CC BY
43
термофильного стрептококка и закваска прямого внесения Bifi).
На заключительном этапе по результатам проведённых исследований была разработана технологическая схема производства кисломолочного продукта из кобыльего молока функциональной направленности.
Вывод. В ходе исследований впервые была изучена возможность использования кобыльего молока в производстве кисломолочного продукта пробиотической направленности, подобраны состав комбинированной закваски, технологические режимы получения продукта.
Литература
1. Косилов В.И., Миронова И.В. Влияние пробиотической добавки ветоспорин-актив на эффективность использования энергии рационов лактирующими коровами чёрно-пёстрой породы // Вестник мясного скотоводства. 2015. Т. 2. № 90. С. 93-98.
2. Комарова Н.К., Косилов В.И., Исайкина Е.Ю. и др. Новые технологические методы повышения молочной продуктивности коров на основе лазерного излучения. М., 2015. 192 с.
3. Комарова Н.К., Косилов В.И., Востриков Н.И. Влияние лазерного излучения на молочную продуктивность коров различного типа стрессоустойчивости // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2015. № 3 (53). С. 132-134.
4. Косилов В.И., Комарова Н.К., Востриков Н.И. Молочная продуктивность коров разных типов телосложения после лазерного облучения БАТ вымени // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2014. № 3 (47). С. 107-110.
5. Комарова Н.К., Косилов В.И. Снижение сроков преддо-ильной подготовки нетелей с использованием лазерного излучения // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2014. № 2 (46). С. 126-129.
6. Гладкова Е.Е. Кобылье молоко - натуральный продукт питания // Коневодство и конный спорт. 2010. № 5. С. 20-21.
7. Басалаева Е.В. Перспективы переработки кобыльего молока // Молочная промышленность. 2006. № 12. С. 30-31.
8. Ганина В.И., Калинина Л.В. Кисломолочный симбиотиче-ский напиток // Молочная промышленность. 2008. № 10. С. 85.
Гистологическая характеристика скелетной мышечной ткани поросят-гипотрофиков при использовании пробиотика Oлин
А.А. Григорьева, аспирантка, Р.Ш. Тайгузин, д.б.н, профессор, ФГБОУ ВО Оренбургский ГАУ
В рамках развития агропромышленного комплекса России одним из приоритетных направлений является получение высококачественной мясной продукции при высокой интенсивности и рентабельности производства. Свиноводство, характеризуемое короткими сроками получения мяса, полностью соответствует запросам современного сельского хозяйства. Кроме того, на долю свиноводства в настоящее время приходится более 40% общего производства мяса в мире [1].
Тем не менее эффективность производства свинины ограничивается наличием уязвимых звеньев в технологическом процессе воспроизводства. Наиболее высокие экономические потери в свиноводческой отрасли ассоциированы с падежом молодняка [2].
Среди самых распространённых патологий молодняка незаразной этиологии особое место занимает гипотрофия, поскольку нарушение обмена веществ, лежащее в основе её патогенеза, выражается низким уровнем цитодифференцировки тканей, что снижает реактивность организма, количество и качество получаемой продукции [3].
В последние десятилетия много внимания уделяется препаратам пробиотического ряда для лечения гипотрофии. Полученные сведения однозначно свидетельствуют о многообразии воздействия пробиотиков как на микрофлору желудочно-кишечного тракта, так и на обменные функции организма животных [4].
Используемый препарат Олин — пробиотик, включает в себя запатентованные и задепониро-ванные штаммы спорообразующих микроорганизмов Bacillus licheniformis (ВКПМ В-10135) и Bacillus subtilis (ВКПМ В-10172) в соотношении 1: 1 (не менее 2 • 109 КОЕ/г). Олин выпускается в виде порошка в сухой водорастворимой форме на лактосодержащем носителе.
Известно, что при регулярном применении пробиотических препаратов в крови повышается содержание гемоглобина и эритроцитов, сокращается период откорма для наращивания живой массы свиней.
Цель исследования — выявить специфические изменения микроморфологии мышечной ткани свиней в норме, при неонатальной гипотрофии и её коррекции.
Материал и методы исследования. Опыт проводили на базе ООО «Оренбургский бекон» Оренбургской области.
Для реализации поставленной цели был взят от животных двух групп биологический материал в виде образцов четырёхглавой мышцы бедра. Образцы тканей фиксировали в 10-процентном растворе формалина в течение суток, затем промывали в проточной воде в течение суток. Далее ткань проводили через ряд спиртов возрастающей крепости (60—96-процентный первый и второй спирт), в каждом из них кусочек ткани находился в течение суток. Из второго 96-процентного спирта кусочек ткани поэтапно переносили: в смесь спирта — ксилола в равных пропорциях (1:1) на 1,5—2 час., в чистый ксилол на 1,5—2 час., в смесь
ксилола с парафином (при температуре 37°С) на 2 час., в чистый парафин с содержанием пчелиного воска 5-процентного на 2 час., в парафин с содержанием пчелиного воска 10-процентного на 1,5 час. (при температуре 59—61°С). После этого чистый парафин с содержанием 15% пчелиного воска заливали в специальные формочки, в которые затем помещали в нужном положении мышечные образцы.
С парафинового блока при помощи микротома делали срезы толщиной 6—8 мкм. Срезы окрашивали гематоксилин-эозином:
Подопытные группы были укомплектованы по 20 гол. животных. В контрольную группу вошли здоровые поросята (поросята-нормотрофики), получающие стандартный внутрихозяйственный рацион. Опытную группу сформировали из поросят-гипотрофиков, к основному рациону которых добавляли пробиотик Олин в дозе 0,5 г на 1 кг корма в сутки. Пробиотический препарат вводили в рацион с 30-суточного возраста.
Результаты исследования. Гистоархитектоника поперечнополосатой мышечной ткани суточных поросят-гипотрофиков качественно отличалась от таковой животных контрольной группы. Мышечные волокна приобрели зигзагообразную форму, местами фрагментировались (рис. 1).
В мышечной ткани особей опытной группы отмечали слабооксифильные миосимпласты, сглаженность поперечнополосатой исчерченности, разволокнение миофиламентов на значительной площади симпласта, сарколемму неровную, утолщённую. Тинкториалные свойства ядер были вариативны и колебались от слабобазофильных до интенсивно базофильных (сине-чёрного цвета); количество ядер в миосимпласте было значительно ниже, чем в ткани животных контрольной группе. Миосателлиты были многочисленны, веретено-видной формы, их ядра интенсивно базофильные. Эндомизий представлен истончёнными прослойками рыхлой соединительной ткани, сосудистое русло слабого кровенаполнения.
К 30-м сут. гистологическая картина скелетной мышечной ткани не претерпела значительной реорганизации: отмечалось истончение миосимпластов, деформированность и фрагментарность мышечных волокон. Стромальный компонент мышцы практически не содержал жировую ткань; сосудистое русло анемично, вокруг крупных сосудов ГМЦР было заметно разрастание соединительной ткани и образование периваскулярных муфт. Оксифиль-ные миосимпласты приобрели специфическую поперечнополосатую исчерченность, отмечалось
Рис. 1 - Гистоструктура скелетной мышечной ткани поросят-нормотрофиков контрольной группы (А); поросят-гипотрофиков (В) опытной группы, 1-е сут. Гематоксилин и эозин. 0б.40. Ок.15 (А); 0б.100. 0к.10 (В).
Рис. 2 - Гистоструктура скелетной мышечной ткани поросят контрольной группы (А) и опытной группы (В), 30-е сут. Гематоксилин и эозин. 06.100. Ок.15 (А, В).
Рис. 3 - Гистоструктура скелетной мышечной ткани поросят контрольной группы - нормотрофиков (А) и поросят опытной группы - гипотрофиков (В), 185-е сут. Гематоксилин и эозин. 06.40. Ок.15 (А, В).
прогрессирование процессов разволокнения мышечных волокон (рис. 2).
Количество ядер было несколько выше, чем в суточном возрасте, однако в отдельных из них выявлялись признаки деградации (кариопикноз, кариорексис).
Таким образом, к возрасту 30 сут. в сократительном аппарате скелетной мышцы поросят преобразования были незначительными, что характеризуется приобретением поперечной ис-черченности, причём реализация депонирующей функции стромального компонента мышцы была снижена.
У подсвинков опытной группы в возрасте 185 сут., получавших в качестве добавки к рациону пробиотик Олин, гистоструктура поперечнополосатой мышечной ткани приобрела относительно изоморфный характер (рис. 3).
Цитоплазма миосимпластов была оксифильная, ядра базофильные с участками просветления, морфология миосателлитов типичная. Локально отмечались участки разволокнения мышечных волокон. Межмышечная соединительная ткань содержала небольшое количество белой жировой ткани.
Таким образом, установлено опосредованное позитивное влияние пробиотического препарата
Олин на организм поросят-гипотрофиков при выращивании, выражающееся в купировании неонатальных гипопластических изменений гистологических структур скелетной мускулатуры. При этом показатели поросят-гипотрофиков при условиях коррекции пробиотиком практически достигли уровня здоровых животных.
Вывод. Включение в рацион поросят-гипотро-фиков в послеотъёмный период пробиотического препарата Олин в рекомендуемых дозах оказало существенное влияние как на динамику микроморфологии скелетной мышечной ткани, так и на организм в целом.
Литература
1. Петряков В.В. Онтогенетические особенности морфофи-зиологического состояния свиней под влиянием биологически активного комплекса БртНпа platensis // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2015. № 3. С. 102-105.
2. Эрнст Л.К. Современное состояние и перспективы биотехнологии сельскохозяйственных животных // Зоотехния. 2008. № 1. С. 11-12.
3. Демидович А.П. Гипотрофия у поросят в условиях промышленных комплексов // Учёные записки УО ВГАВМ: сб. науч. трудов по матер. междунар. науч.-практич. конф., посвящ. 80-летию основания УО ВГАВМ, г. Витебск, 4-5 нояб. 2004 г. / УО ВГАВМ; редкол.: А.И. Ятусевич [и др.]. Витебск, 2004. Т. 40. Ч. 1. С. 47-48.
4. Тараканов Б.В. Механизмы действия пробиотиков на микрофлору пищеварительного тракта и организм животных // Ветеринария. 2000. № 1. С. 47-54.
Морфологические особенности строения лимфатических узлов толстого отдела кишечника козы
Д.В. Астафьева, аспирантка, Р.Ш. Тайгузин, д.б.н., профессор, ФГБОУ ВО Оренбургский ГАУ
Интерес к изучению лимфатического русла убойных животных до настоящего времени не ослабевает. Известно, что лимфатические узлы снаружи покрыты соединительнотканной капсулой, от которой в паренхиму узла отходят тонкие перегородки — трабекулы. Паренхима лимфатического
узла представлена скоплениями лимфоидной ткани шаровидной формы (узелками) в корковой зоне лимфоузла и так называемыми мякотными тяжами в его центральной (мозговой) зоне.
По афферентным лимфатическим сосудам лимфа поступает в синусы лимфоузла, по которым она движется в сторону эфферентных сосудов. В ворота лимфатического узла входят артерии и нервы, а выходят из них вены и эфферентные
