CC BY
84
33,11 (Р<0,01), 3-месячном — на 23,81, 6-месячном — на 47,14% (Р<0,01).
Тироксина было меньше контрольных значений соответственно на 3,14%, 15,б6 (Р<0,01), 27,62 (Р<0,05), 21,43 (Р<0,05), 37,50 (Р<0,05), 18,59 (Р<0,01), 25,98% (Р<0,001), а тироксинсвязыва-ющего глобулина на 28,52 (Р<0,001), 16,89 (Р<0,01), 21,85 (Р<0,001), 13,48, 13,92 (Р<0,05), 15,50 (Р<0,001), 12,84% (Р<0,05).
Таким образом, хроническая интоксикация организма крупного рогатого скота тяжелыми металлами приводила к глубоким нарушениям в функционировании щитовидной железы.
Литература
1 Паршин, А. А., Конопельцев, И. Г., Сапожников, А. Ф. Гормоны. Применение гормональных препаратов в ветеринарии: учебное пособие. — Киров, 1998. — С. 45.
2 Аухатова, С. Н., Ильбульдин, Ю. Ф., Фенченко, Н. Г. Состояние щитовидной железы под воздействием токсикантов // Современные вопросы ветеринарной медицины и биологии: сб. науч. тр. по материалам Первой межд. конф. — Уфа, 2000. - С.14—15.
3 Гребенщиков, А. В., Сулейманов, С. М. Гипофункция щитовидной железы телят в условиях экологического неблагополучия // Актуальные проблемы диагностики, профилактики
и терапии болезней животных в современных экологических условиях: матер. межрегион. научно-практ. конф. — Барнаул, 2001. - С.33—34.
4 Жуков, А. П. Антропогенное воздействие на окружающую природную среду и клинический статус крупного рогатого скота Восточного Оренбуржья // Экологические проблемы патологии, фармакологии и терапии животных: матер. Межд. коорд. совещания. — Воронеж, 1997. — С.74-76.
5 Климов, О. Г. Морфология щитовидной железы крупного рогатого скота при зобной болезни в районах техногенных загрязнений // Матер. научно-произв. конф. по актуальным проблемам ветеринарии и зоотехнии (Часть 1). — Казань, 2001. — С. 148—150.
6 Папуниди, К. Х., Шкуратова, И. А. Техногенное загрязнение окружающей среды как фактор заболеваемости животных // Ветеринарный врач. — 2000. — №2. — С.56—60.
7 Шкуратова, И. А., Аристархова, Л. Н., Климов, О. Г. Профилактика зобной болезни телят // Роль зооветобразования в профилактике болезней и лечении животных: тез. докл./ МВА им. К. И. Скрябина. — М., 1999. — С.139—140.
8 Шкуратова, И. А., Аристархова, Л. Н., Малыгина, А. А. Особенности проявления йодной недостаточности крупного рогатого скота // Экологические проблемы патологии, фармакологии и терапии животных: матер. Межд. координационного совещания. — Воронеж, 1997. — С.165—166.
9 Шкуратова, И. А., Климов, О. Г. Морфофункциональные проявления зобной болезни телят в разных экологических зонах // Морфология и хирургия в практической ветеринарии и медицине: сб. научн. работ. — Оренбург, 1999. — С.202—204.
Иммунный статус коров и телят в зависимости от сезона года и времени после отела
A. Р. Аглюлина, к.вет.н, ст. преподаватель, А. П. Жуков, д.вет.н, профессор, В. Л. Леуцкий, соискатель, Оренбургский ГАУ
Установлено, что организм реактивен на любом этапе онтогенеза, однако проявление этой реактивности на разных его стадиях неодинаково. Это обстоятельство обуславливает возникновение болезней, протекающих у молодых животных иначе, чем у взрослых, поэтому изучению особенностей резистентности и иммунной реактивности организма молодняка на данном этапе развития посвящено большое количество работ [1, 2, 3]. Известно, что уровень иммуноглобулинов в сыворотке крови телят находится также в определенной зависимости от качества молозива [3, 4]. Более того, Ю. Н. Федоров (1996) отмечал, что молозиво является единственным источником иммуноглобулинов, а следовательно, и иммунологической защиты. Это перекликается с опубликованными данными
B. М. Холода (1984), который свидетельствует о том, что в практике большое значение имеет своевременная оценка иммунологического статуса новорожденных животных, основанная на поступлении иммуноглобулинов молозива. Известно, что в первые сутки после родов в молозиве содержится оптимальный набор питательных веществ, необходимый не только для роста и развития теленка, но и для формирования естественных защитных сил [6].
Целью наших исследований явилось определение уровня иммуноглобулинов класса Y и М в сыворотке крови телят и коров, а также в молоке коров в различные периоды после отела в зависимости от сезона года.
Исследования проводили на молочно-товарном комплексе ЗАО «Ключевское» Беляевского района Оренбургской области. В опытную группу были включены коровы 5—7 лет в различные периоды после отела и телята разного пола в возрасте 1—180 дней. Работа проводилась в первую декаду каждого второго месяца сезона года (январь, апрель, июль, октябрь).
Показатели микроклимата в помещении для подопытных животных всех возрастов по физическим и химическим параметрам соответствовали зоогигиеническим и ветеринарным требованиям, за исключением влажности и содержания аммиака, которые были незначительно выше предельно допустимых норм — из-за неудовлетворительной работы вентиляционной и канализационной систем. Это немаловажно, поскольку иммунитет, приобретенный через молозиво, эффективен только в среде, в которой содержали мать [7]. Количественные исследования иммуноглобулинов проводили методом радиальной иммунодиффузии в геле по МапсЫш J. е1 а1. в модификации О. Н. Грызловой с соавт. (1980). Весь цифровой материал обрабатывался на 1ВМ совместимом
персональном компьютере, с помощью программ «Statgraf» и «Stat expert».
Нами установлено, что в зимний период в течение первого часа после отела содержание IqM в крови коров составило 4,21+0,18 мг/мл и в ближайшие 12 часов существенных изменений не регистрировалось (рис 1). Через 1 и 2-е суток после незначительного снижения в среднем на 10,3%, отмечалось повышение этого показателя, и через 3 и 7 суток уровень иммуноглобулинов М составил 7,91±0,07 и 6,78±0,13 мг/мл соответственно. Через 10 суток регистрировали снижение количества исследуемого показателя в 1,18—1,38 раза, через 14 — в 1,19 раза.
В крови коров в зимний период разница между наибольшим и наименьшим показателями IqY была равна 32,8%. Характер изменения содержания иммуноглобулинов следующий. В первые 12 часов после отела их концентрация возрастает лишь на сотые доли процента, затем через 24 часа идет незначительное снижение (до 13,03±0,46), в последующие двое суток — с 13,03±0,46 до 11,96± 0,47 мг/мл, через трое суток вновь повышается на 23%, через 7 суток — уменьшается в 0,9 раза, а через 10 и 14 суток уровень IqY делает резкий скачок и достоверно возрастает до 27,52±0,78 и 36,44±0,80 мг/мл соответственно. В апреле уровень IqM в крови коров достоверно падает с 4,08±0,11 (до 1 часа после отела) до 3,01±0,12, составляя в среднем 3,46±0,14 мг/мл. Через трое суток увеличивается в 2,05 раза, после чего плавно уменьшается на 17,8, 15,1 и 17,7%, соответственно, через 7, 10 и 14 суток.
Несколько иной характер имеет кривая изменений содержания IqY. Если в первые трое суток их количество, как и в случае с иммуноглобулинами М, возрастает, то через 7 суток незначительно уменьшается и вновь возрастает, достигая через 14 суток максимального значения (27,29±0,83 мг/мл). В июле содержание иммуноглобулинов М также плавно снижается до третьих суток исследования, через 3 суток возрастает до 6,7±0,13 мг/мл, после чего вновь начинает уменьшаться. Наименьший показатель концентрации IqY в крови зафиксирован в первые исследуемые часы с мак-
симальным насыщением крови через 10 и 14 часов. В осенний период кривая изменений содержания иммуноглобулинов класса М подобна таковой в остальные сезоны исследования. Период максимальных значений вновь отмечен через 3 суток (7,01±0,21мг/мл), а минимальных — через двое (3,95±0,08 мг/мл). Также и иммуноглобулины класса X постепенно снижаясь от 14,51±0,37 до 10,96±0,39 на вторые сутки, на третьи — повышаются до 15,36±0,39, через 7 — достоверно уменьшаются до 13,8±0,40, а через 10 суток и 2 недели после отела возрастают до 28,69±0,91 и 39,81±0,61 мг/мл соответственно.
По содержанию иммуноглобулинов в молоке отмечалось следующее. Содержание ^М с течением лактации уменьшается: если в первом удое зимой их было 5,79±0,18, то через двое суток становится уже 2,42±0,10, а через 2 недели достигает минимума — 1,08±0,07 мг/мл (рис. 2). Исключением стойкого снижения является период третьих суток, когда показатель незначительно повышается. Такую же картину можно наблюдать и в остальные месяцы исследований. Наибольшее количество IqY у всех исследуемых животных наблюдалось в молозиве первого удоя. В дальнейшем, к 3-му дню лактации, содержание значительно снижалось и в течение 10—11 суток дней оставалось примерно на одном уровне (в среднем в зимний период — 3,05±0,18 мг/мл). Следовательно, основные изменения молозивного периода длятся в течение первых 3—4 дней лактации, что не противоречит утверждениям других исследователей [9]. Отметим, что если в молоке коров при максимальном значении в первые дни после отела к 14-му дню количество иммуноглобулинов достигает минимума, то в крови — все наоборот (рис. 3).
Содержание ^М в крови телят с возрастом имеет тенденцию к увеличению. Так, сразу после рождения, имея средний показатель в 0,43 мг/мл, ^М к полугодовалому возрасту увеличивается почти в 10 раз.
Иммуноглобулины класса X начиная с 0,25±0,01 мг/мл, стабильно увеличиваются и к шести месяцам достигают максимальных значений.
Рис. 2 - Содержание IqM в молоке коров по сезонам года
Если сравнивать количество иммуноглобулинов в крови телят и в молоке их матерей, то получается, что с уменьшением содержания иммуноглобулинов М и Y в молоке происходит увеличение их содержания в крови телят.
Полученные результаты наших исследований несколько расходятся с данными литературы, где указано, что на 3—5 сутки жизни содержание иммуноглобулинов должно уменьшаться [2]. Кроме того, М. И. Немченко (1984) установлено, что иммунные глобулины молозива у новорожденных телят адсорбируются в кишечнике в течение первых 24—36 часов жизни, а наиболее интенсивно всасываются в первые 6—8 часов. Р. Р. Игнатьев с соавт.(1984) утверждают, что проницаемость кишечного тракта для иммуноглобулинов не более 24—36 часов, интенсивность всасывания их заметно снижается уже в течение первых суток.
В результате проведенных исследований установлено, что сезонность в содержании иммуноглобулинов М в крови коров явно выражена. В среднем зимой их количество равно 5,14+0,12; весной — 4,10±0,14; летом — 4,47±0,13; осенью — 4,89±0,15 мг/мл. Пик в течение всего периода наблюдения приходится на 3—4 сутки после отела. А индекс сезонности, который показывает, во сколько раз фактический уровень ряда в определенный интервал времени больше среднего уровня, колеблется в пределах 0,9—1,1.
Наивысший показатель иммуноглобулинов класса Y зарегистрирован в период до двух суток после отела — в зимние месяцы и через 10 и 14 суток — осенью, но и по этому показателю размах индекса сезонности находился в пределах от 0,96 до 1,12, что свидетельствует о выраженной разнице изучаемых признаков.
По содержанию IqY в молозиве сезонность выражена ярче, чем в случае с иммуноглобулинами класса М. За все периоды исследований наибольшие показатели IqY отмечаются в осеннее-зимние месяцы.
Рис. 4 - Содержание IqY в крови телят по сезонам года
На количество IqY в крови телят влияние сезонности начинает проявляться на 30-й день их жизни, когда его индекс равен 1,12 при максимальном его значении осенью и минимальном — весной (рис. 4).
Подобная картина отмечалась и в последующие возрастные периоды исследований. По иммуноглобулинам класса М значение индекса составляет в среднем 1,0—1,1, что свидетельствует о маловыраженной сезонности в разности показателей.
Исходя из установленного, следует рекомендовать зооветспециалистам поддерживать иммунный статус животных в весенне-летний период на должном уровне, в том числе введением иммуномодуляторов как стельным коровам, так и новорожденным телятам.
Литература
1 Ширванян, Ю. А. Гуморальный и клеточный иммунитет у телят / Ю. А. Ширванян // Ветеринария. — 1980. — №11. —
С.58—59.
2 Карпуть, И. М. Качество молозива и диспепсия телят / И. М. Карпуть, В. М. Холод, Г. Л. Дворкин // Ветеринария.
- 1982. - № 4. - С.55—57.
3 Немченко, М. И. Гипогаммаглобулинемия новорожденных телят/ М. И. Немченко // Ветеринария. — 1984. — № 5. — С.53-55.
4 Овчинников, С. В. Физиологические и биохимические показатели резистентности новорожденных телят и влияние на них иммуномодулятора иммунофана: автореф. дис. ... канд. биол. наук / С. В. Овчинников. — Самара, 2003. — 18 с.
5 Федоров, Ю. Н. Иммунопрофилактика болезней новорожденных телят / Ю. Н. Федоров // Ветеринария. — 1996. — № 11. — С.3—6.
6 Сидоров, В. Т. Естественная резистентность телят при желудочно-кишечных заболеваниях / В. Т. Сидоров// Ветеринария. — 1984. — № 10. — С.57—59.
7 Игнатьев, Р. Р. Особенности формирования колострально-го иммунитета у телят и ягнят / Р. Р. Игнатьев, Г. Ч. Бондаренко // Ветеринария. — 1994. — № 10. — С.21—22.
8 Грызлова, О. Н. Методические указания по тестированию естественной резистентности телят/ О. Н. Грызлова, П. А. Емель-яненко, В. Н. Денисенко. — М.: МВА, 1980. — 64 с.
9 Тараненко, А. Г. Регуляция молокообразования / А. Г. Та-раненко. — Ленинград: ВО Агропромиздат. Ленинградское издание. — 1987. — 237 с.
10Влияние кратности выпойки молока на развитие, обменные процессы и резистентность телят / П. Т. Лебедев, М. В. Са-ликова, Н. Н. Тарасова и др. // Ветеринария. — 1986. — № 6.
— С.17—20.
