БИОЛОГИЧЕСКИЕ СВОЙСТВА МИКРООРГАНИЗМОВ, ВЫДЕЛЕННЫХ ОТ СОБАК И КОШЕК С ОТИТАМИ Текст научной статьи по специальности «Ветеринарные науки»

4. Конопельцев, И. Г. Применение озонированного раствора Гинодиксина для профилактики субинволюции матки и послеродового эндометрита у коров / И. Г. Конопельцев, С. В. Николаев // Актуальные проблемы современной ветеринарной науки и практики : мат. Международной науч.-практ. конф. - Кубанский ГАУ, 2016. -С. 44-48.

5. Левашов, Е. А. Сравнительная эффективность различных методов профилактики послеродовых заболеваний коров / Е. А. Левашов, Е. С. Красникова, А. А. Щербаков // Научное обозрение. - 2015. - № 20. -С. 19-22.

6. Пристяжнюк, О. Н. Лечение и профилактика послеродовых осложнений коров тканевым препаратом «Утеромастин» / О. Н. Пристяжнюк, Х. Б. Баймишев // Актуальные задачи ветеринарии, медицины и биотехнологии в современных условиях и способы их решения : мат. региональной науч.-практ. конф. - Самара, 2013. - С. 224-228.

7. Сафарова, М. Эффективность препарата «Сепранол» при профилактике послеродовых осложнений у коров / М. Сафарова, М. Панфилова // Молочное и мясное скотоводство. - 2012. - № 8. - С. 32-34.

DOI 10.12737/17456 УДК 579.62 : 579.61 : 579.26

БИОЛОГИЧЕСКИЕ СВОЙСТВА МИКРООРГАНИЗМОВ, ВЫДЕЛЕННЫХ ОТ СОБАК И КОШЕК С ОТИТАМИ

Ермаков Владимир Викторович, канд. биол. наук, доцент кафедры «Эпизоотология, патология и фармакология», ФГБОУ ВО Самарская ГСХА.

446442, Самарская область, п.г.т. Усть-Кинельский, ул. Учебная, 2.

E-mail: [email protected]

Курлыкова Юлия Александровна, канд. биол. наук, доцент кафедры «Анатомия, акушерство и хирургия», ФГБОУ ВО Самарская ГСХА.

446442, Самарская область, п.г.т. Усть-Кинельский, ул. Учебная, 2.

E-mail: [email protected]

Ключевые слова: отит, собака, кошка, микробные, ассоциации, Malassezia, Staphyloccus.

Цель исследования - повышение эффективности дифференциальной диагностики наружных отитов у собак и кошек. Микробиоценоз наружного слухового прохода у собак и кошек состоял преимущественно из грибов рода Malassezia и Candida, бактерий рода Staphylococcus, Streptococcus, Micrococcus, Corynebacterium, Bacteroides, Escherichia, Proteus, Klebsiella, Enterococcus, Bacillus и Pseudomonas. Представители Malassezia pachydermatis выделены у 52 (67,54%) собак и у 6 (33,34%) котов и кошек. M. obtusa выделены у 5 (6,49%) собак и 2 (11,12%) котов и кошек, M. globosa выделены у 5 (6,49%) собак и 2 (11,12%) котов и кошек. М. furfur выделены у 3 (3,90%) собак и 3 (16,67%) котов и кошек, М. restricta выделены у 7 (9,09%) собак и 2 (11,12%) котов и кошек. Представители Candida albicans выделены у 3 (3,90%) собак и 1 кота (5,56% животных), C. parapsilosis выделены у 2 (2,60%) собак и 2 (11,12%) кошек. Грибы М. pachydermatis выделены у 22 собак, 2 котов и кошек при остром течении отита, а у 30 собак и 4 котов и кошек при хроническом течении. М. restricta выделены у 3 собак и 1 кота при остром течении отита, а у 4 собак и 1 кошки при хроническом течении болезни. М. furfur выделены у 3 собак, 3 котов и кошек, M. globosa - у 5 собак, 2 котов и кошек выделены при остром течении отита. M. obtusa выделены у 5 собак, 2 котов и кошек при хроническом течении отита. Грибы Candida albicans выделены у 3 собак и 1 кота, C. parapsilosis - у 2 собак и 2 кошек при хроническом течении отита. В развитии отита у собак и кошек ведущая роль принадлежит липофильным дрожжеподоб-ным грибам Malassezia, Candida и бактериям рода Staphylococcus, обладающим патогенными свойствами и приобретающим факторы персистенции в ходе формирования грибково-бактериальных и бактериальных ассоциаций.

Патология мелких животных, вызванная ассоциациями патогенных, условно-патогенных бактерий и микрогрибов диагностируются в мире ежегодно, а число заболевших животных только возрастает. Список болезнетворных микрогрибов пополняется, в среднем, на 10 видов в год. В настоящее время изучено около 400 болезнетворных микрогрибов - возбудителей зарегистрированных микозов и микотоксикозов у человека и животных [4, 6, 7, 8]. Исследования микробных ассоциаций домашних и бродячих кошек, собак показали, что наиболее часто среди возбудителей поверхностных дерматомикозов, кератомикозов, патологии органов дыхания и пищеварения встречаются группы микроорганизмов, включающие в себя микрогрибы рода Trichophyton, Microsporum, Malassezia, Candida, Cryptococcus, редко Alternaria, и бактерии рода Staphylococcus, Streptococcus, Peptococcus, Bacteroides, Enterococcus и другие бактерий [3, 5].

При этом в ходе изучения видового состава клинических изолятов энтерококков, выделенных от разных видов животных, в том числе собак, установлено, что он состоял из видов Enterococcus faecalis

(занимающего доминирующее положение), E. faecium, E. casseliflavus, E. flavescens, и в единичных случаях из видов E. hirae, E. avium, E. durans [10].

Наряду с дерматомикозами, кератомикозами, патологией органов дыхания и пищеварения, вызванной патогенными и условно-патогенными микрогрибами и бактериями, у собак часто выявляется отит как в хронической, так и в острой форме. В ходе изучения структуры наружного слухового прохода у собак при разной форме течения отита были выявлены ассоциации микроорганизмов, включающие в себя микрогрибы рода Malassezia, обладающие выраженной антилизоцимной, антикарнозиновой и антигемоглобиновой активностью. Среди бактерий при отитах доминировали стафилококки, реже выделяли коринебактерии, протеи, а в отдельных случаях клебсиеллы, псевдомонады, эшерихии, бациллы, стрептококки, энтерококки [1, 2].

В связи с этим проведено исследование видового состава и биологических свойств ассоциаций микроорганизмов, выделенных от собак при отитах разной формы, содержащихся у жителей г. Самара, г. Жигу-лёвск, г. Тольятти, г. Кинель и в приютах для бездомных животных.

Цель исследования - повышение эффективности дифференциальной диагностики наружных отитов у собак и кошек.

Задачи исследования - выделение и идентификация у собак и кошек представителей микробиоты наружного слухового прохода; изучение морфологических, тинкториальных, культуральных, биохимических, серологических свойств микроорганизмов; выявление факторов патогенности и персистенции микроорганизмов.

Материал и методы исследования. Объект исследования - 77 собак и 18 кошек и котов с острым и хронически протекающим отитом различных пород, половой принадлежности, содержащихся в квартирах, на придомовой дворовой территории и в приютах для бездомных животных. Собаки и кошки наблюдались в ветклиниках г. Самара, г. Жигулёвск, г. Тольятти и г. Кинель. Материал исследования - 57 клинических изо-лята бактерий и 48 изолятов грибов-дерматофитов, выделенных из наружного слухового прохода методом смывов с помощью тампона. Группы животных: первая группа - собаки с острым течением отита, вторая группа - собаки с хроническим течением отита, третья группа - кошки и коты с острым и хроническим отитом.

Материал подвергали первичной микоскопии с флюоресцирующим агентом фторидом кальция, что улучшает качество визуализации структурных компонентов грибов в тканях и является более точным методом скрининга материала. Из проб материала готовили также микосуспензию для высева на селективно-элективные питательные среды. Суспензию материала высевали в чашки Петри на глюкозо-пептон-дрожжевой агар, содержащий твин-80 и липидные наполнители, на агар Сабуро и кровяной МПА. Суспензию материала распределяли одноразовым стерильным микробиологическим г-образным шпателем по поверхности среды в чашке Петри и инкубировали в термостате в течение 10 дней [9].

Суспензию материала для получения роста культур бактерий высевали на селективно-элективные питательные среды. Стафилококки культивировали на желточно-солевом агаре (ЖСА) и на кровяном МПА, стрептококки - на глюкозо-кровяном МПА. Микрококки высевали на кровяном МПА. Пептококки и пептостреп-тококки выделяли на кровяном МПА с созданием анаэробных условий, бациллы - на мясо-пептонном агаре и кровяном агаре. Эшерихии выделяли на средах Эндо и кровяном агаре, энтерококки - на средах Диф-5 и кровяном агаре, протеи - на агар П-1 с полимиксином и солями желчных кислот, на скошенном МПА и кровяном МПА, клебсиеллы выделяли на агаре Плоскирёва и кровяном МПА, псевдомонады - в мясо-пептонном бульоне и на агаре с бриллиантовым зелёным, а коринебактерии - на кровяном теллуритовом агаре и на ци-стин-теллурит-сывороточной среде. С созданием анаэробных условий культивировали бактероиды на глю-козо-кровяном агаре с добавлением гемина (витамин К). Суспензию материала распределяли одноразовым стерильным микробиологическим г-образным шпателем по поверхности среды в чашке Петри и инкубировали 72 ч в термостате при 370С [9].

Чистые культуры микроорганизмов идентифицировали по морфологическим, тинкториальным, куль-туральным, биохимическим, серологическим свойствам, а также в ходе проведения ПЦР анализа. Количество выросших колоний микроорганизмов (КОЕ - колониеобразующая единица) на плотных питательных средах проводили общепринятым методом на приборе ПСБ (прибор счёта бактерий).

Определение факторов патогенности микроорганизмов проводили общепринятыми методами. Гемолитическую и желатиназную, каталазную, фосфолипазную и липолитическую активность культур энтерококков выявляли в ходе культивирования микроорганизмов на обогащённых средах и путём постановки биохимических тестов. Активность протеаз культур энтерококков определяли по убыли альбумина после совместной инкубации с исследуемыми микроорганизмами биуретовым методом.

Определение факторов персистенции микроорганизмов осуществляли общепринятыми методами. Антилизоцимную и антикарнозиновую активность определяли фотометрическим методом. Способность микроорганизмов к образованию биоплёнок выявляли по степени связывания микроорганизмами кристаллического фиолетового в полистироловых планшетах.

Биохимические свойства микроорганизмов изучали постановкой пёстрого ряда со средами Гисса, в пластинах ПБДЭ (пластина для биохимической дифференциации энтеробактерий) и в других специфических тестах. Серологические свойства микроорганизмов изучали в реакциях со специфическими диагностическими сыворотками. Результаты исследований обрабатывали статистически по общепринятой методике с использованием компьютерной программе Microsoft Excel.

Результаты исследования. Микробиоценоз наружного слухового прохода у собак и кошек состоял преимущественно из грибов рода Malassezia и Candida, бактерий рода Staphylococcus, Streptococcus, Micrococcus, Corynebacterium, Bacteroides, Escherichia, Proteus, Klebsiella, Enterococcus, Bacillus и Pseudomonas. Представители Malassezia pachydermatis выделены у 52 (67,54%) собак и у 6 (33,34%) котов и кошек. M. obtusa выделены у 5 (6,49%) собак и 2 (11,12%) котов и кошек, M. globosa выделены у 5 (6,49%) собак и 2 (11,12%) котов и кошек. М. furfur выделены у 3 (3,90%) собак и 3 (16,67%) котов и кошек, М. restricta выделены у 7 (9,09%) собак и 2 (11,12%) котов и кошек. Представители Candida albicans выделены у 3 (3,90%) собак и 1 кота (5,56% животных), C. parapsilosis выделены у 2 (2,60%) собак и 2 (11,12%) кошек.

Грибы М. pachydermatis выделены у 22 собак, 2 котов и кошек при остром течении отита, а у 30 собак и 4 котов и кошек при хроническом течении. М. restricta выделены у 3 собак и 1 кота при остром течении отита, а у 4 собак и 1 кошки при хроническом течении болезни. М. furfur выделены у 3 собак, 3 котов и кошек, M. globosa - у 5 собак, 2 котов и кошек выделены при остром течении отита. M. obtusa выделены у 5 собак, 2 котов и кошек при хроническом течении отита. Грибы Candida albicans выделены у 3 собак и 1 кота, C. parapsilosis - у 2 собак и 2 кошек при хроническом течении отита.

При остром течении отита у 59,10% собак и 50,00% кошек и котов в монокультуре выделены грибы М. pachydermatis, у 33,33% собак - М. restricta, у 66,67% собак и 66,67% кошек и котов - М. furfur, у 80,00% собак и 50,00% кошек и котов - M. globosa.

При остром течении отита у 40,90% собак и 50,00% кошек и котов грибы рода М. pachydermatis выделены в ассоциации с бактериями рода Staphylococcus xylosus, у 66,67% собак и 50,00% кошек и котов М. restricta выделены в ассоциации со Staphylococcus hyicus. У 33,33% собак и 33,33% кошек и котов грибы М. furfur выделены в ассоциации со Staphylococcus intermedius и Micrococcus luteus. У 20,0% собак и 50,00% кошек и котов грибы M. globosa выделены в ассоциации со Staphylococcus aureus и S. intermedius.

При хроническом течении отита у 33,33% собак и 25,00% кошек и котов в монокультуре выделены грибы М. pachydermatis, у 50,00% собак - М. restricta, у 20,00% собак - M. obtusa. Грибы Candida albicans у 33,33% собак, C. parapsilosis у 50,00% собак выделены в монокультуре.

При хроническом течении отита у 66,67% собак и 75,00% кошек и котов грибы рода М. pachydermatis выделены в ассоциации с одним из видов стафилококков S. xylosus, S. saprophiticus, S. intermedius. Грибы М. restricta у 50,00% собак и 100% кошек выделены в ассоциации со стафилококками S. intermedius, S. hyicus и коринебактериями Corynebacterium striatum. Грибы M. obtusa у 80,00% собак и 100% котов и кошек выделены в ассоциации со стафилококками S. intermedius, S. hyicus, S. xylosus, коринебактериями Corynebacterium striatum, энтеробактериями Escherichia coli, Proteus vulgaris, Klebsiella oxytoca и K. terrigena. Грибы Candida albicans выделены у 66,67% собак и 100% котов, C. parapsilosis у 50,00% собак и 66,67% кошек выделены в ассоциации М. pachydermatis, М. restricta, M. obtusa и стафилококками S. xylosus, S. intermedius, коринебакте-риями Corynebacterium striatum, Enterococcus faecalis, E. faecium и E. flavescens, Pseudomonas aeruginosa.

Видовой состав бактерий микробиоты наружного слухового прохода собак и кошек был более разнообразным, особенно при хроническом течении отита. При остром течении отита в монокультуре у 39,29% собак и 16,67% котов и кошек были выделены Staphylococcus aureus, S. intermedius, S. xylosus, S. hyicus, Streptococcus salivarius, а также S. canis у собак. В ассоциации были выделены у 55,56% собак Corynebacterium striatum и Streptococcus salivarius, S. canis. У 11,12% котов и кошек Corynebacterium striatum и Streptococcus salivarius. У 38,89% собак и 11,12% котов и кошек выделены в ассоциации энтеробактерии Escherichia coli, Proteus vulgaris, Klebsiella oxytoca и K. terrigena, с энтерококками Enterococcus faecalis, E. Faecium, E. flavescens.

При хроническом течении отита в монокультуре у 38,78% собак и 27,27% котов и кошек были выделены Staphylococcus intermedius, S. xylosus, Streptococcus salivarius, а также S. canis у собак. В ассоциации были выделены у 26,54% собак Corynebacterium striatum и Streptococcus salivarius, S. canis. У 9,10% котов и кошек выделены Corynebacterium striatum и Streptococcus salivarius. У 20,41% собак и 18,18% котов и кошек выделены в ассоциации энтеробактерии Escherichia coli, Proteus vulgaris, Klebsiella oxytoca и K. terrigena, с энтерококками Enterococcus faecalis, E. faecium, E. flavescens и бактероидами Bacteroides fragilis. У 6,13% собак выделены в ассоциации коринебактерии Corynebacterium striatum со стрептококками Streptococcus salivarius, S. canis и бациллами Bacillus subtillis, B. cereus, B. mycoides. У 18,18% котов и кошек выделены в ассоциации коринебактерии Corynebacterium striatum со стрептококками Streptococcus salivarius ибациллами Bacillus subtillis, B. cereus. У 8,17% собак и 27,27% котов и кошек выделены в ассоциации энтеробактерии Escherichia

coli, Proteus vulgaris, Klebsiella oxytoca и K. terrigena, с энтерококками Enterococcus faecalis, E. faecium, E. flavescens и Pseudomonas aeruginosa.

Все изоляты грибов рода Malassezia и Candida обладали липолитической и фосфолипазной, протео-литической и каталазной активностью, а кандиды Candida albicans ещё и гемолитической активностью. Это свидетельствует о наличие у них факторов патогенности.

Возможность продолжительного существования и формирования микробных ассоциаций появляется у микроорганизмов с приобретением ими так называемых факторов персистенции. При остром и хроническом течении отита выделенные изоляты микроорганизмов обладали факторами персистенции: антилизоцимной, антикарнозиновой активностью и способностью к биоплёнкообразованию. При остром течении отита факторы персистенции выявлены у грибов рода Malassezia, Candida в ассоциации с бактериями стафилококками (табл. 1).

Таблица 1

Факторы персистенции у грибов Ма^егт в ассоциации со стафилококками __при остром течении отита_

Культура микроорганизмов Факторы персистенции

Антилизоцимная активность, мкг/мл Антикарнозиновая активность, мг/мл Способность биоплёнкообразования, %

М. pachydermatis 4,54±0,0018 4,48±0,0016 58,6±3,4

М. restricta 4,12±0,0016 4,26±0,0012 56,4±3,6

М. furfur 3,86±0,0014 4,12±0,0004 52,8±2,8

M. globosa 4,72±0,0012 4,18±0,0008 58,7±2,4

Staphylococcus xylosus 5,72±0,0004 4,32±0,0006 44,3±1,8

S. intermedius 5,64±0,0008 4,26±0,0004 36,6±1,5

S. hyicus 5,22±0,0002 4,56±0,0008 34,3±2,3

S. aureus 6,37±0,0006 7,28±0,0007 56,5±1,7

При хроническом течении отита факторы персистенции выявлены у микроорганизмов, выделенных как в монокультуре, так и в ассоциациях. У монокультур грибов и бактерий факторы персистенции были менее выраженными по сравнению с микробными ассоциациями (табл. 2 и 3).

Таблица 2

Факторы персистенции у монокультур грибов Malassezia, Candida _и бактерий при хроническом течении отита_

Культура микроорганизмов Факторы персистенции

Антилизоцимная активность, мкг/мл Антикарнозиновая активность, мг/мл Способность биоплёнкообразования, %

М. pachydermatis 6,12±0,002 6,23±0,0018 92,3±4,3

М. restricta 5,35±0,0018 5,72±0,0014 96,8±3,8

M. obtusa 5,63±0,0016 5,85±0,0014 85,2±4,6

Candida parapsilosis 8,18±0,0024 7,08±0,0016 92,5±5,8

Candida albicans 8,33±0,0028 8,14±0,0023 96,7±4,5

Staphylococcus xylosus 6,17±0,0002 4,32±0,0006 44,3±1,8

S. intermedius 6,33±0,0006 6,85±0,0008 78,2±2,7

Streptococcus salivarius 6,35±0,0012 6,92±0,0013 77,5±3,6

S. canis 4,73±0,0008 5,08±0,0006 82,6±4,5

Заключение. В развитии отита у собак и кошек ведущая роль принадлежит липофильным дрожже-подобным грибам Malassezia, Candida и бактериям рода Staphylococcus, обладающим патогенными свойствами и приобретающим факторы персистенции преимущественно в ходе формирования грибково-бактериальных и бактериальных ассоциаций.

Основными представителями микробиоты наружного слухового прохода собак и кошек при отитах были грибы рода Malassezia, Candida и бактерии рода Staphylococcus. Все изоляты дрожжеподобных грибов рода Candida были выделены от животных, попавших с улиц в специализированные приюты. При остром течении отита грибы рода Malassezia в большинстве случаев выделены в монокультуре, а при хроническом течении отита микроорганизмы преимущественно были выявлены в виде грибково-бактериальных и бактериальных ассоциаций.

Изоляты грибов рода Malassezia и Candida, бактерий рода Staphylococcus, Streptococcus, Corynebac-terium, Escherichia, Proteus, Klebsiella, Enterococcus, Pseudomonas, Bacteroides, Bacillus обладали типичными морфологическими, тинкториальными, культуральными, биохимическими и серологическими свойствами.

Таблица 3

Факторы персистенции у грибов Malassezia, Candida в ассоциации с бактериями _при хроническом течении отита_

Культура микроорганизмов Факторы персистенции

Антилизоцимная активность, мкг/мл Антикарнозиновая активность, мг/мл Способность биоплёнкообразования, %

М. pachydermatis 7,75±0,003 8,26±0,008 90,8±3,6

М. restricta 7,36±0,004 7,14±0,003 78,5±4,3

M. obtusa 6,27±0,004 6,33±0,002 85,3±4,5

Candida parapsilosis 7,13±0,003 6,83±0,004 83,7±3,3

Candida albicans 8,25±0,006 7,78±0,003 96,2±4,7

Staphylococcus xylosus 6,13±0,003 6,45±0,002 83,2±3,3

S. intermedius 6,53±0,004 6,88±0,005 93,2±4,6

S. hyicus 6,47±0,002 6,75±0,003 87,5±4,4

S. aureus 8,43±0,005 7,65±0,004 93,7±4,2

Streptococcus salivarius 4,17±0,002 3,32±0,002 68,5±3,4

S. canis 4,63±0,003 3,65±0,003 62,7±3,3

Corynebacterium striatum 6,22±0,004 5,45±0,003 73,2±3,7

Escherichia coli 4,52±0,002 4,13±0,004 78,5±3,9

Proteus vulgaris 4,88±0,006 4,38±0,002 83,3±3,2

Klebsiella oxytoca 4,06±0,004 4,67±0,003 80,5±4,3

K. terrigena 4,25±0,005 5,16±0,003 87,9±4,4

Enterococcus faecalis 4,13±0,003 4,73±0,004 84,6±3,3

E. faecium 3,02±0,0002 3,16±0,0006 80,3±3,9

E. flavescens 2,64±0,0008 2,28±0,0005 77,5±4,3

Bacteroides fragilis 3,27±0,0007 2,85±0,0002 48,3±2,7

Pseudomonas aeruginosa 6,88±0,006 5,62±0,005 74,5±4,7

Bacillus subtillis 2,13±0,0007 2,33±0,0005 45,6±3,2

B. cereus 2,08±0,0004 2,27±0,0003 43,8±2,5

B. mycoides 2,35±0,0005 1,38±0,0002 44,5±2,2

Факторы патогенности и персистенции были более выраженными у грибов рода Malassezia, Candida и бактерий рода Staphylococcus, выделенных в грибково-бактериальных и бактериальных ассоциациях, при хроническом течении отита.

Библиографический список

1. Акжигитов, А. С. Антилизоцимная активность микроорганизмов - возбудителей отитов у собак. Характеристика микрофлоры наружного слухового прохода у собак при отитах / А. С. Акжигитов, Т. М. Пашкова, О. Л. Карташова // Проблемы медицинской микологии. - 2015. - № 2. - С. 35.

2. Акжигитов, А. С. Характеристика микрофлоры наружного слухового прохода у собак при отитах : автореф. дис. ... канд. биол. наук : 06.02.02 / Акжигитов Абай Сарсенгалиевич. - Уфа, 2015. - С. 1-24.

3. Ермаков, В. В. Биологические свойства представителей микробиоценоза домашних кошек и собак в г. Самара // Актуальные проблемы аграрной науки и пути их решения : сборник научных трудов. - Кинель : РИО СГСХА, 2016. - С. 194-198.

4. Ермаков, В. В. Кератомикозы у собак, вызванные микрогрибами Malassezia furfur // Актуальные вопросы морфологии и биотехнологии в животноводстве : мат. Международной науч.-практ. конф., посвященной 100-летию со дня рождения профессора О.П. Стуловой. - Кинель : РИЦ СГСХА. - 2015. - С. 147-150.

5. Ермаков, В. В.Лечение наружного отита бактериальной и грибковой природы у собак в ветеринарных клиниках г. Самара / В. В. Ермаков, А. А. Глазунова // Достижения науки агропромышленному комплексу : сборник научных трудов. - Самара : РИЦ СГСХА, 2014. - С. 227-229.

6. Ермаков, В. В. Микробиологическая диагностика кератомикозов и поверхностных дерматомикозов у мелких домашних животных // Достижения современной науки и практики в области охраны здоровья животных и человека : материалы Региональной научно-практической межвузовской конференции. - Самара : ГНУ Самарская научно-исследовательская ветеринарная станция РАСХН, 2011. - С. 95-100.

7. Ермаков, В. В. Микробиологическая диагностика кератомикозов и поверхностных дерматомикозов у мелких домашних животных // Известия Самарской ГСХА. - 2011. - №1. - С. 35-38.

8. Ермаков, В. В. Malassezia furfur в этиологии кератомикозов у собак // Актуальные проблемы и достижения в сельскохозяйственных науках : сб. науч. тр. по итогам Международной науч.-практ. конф. - Самара, 2015. -С. 29-31.

9. Пат. № 163081 Российская Федерация, МПК С12М 1/14, А61В 10/02. Одноразовый стерильный микробиологический г-образный шпатель / Ермаков В. В. - № 2016100537/14 ; заявл. 11.01.2016 ; опубл. 10.07.2016 ; Бюл. № 19.

10. Сычёва, М. В. Биологические эффекты антимикробных веществ животного и бактериального происхождения : автореф. дис. ... д-ра биол. наук : 06.02.02 / Сычёва Мария Викторовна. - Уфа, 2016. - С. 1-48.

DOI 10.12737/17458 УДК 636.32/38.035

ШЕРСТНАЯ ПРОДУКТИВНОСТЬ МОЛОДНЯКА ОВЕЦ

АКЖАИКСКОЙ МЯСО-ШЕРСТНОЙ ПОРОДЫ В ЗАВИСИМОСТИ ОТ ЛИНЕЙНОЙ ПРИНАДЛЕЖНОСТИ

Баймишев Хамидулла Балтуханович, д-р биол. наук, проф., зав. кафедрой «Анатомия, акушерство и хирургия», ФГБОУ ВО Самарская ГСХА.

446442, Самарская область, п.г.т. Усть-Кинельский, ул. Учебная, 2.

E-mail: [email protected]

Есенгалиев Кайрлы Гусмангалиевич, д-р с.-х. наук, доцент кафедры «Биотехнологии, животноводства и рыбного хозяйства», «ЗКАТУ им. Жангир хана».

090009, Западно-Казахстанская область, г. Уральск, ул. Жангир хана, 51.

E-mail: [email protected]

Траисов Балуаш Бакишевич, д-р с.-х. наук, проф., директор департамента животноводства и агробиотехноло-гиии РГП ПХВ «Западно-Казахстанский аграрно-технический университет им. Жангир хана».

090009, Западно-Казахстанская область, г. Уральск, ул. Жангир хана, 51.

E-mail: [email protected]

Ключевые слова: шерсть, волокно, тонина, крепость, индекс, линия, качество, длина, ярка.

Цель исследований - повышение шерстной продуктивности и качества шерсти акжаикской мясо-шерстной породы овец за счет целенаправленного использования новых линий. Материалом для исследований служили ярки акжаикской мясо-шерстной породы линии БАК-4087 и ЗКАТУ-7082. Обе линии создавались методом сложного однородного и разнородного подбора исходного материала, что позволило получить животных желательного типа от которых были получены животные второго поколения из них путем гомогенного и гетерогенного подбора был проведен отбор для разведения «в себе». Линии создавались с учетом шерстной продуктивности и ее качественных показателей. В статье рассмотрены сравнительные показатели шерстной продуктивности ярок сравниваемых линий в 8-месячном возрасте. По настригу шерсти в оригинале и чистой шерсти ярочки линии ЗКАТУ-7082 превосходили своих сверстниц из линии БАК-4087 на 0,17 и 0,13 кг, соответственно. От ярок линии БАК-4087 получено 64,0% шерсти 56-го качества и 16,0% - 58-го качества, а от ярок линии ЗКАТУ-7082 получено 66,0% шерсти 58-го качества и 30,0% шерсти - 56-го качества. Остальная шерсть по качеству в сравниваемых группах была 50-го качества. По показателям естественной и истинной длины шерсти и крепости шерстных волокон ярки линии БАК-4087 достоверно превосходили ярок линии ЗКАТУ-7082. Полученные данные могут быть основанием для совершенствования шерстной продуктивности овец акжаикской мясо-шерстной породы.

Повышение эффективности овцеводства во многом определяется совершенствованием имеющегося поголовья. Племенная работа в мясо-шерстном овцеводстве должна быть направлена на одновременное развитие мясной и шерстной продуктивности животных с тем, чтобы при наименьших затратах труда и корма на единицу продукции получать как можно больше высококачественной кроссбредной шерсти и баранины. Для достижения данной цели необходимо постоянно повышать скороспелость, улучшать использование корма, добиваться увеличения живой массы животных и настрига шерсти [1, 5, 6, 8]. Разработанные на практике оригинальная методика и схемы скрещивания, удачный выбор исходного поголовья, а также адаптационные качества овец акжаикской мясо-шерстной породы к природно-климатическим и кормовым условиям Западного Казахстана позволили за сравнительно короткий срок создать новые линии акжаикской мясо-шерстной породы овец с кроссбредной шерстью. В последние годы в Республике Казахстан и на мировом рынке увеличивается спрос на кроссбредную шерсть овец с предъявлением параметрических показателей к ее технологическим свойствам, что и предопределило цель нашей работы [2, 3, 4, 7, 9].

Цель исследований - повышение шерстной продуктивности и качества шерсти акжаикской мясо-шерстной породы овец.

Задачи исследований - изучить шерстную продуктивность ярок исследуемых групп животных; определить качественные показатели шерсти (тонина, естественная длина, истинная длина, крепость шерсти).