CC BY
69
УЧЕНЫЕ ЗАПИСКИ КАЗАНСКОГО ГОСУДАРСТВЕННОГО УНИВЕРСИТЕТА Том 147, кн. 2 Естественные науки 2005
УДК 579.083.13
ИНДУКЦИЯ ГИПОМЕТАБОЛИЧЕСКИХ ФОРМ У НЕСПОРООБРАЗУЮЩИХ ГРАМПОЛОЖИТЕЛЬНЫХ
БАКТЕРИЙ
А.Б. Маргулис, О.Н. Ильинская, А.И. Колпаков, К. Муфер
Аннотация
Одной из проблем снижения эффективности средств антибактериальной терапии является образование гипометаболических, в частности некультивируемых, форм микроорганизмов, не подверженных действию препаратов. Показано, что гомосеринлактон и пара-2-гидроксиэтилфенол ускоряют реверсию штамма B. subtilis spo0E к спорообразующему фенотипу. Для Staphylococcus aureus индуктором гипометаболизма явился только гексилрезорцин. Индукция гипометаболических форм при длительном культивировании штаммов не приводит к образованию новых морфотипов колоний и не связана с синтезом собственных алкилрезорцинов.
Введение
Регулирование перехода микроорганизмов в состояние покоя имеет большое значение для биотехнологии и медицины. Прикладной аспект этой проблемы связан с потенциальной возможностью управления такими процессами, как образование некультивируемых форм патогенов, устойчивых к фармакологическому воздействию, и сохранение целевой активности промышленных штаммов микроорганизмов - продуцентов биологически активных веществ. В настоящее время хорошо известна способность многих патогенных бактерий существовать и размножаться в объектах внешней среды - почвах, водоемах и др. Феномен перехода в некультивируемое состояние в последнее время привлекает внимание исследователей, поскольку образование некультивируемых форм, по-видимому, может обеспечивать сохранение патогенных бактерий в межэпидемические и межэпизоотические периоды [1]. Способность к переходу в некультивируемое состояние к настоящему времени выявлена для многих (около 30 видов) патогенных бактерий, но механизмы этого процесса остаются неясными [1, 2].
Известно, что микроорганизмы в условиях стресса вступают на путь образования анабиотических форм, позволяющих выжить в неблагоприятных условиях. Подобные формы описаны для многих бактерий [3], в том числе и спорообразующих бацилл в условиях репрессии спорообразования [4]. Снижение интенсивности обмена веществ вегетативных клеток может быть усилено веществами - индукторами гипометаболического состояния. Подтверждено участие в этом процессе ряда химических факторов эндогенного происхождения, в частности алкилрезорцинов [4, 5]. Физиологическое состояние бактерий может ре-
гулироваться по принципу «кворум-эффект», т. е. при достижении эндогенным регулятором определенной концентрации, создаваемой культурой определенных плотности и возраста. В химической коммуникации у бактерий принимают участие различные соединения [6, 7]. Для ацилированных лактонов гомосерина установлено участие в «эффектах кворума» у грамотрицательных бактерий [8, 9]. У стафилококков плотностно-регулируемые процессы осуществляются с участием низкомолекулярных пептидов, также содержащих лактонные структуры [10]. Исследование регуляции физиологического состояния микроорганизмов экзогенными алкилрезорцинами и гомосеринлактоном у грамположи-тельных бактерий, как неспорообразующих, так и с нарушенной системой спо-руляции, было целью настоящей работы.
1. Постановка задачи
Объектом исследования служили грамположительные бактерии: мутантный по спорообразованию штамм Bacillus subtilis spoOE (phe A1, spoOE 11, trp C2) из коллекции ATCC (IDA), США, и штамм Staphylococcus aureus ОК, клинический изолят из коллекции Медицинской Академии Республики Татарстан. Работали с соединениями класса алкилрезорцинов (AR): химические аналоги ауторегуляторных факторов d1 бактерий - метилрезорцин и гексилрезорцин. Для установления возможного неспецифичного действия ауторегуляторного фактора дрожжей по отношению к бактериям был выбран пара-2-гидроксиэти-лфенол - регулятор группы d1 у дрожжей [5], а также применяли индуктор включения luxI-luxR-оперона - гомосеринлактон, являющийся зависимым от плотности культуры регулятором физиологического состояния бактерий [11]. Исходные растворы веществ готовили в диметилсульфоксиде (DMSO) в концентрации 10 мг/мл, рабочую концентрацию (50 мкг/мл) получали, делая разведение стерильной дистиллированной водой. Гомосеринлактон растворяли в воде.
Исходный титр бактерий в суспензии, полученной смывом культур с L-агара, составлял для бацилл 3.4x10 и для стафилококков 6.1x10 колониеобразующих единиц (КОЕ) на 1 мл дистиллированной воды. Суспензию инкубировали в стационарных условиях при 30°С в колбах на 100 мл, содержащих 30 мл дистиллированной воды с каждым из соединений (50 мкг/мл, опытный вариант) и без вещества (контрольный вариант).
Каждые две недели проводили оценку КОЕ с описанием морфологии колоний. 0.1 мл суспензии наносили на поверхность L-агара в чашки Петри и распределяли равномерно по поверхности агара. При высеве использовали метод предельных разведений. Каждые две недели проводили проверку инкубируемого материала на наличие спор (для штамма B. subtilis spoOE) и оценку числа некультивируемых клеток (для штамма S. aureus) с использованием теста Kogure, основанного на положении, что жизнеспособные клетки увеличиваются в размерах при добавлении богатого питательного субстрата в условиях одновременного блокирования репликации и деления [12]. Для этого образец, в котором присутствовали различные по жизнеспособности клетки, инкубировали 4 ч и 24 ч при 30°С в присутствии 250 мкг/мл дрожжевого экстракта и 20 мкг/мл налидиксовой кислоты. После инкубации каплю из суспензии фиксировали на предметном стекле формальдегидом. Число различных по морфо-
логии клеток регистрировали под микроскопом в 20 полях зрения и выражали в процентах по отношению к общему числу бактерий.
Для установления возможности синтеза AR рабочими штаммами проводили культивирование их в жидкой питательной среде (L-бульон) в течение 6 недель при 30°С без добавления исследуемых веществ. По окончании срока культивирования бактерии осаждали центрифугированием (20 мин. при 3000 g). Надосадочную жидкость и осадок, разведенный в 1 мл дистиллированной воды, отдельно проверяли на наличие алкилрезорцинов в цветной реакции с Fast Blue B (FBB, Sigma) [13]. 2.5 мг FBB растворяли в 5 мл 5%-ной уксусной кислоты и доводили объем «-пропанолом до 25 мл. 0.5 мл исследуемой суспензии смешивали с 1.5 мл реактива. Смесь инкубировали в течение 1 ч при комнатной температуре. Измеряли оптическую плотность при X = 490 нм, используя в качестве контрольного варианта стерильный L-бульон. Содержание AR рассчитывали по калибровочной кривой, построенной с использованием гексилре-зорцина.
2. Результаты и обсуждение
Ранее нами было показано, что гексилрезорцин, индуцирующий переход спорообразующего штамма Bacillus subtilis SK1 в гипометаболическое состояние, в концентрации 50 мкг/мл не обладал токсичностью, но индуцировал повреждения генетического материала [14]. В этой концентрации другие регуляторы были также нетоксичны. Отсутствие токсичности позволило выбрать концентрацию 50 мкг/мл для изучения индукции гипометаболического состояния исследуемых микроорганизмов.
Как S. aureus OK, так и дефектный по спорообразованию штамм B. subtilis spoOE сохраняли жизнеспособность в течение всего срока инкубации в условиях голодания (28 и 12 недель соответственно). Было установлено, что характер динамики числа КОЕ при высеве из суспензий штаммов B. subtilis spoOE (рис. 1) и S. aureus OK (рис. 2), подвергавшихся длительному инкубированию, принципиально различен.
Число КОЕ B. subtilis spoOE в течение первых 6-и недель резко падало, а затем в течение всего последующего времени инкубации оставалось практически на одном уровне. Вероятно, это связано с поддержанием популяцией роста на лизате погибших клеток. Однако при сходстве общих тенденций изменения кривых роста B. subtilis spoOE в каждом из вариантов необходимо отметить, что в вариантах с веществами число колоний в каждой временной точке было достоверно меньше, чем в контроле. Наименьшее количество КОЕ регистрировали при высеве бактерий из суспензии с добавлением гомосеринлактона. Также незначительное число КОЕ регистрировали при высеве суспензий с метил- и гексилрезорцином. Кривая роста бактерий в присутствии пара-2-гидрокси-этилфенола имела аналогичный предыдущим кривым характер при несколько большем числе КОЕ по сравнению с другими опытными вариантами (рис. 1).
Таким образом, к 8-й неделе инкубирования способность бацилл к образованию КОЕ под воздействием исследуемых регуляторов уменьшилась на 1-2 порядка, причем наибольшим эффектом обладал гомосеринлактон. К этому времени в вариантах с гомосеринлактоном и пара-2-гидроксиэтилфенолом бы-
35000000
О 32000000
34500000
34000000
33500000
33000000
32500000
♦ Гексилрезорцин —О— Метилрезорцин —О— Пара-2-гидроксиэтилфенол —X— Гомосеринлактон
1200
800
400
0
0
2 4 6 8
8
-I--------■------Т-
10 12
Время, недели
Рис. 1. Изменение числа колониеобразующих единиц в процессе культивирования B. subtilis spoOE с добавлением 50 мкг/мл исследуемых веществ - возможных индукторов гипометаболического состояния бактерий - и без их добавления (контроль)
ли обнаружены споры, т. е. произошла реверсия штамма spoOE к исходному спорообразующему генотипу.
К 12-й неделе инкубирования споры появились во всех вариантах, в том числе и контрольном, и составляли до 80% всех клеток в поле зрения микроскопа. Таким образом установлено, что в присутствии гомосеринлактона и па-ра-2-гидроксиэтилфенола реверсия B. subtilis spoOE к спорообразующему фенотипу происходит раньше, чем в контроле. Гомосеринлактон и пара-2-гидрокси-этилфенол не индуцируют генетических повреждений [15, 16], поэтому вряд ли могла иметь место супрессия мутации в гене spoOE. Возможно, что гомосерин-лактон как регулятор, вызывающий индукцию экспрессии генов определенных оперонов (luxI-luxR), у бацилл с нарушенной споруляцией индуцирует синтез белков, компенсирующих функции дефектного SpoOE. Известно, что мутантный белок SpoOE обладает гиперактивностью фосфатазы, что играет роль в репрессии спорообразования [17]. В условиях длительного голодания штамма B. subtilis, несущего мутантный белок SpoOE, восстановление спорообразования можно также связать с ингибированием присущей этому белку фосфатаз-ной активности.
Динамика изменений числа КОЕ для штамма S. aureus OK отражена на рис. 2. К 18-й неделе инкубации наблюдали пик снижения числа КОЕ. Продолжение инкубации привело к активации вторичного роста штамма S. aureus OK во всех вариантах, кроме варианта с гексилрезорцином. Этот факт связали с возможной индукцией перехода стафилококков в гипометаболическое состояние под влиянием гексилрезорцина. Для подтверждения этого предположения мы провели тест Kogure [12] с образцом суспензии клеток S. aureus OK после 28 недель инкубации. Было отмечено, что около 90% клеток суспензии в варианте с гексилрезорцином не отвечали на внесение экзогенного питательного субстрата, в то время как в контрольном варианте (без гексилрезорцина) таких
0 5 10 15 20 25
Время, недели
Рис. 2. Изменение числа колониеобразующих единиц в процессе культивирования S. aureus OK с добавлением 50 мкг/мл исследуемых веществ - возможных индукторов гипометаболического состояния бактерий - и без их добавления (контроль)
клеток было обнаружено лишь 27% (табл. 1). Клетки, не реагирующие на внесение питательного субстрата, при этом не окрашивались метиленовым синим, что подтверждает их жизнеспособность. Это означает, что гексилрезорцин действительно способствует переходу стафилококков в гипометаболическое состояние.
Как известно, молекула гомосеринлактона является регуляторной для группы грамотрицательных бактерий [8, 9]. Грамположительные мутантные бациллы, не воспринимающие сигналы к спорообразованию из-за отсутствия белка SpoOE, также были подвержены влиянию гомосеринлактона, которое выражалось в значимом снижении числа КОЕ. Однако грамположительные стафилококки, в отличие от бацилл, не воспринимали гомосеринлактон как сигнал к переходу в гипометаболическое состояние.
Из серии представленных ауторегуляторов только гексилрезорцин можно рассматривать как универсальный индуктор гипометаболического состояния штаммов, не способных к спорообразованию, в то время как гомосеринлактон индуцировал переход к этому состоянию только у мутантного штамма бацилл.
Проверка способности штаммов синтезировать AR при длительном росте на L-бульоне показала, что исследуемые штаммы в данных условиях культивирования не образуют ауторегуляторов этого типа. AR не были обнаружены ни в клетках, ни в культуральной жидкости, т. е., в отличие от B. cereus [18], мутант
B. subtilis spoOE не продуцирует AR в условиях старения. Тем не менее, результаты нашей работы свидетельствуют, что экзогенный гексилрезорцин функционирует как сигнальная молекула, активирующая переход грамположитель-ных бактерий в гипометаболическое состояние.
Вероятно, описанные выше ауторегуляторы физиологического состояния бактерий в соответствии с их функциями можно рассматривать как один из компонентов механизма стрессоустойчивости. Исследования в этой области позволят создать более полное представление об универсальном ответе микро-
Табл. 1
Процентное содержание клеток в 28-недельной суспензии Staphylococcus aureus OK, отвечающих на внесение экзогенного субстрата (тест Kogure); значение (%) ± стандартное отклонение
Размер клеток Без гексилрезорцина С гексилрезорцином
Крупные клетки, % 73±1.3 10±0.7
Мелкие клетки, % 27±1.1 90±0.8
организмов на стресс и сделать выводы о потенциальной возможности направленной регуляции физиологической активности патогенных бактерий. Клиническая практика нуждается в создании теоретической базы для управления процессами перехода патогенных и сапрофитных микроорганизмов в некультиви-руемое состояние, поскольку устойчивые формы возбудителей плохо поддаются выявлению и элиминации.
Работа выполнена при поддержке Фонда НИОКР Республики Татарстан (проект № 03-3.10-180/2003(Ф)).
Summary
A.B. Margulis, O.N. Ilinskaya, A.I. Kolpakov, K. Mufer. Induction of hypometabolic forms of nonsporeforming grampositive bacteria.
Formation of hypometabolic forms of microorganisms is connected with the decrease of efficiency of antibacterial therapy. It was shown that homoserine lactone and para-2-hydroxyethylphenole increase the frequency of reversion of strain B. subtilis spoOE to spore-forming phenotype. Hexylresorcinol only was showed to be an Inductor of hypometabolic state of Staphylococcus aureus. Induction of hypometabolic forms during long time cultivation of strains doesn’t result in formation of new morphotypes of colonies and synthesis of their own alkylresorcinols.
Литература
1. Литвин В.Ю., Гинцбург А.Л., Пушкарева В.И., Романова Ю.М. Обратимый переход патогенных бактерий в покоящееся (некультивируемое) состояние: экологические и генетические механизмы // Вестник РАМН. - 2000. - № 1. - С. 7-13.
2. Литвин В.Ю., Гинцбург А.Л., Пушкарева В.И. и др. Эпидемиологические аспекты экологии бактерий. - М., 1998.
3. Мулюкин А.Л., Луста К.А., Грязнова М.Н. и др. Образование покоящихся форм Bacillus subtilis и Micrococcus luteus // Микробиология. - 1997. - Т. 66, № 1. - С. 4249.
4. Грязнова М.Н., Эль-Регистан Г.И., Козлова А.Н. и др. Микроорганизмы, их роль в плодородии почвы и охране окружающей среды. - М.: ТСХА им. К. А. Тимирязева, 1985. - С. 88-93.
5. Батраков С.Г., Эль-Регистан Г.И., Придачина Н.Н. и др. Тирозол - ауторегуляторный фактор d\ Saccharomyces cerevisiae // Микробиология. - 1993. - Т. 62, Вып. 4. - С. 633-638.
6. Oleskin A.V. Social behavior of microbial populations // J. Basic Microbiol. - 1994. -V. 34, No 6. - P. 425-439.
7. Oleskin A.V., Samuilov V.D. Technical bioenergetics and ecosystem biotechnology // J. Basic Microbiol. - 1992. - V. 32. - P. 129-149.
8. Fuqua W.C., Winans S.C., Greenberg E.P. Quorum sensing in bacteria: the LuxR-LuxI family of cell density-responsive transcriptional regulators // J. Bacteriol. - 1994. -V. 176, No 2. - P. 269-275.
9. Salmond G.P.C., Bycroft B.W., Stewart C.S.A.B., Williams P. The bacterial “enigma”: cracking the code of cell-cell communication // Mol. Microbiol. - 1995. - V. 16, No 4. -P. 615-624.
10. Mamson M.D., Armitage J.D., Hoch J.A., Macnab R.M. Bacterial locomotion and signal transduction // J. Bacteriol. - 1998. - V. 180, No 5. - P. 1009-1022.
11. Givskov M., Ostling J., Eberl L., et al. Two separate regulatory systems participate in control of swarming motility of Serratia liquefaciens MG1 // J. Bacteriol. - 1998. -V. 18, No 3. - P. 742-745.
12. Kogure K., Simudu U., Taga N. A tentative direct microscopic method for counting living marine bacteria // Can. J. Microbiol. - 1979. - V. 25. - P. 415-420.
13. Tluscik F., Kozubek A., Mejbaum-Katzenellenbogen W. Alkylresorcinols in rye (Secale cereale L.) grains. VI. Colorimetric micromethod for the determination of alkylresorcinols with the use of diazonium salt, Fast Blue B // Act. Soc. Bot. Pol. - 1981. - V. 50, No 7. - P. 645-651.
14. Ильинская О.Н., Колпаков А.И., Зеленихин П.В. и др. Влияние аутоиндукторов анабиоза бактерий на геном микробной клетки // Микробиология. - 2002. - Т. 71, № 2. -P. 164-168.
15. Бушманова О.В., Ожиганова И.В., Маргулис А.Б. Оценка генотоксических свойств гомосеринлактона // Докл. конф. молодых ученых «Туполевские чтения». - Казань: Изд-во КГТУ им. Туполева, 2003. - Т. 1. - С. 154.
16. Маргулис А.Б., Ильинская О.Н., Колпаков А.И., Эль-Регистан Г.И. Индукция SOS-ответа клетки под действием ауторегуляторных факторов микроорганизмов // Генетика. - 2003. - № 9. - С. 1180-1184.
17. Ohlsen K.L., Grimsley J.K., Hoch J.A. Deactivation of the sporulation transcription factor Spo0A by the Spo0E protein phosphatase // Proc. Natl. Acad. Sci. - USA. - 1994. -P. 1756-1760.
18. Дорошенко Е.В., Лойко Н.Г., Ильинская О.Н. и др. Характеристика диссоциантов Bacillus cereus // Микробиология. - 2001. - Т. 70, № 6. - С. 811-819.
Поступила в редакцию 15.06.05
Маргулис Анна Борисовна - аспирант кафедры микробиологии Казанского государственного университета.
E-mail: [email protected]
Ильинская Ольга Николаевна - доктор биологических наук, профессор, заведующая кафедрой микробиологии Казанского государственного университета.
E-mail: [email protected]
Колпаков Алексей Иванович - кандидат биологических наук, старший научный сотрудник, заведующий НИЛ ББФ Казанского государственного университета.
E-mail: [email protected]
Муфер Консолар - аспирант кафедры микробиологии Казанского государственного университета.
