CC BY
43
СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННАЯ БИОЛОГИЯ, 2016, том 51, № 6, с. 837-844
Африканская чума свиней: протеомика, диагностика
УДК 636.4:619:616.636:578:[577.2.08+51-76 doi: 10.15389/agrobiology.2016.6.837rus
ЭКСПРЕССИЯ РЕКОМБИНАНТНЫХ ГЕНОВ, КОДИРУЮЩИХ ФРАГМЕНТЫ ПРОТЕКТИВНО ЗНАЧИМЫХ БЕЛКОВ ВИРУСА АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ, В ЭУКАРИОТИЧЕСКИХ КЛЕТКАХ*
А.Р. ИМАТДИНОВ, А.Д. СЕРЕДА, И.Р. ИМАТДИНОВ, А.С. КАЗАКОВА, О.А. ДУБРОВСКАЯ, Д.В. КОЛБАСОВ
Контроль за африканской чумой свиней (АЧС) осложняется отсутствием средств специфической профилактики. Попытки получить живые вакцины традиционными методами оказались малоперспективными, а инактивированные и субъединичные — неудачными (N. Petuska, 1965; Д.В. Колбасов с соавт., 2014; V. Makarov с соавт., 2016). Исследования формирования протективного иммунитета при АЧС позволили определить решающую роль клеточных механизмов защиты и наиболее значимые участвующие в этом вирусные белки: р30, р54, CD2v (или ГП110-140) (P. Gomez-Puertas с соавт., 1998; J.M. Argilaguet с соавт., 2012; А.Д. Середа с соавт., 2015). В представляемой работе впервые созданы гибридные плазмиды, пригодные для про-теомных исследований и разработки ДНК-вакцины против вируса АЧС III сероиммунотипа. Исследование выполнено с целью получения ДНК-конструкций, содержащих фрагменты генов CP204L, E183L, EP402R вируса АЧС аттенуированного штамма МК-200, и идентификации в трансфицированных ими эукариотических клетках соответствующих антигенно активных продуктов трансляции рекомбинантных белков rp30, rp54, rCD2v. Рекомбинантными плазмидами pCI-neo/ASFV/p30, pCI-neo/ASFV/p54 и pCI-neo/ASFV/CD2v трансфицировали культуру человеческих эмбриональных клеток почек, трансформированных геном Т-антигена вируса SV40 (HEK293T). Методом иммуноблоттинга в лизатах трансфицированных клеток определены и охарактеризованы по молекулярной массе экспрессированные рекомбинантные полипептиды. Среди полученных антигенно активных полипептидов одни по размеру соответствовали теоретически рассчитанным, другие — продуктам посттрансляционной модификации рекомбинантных белков. В лизатах клеток HEK293T, трансфицированных pCI-neo/ASFV/p30, выявлен полипептид с молекулярной массой 21,6 кДа, в содержащих pCI-neo/ASFV/p54 — мажорный полипептид 20,9 кДа и минорный 36,3 кДа, в клетках с pCI-neo/ASFV/CD2v — мажорные полипептиды с молекулярной массой 39,8 и 63,1 кДа, а также минорные 28,8 и 104,7 кДа. Полученные модели позволят исследовать иммуногенные и протективные свойства созданных ДНК-конструкций.
Ключевые слова: африканская чума свиней, рекомбинантные гены и белки, трансфек-ция, антигенность.
Африканская чума свиней (АЧС) — вирусная контагиозная септическая болезнь свиней, характеризующаяся лихорадкой, признаками токсикоза, геморрагическим диатезом и высокой летальностью, может протекать сверхостро, остро, подостро, хронически и бессимптомно. При острой, наиболее распространенной форме инфекции, до 100 % животных погибают в течение 5-10 сут после начала проявления клинических признаков. Болезнь поражает диких кабанов и домашних свиней, передается от больных животных и вирусоносителей контактно, алиментарно, а также транс-плацентарно (1). В юго-восточной Африке эволюция вируса АЧС происходит в процессе сильватического цикла, в который включены бородавочники и клещи рода Ornitodoros (2, 3). После регистрации в 2007 году вспышек АЧС в Грузии болезнь распространилась в Армению, Азербайджан, Нагорный Карабах, Иран, Абхазию, Россию, страны Прибалтики, Белоруссию, Польшу, на Украину (4-6).
Контроль за инфекцией осложняется отсутствием средств специфической профилактики. Попытки вакцинации домашних свиней аттену-ированными штаммами вируса АЧС в Испании и Португалии в 1960-х годах закончились неудачно (7, 8). Позднее подтвердилось, что из-за высо-
* Работа выполнена в рамках проекта Российского научного фонда «Создание кандидатной вакцины портив африканской чумы свиней на основе химерных вирусов» № 16-16-00090.
кой вероятности реверсии и неудовлетворительных иммунобиологических характеристик многих аттенуированных штаммов живые вакцины на их основе непригодны для широкого применения (9).
Эксперименты по созданию инактивированных или субъединичных вакцин против АЧС по общепринятым технологиям также оказались неудачными ввиду их неспособности индуцировать клеточный иммунитет, который играет решающую роль в формировании защиты при АЧС (1012). Тем не менее, исследования по разработке безопасных кандидатных защитных препаратов для временной защиты свиней, обеспечивающих их защиту в энзоотичных зонах или плановый убой на крупных свинокомплексах, продолжаются (9, 13). Показано, что иммунизация свиней реком-бинантными белками р30 и р54 или препаратом серотипоспецифического вирусного мажорного гликопротеина ГП 110-140 приводила к частичной защите животных от контрольного заражения гомологичными вирулентными изолятами (14-17).
Результаты изучения протективных свойств ДНК-конструкций, содержащих гены белков р30, р54 и CD2v (ГП 110-140), свидетельствуют о критически важной роли последнего в формировании защиты от АЧС (18, 19). Таким образом, исследование антигенных и иммуногенных характеристик продуктов экспрессии ДНК-конструкций, кодирующих гены протек-тивно значимых белков вируса АЧС, открывает перспективы создания препаратов нового поколения против вирулентных изолятов различных сероиммунотипов. Необходимые этапы этих работ — клонирование генов в составе ДНК-конструкций, экспрессия в эукариотических системах и подтверждение получения антигенно активных продуктов трансляции (20). Полагаем, что в качестве источников вирусных генов следует использовать аттенуированные штаммы вируса АЧС, охарактеризованные по сероимму-нотипу и протективным свойствам.
В представляемой работе впервые созданы гибридные плазмиды, пригодные для протеомных исследований и разработки ДНК-вакцины против вируса АЧС III сероиммунотипа.
Наша цель заключалась в получении ДНК-конструкций, содержащих фрагменты генов CP204L, E183L, EP402R вируса АЧС III сероиммунотипа, и идентификации в трансфицированных ими эукариотических клетках соответствующих антигенно активных продуктов трансляции ре-комбинантных белков гр30, гр54, rCD2v.
Методика. Штаммы вируса АЧС III и VIII сероиммунотипов Мо-замбик-78 (М-78) и Ставрополь 01/08 (высоковирулентные), а также штамм МК-200 и вариант Ставрополь 01/08 А^2/9к (аттенуированные) депонированы в Государственной коллекции микроорганизмов (Всероссийский НИИ ветеринарной вирусологии и микробиологии — ВНИИВВиМ) (21-23).
Схемы получения антисывороток были следующими: № 1 — 2-кратное внутримышечное введение домашней свинье аттенуированного варианта Ставрополь 01/08 А^2/9к в дозе 103'0 ГАЕ50 (0-е и 14-е сут), внутримышечное заражение вирулентным штаммом Ставрополь 01/08 в дозе 103 ГАЕ50 (на 28-е сут) и обескровливание животного (35-е сут после начала эксперимента); № 2 — отбор крови на 24-е сут после 1-кратной внутримышечной инокуляции дикому кабану аттенуированного штамма МК-200 (106'5 ГАЕ50); № 3 — 1-кратное внутримышечное введение домашней свинье аттенуированного штамма МК-200 в дозе 106'5 ГАЕ50 (0-е сут), внутримышечное заражение вирулентным штаммом М-78 в дозе 103 ГАЕ50 (на 21-е сут) и обескровливание животного (на 35-е сут после начала эксперимента).
При ПЦР в состав реакционной смеси входили праймеры, фланки-
рующие гены CP204L, E183L, EP402R вируса АЧС штамма МК-200. Для накопления ПЦР-продуктов использовали полученные ранее рекомбинант-ные плазмиды pJET1.2/p30-M200/2, pJET1.2/p54-M200/1 и pJET1.2/CD2v-M200/10. Лигирование осуществляли с применением коммерческого набора CloneJET PCR Cloning Kit согласно рекомендациям фирмы-изготовителя («Thermo Fisher Scientific, Inc.», США) и описанию (24).
Компетентные клетки штамма Escherichia mli XL-1 трансформировали методом теплового шока в присутствии ионов Ca2+ (25). Из отобранных устойчивых к ампициллину трансформантов выделяли плазмиды, наличие специфических вставок подтверждали рестрикционным анализом.
Нуклеотидные последовательности полученных химерных структур, содержащих гены CP204L, E183L и EP402R в составе плазмид pJET1.2 и pCI-neo, определяли на генетическом анализаторе Applied Biosystems 3130xl («Applied Biosystems, Inc.», США).
Линию человеческих эмбриональных клеток почки, трансформированных геном Т-антигена вируса SV40 (HEK293T; Коллекция культур клеток ВНИИВВиМ), трансфицировали рекомбинантными плазмидами pCI-neo/ASFV/p30/1, pCI-neo/ASFV/p54/1 и pCI-neo/ASFV/CD2v/1 кальций-фосфатным методом согласно рекомендациям (26) и культивировали после смены среды Игла МЕМ (ФГУП «ПИПВЭ им. М.П. Чумакова», Россия) от 1 до 5 сут. Трансфекцию контролировали по экспрессии GFP белка (положительный контроль — плазмида phMGFP) («Promega», США) на инвертированном флуоресцентном микроскопе Olympus MIT-2 («Olympus Corp.», Япония). Трансфицированные клетки снимали с субстрата механически, предварительно отмыв 3-кратно от сывороточных белков фосфатно-буферным раствором с рН 7,2 (ФБР), осаждали центрифугированием (3000 g, 10 мин) и замораживали при -70 °С. Далее 106 клеток лизировали в 1 см3 RIPA-буфера (24), клеточный дебрис осаждали центрифугированием (3000 g, 20 мин) и исследовали супернатанты методом иммунблоттинга. Электрофорез, электроперенос и иммуноблоттинг осуществили по методам U.K. Laemmle (27), J. Kyhse-Andersen (28) и J.M. Escribano, E. Tabares (29).
Для сравнения нуклеотидных последовательностей созданных химерных конструкций c опубликованными в GenBank применяли программу BLASTn (доступна на сайте http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/). Выравнивание и анализ проводили с помощью программ BioEdit 7.2.5 (intellectual property of Tom Hall, Freeware) и uGene 1.22 (ООО «Новосибирский центр информационных технологий УниПро»). Прогнозирование эпито-пов и структурных элементов выполняли с использованием онлайн-серверов (Technical University of Denmark, http://www.cbs.dtu.dk/cgi-bin/).
Специфичные олигонуклеотидные праймеры, флан- Результаты. Би-
кирующие участки генов белков p30, p54 и CD2v оинформатический ана-
Наименование| Нуклеотидная последовательность лиз трех потенциально
F-p30Domen 5 '-AGTACTGTTAAGTATGATATTGTGAAATCTG-3' протективных белков ви-R-p30Domen 5 '-AAGTTTAATAACCATGAGTCTTACCACC-3' F-p54Domen 5' -TCCTCAAGAAAGAAAAAAGCTGCTGCTATTGAG- 3'
руса АЧС (p30, p54 и
R-p54Domen 5'-CAAGGAGГПTCГAGGTCПTATGCGTATAGG-3' CD2v) штамма МК-200
F-CD2-IgHA 5'-AGTTATAATGAAACAATAATTTTAAATAGTAAT-3' выявил Ригняльные по-R-CD2-IgHA 5'-GTGATTTCCTAATAAAAAAGAATATTGATAATA-3' вьишил ишнсшышс ни
следовательности, трансмембранные регионы и возможные сайты посттрансляционных модификаций. В результате были определены внеклеточные (вневирионные) домены трансмембранных белков, которые несут в аминокислотных последовательностях наибольшее число прогнозируемых В- и Т-клеточных эпитопов. Клонируемый регион гена EP402R 49-651 п.н. (201 а.о.) исключал
нативные сигнальные и трансмембранные регионы, а также цитоплазма-тический домен 721-1137 п.н. Аналогичные регионы локализованы для генов CP204L (142-546 п.н.) и E183L (160-597 п.н.). Дизайн праймеров осуществляли в соответствии с дальнейшей стратегией «бесшовного» клонирования ДНК-конструкций по D.G. Gibson с соавт. (30). Нуклеотидные последовательности рассчитанных праймеров приведены в таблице.
Для повышения эффективности внутриклеточного сортинга указанных белков использовали универсальные сигнальные элементы из гете-рологичных вирусов (сигнальная последовательность белка слияния F парагриппа человека 1 и трансмембранный регион белка HN вируса Сендай). Для этого ампликоны p30-Domain, p54-Domain и CD2v-IgHA были суб-клонированы с сигнальными последовательностями и трансмембранными регионами в плазмидный вектор pJET1.2 («Thermo Fisher Scientific, Inc.», США). На основании ПЦР-скрининга и рестрикционного анализа отобрали клоны, содержащие плазмиды со специфическими нуклеотидными вставками. Секвенирование плазмид показало целостность рамок считывания полученных химерных последовательностей.
На следующем этапе получали ДНК-конструкции, экспрессирующие в клетках эукариот. Для этого соответствующие нуклеотидные последовательности были переклонированы в плазмидный вектор pCI-neo («Promega», США) по сайтам рестрикции NheI и SmaI. Цитомегаловирусный промотор в векторе pCI-neo обеспечивает высокую экспрессию в эукариотических системах. Карты открытых рамок считывания химерных генов приведены на рисунке 1.
А
NheI (1085) SmaI (1646)
CMV энхансер/промотор50™ ИНТР°Н I Химерная ОРС [рЗО]
TV промотор_
SV40
ПА терминатор
С МЛ' ттромотор Сигнал пептид | рЗО Domain
Трансмембранный регион pCI-neo/ASFV/p30
5991 п.н.
Б
N110^(1085)
ЬтаПШ!)
CMV знхансе р/промотор*™ И^°"|омотор Химерная ОРС [р54]
<=
SV40 ПА терминатор
CMV промотор Сигнал пептпд | р54 Domain
Трансмембранный регион pCI-neo/ASFV/p54
6036 п.н.
NheI (1085) I —
SmaI (1829) _I_
CMV :л ixai iccp/i фомотор >U'т7 промотор |ая »PC [CD2v]
SV40 ПА терминатор
CMV промотор Сигнал пептид CD2v-IgHA Domain Трансмсмбранный регион
pCI-neo/ASFV/CD2v 6174 п.н.
Рис. 1. Схема открытых рамок считывания для химерных генов с клонированными последовательностями фрагментов, кодирующих белки вируса африканской чумы свиней p30, p54 и СD2v, в полученных ДНК-конструкциях: А — pCI-neo/ASFV/p30, Б — pCI-neo/ASFV/p54, В — рС1-neo/ASFV/CD2v; CMV энхансер/промотор — энхансер раннего ответа промотора цитомегало-вируса, CMV промотор — промотор цитомегаловируса, хим интрон — химерный интрон, T7 промотор — промотор фага T7, SV40 ПА терминатор — сигнал полиаденилирования и терминатор из ДНК вируса SV40, Сигнал пептид — сигнальная последовательность.
Анализ полученных рекомбинантных плазмид рС1-пео/А8Бу/р30, рС1-пео/А8БХ/р54 и pCI-neo/ASFV/CD2v методом ПЦР с диагностическими праймерами показал, что на этих матрицах синтезируются ампли-
коны, размеры которых соответствуют расчетным (рис. 2). Для дальнейшей работы выбрали первые клоны каждой конструкции.
Для экспрессии полученных рекомбинантных генов in vitro использовали перевиваемую культуру HEK293T (клетки почки эмбриона человека, трансформированные геном Т-антигена вируса SV40). Наличие ориджи-на репликации вируса SV40 в составе pCI-neo обеспечивает эписомальную репликацию плазмид. После трансфекции монослоя клеток HEK293T кальций-фосфатным методом (конфлюентность 80-90 %) каждой из рекомбинантных плазмид и последующего культивирования в течение 1-5 сут рассчитывали эффективность трансфекции как долю числа флуоресцирующих клеток от общего наблюдаемого при люминесцентной микроскопии. В качестве контроля аналогичные эксперименты в идентичных условиях проводили с плазмидой phMGFP.
Рис. 2. Электрофореграмма разделения ПЦР-продуктов химерных генов в 1,5 % агарозном геле при скрининге рекомбинантных плазмид: 1, 2, 3 — ампликоны p30 (в качестве матрицы использованы выделенные из Escherichia coli плазмиды pCI-neo/ASFV/p30); 4, 5, 6 — ампликоны p54 (в качестве матрицы использованы выделенные из E. coli плазмиды pCI-neo/ASFV/p54); 7, 8, 9 — ампликоны CD2v (в качестве матрицы использованы выделенные из E. coli плазмиды pCI-neo/ASFV/CD2v); М — Lambda DNA/PstI Marker (маркер размера фрагментов ДНК 247-11501 п.н., «GeneOn GmbH», Германия).
Рис. 3. Иммуноблоттинг, демонстрирующий трансляцию рекомбинантных белков rp30 (А), rp54 (Б) и rp CD2v (В) в трансфицированных плаз-мидами pCI-neo/ASFV/p30/1, pCI-neo/ASFV/p54, pCI-neo/ASFV/CD2v клетках HEK293T и антигенную активность rp30 (Г): 1-4 — номера антисывороток, 5-13 — разведения лизата клеток HEK293T (от 1:2 до 1:512 с 2-кратным шагом), экс-прессирующих rp30. Слева стрелками указано местоположение и молекулярные массы вирусоспеци-фических полипептидов.
Полученные результаты, которые представлены на рисунке 3 (А, Г), отражают антигенную активность рекомбинантного (r) белка гр30, синтезированного в клетках HEK293T, трансфицированных плазмидой pCI-neo/ASFV/p30/1. По данным иммуноблоттинга с антителами АЧС-позитивных антисывороток крови домашних свиней и дикого кабана (разведение 1:20), его молекулярная масса составляет 21,6 кДа. С
сывороткой крови от интактной свиньи вирусоспецифических антигенов мы не выявили. Иммуноблоттинг белков лизата из нетрансфицированных клеток HEK293T со всеми антисыворотками дал отрицательные результаты (данные не приведены). Титрование лизата клеток HEK293T, трансфи-цированных плазмидой pCI-neo/ASFV/p30/1 (от 1:2 до 1:512 с 2-кратным шагом) (см. рис. 3, Г), выявило антигенную активность вплоть до разведения 1:128, что свидетельствует о высокой экспрессии ф30.
Методом иммуноблоттинга с использованием антисыворотки № 3 в лизате трансфицированных pCI-neo/ASFV/p54 клеток HEK293T было показано присутствие мажорного полипептида с молекулярной массой 20,9 кДа и минорного — с массой 36,3 кДа (см. рис. 3, Б), а при транс-фекции pCI-neo/ASFV/CD2v выявлялись мажорные полипептиды 39,8 и 63,1 кДа и минорные 28,8 и 104,7 кДа (см. рис. 3, В).
Расчетные молекулярные массы немодифицированных рекомби-нантных белков составили 21,6 кДа (ф30), 18,7 кДа, (ф54) и 28,6 кДа (rCD2v). По результатам иммуноблоттинга, фактические молекулярные массы полученных нами рекомбинантных полипептидов соответствовали или были близки с расчетными: для ф30 — 21,6 кДа, для ф54 — 20,9 кДа и 36,3 кДа (вероятно, димер ф54). По данным P. Gómez-Puertas с соавт. (16) и F. Rodriguez с соавт. (31), масса мономера полноразмерного р54 — 2428 кДа. В трансфицированнных pCI-neo/ASFV/CD2v клетках HEK293T транслированные вирусоспецифические полипептиды имели молекулярные массы 28,8; 39,8; 63,1 и 104,7 кДа. Первый из них по размеру соответствовал расчетной немодифицированной молекуле rCD2v. Остальные, по-видимому, представляли собой формы, в разной степени модифицированные в процессе гликозилирования. Эти результаты соответствуют данным L.C. Go-atley и L.K. Dixon (32), которые в клетках Vero, трансфицированных плаз-мидой SV5CD2vHA, идентифицировали полипептиды рекомбинантного CD2v с молекулярными массами 26, 63, 89 и 104 кДа. Под действием ингибитора гликозилирования туникамицина или эндогликозидаз D и F авторы дополнительно выявляли полипептиды размером 42 и 47 кДа (32).
Таким образом, получены ДНК-конструкции с фрагментами генов вируса африканской чумы свиней (АЧС) CP204L, E183L, EP402R. Методом иммуноблоттинга с использованием АЧС-специфических антисывороток показана антигенная активность полипептидов, экспрессируемых в результате трансфекции культуры клеток HEK293T рекомбинантными плаз-мидами pCI-neo/ASFV/p30, pCI-neo/ASFV/p54 и pCI-neo/ASFV/CD2v с нуклеотидными последовательностями для рекомбинантных белков (соответственно rp30, rp54 и rpCD2v). На следующем этапе предстоит определить иммуногенные свойства рекомбинантных плазмид и усовершенствовать полученные генные конструкции для создания соответствующих про-тективных форм.
Авторы выражают благодарность профессору В.М. Балышеву, д-ру С.П. Жи-водерову и д-ру И.А. Титову (ВНИИВВиМ) за помощь в выполнении работы.
ЛИТЕРАТУРА
1. Sanchez-Vizcaíno J.M., Mur L., Gomez-Villamandos J.C., Carrasco L. An update on the epidemiology and pathology of African swine fever. J. Comp. Pathol., 2015, 152(1): 9-21 (doi: 10.1016/j.jcpa.2014.09.003).
2. Макаров В.В., Сухарев О.И., Цветнова И.В. Эпизоотологическая характеристика вируса африканской чумы свиней. Ветеринарная практика, 2013, 1(60): 6-16.
3. Колбасов Д.В., Середа А.Д. Вопросы биологии вируса африканской чумы свиней в клещах. Ветеринария, 2013, 1: 19-23.
4. Rowlands R.J., Michaud V., Heath L., Hutchings G., Oura C., Volsoo W.,
Dwarka R., Onashvili T., Albina E., Dixon L.K. African swine fever virus isolate Georgia, 2007. Emerg. Infect. Dis., 2008, 14(12): 1870-1874 (doi: 10.3201/eid1412.080591).
5. Gogin A., Gerasimov V., Malogolovkin A., Kolbasov D. African swine fever in the North Caucasus region and the Russian Federation in years 2007-2012. Virus Res., 2013, 173(1): 198-203 (doi: 10.1016/j.virusres.2012.12.007).
6. S mietanka K., Wo z niakowski G., Kozak E., Niemczuk K., Fr 4 czyk M., Bocian L., Kowalczyk A., Pejsak Z. African swine fever epidemic, Poland, 20142015. Emerg. Infect. Dis., 2016, 22(7): 1201-1207 (doi: 10.3201/eid2207.151708).
7. Petisca N.J. Quelques aspects morphologiques а la suite de la vaccination contre la peste porcine Africaine (Virose L) au Portugal. Bull. Off. Int. Epizoot., 1965, 63: 199-237.
8. Vigario I.D., Terrinha A.M., Nunes J.F.M. Antigenic relationships among strains of African swine fever virus. Archiv fur die gesamte Virusforschung, 1974, 45(3): 272-277 (doi: 10.1007/BF01249690).
9. Колбасов Д.В., Балышев В.М., Середа А.Д. Итоги разработки живых вакцин против африканской чумы свиней. Ветеринария, 2014, 8: 3-8.
10. Makarov V., Nedosekov V., Sereda A., Matvienko N. Immunological conception of African swine fever. Zoology and Ecology, 2016, 26(3): 236-243 (doi: 10.1080/21658005.2016.1182822).
11. Takamatsu H.H., Denyer M.S., Lacasta A., Stirling C.M.A., Argilaguet J.M., Netherton C.L., Our a C.A.L., Martins C., Rodr i guez F. Cellular immunity in ASFV responses. Virus Res., 2013, 173(1): 110-121 (doi: 10.1016/j.virusres.2012.11.009).
12. Oura C.A.L., Denyer M.S., Takamatsu H., Parkhouse R.M.E. In vivo depletion of CD8+ T lymphocytes abrogates protective immunity to African swine fever virus. J. Gen. Virol., 2005, 86(9): 2445-2450 (doi: 10.1099/vir.0.81038-0).
13. King K., Chapman D., Argilaguet J.M., Fishbourne E., Hutet E., Cariolet R., Hutchings G., Oura C.A.L., Netherton C.L., Moffat K., Taylor G., Le P o ti e r M.F., D ixo n L.K., T aka ma ts u H.H. Protection of European domestic pigs from virulent African isolates of African swine fever virus by experimental immunization. Vaccine, 2011, 29(28): 4593-4600 (doi: 10.1016/j.vaccine.2011.04.052).
14. Bachmann M.F., Kundig T.M., Freer G., Li Y., Kang C.Y., Bishop D.H., H e n g a rt n e r H., Z in ke rn a R.M. Induction of protective cytotoxic T cells with viral proteins. Eur. J. Immunol., 1994, 24: 2228-2236 (doi: 10.1002/eji.1830240944).
15. Gomez-Puerta P., Rodriguez F., Oviedo J.M., R a m i r o -1 b a ne z F., Rui z - G o n z a l v o F., E s c ri b a n o J.M. Neutralizing antibodies to different proteins of African swine fever virus inhibit both virus attachment and internalization. Virology, 1996, 70(8): 5689-5694.
16. G о mez-Puertas P., Rodriguez F., Oviedo J.M., Brun A., Alonso C., Escribano J.M. The African swine fever virus proteins p54 and p30 are involved in two distinct steps of virus attachment and both contribute to the antibody-mediated protective immune response. Virology, 1998, 243: 461-471 (doi: 10.1006/viro.1998.9068).
17. Середа А.Д. Иммуногенные и протективные свойства гликопротеинов вируса африканской чумы свиней. Актуальные вопросы ветеринарной биологии, 2013, 4(20): 31-35.
18. Argilaguet J.M., Perez-Martin E., Nofrarias M., Gallardo C., Accensi F., Lacasta A., Mora M., B all e s t e r M., Galindo-Cardiel I., Lopez - Soria S., Escribano J.M., Reche P.A., Rodriguez F. DNA vaccination partially protects against African swine fever virus lethal challenge in the absence of antibodies. PLoS ONE, 2012, 7(9): e40942 (doi: 10.1371/journal.pone.0040942).
19. Середа А.Д., Казакова А.С., Иматдинов А.Р., Колбасов Д.В. Гуморальные и клеточно-опосредованные механизмы иммунитета при африканской чуме свиней. Сельскохозяйственная биология, 2015, 50(6): 709-718 (doi: 10.15389/agrobiology.2015.6.709rus, doi: 10.15389/agrobiology.2015.6.709eng).
20. Мима К.А., Бурмакина Г.С., Титов И.А., Малоголовкин А.С. Иммунологиче-ски значимые гликопротеины p54 и CD2v вируса африканской чумы свиней: биоинфор-матический анализ генетических вариаций и гетерогенности. Сельскохозяйственная биология, 2015, 50(6): 785-793 (doi: 10.15389/agrobiology.2015.6.785rus, doi: 10.15389/agrobiolo-gy.2015.6.785eng).
21. С е р е д а А.Д., Б а л ы ш е в В.М. Антигенное разнообразие вируса африканской чумы свиней. Вопросы вирусологии, 2011, 4: 38-42.
22. Malogolovkin A., Burmakina G., Titov I., Sereda A., Gogin A., Barysh-nikova E., Kolbasov D. Comparative analysis of African swine fever virus genotypes and serogroups. Emerg. Infect. Dis., 2015, 21(2): 312-315 (doi: 10.3201/eid2102.140649).
23. Балышева В.И., Прудникова Е.Ю., Гальнбек Т.В., Балышев В.М. Перевиваемая сублиния клеток А4С2/9к и ее использование в исследованиях с вирусом африканской чумы свиней. Вопросы вирусологии, 2015, 2: 43-47.
24. Green M.R., Sambrook J. Molecular doning: а laboratory manual. Cold Spring Harbor Laboratory Press, NY, 2012.
25. Маниатис Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. Методы генетической инженерии. Молекулярное клонирование. М., 1984.
26. Graham F.L., van der Eb A.J. Transformation of rat cells by DNA of human adenovirus 5. Virology, 1973, 54(2): 536-539 (doi: 10.1016/0042-6822(73)90163-3).
27. Laemmle U.K. Clevage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature, 1970, 227: 680-685 (doi: 10.1038/227680a0).
28. Kyhse -Andersen J. Electroblotting of multiple gels: a simple apparatus without buffer tank for rapid transfer of proteins from polyacrylamide to nitrocellulose. J. Biochem. Biophys. Methods, 1984, 10(3/4): 203-209.
29. Escribano J.M., Tabares E. Proteins specified by African swine fever virus. V. Identification of immediate early, early and late proteins. Arch. Virol., 1987, 92: 221-238.
30. Gibson D.G., Young L., Chuang R.Y., Venter J.C., Hutchison C.A. III, Smith H.O. Enzymatic assembly of DNA molecules up to several hundred kilobases. Nature Methods, 2009, 6: 343-345 (doi: 10.1038/nmeth.1318).
31. Rodriguez F., Alcaraz C., Yanez R.J., Rodriguez J.M., Alonso C., Rodriguez J.F., Escribano J.M. Characterization and molecular basis of heterogeneity of the African swine fever virus envelope protein p54. J. Virol., 1994, 68(11): 7244-7252.
32. Go at ley L.C., Dixon L.K. Processing and localization of the African swine fever virus CD2v transmembrane protein. J. Virol., 2011, 85(7): 3294-3305 (doi: 10.1128/jvi.01994-10).
ГНУ Всероссийский НИИ ветеринарной вирусологии и микробиологии, 601125 Россия, Владимирская обл., Петушинский р-н, пос. Вольгинский, ул. Академика Бакулова, стр. 1, е_таЛ: [email protected]
Поступила в редакцию 30 августа 2016 года
Sel'skokhozyaistvennaya biologiya [Agricultural Biology], 2016, V. 51, № 6, pp. 837-844
EXPRESSION OF RECOMBINANT GENES ENCODING FRAGMENTS OF THE PROTECTIVE IMPORTANT PROTEINS OF AFRICAN SWINE FEVER VIRUS IN EUCARYOTIC CELLS
A.R. Imatdinov, A.D. Sereda, I.R. Imatdinov, A.S. Kazakova, O.A. Dubrovskaya,
D.V. Kolbasov
All-Russian Institute of Veterinary Virology and Microbiology, Federal Agency of Scientific Organizations, 1, ul. Akade-mika Bakuleva, pos. Vol'ginskii, Petushinskii Region, Vladimir Province, 601125 Russia, e-mail [email protected] Acknowledgements:
We thank Prof. V.M. Balyshev, Dr. S.P. Zhivoderov and Dr. I.A. Titov for assistance in carrying out the work. Supported by Russian Science Foundation (the research project «Design of African swine fever virus candidate vaccine based on chimeric viruses», contract No 16-16-00090)
Received August 30, 2016 doi: 10.15389/agrobiology.2016.6.837eng
Abstract
Control of African swine fever (ASF) is complicated by the lack of specific prevention medications. The attempts to obtain live attenuated vaccines by conventional methods were not promising, and the inactivated or subunit vaccines have not been developed so far (N.J. Petiska, 1965; D.V. Kolbasov et al., 2014; V. Makarov et al., 2016). The investigation of protective immune response against ASF virus (ASFV) enabled determination of a critical role of cellular defense mechanisms and the most important viral proteins p30, p54 and CD2v (or gp 110-140) involved (P. Gomez-Puertas et al., 1998; J.M. Argilaguet et al., 2012; A.D. Sereda et al., 2015). In view to develop a DNA vaccine against ASFV seroimmunotype 3 we have constructed a set of hybrid plasmids containing fragments of ASFV genes CP204L, E183L and EP402R from attenuated strain MK-200 (pCI-neo/ASFV/p30, pCI-neo/ASFV/p54 and pCI-neo/ASFV/CD2v). To study expression of the antigenically active polypeptide products for recombinant proteins rp30, rp54 and rCD2v in the eukaryotic cells, we transfected human embryonic kidney cells HEK293T, which stably express the SV40 large T antigen, with recombinant plasmids pCI-neo/ASFV/p30, pCI-neo/ASFV/p54 and pCI-neo/ASFV/CD2v. By immunoblotting, the polypeptides of the expressed recombinant proteins were identified in the HEK293T cell lysates and characterized for their molecular weights. Regarding size, some antigenically active recombinant polypeptides were as calculated, whereas the other ones apparently resulted from post translational modification. We identified a 21.6 kDa polypeptide after pCI-neo/ASFV/p30 transfection, a major (20.9 kDa) and a minor (36.3 kDa) polypeptides after pCI-neo/ASFV/p54 transfection, and, finally, major polypeptides of 39.8 kDa and 63.1 kDa, together with minor polypeptides of 28.8 kDa and 104.7 kDa when pCI-neo/ASFV/CD2v transfected. These genetic constructions will be helpful to investigate antigenic, immunogenic and protective properties of ASFV recombinant proteins rp30, rp54 and rCD2v.
Keywords: African swine fever, recombinant genes and proteins, transfection, antigenicity.
