., Gutierrez A., Blanco J., Cabrera C. et al. Interleukin-7 in plasma correlates with CD4 T-cell depletion and may be associated with emergence of syncytium-inducing variants in human immunodeficiency virus type 1-positive individuals. J. Virol. 2001; 75: 10319-25.
47. Schmitt N., Chene L., Boutolleau D., Nugeyre M.T., Guil-lemard E. et al. Positive regulation of CXCR4 expression and signaling by interleukin-7 in CD4+ mature thymocytes correlates with their capacity to favor human immunodeficiency X4 virus replication. J. Virol. 2003; 77: 5784-93.
48. Anderson D.J., Politch J.A., Nadolski A.M., Blaskewicz C.D., Pudney J. et al. Targeting Trojan Horse leukocytes for HIV prevention. AIDS. 2010; 24: 163-87.
49. Grivel J.C., Margolis L. Use of human tissue explants to study human infectious agents. Nat. Protoc. 2009; 4: 256-69.
50. Sullivan P.S., Do A.N., Ellenberger D., Pau C.P., Paul S. et al. Human immunodeficiency virus (HIV) subtype surveillance of African-born persons at risk for group О and group N HIV infections in the United States. J. Infect. Dis. 2000; 181: 463-9.
51. Chen M., Singh M.K., Balachandran R., Gupta P. Isolation and characterization of two divergent infectious molecular clones of HIV type 1 longitudinally obtained from a seropositive patient by a progressive amplification procedure. AIDS Res. Hum. Retrovirus. 1997; 13: 743-50.
52. Biancotto A., Brichacek B., Chen S.S., Fitzgerald W., Lisco A. et al. A highly sensitive and dynamic immunofluorescent cytometric bead assay for the detection of HIV-1 p24. J. Virol. Meth. 2009; 157: 98-101.
Поступила 15.03.13
