CC BY
25
УДК 616.1 - 089.843
БИОФУНКЦИОНАЛИЗАЦИЯ RGD-ПЕПТИДАМИ И СОСУДИСТЫМ ЭНДОТЕЛИАЛЬНЫМ ФАКТОРОМ РОСТА - ЭФФЕКТИВНЫЙ СПОСОБ РАННЕЙ ЭНДОТЕЛИЗАЦИИ БИОДЕГРАДИРУЕМЫХ СОСУДИСТЫХ ГРАФТОВ МАЛОГО
ДИАМЕТРА
Е.О. Кривкина, Л.В. Антонова, В.В. Севостьянова, Е.А. Великанова, А.В. Миронов
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Научно-исследовательский институт комплексных проблем
сердечно-сосудистых заболеваний", Кемерово E-mail: [email protected]
BIOFUNCTIONALIZATION WITH RGD PEPTIDES AND VASCULAR ENDOTHELIAL GROWTH FACTOR ENHANCES ENDOTHELIALIZATION OF BIODEGRADABLE
SMALL-DIAMETER VASCULAR GRAFTS
E.O. Krivkina, L.V. Antonova, V.V. Sevostyanova, E.A. Velikanova, A.V. Mironov
Research Institute for Complex Issues of Cardiovascular Diseases, Kemerovo
Решением проблемы дефицита сосудистых протезов для проведения шунтирующих операций является создание тканеинженерного кровеносного сосуда. Цель исследования: сравнительная оценка in vivo ремоделирования сосудистой ткани на основе графтов малого диаметра из полигидроксибутирата/валерата и поликапролактона (ПГБВ/ ПКЛ), немодифицированных и модифицированных сосудистым эндотелиальным фактором роста (VEGF) и RGD-пептидами. Материал и методы. ПГБВ/ПКЛ и ПГБВ/ПКЛ/VEGF-графты изготавливали методом электроспиннинга. Графты имплантировали в брюшную часть аорты крыс на 1, 3, 6, 9 и 12 мес. Далее проводили гистологический и иммунофлуоресцентный анализ эксплантированных графтов. Результаты. Модификация ПГБВ/ПКЛ-графтов VEGF и RGD-пептидами способствовала эндотелизации 75% графтов спустя 12 мес. имплантации, при этом частота тромбообразования снизилась на 25%. Высокопористая структура стенки графтов в совокупности с хемоат-трактантным и адгезивным эффектом модифицирующих агентов привели к активному привлечению из кровотока CD34+ прогениторных эндотелиальных клеток уже через 1 мес. имплантации, которые в последующем формировали полноценный эндотелиальный монослой и базальную мембрану на внутренней поверхности графтов. Ключевые слова: тканевая инженерия, сосудистый графт, RGD-пептиды, сосудистый эндотелиальный фактор роста, эндотелизация.
Tissue-engineered vascular grafts are the perfect candidates as vascular conduits for cardiovascular bypass or arterial replacement surgery. Aim: To compare efficiency of the grafts blended of poly(3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxyvalerate) with poly^-caprolactone) and optionally modified with either vascular endothelial growth factor (VEGF) or RGD peptides. Materials and Methods. Electrospun, 2 mm diameter grafts optionally modified with either VEGF or RGD peptides were implanted into rat abdominal aorta (n=20 per each group). In 1, 3, 6, 9, or 12 months, one-fifth of rats in each group were sacrificed (n=4 per each time point) for the following histological and immunofluorescence examination of the explanted grafts. Results. At 12 months postimplantation, modification with either VEGF or RGD peptides induced formation of endothelial cell monolayer and a basement membrane-like structure in three-fourths of the grafts, which was three-fold higher compared to unmodified grafts. Furthermore, we detected CD34-positive cells, i.e. endothelial progenitor cells, as early as 1 month postimplantation in both VEGF- and RGD-treated grafts.
Key words: tissue engineering, vascular graft, RGD-peptides, vascular endothelial growth factor, endothelialization.
Введение
Реконструктивная хирургия является традиционным способом лечения ишемической болезни сердца и заболеваний периферических артерий. В качестве сосудистых шунтов широко применяют аутологичные вены и артерии. В то же время у значительного числа пациентов отсутствуют сосуды подходящего качества. Невозможность использования синтетических сосудистых протезов для шунтирования артерий малого диаметра доказана во многих исследованиях, поэтому создание функционально активных биодеградируемых сосудистых граф-тов малого диаметра может решить данную проблему. С
целью повышения адгезии эндотелиальных клеток к внутренней поверхности сосудистых графтов был разработан ряд стратегий [1]. Большинство из них включает в себя иммобилизацию белков клеточной адгезии или биоактивных пептидов на внутренней поверхности [1]. Биоактивные пептиды более стабильны и имеют более простую структуру в сравнении с белками. ИСБ-трипептид широко распространен в структуре белков экстрацеллюляр-ного матрикса и является важнейшим лигандом для ин-тегринов - рецепторов, ответственных за клеточную адгезию, пролиферацию, выживаемость, миграцию и диф-ференцировку [2, 3]. Инкорпорирование факторов роста
в полимерные каркасы - другая популярная стратегия повышения клеточной адгезии и инфильтрации сосудистых графтов [1, 4]. Среди ряда доступных факторов роста нами был выбран сосудистый эндотелиальный фактор роста (VEGF), так как он является наиболее мощным стимулятором ангиогенеза и васкулогенеза [5]. В дополнение к множеству других эффектов, VEGF индуцирует пролиферацию, выживаемость, миграцию и дифферен-цировку эндотелиальных клеток [6, 7].
Цель работы: сравнительная оценка in vivo ремодели-рования сосудистой ткани на основе графтов малого диаметра из полигидроксибутирата/валерата и поликапро-лактона, немодифицированных и модифицированных VEGF или RGD-пептидами.
Материал и методы
Немодифицированные сосудистые графты диаметром 2 мм (n=32) на основе ПГБВ/ПКЛ (Sigma, США) были изготовлены методом электроспиннинга на аппарате NANON-OU (MECC, Япония). Половина графтов (n=l6) в дальнейшем была подвергнута модификации RGD-пеп-тидами по следующей схеме: предварительная активация поверхности, последующая обработка линкерным раствором, конъюгация с RGD-пептидами. Сосудистые ПГБВ/ ПКЛ-графты диаметром 2 мм, содержащие VEGF (n=l6), были изготовлены методом двухфазного электроспиннинга. Конечная концентрация VEGF (Sigma, США) составила 5OO нг на 1 мл полимерного раствора. Все графты имплантированы в брюшную часть аорты крыс линии Wistar на 1, 3, 6 и 12 мес. После эксплантации сосудистых графтов проведен гистологический анализ образцов с окраской гематоксилин-эозином и иммунофлуоресцен-тный анализ с использованием следующих специфических антител: CD31 - маркер зрелых эндотелиальных клеток (Millipore, США), cD34 - маркер прогениторных клеток гемопоэтического происхождения (Abcam, США), коллагены I и IV типа (Abcam, США). Ядра клеток в толще
стенок графтов докрашивали ядерным красителем Dapi (Sigma, США).
Вследствие небольшой выборки (по 4 графта на точку вывода) данные представлены в виде процентного соотношения. Остальные результаты имели качественный характер и не подвергались статистической обработке.
Результаты
Все прооперированные животные дожили до предполагаемого срока вывода из эксперимента, все имплантированные графты оставались проходимыми и не меняли своей формы и длины на всех сроках эксперимента (рис. 1).
При проведении гистологического исследования в 75% эксплантированных немодифицированных графтов на всех временных точках выявлены пристеночные тромбы (рис. 2). Напротив, 75% графтов, модифицированных RGD-пептидами (рис. 3) или VEGF (рис. 4), были первично проходимы. Более того, на их внутренней поверхности обнаружен вероятный монослой эндотелиальных клеток.
Немодифицированные графты содержали на внутренней поверхности единичные дезорганизованные эндо-телиальные клетки, что не характерно для нормальной сосудистой сети (рис. 5а), в то время как на внутренней поверхности RGD- и VEGF-модифицированных графтов уже через 1 мес. имплантации выявлен монослой клеток с переходным фенотипом CD31+, CD34+ (рис. 5b, с). Через 3 мес. эксперимента эндотелиальные клетки в граф-тах, модифицированных RGD-пептидами или VEGF, приобрели удлиненную форму, что характерно для эндоте-лиальной выстилки сосудов, и имели фенотип CD31+, CD34-, соответствующий зрелым эндотелиальным клеткам (рис. 5b, с). Таким образом, данные результаты отражают формирование монослоя эндотелиальных клеток и улучшенную эндотелизацию графтов, модифицированных RGD-пептидами или VEGF.
До имплантации Через 12 мес. имплантации
Рис. 1. Вид ПГБВ/ПКЛ-графтов до и после имплантации
ПГБВ/ПКЛ немодифицированные
1 мес. 3 мес. 6 мес. 9 мес. 12 мес.
Рис 2. Результаты имплантации немодифицированных ПГБВ/ПКЛ-графтов, окраска гематоксилин-эозином, ув. х50 и х200
Рис. 3. Результаты имплантации ПГБВ/ПКЛ/КОБ-графтов, окраска гематоксилин-эозином, ув. х50 и х200
ПГБВ/ПКЛ А/Ев Г
1 мес.
3 мес.
6 мес.
9 мес.
12 мес.
Рис. 4. Результаты имплантации ПГБВ/ПКЛ/УЕОБ-графтов, окраска гематоксилин-эозином, ув. х50 и х200
CD31/CD34/DAPI
1 месяц 3 месяца быеснмеп 12 месяцев
Рис. 5. Сочетанное окрашивание антителами к СБ31 (красный цвет), СБ34 (зеленый цвет) и БАИ (синий цвет): а - немодифици-рованные графты; Ь - ПГВВ/ПКЛ/КСБ-графты; с - ПГВВ/ПКЛ/УБОР-графты. ТЬг - тромб, gr - графт, 1иш - просвет сосуда
Рис. 6. Сочетанное окрашивание антителами к коллагену I типа (красный цвет), IV типа (зеленый цвет) и БАР1 (синий цвет): (а) - контрольные графты; (Ь) - ПГВВ/ПКЛ/КСБ-графты; (с) - ПГВВ/ПКЛ/УЕСР-графты. ТЬг - тромб, gr - графт, 1иш - просвет сосуда
Образование базальной мембраны требует отложения цепей коллагена I и IV типа [8]. Чтобы понять, способен ли выявленный монослой эндотелиальных клеток синтезировать коллаген для создания базальной мембраны, мы провели двойное иммуноокрашивание на коллагены I и IV типа. Как и ожидалось, на всех временных точках под эндотелиальными клетками на внутренней поверхности графтов, конъюгированных с RGD-пептидами или
с инкорпорированным ^СБ, выявлен слой положительно окрашенных волокон коллагена IV типа. Ничего подобного в немодифицированных графтах не наблюдалось (рис. 6). Таким образом, мы показали, что эндотели-альные клетки, прикрепившиеся к внутренней поверхности ИСБ- и VEGF-модифицированных графтов, формируют аналог базальной мембраны.
Обсуждение
Ранее нами было обнаружено, что конъюгация с RGD-пептидами и инкорпорирование VEGF улучшают биофизические свойства, способствуют эндотелизации и повышают первичную проходимость графтов малого диаметра из ПГБВ/ПКЛ на ранних сроках имплантации [9, 10]. Кроме того, модификация VEGF статистически значимо снижала средний диаметр волокон и среднюю площадь пор в сравнении с модификацией RGD-пепти-дами [9, 10]. Таким образом, структура графтов с VEGF была более схожа с нативным экстрацеллюлярным мат-риксом [11, 12]. Более того, эластичность, жесткость и характер кривой "растяжение-деформация" у графтов с VEGF были более схожими с таковыми внутренней грудной артерии в сравнении с графтами, модифицированными RGD-пептидами [9, 10].
В данной работе мы провели кратко- и долговременное тестирование сосудистых графтов малого диаметра из ПГБВ/ПКЛ in vivo, включая графты с конъюгирован-ными RGD-пептидами и инкорпорированным VEGf. Нам удалось подтвердить, что модификации RGD-пептидами и VEGF способствуют эндотелизации и повышают первичную проходимость на ранних и поздних сроках имплантации биодеградируемых сосудистых графтов малого диаметра из ПГБВ/ПКЛ. Как RGD-пептиды, так и VEGF привлекали CD31-положительные, т.е., зрелые, и CD34-положительные, т.е. прогениторные эндотелиальные клетки к внутренней поверхности с 1-го по 12-й мес. имплантации. Указанные эндотелиальные клетки синтезировали коллаген IV типа.
Таким образом, как конъюгирование с RGD-пептида-ми, так и инкорпорирование VEGF приводит к раннему формированию функционального эндотелиального монослоя на внутренней поверхности биодеградируемых сосудистых графтов, что обеспечивает краткосрочную и долгосрочную проходимость сосудистых графтов в эксперименте in vivo.
Литература
1. Ren X., Feng Y., Guo J. et al. Surface modification and endothelialization of biomaterials as potential scaffolds for vascular tissue engineering applications // Chem. Soc. Rev. -2015. - Vol. 44, No. 15. - P. 5680-5742.
2. Wang F., Li Y., Shen Y. et al. The functions and applications of RGD in tumor therapy and tissue engineering // Int. J. Mol. Sci. - 2013. - Vol. 14, No. 9. - P. 13447-13462.
3. Harburger D.S., Calderwood D.A. Integrin signalling at a glance // J. Cell Sci. - 2009. - Vol. 122, No. 2. - P. 159-163.
4. Ingavle G.C., Leach J.K. Advancements in electrospinning of polymeric nanofibrous scaffolds for tissue engineering // Tissue Eng. Part B Rev. - 2014. - Vol. 20, No. 4. - P. 277-293.
5. Антонова Л.В., Мухамадияров Р.А., Миронов А.В. и др. Оценка биосовместимости биодеградируемого сосудистого графта малого диаметра из полигидроксибутирата/валера-та и поликапролактона: морфологическое исследование // Гены & клетки. - 2015. - Т. 10, № 2. - С. 71-77.
6. Azimi-Nezhad M. Vascular endothelial growth factor from embryonic status to cardiovascular pathology // Rep. Biochem. Mol. Biol. - 2014. - Vol. 2, No. 2. - P. 59-69.
7. Thanigaimani S., Kichenadasse G., Mangoni A.A. The emerging role of vascular endothelial growth factor (VEGF) in vascular
homeostasis: lessons from recent trials with anti-VEGF drugs // Curr. Vasc. Pharmacol. - 2011. - Vol. 9, No. 3. - P. 358-380.
8. Kalluri R. Basement membranes: structure: assembly and role in tumour angiogenesis // Nat. Rev. Cancer. - 2003. - No. 3. -P. 422-433.
9. Antonova L.V., Seifalian A.M., Kutikhin A.G. et al. Bioabsorbable bypass grafts biofunctionalised with RGD have enhanced biophysical properties and endothelialisation tested in vivo // Front. Pharmacol. - 2016. - Vol. 7. - P. 136.
10. Antonova L.V., Sevostyanova V.V., Kutikhin A.G. et al. Vascular endothelial growth factor improves physico-mechanical properties and enhances endothelialization of poly(3-hydroxybutyrate-co^-hydroxyvalerateypoly^-caprolactone) small-diameter vascular grafts in vivo // Front. Pharmacol. -2016. - Vol. 7. - P. 230.
11. Rim N.G., Shin C.S., Shin H. Current approaches to electrospun nanofibers for tissue engineering // Biomed. Mater. - 2013. -Vol. 8, No. 1. - P. 014102.
12. Zhang X., Tsukada M., Morikawa H. et al. Production of silk sericin/silk fibroin blend nanofibers // Nanoscale Res. Lett. -2011. - Vol. 6. - P. 510.
Поступила 10.01.2017
Сведения об авторах
Кривкина Евгения Олеговна, младший научный сотрудник лаборатории клеточных технологий отдела экспериментальной и клинической кардиологии Федерального государственного бюджетного научного учреждения "Научно-исследовательский институт комплексных проблем сердечно-сосудистых заболеваний".
Адрес: 650002, г. Кемерово, Сосновый бульвар, 6. E-mail: [email protected].
Антонова Лариса Валерьевна, канд. мед. наук, заведующая лабораторией клеточных технологий отдела экспериментальной и клинической кардиологии Федерального государственного бюджетного научного учреждения "Научно-исследовательский институт комплексных проблем сердечно-сосудистых заболеваний".
Адрес: 650002, г. Кемерово, Сосновый бульвар, 6. E-mail: [email protected].
Севостьянова Виктория Владимировна, канд. мед. наук, научный сотрудник лаборатории клеточных технологий отдела экспериментальной и клинической кардиологии Федерального государственного бюджетного научного учреждения "Научно-исследовательский институт комплексных проблем сердечнососудистых заболеваний". Адрес: 650002, г. Кемерово, Сосновый бульвар, 6. E-mail: [email protected].
Великанова Елена Анатольевна, младший научный сотрудник лаборатории клеточных технологий отдела экспериментальной и клинической кардиологии Федерального государственного бюджетного научного учреждения "Научно-исследовательский институт комплексных проблем сердечно-сосудистых заболеваний".
Адрес: 650002, г. Кемерово, Сосновый бульвар, 6. E-mail: [email protected].
AB. Мухомедзянов
УЧАСТИЕ ЭHДOГЕHHЫХ AГOHИСТOB OПИOИДHЫХ РЕЦЕПТOРOB..,
Миронов Андрей Владимирович, младший научный сотрудник лаборатории клеточных технологий отдела экспериментальной и клинической кардиологии Федерального государственного бюджетного научного учреждения "Научно-исследовательский институт
комплексных проблем сердечно-сосудистых заболеваний".
Адрес: 650002, г. Кемерово, Сосновый бульвар, 6. E-mail: [email protected].
УДК 616,12-008
УЧАСТИЕ ЭНДОГЕННЫХ АГОНИСТОВ ОПИОИДНЫХ РЕЦЕПТОРОВ В ПОВЫШЕНИИ УСТОЙЧИВОСТИ СЕРДЦА К ПОВРЕЖДАЮЩЕМУ
ДЕЙСТВИЮ РЕПЕРФУЗИИ
А.В. Мухомедзянов
Научно-исследовательский институт кардиологии, Томский национальный исследовательский медицинский центр Российской
академии E-mail: [email protected]
INVOLVEMENT OF ENDOGENOUS OPIOID RECEPTOR AGONISTS IN INCREASING CARDIAC RESISTANCE TO THE DAMAGING EFFECTS OF REPERFUSION
А-V. Mukhomedzyanov
Cardiology Research Institute, Tomsk National Research Medical Center, Russian Academy of Sciences
Установлено, что при внутривенном введении неселективный антагонист опиоидных рецепторов (ОР) налтрек-сон (5 мг/кг), а также селективный антагонист 81-ОР BNTX (0,7 мг/кг), селективный блокатор §2-Ор налтрибен (0,3 мг/кг), селективный антагонист к-ОР нор-биналторфимин (2 мг/кг) не влияют на реперфузионное повреждение сердца in vivo. Установлено, что селективный антагонист Ц.-ОР СТАР ограничивает размер инфаркта. Ключевые слова: опиоидные рецепторы, опиоиды, сердце, реперфузия.
It was found that an intravenous administration of the nonselective of opioid receptor (OR) antagonists naltrexone (5 mg/kg) and also the selective antagonist 81-OR BNTX (0.7 mg/kg), the selective 82-OR blocker naltriben (0.3 mg/kg), the к-selective antagonist nor-binaltorphimine (2 mg/kg), do not affect cardiac reperfusion injury in vivo. It is established that the м-selective antagonist CTAP limits infarct size. Key words: opioid peptides, opioids, heart, reperfusion.
Введение
В 70-е и 80-е годы прошлого столетия были обнаружены эндогенные опиоиды [5]. Затем последовало открытие ОР на сарколемме кардиомиоцитов [11]. В экспериментах на изолированном сердце было установлено, что блокада ц-ОР перед ишемией способствует уменьшению развития реперфузионной контрактуры [1]. Блокада 5- и к-ОР перед ишемией, напротив, способствует ухудшению реперфузионной сократительной дисфункции изолированного сердца [10]. Есть данные о том, что блокада всех типов периферических ОР приводит к повышению устойчивости сердца к аритмогенному действию корона-роокклюзии [7]. Эти данные говорят о том, что эндогенные агонисты ОР могут регулировать устойчивость сердца к патогенному действию ишемии. Однако остается неясным, как влияют на размер зоны инфаркта эндогенные опиоиды при воздействии реперфузии in vivo. Впер-
вые будет изучено участие эндогенных агонистов ОР в повышении устойчивости сердца к действию реперфузии.
Цель исследования: выяснить, влияют ли эндогенные агонисты ОР на размер зоны инфаркта при действии реперфузии in vivo.
Материал и методы
Исследование было выполнено на 120 крысах-самцах линии Вистар массой 250-300 г. Животных наркотизировали внутрибрюшинным введением а-хлоралозы (60 мг/кг, внутрибрюшинно, Sigma) и подключали к аппарату искусственной вентиляции легких "SAR-830 Series" (CWE Inc. США). Коронароокклюзию и реперфузию осуществляли по методу J.E. Schultz и соавт. [9]. Регистрация АД осуществлялась с помощью датчика давления SS13L (BiopacSystemInc., Goleta, Калифорния, США), сопряжен-
