151Литература
1. Воробьев В.Н., Невмержицкая Ю.Ю., Хуснетдинова Л.З., Якушенкова Т.П. Практикум по физиологии растений. Казань, Казанский университет, 2013. 80 с.
2. Гавриленко В.Ф., Жигалова Т.В. Большой практикум по фотосинтезу. М.: «Академия», 2003. 256 с.
3. Ладыгин В.Г., Ширшикова Г.Н. Современные представления о функциональной роли каротиноидов в хлоропластах эукариот // Журнал общей биологии. 2006. Т. 67. № 3. С. 163-189.
4. Пиняскина Е.В., Пиняскина А.В., Маммаев А.Т., Магомедова М.М., Алиева М.Ю. Изучение флуоресцентных показателей фотосинтетической активности вишен разных сортов в зависимости от вертикальной зональности // Современные проблемы науки и образования. 2016. № 6. URL: http://science-education.ru/ru/article/view?id=26006 (дата обращения: 07.02.2020).
5. Смашевский Н.Д. Экология фотосинтеза // Астраханский вестник экологического образования. 2014. № 2(28). С. 165-180.
6. Тужилкина В.В. Реакция пигментной системы хвойных на длительное аэротехногенное загрязнение // Экология. 2009. № 4. С. 243-248.
7. Hokmalipour S., Darbandi M.H. Effects of nitrogen fertilizer on chlorophyll content and other leaf indicate in three cultivars of maize (Zea mays L.) // World Applied Sciences Journal. 2011. Vol. 15, № 12. P. 1780-1785.
8. Jaroszewska A. Assimilatory pigment content of stone fruit trees leaves in relation to irrigation and fertilization / Infrastructure and ecology of rural areas. 2011. № 6. Р. 155-164.
9. Jaroszewska A. The effect of irrigation and mineral fertilization on the photosynthetic activity and water use in respect of cherry cv. 'Kelleris 16' yielding // Acta Sci. Pol. Hortorum Cultus. 2015. Vol. 14, № 5. Р. 109-120.
10. Jaroszewska A., Podsiadlo C., Rumasz-Rudnicka E. Influence of under-crown irrigation and mineral fertilization on the photosyntetic activity and yielding of some species of stone fruits trees // Infrastructure and ecology of rural areas. 2009. № 3. Р. 201-212.
11. Lichtenthaler H.K. Chlorophylls and carotenoids: pigments of photosynthetic biomembranes // Methods in Enzymology. 1987. V. 148. P. 350-382.
12. Pilarski J., Tokarz K., Kocurek M. Comparison of photosynthetic pigment contents in stems and leaves of fruit trees: cherry, sweet cherry, common plum, and walnut tree // Folia Horticulturae. 2007. Vol. 19, № 1. Р. 53-65.
13. Podsiadto C., Jaroszewska A. Effect of irrigation and fertilization of nitrogen and potassium on photosynthetic activity of cherry // Infrastructure and ecology of rural areas. 2013. № 2/I. Р. 93-101.
14. Prsa I., Stampar F., Vodnic D., Veberic R. Influence of nitrogen on leaf chlorophyll content and photosynthesis of 'Golden Delicious' apple // Acta Agriculturae Scandinavica, Section B - Soil & Plant Science. 2007. Vol. 57, № 3. Р. 283-289. DOI: 10.1080/09064710600982878
15. Tranaviciene T., Siksnianiene J.B., Urbonaviciute A., Vaguseviciene I., Samuoliene G., Duchovskis P., Sliesaravicius A. Effects of nitrogen fertilizers on wheat photosynthetic pigment and carbohydrate contents // Biologija. 2007. Vol. 53, № 4. P. 80-84.
16. Viljevac M., Dugalic K., Mihaljevic I., Simic D., Sudar R., Jurkovic Z., & Lepedus, H. (2013). Chlorophyll content, photosynthetic efficiency and genetic markers in two sour cherry (Prunus cerasus L.) genotypes under drought stress // Acta Botanica Croatica. 2013. Vol. 72, № 2. Р. 221-235.
17. Yaseen S.A., AL-Zubaydi S.R. Effects of foliar application of (NH4)2SO4 and Alga21st on vegetative growth and chlorophyll content of two cultivars sweet cherry (Prunus aviumL.)
18. Transplants // Journal of Duhok University. 2019. Vol. 22, № 1. Р. 78-88. https://doi.org/10.26682/avuod.2019.22.1.8
УДК 634.1:632.3 https://www.doi.org/10.24411/2500-0454-2020-11234
ДИАГНОСТИКА ВИРУСОВ ПЛОДОВО-ЯГОДНЫХ КУЛЬТУР И СОВРЕМЕННЫЕ МЕТОДЫ ИХ ОЗДОРОВЛЕНИЯ
Рягузова Т.В., м.н.с.
ФГБНУ ВНИИ селекции плодовых культур, 302530, Россия, Орловская область, Орловский район, д. Жилина, ВНИИСПК, [email protected]
Аннотация
Вирусные болезни в средней полосе России в силу хронического характера и высокой вредоносности становятся постоянным фактором, сдерживающим повышение урожайности плодово-ягодных культур. Продуктивность семечковых культур снижается на 21-48% под действием таких патогенов, как хлоротическая пятнистость листьев яблони (Apple chlorotic leaf spot trichovirus, ACLSV), бороздчатость древесины (Apple stem-grooving virus, ASGV), ямчатость древесины (Apple stem pitting virus, ASPV), мозаика яблони (Apple mosaic ilarvirus, AMV). На
косточковых - весьма вредоносны вирусы Шарки сливы (Plum pox potyvirus, PPV), некротической кольцевой пятнистости (Prunus necrotic ringspot ilarvirus, PNRSV), карликовости сливы (Prune dwarf ilarvirus, PDV), хлоротической пятнистости листьев яблони, которые приводят к снижению урожая до 50 %. В высокой степени от вирусов страдают ягодные культуры. На землянике значительный вред причиняют вирусы морщинистости (Strawberry crinkle rhabdovirus, SCR) и крапчатости листьев (Strawberry mottle virus, SMV), переносимые тлями. Для малины большую опасность представляет вирус кустистой карликовости (Raspberry bushy dwarf virus, RBDV), распространяющийся с пыльцой и приводящий к измельчению и рассыпухе плодов. На смородине потери урожая от вируса реверсии (Blackcurrant reversion virus, BCRV) колеблются от 30 до 98 %. Крыжовник часто поражается вредоносным вирусом окаймления жилок (Gooseberry vein banding, GVB), который переносится тлями.
Для увеличения объемов производства свободного от вирусов посадочного материала плодовых и ягодных культур, необходимо применять наиболее современные методы диагностики вирусов и последующее оздоровление инфицированных растений. Поэтому изучение вирусных заболеваний в настоящее время является наиболее актуальной задачей. В данной статье представлены материалы исследования и анализа мирового опыта в оздоровлении посадочного материала плодовых и ягодных культур. Ключевые слова: вирусы плодово-ягодных культур, диагностика, оздоровление
DIAGNOSTICS OF VIRUSES OF FRUIT AND BERRY CROPS AND MODERN METHODS OF THEIR IMPROVEMENT
Ryaguzova T.V., junior researcher
Russian Research Institute of Fruit Crop Breeding, 302530, Russia, Orel region, Orel district, Zhilina, VNIISPK, [email protected]
Abstract
Due to the chronic nature and high harmfulness, virus diseases in Central Russia become a constant factor constraining the increase in the yield of fruit and berry crops. The productivity of pome crops decreases by 21-48 % under the action of pathogens such as Apple chlorotic leaf spot trichvirus (ACLSV), Apple stem-grooving virus (ASGV), Apple stem pitting virus (ASPV) and Apple mosaic ilarvirus (AMV). For stone fruit crops, the following viruses are rather harmful: Plum pox potyvirus (PPV), Prunus necrotic ringspot ilarvirus (PNRSV) and Prune dwarf ilarvirus (PDV) and Apple chlorotic leaf spot trichvirus (ACLSV), which reduce the yield to 50 %. Berry crops suffer from viruses to a high degree. Strawberry crinkle rhabdovirus (SCR) and Strawberry mottle virus (SMV) cause significant harm to strawberries. These viruses are carried by aphids. Raspberry bushy dwarf virus (RBDV) is very dangerous for raspberries. This virus is spread by pollen and leads to small and crumbling the fruit. On currants, crop losses from the Blackberry reversion virus (BCRV) range from 30 to 98 %. Gooseberries are often affected by Gooseberry vein banding (GVB) which is carried by aphids.
To increase the production of virus-free planting material of fruit and berry crops, it is necessary to
apply the most modern methods of virus diagnosis and subsequent rehabilitation of infected plants.
Therefore, the study of viral diseases is the most urgent task at the present time.
Data of research and analysis of the world experience in the field of diagnosis of viral diseases and
improvement of planting material of fruit and berry crops are presented in this article.
Key words: viruses of fruit and berry crops, diagnostics, improvement
Введение
Вирусы являются опасными внутриклеточными патогенами плодово-ягодных культур, поражение которыми имеет хронический латентный характер и, как правило, не ведет к скоротечным потерям урожая или гибели культур. Несмотря на это у многих растений значительно снижается продуктивность, а в некоторых случаях отмечается вырождение сортов. При отсутствии других факторов, угнетающих продуктивность плодовых и ягодных культур, потери урожая от вирусных заболеваний составляют 30-50 % (Упадышев, 2011).
М.Т. Упадышевым приводятся данные, что под воздействием скрытых вирусов, происходит снижение продуктивности груши на 20 %, а также уменьшается содержание хлорофилла на 14 % (Упадышев, 2012). Он же указывает на снижение урожая ежевики и малино-ежевичных гибридов на 71 % и уменьшение длины их побегов на 40 % под действием вирусов (Упадышев, 2011).
Согласно данным зарубежных исследователей латентные вирусы (хлоротической пятнистости листьев яблони, бороздчатости древесины, мозаики яблони и др.) на яблоне и груше приводят к снижению урожая на 21-48 %, а у
восприимчивых сортов на 70 % (Clever, Stehr, 1996).
Поскольку в настоящее время появляются новые штаммы вирусов и осуществляется размножение неоздоровленного посадочного материала, их распространенность и вредоносность значительно возрастает. С 1995 по 2017 гг. учеными из ФГБНУ ВСТИСП проводился мониторинг насаждений в 15 областях России, где было протестировано около 100 тысяч растительных образцов. Проведенное исследование показало весьма большую распространенность вирусных заболеваний: 32-80 % в зависимости от культуры (Упадышев, 2012).
В связи с тем, что вирусы имеют скрытый характер, они широко распространяются с пыльцой, семенами, тлями и нематодами, с зараженными посадочными материалами, а также с инструментами при проведении агротехнических работ (Упадышев, 2011).
Актуальными задачами защиты растений являются: изучение распространенности вирусных инфекций, диагностика и прогноз их развития, а также уничтожение очагов карантинных объектов и создание безвирусного питомниководства плодовых и ягодных культур.
Диагностика таких заболеваний проводится визуально (по наличию симптомов), путем тестирования на индикаторах, серологическими и молекулярными методами, электронной микроскопией. Методы визуальной диагностики и индикаторов применялись в основном только на начальных этапах развития вирусологии. С накоплением знаний о вирусах и технической модернизации, происходило усовершенствование и способов диагностики. На сегодняшний день широкое применение находят методы ИФА и ПЦР (Упадышев, 2018).
Тестирование на травянистых индикаторах. К преимуществам данного метода можно отнести отсутствие необходимости использования дорогостоящего оборудования. Метод прост в выполнении и имеет небольшую продолжительность теста во времени. К недостаткам относят наличие специального помещения с определенной температурой (не выше 20-22 °С) и семян определенных видов индикаторов, которые свободны от вирусов. А также достаточно высокая трудоемкость, сложность передачи некоторых вирусов и низкий процент заражения, невысокая специфичность, которая затрудняет идентификацию возбудителя (Упадышев, 2018).
Тестирование на древесных индикаторах проводится на общепринятых видах и сортах в специально созданных насаждениях древесных растений-индикаторов. Данный метод позволяет обнаружить поражения всеми известными в настоящее время вирусными заболеваниями. Тестирование данным методом отличается высокой надежностью. Для проведения заражения, используют восприимчивые виды, сорта, которые специфично реагируют на инфекции и быстро проявляют признаки заболевания. На плодовых культурах диагностика осуществляется способом двойной окулировки или массированным заражением, на ягодных - разнообразными способами прививки (сближением, врасщеп, копулировкой, щитком коры и др.). Недостатками данного метода являются продолжительный период тестирования (1 -2 года), высокая трудоемкость и стоимость, необходимость больших площадей (Упадышев, 2018).
Низкий уровень чувствительности биологических методов и длительное время для получения результатов, обусловили необходимость разработки более чувствительных, надежных и быстрых методов обнаружения вирусов.
В последние годы тестирование на индикаторах уступает место таким методам диагностики, как ИФА (иммуноферментному анализу) и ПЦР (полимеразной цепной реакции).
Иммуноферментный анализ позволил выйти на новый этап в диагностике вирусов, поскольку обладает высокой специфичностью и чувствительностью (способен выявлять вирусные частицы в концентрации 1-100 нг/мл). Этот метод пригоден для массового тестирования растений и позволяет автоматизировать большинство этапов анализа. Ввиду того, что ИФА ограничен вирусами, к которым имеются антисыворотки, в последние годы все чаще используется метод с применением ПЦР. Полимеразная цепная реакция обладает высокой чувствительностью (в 100-1000 раз больше по сравнению с иммуноферментным анализом) и возможностью выполнения анализа за один рабочий день. В исследованиях М.Т. Упадышева оценка ИФА и ПЦР при тестировании груши разных сортов на вирусные инфекции подтвердила большую чувствительность и специфичность полимеразной цепной реакции (Упадышев, 2018).
Благодаря ПЦР появилась возможность быстрой диагностики болезней, для которых отсутствуют антисыворотки, а также возможность определения вирусов в тканях, которые находятся в состоянии покоя растений (в коре, древесине). Недостатками метода являются высокая стоимость анализа, наличие дорогостоящего оборудования, низкая производительность и использование канцерогенных препаратов (этидиум, бромид) (Упадышев, 2018).
Электронная микроскопия. Под электронным микроскопом рассматривают срез или гомогенат тканей растения. Метод позволяет получить информацию о наличии возбудителей в тканях инфицированного растения, а также определить примерную концентрацию, форму и размеры вирусных частиц и установить их таксономическую принадлежность. Электронная микроскопия используется как дополнительный метод для подтверждения результатов, которые были получены при использовании других способов диагностики. Микроскопический анализ используется редко из-за своей трудоемкости и дороговизны (Кухарчик, 2012).
Методы оздоровления. Предотвращение вирусных заболеваний достигается переводом питомниководства на безвирусную основу, соблюдением требований сертификации посадочного материала. Основным способом, получения растений свободных от вирусных частиц, является их оздоровление, которое представляет из себя сложный, многоступенчатый процесс, зависящий от вида вируса и генотипа растения.
Для того, чтобы получить посадочный материал свободный от вирусов, необходимо использовать следующие способы оздоровления: хемо-, термо-, магнитотерапию и биотехнологические методы. Эффективность процесса
повышается при использовании комплекса оздоровительных приемов.
С середины ХХ века стали появляться первые результаты об успешном получении безвирусных растений, выращенных из меристем. В дальнейшем данная методика стала активно развиваться.
Во ФГБУН «ВННИИВиВ «Mагарач» РАН» учеными применялась термотерапия в сочетании с культивированием верхушек побегов винограда, зараженного латентными вирусами (вирус короткоузлия (GFLV), вирус скручивания листьев 1-3-го серотипа (GLRaV1, GLRaV2, GLRaV3), вирус А винограда (GVA), вирус В винограда (GVB), вирус бороздчатости древесины Rupestris). Проведенное исследование показало положительные результаты в отношении лечения вирусных заболеваний винограда: в 14 из 20 случаев наступало выздоровление (Клименко, Павлова,2018).
При проведении хемотерапии в питательные среды необходимо добавлять различные противовирусные препараты, что увеличивает выход здоровых растений от 80 % до 100 %.
MT. Упадышев, при оздоровлении подвоя груши, применил салициловую кислоту, что обеспечило выход здоровых растений от 50 % до 55 % от числа тестированных образцов. Им же было проведено оздоровление малины с добавлением в питательную среду препаратов рибавирин, кагоцел и арбидол (20, 40, 80 мг/л) (Упадышев и др., 2009).
Ученые из НБС-ННЦ проводили оздоровление 2 сортов вишни (Подбельская, Чернокорка) и 2 сортов сливы (Персиковая, Стенлей), пораженных вирусами карликовости, некротической кольцевой пятнистости, кроме того, сорт сливы Стенлей был поражен вирусом Шарки сливы. При проведении хемотерапии ими применены следующие вироциды: виразол (1-50 мг/л) и NEO-DNT (50-100 мг/л). Исследования показали, что оба противовирусных препарата оказались эффективными против данных вирусов (Лукичева и др., 2007).
При магнитотерапии растения подвергаются обработке магнитными импульсами с частотой 3.2-12.8 Гц. Выход здоровых растений составляет от 60 до 100 % (Упадышев и др., 2016; Упадышев и др., 2017). Сочетание методов хемотерапии и магнитно-импульсной обработки, способствует оздоровлению от 98-100 % растений.
Ю.А. Утковым, MT. Упадышевым и др. проводилось оздоровление гибрида между малиной и ежевикой сорта Краснодарская и груши сорта Лада при помощи магнитотерапии от комплекса вирусов. Mикропобеги подвергали обработке магнитными импульсами с диапазоном от 0,2 до 51,2 Гц. Оздоровление 80-100 % растений было достигнуто при частотах 1,6; 3,2 и 12,8 Гц (Утков и др., 2008).
Учеными из ФГБНУ ВСТИСП при помощи хемо- и магнитотерапии проводилось оздоровление груши сорта Березолистная, зараженной вирусами мозаики яблони, бороздчатости древесины яблони и ямчатости древесины яблони. При проведении хемо- или магнитно-импульсной обработки, оздоровление от комплекса вирусов составляло 50 % и 55 % соответственно от числа тестируемых эксплантов. Использование комплексной обработки антивирусным препаратом (салициловая кислота в концентрации 42 мг/л) и магнитотерапией (импульсы с частотой от 0,8 до 51,2 Гц), не приводило к увеличению выхода здоровых растений по сравнению с контролем. Оздоровление от одного вируса протекало успешнее, чем от комплекса вирусов: удалось получить до 100 % растений, свободных от вируса бороздчатости древесины яблони (Упадышев и др., 2016).
В настоящее время имеется несколько методов оздоровления растений при помощи термотерапии. К ним относятся водные и суховоздушные способы обработки.
При термотерапии растения поддерживают на пределе температуры физиологической терпимости (от +32 до +42 °C) от нескольких недель до нескольких месяцев. Успех зависит от термостойкости вирусов, которыми заражены обрабатываемые растения. Чем выше температура, которую может выдержать растение, и длительнее период культивирования при высокой температуре, тем больше вероятность освобождения растения от вирусов. В результате термообработки отдельные органы растения или верхушки стебля освобождаются от вирусов. Освобожденные верхушки выращивают на питательных средах или прививают на безвирусные сеянцы (Кухарчик, 2012).
Также при проведении термотерапии можно применять методику чередования высоких и низких температур, что менее губительно для растения и эффективно для оздоровления от вирусов.
Guo-jun Hu, Ya-feng Dong и др. (2015) было использовано чередование режимов высокотемпературной и низкотемпературной терапии при оздоровлении яблони от ACLSV, ASGV и ASPV. Элиминация вируса составила 45 %. Эффективность устранения инфекции была повышена путем сочетания термо- и хемотерапии. Обработка сочетанием рибавирина (25 мкг/мл) и термотерапии при 36 °C привела к высокой эффективности уничтожения вируса (95,0 %).
Rongrong Tan, Liping Wang и др. (2010) проводили термотерапию in vitro на побегах груши, пораженных вирусами ACLSV, ASGV и ASPV. Результаты показали, что обработка при постоянной высокой температуре 37 °C сильно влияла на рост растений груши in vitro и значительно снижала выживаемость растений, хотя безвирусные растения можно было регенерировать из нескольких выживших кончиков растений. Когда обработку проводили при 32 °C / ночь и 38 °C / день, выживаемость и рост растений были значительно улучшены, но безвирусные растения не могли быть регенерированы из кончиков побегов, обработанных в течение 50 дней. На основании этих результатов зараженные растения подвергали тепловой обработке при 42 °С / день и 34 °С / ночь. Высокая эффективность уничтожения вируса была достигнута на обработанных культурах груши в течение более 55 дней.
Выводы
Таким образом, перспективы развития безвирусного питомниководства плодовых и ягодных культур определяются доступностью надежных методов диагностики вирусных инфекций, обладающих высокой
чувствительностью, специфичностью, достоверностью и пригодностью для массового тестирования образцов. А также повышение результативности оздоровления (хемо-, термо-, магнитотерапия, биотехнологические методы), для повышения качества посадочного материала и перехода на выпуск сертифицированного материала, свободного от основных вредоносных вирусов. Принятие данной программы позволит значительно улучшить фитосанитарное состояние садовых культур в стране.
Литература
1. Клименко В.П., Павлова И.А. Оздоровление растений винограда in vitro от вирусных болезней // Русский виноград. 2018. Т. 7. С. 76-83.
2. Куликов И.М., Упадышев М.Т. Пути оздоровления садовых культур от вирусов // Защита и карантин растений. 2015. № 4. С. 10-12.
3. Кухарчик Н.В. Вирусные и фитоплазменные болезни плодовых и ягодных культур в Беларуси. Минск: Беларус. навука, 2012. 209 с.
4. Лукичева Л.А., Митрофанова О.В., Лесникова-Седошенко Н.П. Оздоровление сортов вишни (Prunus cerasus L.) и сливы (Prunus domestica L.) от вирусов с использованием биотехнологических приемов // Труды Никитского ботанического сада. Т. 127. Ялта, 2007. С. 27-34.
5. Упадышев М.Т., Приходько Ю.Н., Петрова А.Д. и др. Хемотерапия вирусов плодовых и ягодных культур in vitro. М.: ФГНУ «Росинформагро-тех», 2009. 71 с.
6. Упадышев М.Т. Вирусные болезни и современные методы оздоровления плодовых и ягодных культур: дис. ...докт. с.-х. наук. М., 2011. 479 с.
7. Упадышев М.Т. Оздоровление садовых растений от вирусов // Защита и карантин растений. 2012. № 5. С. 17-18.
8. Упадышев М.Т., Донецких В.И., Петрова А.Д., Метлицкая К.В. Магнитно-импульсная терапия при оздоровлении растений груши от вирусов in vitro // Применение химических веществ, ионизирующих и неионизирующих излучений в агробиотехнологиях: сб. докл. круг. стола в рамках XX Менделеевского съезда по общей и прикладной химии (21 сентября 2016 г.). Обнинск: ФГБНУ ВНИИРАЭ. С. 119-121.
9. Упадышев М.Т., Петрова А.Д., Метлицкая К.В., Донецких В.И. Хемо- и магнитотерапия при оздоровлении растений груши от латентных вирусов // IV Международная конференция "Современные проблемы иммунитета растений к вредным организмам". СПб.: ФГБНУ ВИЗР, 2016. 124 с.
10. Упадышев М.Т., Мотылева С.М., Мертвищева М.Е., Донецких В.И. О биохимическом механизме действия магнитной обработки на процесс оздоровления растений малины от вирусов // Новые и нетрадиционные растения и перспективы их использования. 2017. № 3. С. 315-317.
11. Упадышев М.Т. Диагностика вирусов плодовых и ягодных культур - важный этап в производстве сертифицированного посадочного материала // Садоводство и виноградарство - Horticulture and viticulture. 2018. № 2. С. 43-48. DOI: 10.25556/VSTISP.2018.2.12306
12. Утков Ю.А., Упадышев М.Т., Донецких В.И. Магнитотерапия при оздоровлении ягодных и плодовых культур от вирусов // Энергообеспечение и энергосбережение в сельском хозяйстве. 2008. Ч. 2. С. 191-196.
13. Guo-jun Hu, Ya-feng Dong, Zun-ping Zhang, Xu-dong Fan, Fang Ren, Jun Zhou. Virus elimination from in vitro apple by thermotherapy combined with chemotherapy // Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC). 2015. Vol. 121. P. 435-443. DOI: 10.1007/s11240-015-0714-6
14. Rongrong Tan, Liping Wang, Ni Hong, Guoping Wang. Enhanced efficiency of virus eradication following thermotherapy of shoot-tip cultures of pear // Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC). 2010. Vol. 101. P. 229-235. DOI: 10.1007/s11240-010-9681-0.
УДК 634.11:631.526:631.546 https://www.doi.org/10.24411/2500-0454-2020-11235
УСПЕХИ СЕЛЕКЦИИ ЯБЛОНИ КОЛОННОВИДНОЙ В ФГБНУ ФНЦ ИМ. И.В. МИЧУРИНА
Савельева Н.Н., д.б.н. Земисов А.С., к.с.-х.н.
ФГБНУ «ФНЦ им. И.В. Мичурина», Мичуринск, Россия, [email protected] Аннотация
Создание колонновидных сортов является в настоящее время актуальным направлением, так как дает возможность закладывать уникальные суперинтенсивные сады, обеспечивающие получение прибыли, высокую рентабельность производства, а также значительную экономию материальных и трудовых затрат. В этой связи в селекционно-генетическом центре ФГБНУ
