CC BY
345
С. Н. Масленникова, А. И. Шургин, В. К. Чеботарь,
А. В. Щербаков, А. В. Канарский
ЭНДОФИТНЫЕ БАКТЕРИИ ХВОЙНЫХ РАСТЕНИЙ: ПОСЛЕДНИЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
И ПЕРСПЕКТИВЫ П РИМЕНЕНИЯ
Ключевые слова: эндофиты, эндофитные бактерии, сосна, ель, бактериальные удобрения.
В данной статье представлен краткий обзор последних исследований, посвященных эндофитным микроорганизмам хвойных древесных растений и перспективным возможностям их применения в лесном хозяйстве.
Key words: endophytes, endophytic bacteria, pine, spruce, bacterial fertilizers.
This article is a brief survey of the recent studies of endophytic microorganisms of conifers and perspective ways of their application in forestry.
Введение
Охрана и защита лесов от вредителей и болезней - важная проблема не только в плане их экономического значения, но и общебиологического и географического: леса определяют состояние многих видов природных ресурсов, водного баланса речных бассейнов [1], формируют местный и мировой климат, а также вносят вклад в цикл углерода.
Предупреждение инфекционных болезней и улучшение роста и развития древесных растений представляет современную задачу многих специа-листов-биологов. Борьба с потерями и убытками лесного хозяйства от массовой гибели лесных насаждений и снижение качества древесины в результате бактериальных и грибных заболеваний, защита сеянцев в питомниках при выращивании стандартного посадочного материала на промышленной основе должны рассматриваться с точки зрения экологической безопасности применяемых методов [2]. В основе такого безопасного и перспективного способа подавления инфекционных заболеваний, а также стимулирования роста и развития лесных древесных пород лежит использование симбиотических бактерий. Есть данные, что эндофиты, выделенные из почек сосны обыкновенной, могут улучшать рост сеянцев сосны в той же степени, как и микоризные грибы [3]. Поэтому многие эндофитные бактерии могут предоставить большие возможности для лесного хозяйства в качестве стимуляторов роста и оздоровления древесных растений.
В настоящее время уже созданы и повсеместно применяются биопрепараты на основе эндофитных и ризосферных бактерий для сельскохозяйственных культур. Однако, этот положительный опыт не нашел своего применения в лесоводстве, и до сегодняшнего времени биопрепараты для лесных культур созданы не были.
Целью настоящего обзора явился анализ существующих данных об эндофитных микроорганизмах древесных растений, а также потенциальных путей их применения в области лесного хозяйства.
Разнообразие эндофитных симбионто в древесных растений
К эндофитам принадлежат микроорганизмы, в основном бактерии и грибы, которые могут
быть обнаружены в отдельный момент времени в тканях внешне здорового растения [4].
Большое количество работ в настоящее время направлено на изучение грибных популяций лесных деревьев, и имеется очень мало данных об эндофитных бактериях и особенно их функциях в тканях дерева [5]. Эндофитные бактерии родов Pseudomonas, Bacillus, Paenibacillus, Erwinia и Burk-holderia обнаружены практически во всех древесных тканях. Большинство исследований направлено на эндофитные бактерии, ассоциированные с корнями древесных растений, которые, по всей видимости, отличаются по разнообразию и функциям от бактерий, ассоциированных с побегами [6]. Надземная часть деревьев подвергается УФ излучению, быстро меняющейся температуре, влажности и обладает лимитированным количеством питательных веществ по сравнению с корнями.
Обычно эндофитные бактерии побегов обнаруживаются при использовании культуры тканей, т.к. меристема побегов или зародышей очень часто используется как стартовый материал. Например, эндофитные бактерии были обнаружены в культуре тканей лесного ореха (Corylus avellana L., C. contor-ta C.) [7], вишни (Prunus cerasus L.) [8], различных видах тополей, лиственницы, белой акации (Robinia pseudoacacia L.), ели обыкновенной (Picea abies Karst.) [9, 10] и сосне обыкновенной (Pinus sylvestris L.) [11, 12]. В опытах Ульриха и соавторов [9] большая часть эндофитов 5-летних культур, выращенных из побегов и зрелых и незрелых зигот тополей, лиственницы, белой акации и ели, были идентифицированы как представители рода Paenibacillus. Иногда в этих культурах встречались бактерии родов Methylobacterium, Stenotrophomonas и Bacillus spp. Paenibacillus spp. не оказывал видимого негативного влияния на развитие растения, а один штамм, выделенный из культуры тополя, оказывал стимулирующее влияние на рост сеянцев [9].
Присутствие эндофитной микрофлоры в хвое отмечают многие авторы. Так, Мюллер с коллегами изучали эндофиты хвои ели обыкновенной. Всего было выделено 182 изолята, 90% от общего числа которых было идентифицировано как Lophodermium piceae. Основная роль этих грибных
эндофитов, как было доказано в опыте, состоит в разложении хвои после ее опада [13].
Хеландер с коллегами [14] обнаруживали в хвое сосны обыкновенной следующих эндофитных грибных штаммы: Cenangium ferruginosum (64 % от общего числа выделенных грибных эндофитов) и Cyclaneusma minus (12 %). Также авторы отмечают, что старая хвоя населена микроорганизмами больше, чем молодая. Таким образом, имеются возрастные различия в эндофитной микрофлоре. Помимо этого, наблюдается и сезонная периодичность: количество эндофитов в молодой хвое нарастает в течение лета, тогда как в старой хвое численность ассоциативной микрофлоры не изменяется.
Отмечается, что наиболее распространёнными бактериальными эндофитами почек сосны обыкновенной (Pinus sylvestris L.) являются штаммы Methylobacterium extorquens и Pseudomonas synxan-tha [12].
Другие авторы так же сообщают, что Methy-lobacterium spp. - доминирующие представители эндофитной микрофлоры почек сосны обыкновенной [15], симбиоз которых положительно влияет на рост и развитие растения-хозяина. В опытах было доказано, что инокуляция сеянцев сосны обыкновенной штаммом Methylobacterium extorquens увеличивает образование боковых корней, стимулирует их рост, а также увеличивает биомассу надземной части сеянцев по сравнению с контрольными образцами.
Некоторые исследователи отмечают о наличии в почках и представителей микобактерий. Пир-ттила и коллеги изучили локализацию и распределение эндофита Mycobacterium sp. в почках сосны обыкновенной [16]. Примечательно, что данные бактерии в изобилии присутствовали до удлинения и дифференцировки почки, но как только ткани полностью сформировались, микобактерии больше не обнаруживались, и метаболическая активность эндофитов восстанавливалась только к следующему сезону роста.
Помимо бактерий, в почках сосны обнаруживаются и представители микромицетов. Этими же авторами из почек сосны обыкновенной было изолировано 2 эндофитных гриба: Hormonema dema-tioides и Rhodotorula minuta [17].
Эндофитные бактерии также содержатся и в репродуктивных органах хвойных деревьев. Бактерия Enterobacter cloacae была выделена из пыльцы Pinus halepensis и P. pinea и оплодотворённых яйцеклеток Pinus brutia [18]. В пыльце сосны обыкновенной эндофиты обнаружены не были, однако спорогенные клетки мужских цветков содержали эндофиты в виде биоплёнкоподобных структур (согласно данным, полученных методом in situ гибридизации) [5]. Меньшее количество эндофитов было обнаружено в женских соцветиях сосны обыкновенной, несмотря на то, что зародыши семян были хорошо заселены бактериальной микрофлорой [5]. Были также выделены бактериальные эндофиты рода Rahnella из зародыша и эндосперма семян ели обыкновенной [19]. Отмечается, что количество эн-дофитов в семенах ели со временем снижается [19].
Пыльца и семена других лесных деревьев изучены крайне мало. Были выделены эндофиты таких родов, как Bacillus, Enterococcus, Paenibacillus и Methylobacterium, из семян и сеянцев эвкалиптов (Eucalyptus) [20]. Специфичные штаммы Bacillus, Paenibacillus и Enterococcus присутствовали сразу и в семенах, и сеянцах, выращенных из семян, что подтверждает вертикальный транспорт эндофитов. В аналогичных опытах эндофитный штамм Pantoea agglomerans был выделен из E. grandis, помечен GFP (от англ. «green fluorescent protein» - зеленый флуоресцентный белок) и инокулирован в семена двух видов и одного гибрида эвкалипта. И затем наблюдали колонизацию с помощью флуоресцентной микроскопии. Колонизация сеянцев была подтверждена для E. grandis и гибрида E. grandis х E. globulus, и не подтверждена для E. urophylla. Штамм заселял корни сеянцев (в основном межклеточных пространства) и ксилемные сосуды стебля. Отмечается, что ни один лист сеянцев GFP -помеченным штаммом колонизирован не был, что говорит об отсутствии горизонтального транспорта.
Присутствие эндофитной микрофлоры в семенах норвежской ели было показано с использованием культуральных и молекулярно-генетических методов [19]. Оба подхода выявили непатогенных представителей рода Pseudomonas и Rahnella.
Гвоздяком с соавторами [21] из семян сосны обыкновенной (класс качества - ЫП) были изолированы облигатные фитопатогенные (Pseudomonas syringae, Erwinia carotovora, E. nimipressuralis), факультативные фитопатогенные (Pseudomonas fluorescens, Pantoea agglomerans) и сапротрофные (Bacillus subtilis, B. рumilus, Paenibacillus polymyxa) бактерии, а также грибы из родов Mucor, Trichoderma, Aspergillus, Penicilium, Alternaria, Acremonium и дрожжи (р. Torula).
Физиологическая активность эндофитных бактерий
Бактериальные эндофиты колонизируют экологические ниши, сходные с таковыми фитопатогенов, что позволяет функционировать им как агентам биоконтроля [22]. Этот факт подтверждается многочисленными исследованиями, в которых показана способность эндофитных микроорганизмов подавлять рост растительных патогенов [23, 24, 25], насекомых [26] и нематод [27, 28]. Помимо этого, эндофитные бактерии способны улучшать появление всходов, а также оказывать стимулирующие воздействие на рост и развитие растения [29, 30].
Подобно действию многих ризосферных бактерий, механизмы положительного влияния эн-дофитов можно разделить на две группы: непосредственное влияние на рост путем продукции веществ-стимуляторов и/или опосредованное действие через ингибирование фитопатогенов.
В большинстве исследований отмечается позитивное влияние эпифитных и эндофитных бактерий, главным образом бактерий рода Methylobac-terium, на органо- и эмбриогенез древесных растений [31, 32, 33, 34]. Метилотрофы обладают уникальной способностью утилизировать метанол и метан и использовать в качестве источника энергии,
и являются экологически важными организмами, поскольку они минимизируют выброс метанола и метана растениями в атмосферу [35, 36, 37].
В литературных данных часто отмечается, что многие эндофитные бактерии способны улучшать рост растения-хозяина. Так, Канкаром и коллегами были изолированы бактериальные штаммы из семян ели обыкновенной (Picea abies L. Karst), принадлежащие родам Pseudomonas и Rahnella, которые в опытах проявляли ростостимулирующую активность [19].
Эндофитные бактерии способны переводить атмосферный азот в формы, доступные для усвоения, и тем самым стимулировать рост растительного хозяина [38, 39]. Наряду с фиксацией атмосферного азота и улучшением азотного питания ассоциативные микросимбионты синтезируют фитогормоны -ауксины, цитокинины и гиббереллины. Стимулирующий эффект заключается в том, что экзогенные фитогормоны вызывают усиленный рост корневой системы растения, что, в свою очередь, приводит к улучшению минерального питания. Визуально это выражается в приросте биомассы, в частности, корневой системы.
Эндофитные микроорганизмы способны синтезировать антибиотики и экзоферменты с антагонистическими свойствами по отношению к широкому кругу фитопатогенов [40].
Сумара с соавторами [41] были выделены эндофиты из белой восточной сосны (Pinus strobus), метаболиты которых (алифатический поликетид, пиренофорол и впервые выделенное вещество неизвестной структуры) обладают фунгицидной активностью против ржавчины Microbotryum violaceum и Saccharomyces cerevisiae.
Перспективы использования эндофитных бактерий
Одним из прикладных направлений в биологии семян является разработка методов обработки, позволяющих улучшить прорастание семян, а также защитить их от фитопатогенов. Внедрение штаммов эндофитных бактерий во внутренние структуры семян рассматривают как перспективный способ расширения физиологических возможностей семян. В литературе данный метод биологической обработки семян получил название биопрайминга [42]. В отличие от других методов обработки, при которых бактериальные клетки наносят на поверхность семян, биопрайминг предполагает проникновение бактерий во внутренние ткани. Колонизируя внутреннюю среду, бактерии выдерживают процедуру сушки и длительное хранение семян [42]. Постоянное присутствие эндофитных симбионтов снижает вероятность инфицирования семян патогенами, а также стимулирует прорастание семян.
В последнее десятилетие отмечается устойчивый рост применения биопрепаратов в растениеводстве в России, производственные испытания которых подтверждают их высокую экономическую эффективность. К преимуществам микробиологических препаратов в отличие от химических можно отнести безопасность использования, снижение химической нагрузки на агроценоз и ландшафт приле-
гающих территорий, восстановление нормальной структуры микробиоценоза обрабатываемых почв. Биопрепараты подавляют возбудителей болезней, при этом «включая» собственные иммунные механизмы растения, увеличивают устойчивость обработанных растений к неблагоприятным климатическим условиям, обеспечивают фиксацию атмосферного азота и мобилизуют запасы элементов питания из почвы.
В связи с этим другим перспективным способом применения эндофитных бактерий древесных растений могут стать микробиологические препараты для лесного хозяйства, которые до настоящего момента созданы не были, поэтому их разработка является весьма актуальной и своевременной. Авторами работ [43, 44] выделены эндофитные бактерии из семян сосны обыкновенной и ели гибридной, проявляющих фунгицидную и ростостимулирующую активность. Выделенные штаммы планируется использовать при создании биопрепаратов для стимулирования развития и роста лесных культур.
Заключение
Таким образом, к настоящему времени накоплен большой экспериментальный материал, доказывающий огромное и разнообразное значение эндофитной микрофлоры в жизни древесных растений. Способность стимулировать рост растений, улучшать питание, выделять гормоны, снижать заболеваемость растений, повышать устойчивость к абиотическим стрессовым факторам позволяет эндофитным бактериям стать потенциальными эффективными агентами в биологической защите лесных культур.
Работа выполнена при финансовой поддержке Министерства образования и науки Российской Федерации в рамках реализации ФЦП «Научные и научно-педагогические кадры инновационной России» на 2009 - 2013 г.
Литература
1. Р.В. Опритов, В кн. Биосфера и человек. Москва, 1975. С. 64-65.
2. Т.М Рыбалко, А.Б. Гукасян, Бактериозы хвойных Сибири. Наука, Новосибирск, 1986.
3. Metsometsa et al. Неопубликованные данные.
4. В. Schulz, C. Boyle, Microbial root endophytes, 1-13 (2006).
5. А.М. Pirttila, A.C.Frank, Endophytes of Forest Trees: Biology and Applications. Springer Science+Business Media
B.V., 2011.
6. F.P. Moore, T. Barac, В. Borremans, Syst Appl Microbiol, 29, 539-556 (2006).
7. B.M. Reed, J. Mentzer, P. Tanprasert, Plant Cell Tiss Org Cult, 52, 67-70 (1998).
8. R. Kamoun, P. Lepoivre, P. Boxus, Plant Cell Tiss Org Cult, 52, 57-59 (1998).
9. K. Ulrich, A. Ulrich, D. Ewald, Plant Cell Tiss Organ Cult, 93, 347-351 (2008).
10. B. Van Aken, C.M. Peres, S.L. Doty, Int J Syst Evol Microbiol, 54, 1191-1196 (2004).
11. H. Laukkanen, 1.1. Soini, S. Kontunen-Soppela, Tree Physiol, 20, 915-920 (2000).
12. A.M. Pirttila, H. Laukkanen, H. Pospiech, Appl Environ Microbiol, 66, 3073-3077 (2000).
13. M.M. Muller, R. Valjakka, A. Suokko, J. Hantula, Mol Ecol, 10, 7, 1801-1810 (2001).
14. M.L. Helander, T.N. Sieber, O. Petrini, S. Neuvonen, Canadian Journal of Botany, 72, 8, 1108-1113 (1994).
15. J. Koskimaki, J. Metsometsa, M. Kajula, J. Hokkanen, Academy of Finland. Projects № 118569, 129852.
16. A.M. Pirttila, H. Pospiech, H. Laukkanen, Tree Physiol, 25, 289-297 (2005).
17. A.M. Pirttila, H. Pospiech, H. Laukkanen, Microb Ecol, 45, 53-62 (2003).
18. A. Madmony, L. Chernin, S. Pleban, Folia Microbiol, 50, 209-216 (2005).
19. K. Cankar, H. Kraigher, M. Ravnikar, FEMS Microbiol Lett, 244, 341-345 (2005).
20. A. Ferreira, M.C. Quecine, P.T. Lacava, FEMS Microbiol Lett, 287, 8-14 (2008).
21. Р.И. Гвоздяк, XIII Междунар. научн. конф. Изд-во СибГТУ, Красноярск, 2009. С. 30-34.
22. G. Berg, L. Eberl, A. Hartmann, Environ Microbiol, 7, 1673-1685 (2005).
23. A.V. Sturz, B.G. Matheson, Plant Soil, 184, 265-271 (1996).
24. B.J. Duijff, V. Gianinazzi-Pearsonand, P. Lemanceau, New Phytol, 135, 325-334 (1997).
25. K. Krishnamurthy, S.S. Gnanamanickam, Curr Sci, 72, 331-334 (1997).
26. J.L. Azevedo, J. Jr Maccheroni, O. Pereira, W.L. Ara, Electr J Biotech, 3, 40-65 (2000).
27. J. Hallmann, A. Quadt-Hallmann, W.F. Mahaffee, J.W. Kloepper, Can J Microbiol, 43, 895-914 (1997).
28. J. Hallmann, A. Quadt-Hallmann, R. Rodriguez-Kabana, J.W. Kloepper, Soil Biol Biochem, 30, 925-937 (1998).
29. C.P. Chanway, Forest Sci, 43, 99-112 (1997).
30. E. Bent, C.P. Chanway, Can J Microbiol, 44, 980-988 (1998).
31. M.A. Holland, J.C. Polacco, Annu Rev Plant Phys Plant Mol Biol, 45, 197-209 (1994).
32. C. Visser, B.N.S. Murthy, J. Odumeru, In Vitro Cell DevBiol, 30, 140-143 (1994).
33. B.N.S. Murthy, N.N. Vettakkorumakankav, S. Krishna-Raj, Plant Cell Rep, 18, 607-613 (1999).
34. M.A. Kalyaeva, N.S. Zakharchenko, N.V. Doronina, Russ J Plant Physiol, 48, 514-517 (2001).
35. R. Fall, Microbial growth on C1 compounds, 8, 343-350, (1996).
36. R. Fall, A.A. Benson, Plant Sci, 1, 296-301 (1996).
37. F. Keppler, J.T.G. Hamilton, M. Bra, Nature, 439, 187191 (2006).
38. J. Palus, J. Borneman, E. Triplett, Plant and Soil, 186, 135-142 (1996).
39. W. Barraquio, L. Revilla, J. Ladha, Plant and Soil, 194, 15-24 (1997).
40. G. Berg, J. Hallmann, Microbial root endophytes, 53-69 (2006).
41. M.W. Sumarah, J.R. Kesting, D. Sorensen, J.D. Miller, Phytochemistry, 72, 14, 1833-1837 (2011).
42. H. Muller. PhD thesis, University of Rostock, Germany, 2007.
43. Масленникова С.Н., Шургин А.И., Чеботарь В.К., Щербаков А.В., Канарский А.В. Вестник казанского технологического университета. 2012. Т.15. № 16. с. 175
- 178.
44. Масленникова С.Н., Шургин А.И., Чеботарь В.К., Щербаков А.В., Канарский А.В. Вестник казанского технологического университета. 2012. Т.15. № 18. с. 207
- 212.
© С. Н. Масленникова - инженер-исследователь лаб. технологии микробных препаратов, ГНУ ВНИИСХМ Россельхозака-демии, [email protected]; А. И. Шургин - канд. сельскохозяйственных наук, зам. дир. ЦКП ЭБЭЭ, [email protected]; В. К. Чеботарь - канд. биол. наук, зав. лаб. технологии микробных препаратов, ГНУ ВНИИСХМ Россельхоза-кадемии, [email protected]; А. В. Щербаков - инженер-микробиолог той же лаборатории, [email protected]; А. В. Канарский - д-р техн. наук, проф. каф. пищевой биотехнологии КНИТУ, [email protected].
