CC BY
12
УДК 636.4: 612.176:591.11
С. С. Грабовський1, О. С. Грабовська2 ГОРМОНАЛЬНИЙ ПРОФ1ЛЬ ТА НЕСПЕЦИФ1ЧНА РЕЗИСТЕНТН1СТЬ КНУР1В ЗА УМОВ ПЕРЕДЗАБ1ЙНОГО СТРЕСУ
^beiecbKm нацюнальний утверситет ветеринарног медицини та бютехнологш
шет С. З. Гжицького, вул. Пекарська, 50, Abeie 79010, Украгна, [email protected]
Чнститут бюлоггг тварин НААН, вул. В. Стуса, 38; м. Abeie, 79034, Украгна,
alice [email protected]
Стаття присвячена досл^дженню гормонального профьлю та вмкту окремих показниюв неспецифiчного iMymTeiy у кровi кнурiв перед забоем за використання бюлопчно активних речовин — антистресорiв та iмyностимyляторiв тваринного походження.
Як бiологiчно активнi речовини у передзабшний перiод використовували екстракт селезшки, отриманий i3 застосуванням ультразвуку (I дослЦна група) протягом п'яти дшв до забою. Екстракти наносили на сухий корм аерозольним методом (70 % спиртовий розчин екстракту селезшки свиш). Кнурам II дослано! групи давали до корму 70 % розчин етанолу. Кнурщ контрольно! групи отримували лише сухий корм господарства.
Рiвень шсулшу, адренокортикотропного гормону та кортизолу у плазмi кровi кнyрiв значно зрк пiсля перевезення на м'ясокомбшат — перед самим забоем порiвняно з цими показниками до перевезення. Фагоцитарна актившсть у кровi кнyрiв дослiдних груп порiвняно з контрольною тдвищилась на 12 % (Р<0,05), фагоцитарний iндекс — на 13 % (Р<0,01), фагоцитарне число — на 14 % (Р<0,05) лише у кровi кнyрiв I дослано! групи, тобто у тварин, яким додатково до корму додавали екстракт селезшки.
Отримаш результати можуть бути використаш у досл^дженнях показникiв клиинного iмyнiтетy i концентрацп стресових гормошв, зокрема кортизолу, на iнших домашшх тваринах з метою пiдвищення резистентносп органiзмy, корекцп та нiвелювання стресового стану тварин перед забоем для покращення якост продукцп.
Ключовi слова: кнурь передзабшний стрес, екстракт селезшки, гормональний профш, неспецифiчна резистентшсть
Grabovskyi S.S.,1 Grabovska O.S.2 HORMONAL PROFILE AND NONSPECIFIC RESISTANCE IN BOAR
UNDER PRE-SLAUGHTER STRESS 1Lviv National University of Veterinary Medicine and Biotechnologies named after S. Z. Gzhytskyj, 50, Pekarska St., Lviv, 79010, Ukraine, [email protected] 2Institute of Animal Biology NAAS, Lviv, 79034, st. V. Stus 38, Ukraine, alice [email protected]
=5»
te-
The article is devoted to determination of hormonal profile and nonspecific resistance in
boars blood before slaughter after using of biologically active substances — animal origin antistressors and immunostimulators.
The purpose of research — determination of changes of insulin, adrenocorticotropic hormone (ACTH), cortisol content in boars blood before slaughter and their correction of natural origin biologically active substances of spleen extract.
Object and research methods. The spleen extract has been additionally entered to the boars feed at 5 days before slaughter as an antistressors and immunostimulators in pre-slaughter period. The experiment was conducted on 15 boars with standard diet. Three groups of boars six months of age (5 boars each) were formed for research. The pig's spleen extract was obtained with ultrasound application (I research group) were using as a biologically active substances to the feed boars in pre-slaughter period. The extracts were applied to dry feed by aerosol method (70 % alcohol solution of spleen extract volume of 1.4 ml per kg body weight). The boars of II research group in the same way received to the feed of 70 % ethanol solution in the same volume. The boars of control group received only dry feed economy. The boars slaughter was held on day 13 hours a.m. Mathematical treatment of the research results worked statistically using the software package Statistica 6.0.
Results and discussion. The ACTH and cortisol level in the boars' blood plasma of experimental and control groups significantly increased after transportation (before the slaughter) compared with the indexes before transportation to meat plant. The ACTH concentration in the boars' blood plasma of I experimental group, which was added to the basic diet spleen extract, was 10 % lower than in the control group boars compared with indicators before and after transportation. The insulin concentration of I experimental and control groups boars was higher after transportation with comparing before transportation to meat plant.
All nonspecific body resistance parameters significantly increased in boars blood, which in addition to food received spleen extract, compared with the control group animals after transportation before slaughter: phagocytic activity increased at 12 %, phagocytic index — 13 % and phagocytic number — 14 %.
On the boars' feeding final stage is necessary to consider a pre-slaughter stress and to apply of natural origin biologically active substances. The results can be used on other farm animals for resistance increasing, correction and avoid their pre-slaughter stress and improve the product quality.
Keywords: boars, pre-slaughter stress, spleen extract, hormonal profile, nonspecific resistance
ВСТУП
Стресовий стан у домаштх тварин i свиней, зокрема, призводить не лише до економiчних втрат, але й до попршення якост 1хньо1 продукцп (Dokmanovic et al., 2014; Kim et al., 2014; Makarchuk & Ushakova, 2014; Rocha et al., 2013). У дослЦженнях (Ferguson, Warner, 2008; Wesoly et al., 2015) встановлено, що тривалкть транспортування та процес розвантаження були причиною ушкодження шири жуйних та кнурiв i3 зазначенням впливу на 6mxiMi4m показники та яюсш характеристики 1х м'яса.
У розвитку стресового синдрому у поросят пiсля вЦлучення вiд свиноматки ключову роль вЦпрають гормони кори наднирник1в — глюкокортико'1ди, рiвень яких у кровi у цей перюд значно пiдвищуeться (Strappini et al., 2009; Чумаченко та in, 2004). З лiтературних джерел вiдомi дослiдження iмунологiчних показникiв, що пов'язанi з вiковими змiнами у специфiчному та неспецифiчному iмунiтетi оргашзму свиней (Петрова, Донник, 2014), з рiзними генотипами (Ганзенко, Лодянов, 2014; Крыштоп, Барило, 2010), з рiзними захворюваннями (Galindo et al., 2012), з хрошчним та гострим стресом рiзноï тривалостi його дп (Bevzyuk & Levicheva, 2014; Kick et al., 2012; Sutherland et al., 2006), з температурними режимами (Xianghong et al., 2011), зi стимулящею iмунних процесiв (Топурия, Семёнов, 2013) та з онтогенезом (Киселев, Обязуева, 2006). На жаль, у наш час — час глобалiзащï та техногенного навантаження на оргашзм, не враховують стрес тварин перед забоем, тому виникае необхЦшсть тдвищення iмунного статусу тварини з метою швелювання передзабiйного стресу. Поряд з тим, вЦсутш дослiдження, пов'язанi з визначенням гормонального профыю та неспецифiчноï резистентноси кровi свиней i, зокрема кнурiв у передзабiйний перiод, та його корекщя бiологiчно активними речовинами.
Найбыьш надiйним, ефективним i екологiчно безпечним методом профыактики стресу у свиней вважають вдосконалення методiв використання антистресорiв та iмуностимуляторiв природного походження, яю б формували в органiзмi мехашзми адаптацп до дп несприятливих чинниюв довк1лля (Coban et al., 2013).
Попередшми дослiдженнями встановлено позитивний вплив екстракту селезiнки на пiдвищення !мунного статусу i зменшення передзабiйного стресу у шур!в (модельний досл1д) (Грабовський, 2014). Як ведомо, у контрол! вроджено'1 1мунно'1 в1дпов1д1 у вищих хребетних важливу роль вЦпрають полiамiни: путресцин (Put), спермiдин (Spd) та спермш (Spm), як1 можуть сприяти розвитку в1дпов1дно'1 адаптивно'1 1мунно'1 реакцп (Грабовський, 2014; Minois et al., 2011), але в лiтературi недостатньо висвгглеш питання про вплив передзабшного стану тварин на окремi показники iмунiтету та д1ю полiамiнiв.
МАТЕР1АЛ I МЕТОДИ
Досл1д провели на 15 кнурах породи Петрен-Дюрок, яких утримували у клггках на сухому корм1 ТзОВ «Лемберг-Агро» села Лщини Жидачiвського району Льв1всько'1 областi. Для дослЦження було сформовано три групи тварин 6-м1сячного в1ку (по 5 тварин у кожнш). Як бюлопчно активнi речовини у передзабiйний перюд (протягом п'яти дшв до забою) використовували екстракт селезшки, одержаний 1з застосуванням ультразвуку (I дослiдна група). Екстракти наносили на сухий корм аерозольним методом (70 % спиртовий розчин екстракту селезшки свиш об'емом 1,4 мл на кг маси тыа). Кнурам
II дослЦно'1 групи давали до корму 70 % розчин етанолу в аналогичному об'емь Кнурцi контрольно'1 групи отримували лише сухий корм господарства. За умов експерименту були збережеш уа бiоетичнi норми згiдно з бвропейською конвенцieю «Про захист хребетних тварин, як використовуються для експериментальних i наукових щлей» (Страсбург, 1986 р.) i «Загальних етичних принцитв експериментiв на тваринах», ухвалених Першим Нацюнальним конгресом з бiоетики (Кшв, 2001) та дотриманням принципiв гуманносп, викладеними у директивi 6вропейсько'1 Стльноти (Directive, 2010).
У плазмi кровi кнурiв визначали концентрацiю кортизолу за стандартною методикою за допомогою набору 1ФА (EIA-1887, Cortisol ELISA) для прямого юльюсного визначення методом iмуноферментного аналiзу, створеного за принципом конкуренцп. Лунки на мiкропланшетцi вкритi моноклональним антитiлом проти антигенiв молекул кортизолу. Зразок плазми (сироватки) кровi з ендогенним кортизолом шкубуеться у лунщ разом з ензимним кон'югатом. Шсля iнкубацiï незв'язаний кон'югат вимиваеться водою. Юльюсть зв'язано'1 пероксидази зворотно пропорцшна концентрацп кортизолу у зразку. Шсля додавання субстрату штенсившсть забарвлення, що утворюеться, зворотно пропорцiйна концентрацп кортизолу у дослЦжуваному зразку (Влiзло та ш., 2012).
Концентрацiю АКТГ (адренокортикотропний гормон, що складаеться з 39 амшокислот) визначали за допомогою набору DRG Intl АКТГ ELISA — це двохсайтовий 1ФА (твердофазний iмуноферментний аналiз) для вимiру бiологiчно активного АКТГ. Принцип методу полягае у використанш овечих полiклональних антитiл до АКТГ людини, очищенi методом афшно'1 хроматографп, i мишачих моноклональних антиты до АКТГ людини, якi е специфiчними до певних дiлянок молекули АКТГ. Одне антитiло зв'язуеться тыьки iз С-кiнцевою частиною АКТГ 34-39, воно бштишльоване. 1нше антитiло зв'язуеться тыьки з середнiми дiлянками i N-кшцевою частиною АКТГ 1-24, воно мае ензимну мiтку пероксидази хрону.
Калiбратори, контролi i зразки плазми кровi одночасно iнкубуються з антитыом та з ензимною мiткою i бютишльованим антитiлом в лунках, покритих стрептавЦшом. Пiсля iнкубацiï мiкролунки промивали для видалення незв'язаних компоненпв i ензим, зв'язаний з твердою фазою, шкубували зi субстратом. Реакцiю зупиняли додаючи стоп-розчин на основi кислоти i забарвлення вмюгу лунок змшювалося. Iнтенсивнiсть жовтого забарвлення прямо пропорцшна концентрацп АКТГ у зразку. Будували криву залежносл концентрацп вЦ одиниць абсорбцп за результатами, отриманими пiд час вимiру калiбраторiв. Концентрац11 АКТГ у контролях i зразках плазми кровi визначали за щею кривою.
1нсулш визначали набором для визначення iнсулiну DRG Insulin EIA-2935. Принцип iмуноферментного аналiзу для кiлькiсного визначення iнсулiну в
сироватцi/ плазмi або сечк лунки на мiкропланшетцi покрит моноклональним антитiлом проти антигенiв молекули iнсулiну. Зразок плазми кровi K^piB з ендогенним iнсулiном iнкубували у лунщ разом i3 ензимним кон'югатом. Пiсля iнкубацiï незв'язаний кон'югат вимивали водою. Юлькють зв'язано'1 пероксидази обернено пропорцшна концентраций iнсулiну в зразку. Пiсля додавання субстрату iнтенсивнiсть утворюваного забарвлення обернено пропорцiйна концентраций шсулшу в зразку.
Аналiз результатiв дослЦжень проводили за допомогою програми Statistica 6.0. Вiрогiднiсть рiзниць оцiнювали за t-критерieм Ст'юдента. Результати вважали вiрогiдними за Р < 0,05.
РЕЗУЛЬТАТИ ДОСЛ1ДЖЕНЬ
Аналiзуючи концентраций кортизолу, шсулшу та АКТГ у плазмi кровi кнурiв до транспортування на м'ясокомбшат, вiрогiдноï рiзницi стосовно дослiдних груп порiвняно з концентрацieю гормонiв у плазмi кровi кнурiв контрольно'1 групи не вiдмiчали (Таблиця 1).
Таблиця 1. PiBeHb гормошв у плазмi KpoBi KHypiB до транспортування, нг/мл (тут та надалi наведено середне значення та похибка, n = 5)
Групи Ысулш, ммоль/л АКТГ, пг/мл Кортизол, нмоль/л
I дослана 4,9±0,79 6,3±2,62 27,1±15,29
II дослана 7,5±1,58 8,4±3,44 32,9±12,10
Контроль 7,4±2,42 8,3±2,35 21,8±7,40
Щ результати спiвпадають з дослЦженнями (Gibson, Norman, 1993), в яких рiвень кортизолу у плазмi не вiдрiзнявся пiсля використання бюлопчно активних речовин. Хоча рiвень кортизолу був вищий порiвняно з нормою у цей перюд (1200-1300) — зпдно з добовими коливаннями, як i у дослЦженнях (Hessing et al., 1994), як не встановили рiзницi плазмового кортизолу та АКТГ.
Отже, за результатами наших експерименлв та дослЦжень шших авторiв (Кузьменко и др., 2010) е пiдстави стверджувати, що iнтенсивнiсть дослiджуваних показникiв визначаеться шдивЦуальними особливостями органiзму у вiдповiдь на неспецифiчний стресовий вплив.
Необхiдно вЦмггити, що рiвень дослiджуваних гормонiв у плазмi кровi кнурiв значно зрк пiсля перевезення на м'ясокомбiнат — перед самим забоем (Таблиця 2) порiвняно з показниками до перевезення (Таблиця 1): рiвень iнсулiну зрю майже вдвiчi у кровi кнурiв I дослiдноï групи та в 1,4 разу (R<0,05) — у кровi кнурiв контрольно'1 групи. Щодо рiвня кортизолу, то цей гормон мае чггко вираженi добовi коливання i найвищий його рiвень спостерпаеться ранком. З одержаних даних видно, що тварини тд час транспортування та перед забоем мали сильний стрес, осюльки рiвень кортизолу зрк на 33 %
Л
(R<0,05) перед забоем, як у тварин дослЦних груп, так i контрольно! групи. За р1внем АКТГ тсля транспортування (перед забоем) м1ж кнурами I дослано! та контрольно! груп була суттева р1зниця. Концентрацiя АКТГ у тварин I дослано! групи, яким до основного ращону додавали екстракт селезшки, була на 10 % (R<0,05) меншою, н1ж у кнур1в контрольно! групи пор1вняно з показниками до та тсля транспортування. Тако! р1знищ не в1дм1чено, якщо пор1внювати показники у кров1 кнур1в м1ж групами окремо до та тсля транспортування. За р1внем шсулшу в1рог1дних р1зниць не спостер1гали. Таблиця 2. Рiвень гормошв у плазмi KpoBi KHypiB пiсля транспортування перед забоем, нг/мл (n=5)
Групи Ысулш, ммоль/л АКТГ, пг/мл Кортизол, нмоль/л
I дослана 8,9±2,15 33,1±13,92 80,5±4,33
II дослана 7,6±2,36 25,3±6,35 73,6±17,03
Контроль 10,2±2,18 29,8±4,20 66,2±13,99
Оск1льки свит та кнур1, зокрема надзвичайно стресочутлив1 тварини, то з отриманих результат1в досл1джень можна зробити висновок, що застосоваш антистресори та 1муностимулятори з екстракту селез1нки н1велювали передзаб1йний стрес i п1двищили 1мун1тет тварин.
До перевезення у кнyрiв, як1 отримували лише 70 % розчин етанолу, фагоцитарна актившсть кровi була нижча на 10 % (Р<0,01), а у кнyрiв, яким до корму вносили екстракт селезшки — майже на 19 % (Р<0,05) порiвняно з кнурами контрольно! групи Таблиця 3. 3). До перевезення на м'ясокомбшат встановлено менше на 18 % (Р<0,05) фагоцитарне число у кровi кнyрiв I дослано! групи порiвняно з контрольною.
Таблиця 3. Показники неспецифiчнol pезистентнoстi кнуpiв до транспортування, % (n = 5)
Групи Фагоцитарна активнiсть кров^ (%) Фагоцитарний щдекс, (од.) Фагоцитарне число, (од.)
Контроль 38,4 ±2,70 9,9 ± 1,0 3,8 ± 0,22
I дослiдна 31,2 ± 1,92* 9,8 ±1,21 3,1 ± 0,24*
II дослiдна 34,4 ± 1,52** 10,6 ± 0,87 3,6 ± 0,31
* Р < 0,05; ** Р < 0,01 (стосовно контролю)
За нашими дослЦженнями тсля перевезення на м'ясокомбшат i власне перед самим забоем у кровi кнyрiв, як додатково в корм отримували екстракт селезшки (I дослана група), вiрогiдно збыьшилися yсi дослiджyванi показники неспецифiчно'l резистентностi органiзмy порiвняно з тваринами контрольно! групи (Таблиця 2. 4).
Таблиця 2. Показники неспецифiчноï резистентност KHypiB пiсля
транспортування
перед забоем, % (n=5)
Групи Фагоцитарна актившсть кров^ (%) Фагоцитарний шдекс, (од.) Фагоцитарне число, (од.)
Контроль 36,6 ± 1,14 8,3 ± 0,68 3,0 ± 0,22
I дослана 41,8 ± 2,28* 9,6 ± 0,64** 4,0 ±0,16*
II дослана 41,8 ± 2,95* 7,9 ± 0,83 3,3 ± 0,42
* Р < 0,05; ** Р < 0,01 (стосовно контролю)
Фагоцитарна актившсть у KpüBi KHypiB дослЦних груп порiвняно з контрольною тдвищилась на 12 % (Р<0,05), фагоцитарний iндекс — на 13 % (Р<0,01), фагоцитарне число було быьшим на 14 % (Р<0,05) лише у кpовi кнypiв I дослано!" групи, тобто у тварин, яким додатково до корму додавали екстракт селезшки. Необх1дно зазначити, що до перевезення тако'1 piзницi мiж дослЦжуваними параметрами не спостеpiгали. Якщо поpiвняти цi показники мiж двома дослЦними групами I та двома дослЦними групами II мiж собою, тобто до та тсля транспортування тварин, то можна вЦмггити певну закономipнiсть: значно пiдвищилась фагоцитарна активнiсть кpовi вiдповiдно на 34 % i 22 % та фагоцитарне число — на 29 %, тодi як фагоцитарний шдекс залишався практично на однаковому piвнi.
Висновки
Отже, з отриманих результатав досл1джень можна зробити висновки про нестандартну реакщю-вЦповЦь кнypiв на пеpедзабiйний стрес. Вмют кортизолу та piвень АКТГ не вiдpiзнялися у кнypiв дослiдних i контрольно'1 груп. На деякi показники неспецифiчноï pезистентностi оpганiзмy кнypiв мав вплив передзабшний стрес, який можна швелювати екстрактом селезiнки, що мютить бiологiчно активнi речовини. Iнтенсивнiсть дослЦжуваних показникiв визначаеться iндивiдyальними особливостями оргашзму у вiдповiдь на неспецифiчний стресовий вплив, а використання iмyномодyлятоpiв та антистpесоpiв, як1 мiстять полiамiни з екстракту селезшки, знижують негативний вплив передзабшного стресу та пiдвищyють iмyнiтет тварин.
ПЕРЕЛ1К BИКОРИСТАНОÏ Л1ТЕРАТУРИ
1. Bevzyuk, D. A., & Levicheva, N. A. (2014Dokmanovic M. The effects of lairage time and handling procedure prior to slaughter on stress and meat quality parameters in pigs / M. Dokmanovic, A. Velarde, V. Tomovic [et al.] // Meat science. — 2014. — V. 98. — Is. 2. — P. 220-226.
2. Coban J. Effect of Blueberry Feeding on Lipids and Oxidative Stress in the Serum, Liver and Aorta of Guinea Pigs Fed on a High-Cholesterol Diet / J. Coban,
Biological Bulletin of Bogdan Clunelnitskiy Melitopol State Pedagogical University 87 fe-=-
B. Evran, F. Ozkan // Bioscience, biotechnology, and biochemistry. — 2013. — V. 77.
— N 2. — P. 389-391.
3. Ferguson D. M. Have we underestimated the impact of pre-slaughter stress on meat quality in ruminants? / D. M. Ferguson, R. D. Warner // Meat Science. — 2008.
— V. 80. — N 1. — P. 12-19.
4. Galindo R. C., Ayllon N., Smrdel K. S. Gene expression profile suggests that pigs (Sus scrofa) are susceptible to Anaplasma phagocytophilum but control infection / R. C. Galindo, N. Ayllon, K. S. Smrdel // Parasit. Vectors. — 2012. — V. 5.
— P. 181-190. doi:10.1186/1756-3305-5-181.
5. Gibson M., Norman R. L. Shipping stress and social status effects on pig performance, plasma cortisol, natural killer cell activity, and leukocyte numbers' / M. Gibson, R. L. Norman // J Anim Sci. — 1993. — V. 71. — P. 888-896.
6. Hessing M. J. C. Indiviual behavioral and physiological strategies in pigs / M. J. C. Hessing, A. M. Hagelso, W. G. P. Schouten // Physiol Behav. — 1994. — V. 55. — P. 39-46.
7. Impacts of chronic stress and social status on various physiological and performance measures in pigs of different breeds / M. A. Sutherland, S. R. Niekamp, S. L. Rodriguez-Zas, J. L. Salak-Johnson // J. Anim. Sci. — 2006. — V. 84. — N. 3. — P. 588-596.
8. Impacts of heat stress on baseline immune measures and a subset of T cells in Bama miniature pigs / Ju. Xianghong, Yong Yan-Hong, Xu Han-Jin, An Li-Iong // Livestock Science. — 2011. —V. 135. —N 2. — P. 289-292.
9. Kick A. R. Stress and immunity in the pig / A. R. Kick, M. B. Tompkins, G. W. Almond // Animal Science Reviews. — 2011. — V. 212. — C. 51-65.
10. Kim Y. H. B. Influence of high pre-rigor temperature and fast pH fall on muscle proteins and meat quality: a review / Y. H. B. Kim, R. D. Warner, K. Rosenvold // Animal Production Science. —2014. — V. 54. — N. 4. — P. 375-395.
11. Makarchuk, V. A., & Ushakova, G. A. (2014). Soderzhanie NCAM v golovnom mozge i podzheludochnoj zheleze krys v uslovijah jendogennoj intoksikacii pri jeksperimental'nom hronicheskom pankreatite [Content of NCAM in the brain and pancreas of rats in response to endointoxication under conditions of experimental chronic pancreatitis]. Visnyk of Dnipropetrovsk University. Biology, Ecology, 22(2), 169-177 (in Russian). doi: 10.15421/011424.
12. Minois N. Polyamines in aging and disease / N. Minois, D. Carmona-Gutierrez, Madeo F // Aging (Albany NY). — 2011. — V. 3. — N. 8. — P. 1-16.
13. Official Journal of the European Union L276/33. Directive 2010/63/EU of the European Parliament and of the Council of 22 September 2010 on the protection of animals used for scientific purposes. 86/609/EC. 20.10.2010.
14. Pre-slaughter conditions influence skatole and androstenone in adipose tissue of boars / R. Wesoly, I. Jungbluth, V. Stefanski, U. Weiler // Meat science. — 2015. — V. 99. — P. 60-67. DOI: 10.1016/j.meatsci.2014.08.015.
15. Rocha L. M. Effects of ractopamine administration and castration method on the response to preslaughter stress and carcass and meat quality in pigs of two Pietrain genotypes / L. M. Rocha, A. M. Bridi, A. Foury [et al.] // Journal of animal science. — 2013. — V. 91. — N. 8. — P. 3965-3977.
16. Strappini A. C. Origin and assessment of bruises in beef cattle at slaughter / A. C. Strappini, J. H. M. Metz, C. B. Gallo, B. Kemp. Animal. — 2009. — V. 3. — N 5.
— P. 728-736. doi:10.1017/S1751731109004091
17. Topurija G. M., Semjonov S. V. Stimulation of immune response in sows and their offspring. Proceedings of the Orenburg State Agrarian University. 2013;4 (42):100-102. (in Russian).
18. Влiзло В. В. Лабораторт методи дослЦжень у бюлогл, тваринницв та ветеринарнш медицин : довЦник / В. В. Влiзло, Р. С. Федорук, I. Б. Ратич та in; за ред. В. В. Влiзла. — Львiв : Сполом, 2012. — 764 с.
19. Ганзенко Е. А., Лодянов В. В. Биохимические показатели крови свиней специализированных типов / Е. А. Ганзенко, В. В. Лодянов // Политематический сетевой электронный научный журнал Кубанского государственного аграрного университета. — 2014. — № 97. — C. 57-60.
20. Грабовський С. С. Вплив iмуномодуляторiв природного походження на показники клггинного iмунiтету i рiвень кортизолу в кровi щурiв за умов стресу / С. С. Грабовський // Бюлопчш Студи. — 2014. — Том 8. — № 1. — С. 93-102.
21. Киселев А. Л. Резистентность животных в онтогенезе и способы ее повышения / А. Л. Киселев, Е. В. Обязуева // Труды российского государственного аграрного заочного университета. — 2006. — С. 169-175.
22. Крыштоп Е. А. Стрессоустойчивость и естественная резистентность свиней специализированных мясных типов / Е. А. Крыштоп, О. Р. Барило // Аграрный вестник Урала. — 2010. — Т. 72. — № 6. - С. 53-55.
23. Кузьменко Е. В., Фагоцитарная активность нейтрофилов периферической крови крыс с различной реакцией на стресс / Е. В. Кузьменко, Н. А. Никифорова, М. О. Иваненко // Вкник Харювського нащонального ушверситету iменi В. Н. Каразша. Сер1я: бюлопя. — 2010. — Вип. 11. — № 905.
— С. 173-177.
24. Петрова О. Г. Иммунологические и биохимические показатели крови поросят при ассоциированной форме цирковирусной инфекции / О. Г. Петрова, И. М. Донник // Аграрный вестник Урала. — 2014. — T. 2. — № 120. — С. 36-39.
25. Топурия Г. М., Семёнов С. В. Стимуляция иммунных реакций у свиноматок и их приплода // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. — 2013. — № 4 (42). — C. 94-99.
Biological Bulletin of Bogdan Clunelnitskiy Melitopol State Pedagogical University 89
te-
26. MyManeHKO B. M. ^ocmg^eHna iMyHHoi' CMCTeMM. OaKTopu, m;o Bn^MBaroTb Ha
pe3MCTeHTHiCTb TBapuH / B. M. MyManeHKO, B. B. MyManeHKO, O. I. naB^eHKO
// BeTepuHapHa мe4мцмнa YKpaiHM. — 2004. — № 5. — C. 33-37.
References
Bevzyuk, D. A., & Levicheva, N. A. (2014). Bioinformacijnyj pidhid u korekcii' negatyvnogo emocijnogo stanu u shhuriv [Bioinformatic approach to correction of negative emotional state in rats]. Visnyk of Dnipropetrovsk University. Biology, Ecology, 22(1), 77-82 (in Ukrainian). doi: 10.15421/011411.
Chumachenko V. Yu., Chumachenko V. V., Pavlenko O. I. (2004). The study of the immune system. Factors affecting the resistance of animals. Veterinary Medicine of Ukraine. 5, 33-37 (in Ukrainian).
Coban, J., Evran, B., Ozkan, F. Cevik A., Dogru-Abbasoglu S. (2013). Effect of Blueberry Feeding on Lipids and Oxidative Stress in the Serum, Liver and Aorta of Guinea Pigs Fed on a High-Cholesterol Diet. Bioscience, biotechnology, and biochemistry. 77(2), 389-391.
Dokmanovic, M., Velarde, A., Tomovic, V., Glamoclija, N., Markovic, R., Janjic, J., Baltic, M. Z. (2014). The effects of lairage time and handling procedure prior to slaughter on stress and meat quality parameters in pigs. Meat science. 98(2), 220-226.
Ferguson, D. M., Warner, R. D. (2008). «Have we underestimated the impact of pre-slaughter stress on meat quality in ruminants?» Meat Science. 80(1), 12-19.
90 Бюлопчний в1сник ФЦр
-h
Galindo, R. C., Ayllon, N., Smrdel, K. S., Boadella M., Beltran-Beck, B.,
Mazariegos, M. (2012). Gene expression profile suggests that pigs (Sus scrofa) are susceptible to Anaplasma phagocytophilum but control infection. Parasit. Vectors. 5,181-190. doi:10.1186/1756-3305-5-181. Ganzenko, E. A., Lodjanov, V. V. (2014). Biochemical indicators of pigs blood of specialized types. Polythematic online scientific journal of Kuban State Agrarian University. 97(03), 1-10. (in Russian). Gibson, M., Norman, R. L. (1993). Shipping stress and social status effects on pig performance, plasma cortisol, natural killer cell activity, and leukocyte numbers'. J Anim Sci. 71, 888-896. Grabovskyi, S. S. (2014). Natural origin immunomodulators influence on cellular immunity indices and cortisol level in rats blood at pre-slaughter stress. Studia Biologica. 8(1), 93-102. (In Ukrainian). Hessing, M. J. C., Hagelso, A. M., Schouten, W. G. P, Wiepkema, P. R., Van Beek, J. A. M. (1994). Indiviual behavioral and physiological strategies in pigs. Physiol Behav. 55, 39-46. Kick, A. R., Tompkins, M. B., Almond, G. W. (2011). Stress and immunity in the pig. Animal Science Reviews. 212, 51-65.
Biological Bulletin of Bogdan Clunelnitskiy Melitopol State Pedagogical University 91
te-
Kim, Y. H. B., Warner, R. D., Rosenvold, K. (2014). Influence of high pre-rigor
temperature and fast pH fall on muscle proteins and meat quality: a review. Animal Production Science. 54(4), 375-395. Kiselev, A. L., Objazueva, E. V. (2006). Resistance animals in ontogenesis and ways to improve it. Bulletin of the Russian State Agrarian Correspondence University. 1(6), 169-175. (in Russian). Kryshtop, E. A., Barilo, O. R. (2010). Stress resistance and natural resistance of pigs
of specialized meat types. Agrarian Urals Visnyk. 72(6), 53-55. (in Russian). Kuzmenko E. V., Nikiforova N. A., Ivanenko M. O. (2010). Neutrophils phagocytic activity of peripheral blood in rats with different stress response. The Journal of V. N. Karazin Kharkiv National University. Series: biology. 11(905), 173-177. (in Russian).
Makarchuk, V. A., & Ushakova, G. A. (2014). Soderzhanie NCAM v golovnom mozge i podzheludochnoj zheleze krys v uslovijah jendogennoj intoksikacii pri jeksperimental'nom hronicheskom pankreatite [Content of NCAM in the brain and pancreas of rats in response to endointoxication under conditions of experimental chronic pancreatitis]. Visnyk of Dnipropetrovsk University. Biology, Ecology, 22(2), 169-177 (in Russian). doi: 10.15421/011424. Minois, N., Carmona-Gutierrez, D., Madeo, F. (2011). Polyamines in aging and disease. Aging (Albany NY). 3(8), 1-16.
92 Bio^oriHHHH eicHHK
Official Journal of the European Union L276/33. (2010). Directive 2010/63/EU of the European Parliament and of the Council of 22 September 2010 on the protection of animals used for scientific purposes. 86/609/EC.
Petrova, O. G., Donnik, I. M. (2014). Immunological and biochemical blood parameters associated form of pigs at circovirus infection. Agrarian Urals Visnyk. 2(120), 36-39. (in Russian).
Rocha, L. M., Bridi, A. M., Foury, A., Mormede, P., Weschenfelder, A. V., Devillers, N. Faucitano, L. (2013). Effects of ractopamine administration and castration method on the response to preslaughter stress and carcass and meat quality in pigs of two Pietrain genotypes. Journal of animal science. 91(8), 39653977.
Strappini, A. C, Metz, J. H.M., Gallo, C. B., Kemp, B. (2009). Origin and assessment of bruises in beef cattle at slaughter. Animal. 3:5, 728-736. doi:10.1017/S1751731109004091
Sutherland, M. A., Niekamp, S. R., Rodriguez-Zas, S. L., Salak-Johnson, J. L. (2006). Impacts of chronic stress and social status on various physiological and performance measures in pigs of different breeds. J. Anim. Sci. 84(3), 588-596.
Topurija, G. M., Semjonov, S. V. (2013). Stimulation of immune response in sows and their offspring. Proceedings of the Orenburg State Agrarian University. 4(42), 100102. (in Russian).
Biological Bulletin of Bogdan Clunelnitskiy Melitopol State Pedagogical University 93
te-
Vlizlo, V. V., Fedoruk, R. S., Ratych, I. B. (2012). Laboratory methods of investigation
in biology, stock-breeding and veterinary. Reference book. V.V. Vlizlo (Ed.). Lviv: SPOLOM. 764. (in Ukrainian). Wesoly, R., Jungbluth, I., Stefanski, V., Weiler, U. (2015). Pre-slaughter conditions influence skatole and androstenone in adipose tissue of boars. Meat science. 99, 60-67. DOI: 10.1016/j.meatsci.2014.08.015. Xianghong, Ju., Yan-Hong, Yong, Han-Jin, Xu, Li-Iong, An. (2011). Impacts of heat stress on baseline immune measures and a subset of T cells in Bama miniature pigs. Livestock Science. 135(2), 289-292.
Поступила в редакцию 17.01.2016 Как цитировать:
Grabovskyi, S.S., Grabovska, O.S. (2016). Hormonal profile and nonspecific resistance in Boar under pre-slaughter stress. Biological Bulletin of Bogdan Chmelnitskiy Melitopol State Pedagogical University, 6 (1), 80-93. cross«* http://dx.doi.org/10.15421/201605
© Грабовський, Грабовська, 2016
Users are permitted to copy, use, distribute, transmit, and display the work publicly and to make and distribute derivative works, in any digital medium for any responsible purpose, subject to proper attribution of authorship.
<°0
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 3.0 License
